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배지가 들어 있는 멀티웰 플레이트에 미세아교세포 배양물을 채취합니다.
테스트 웰에 있는 배지의 절반을 은 나노입자가 포함된 배지로 교체하고 대조군 웰에 있는 배지를 비히클 배지로 교체합니다. 인큐베이트.
미세아교세포는 나노입자를 내재화하고 활성화되며 전염증성 사이토카인을 방출합니다.
비히클 배지와 이러한 사이토카인을 포함하는 컨디셔닝된 배지를 수집 튜브에 장착된 필터로 옮깁니다.
사이
토카인을 유지하면서 나노입자를 제거하기 위해 원심분리합니다.
필터를 새 수집 튜브로 뒤집고 원심분리하여 배지를 수집합니다. 새 미디어를 추가합니다.
다음으로 시상하부 신경 배양을 취합니다.
제어 웰 매체의 절반을 차량 매체로 교체하고 테스트 웰 매체를 컨디셔닝된 매체로 교체합니다. 인큐베이트.
사이토카인은 시상하부 뉴런의 수용체에 결합하여 신경 사멸을 유도하는 신호 전달 경로를 활성화합니다.
레사주린을 넣고 배양합니다.
살아있는 세포에서 탈수소효소 효소는 약한 형광 레사주린을 형광 레소루핀으로 환원시킵니다.
형광을 측정합니다.
형광 감소는 시상하부 신경 세포 사멸의 증가를 나타내며 나노입자 유발 신경독성을 시사합니다.
시작하려면 각 플레이트 웰에서 200마이크로리터의 상청액 배지를 수집하고 나노입자를 제거하는 필터에 적재하여 미세 원심분리기 튜브 위에 놓습니다.
나노입자를 여과할 때 나노입자의 크기, 모양 및 농도가 여과 효율에 영향을 미치므로 사전에 여과를 테스트하는 것이 좋습니다.
이제 튜브를 실온에서 14,000g에서 15분 동안 회전시킵니다. 그런 다음 나노 입자가 포함된 플로우스루를 버리고 필터를 거꾸로 새 수집 튜브에 넣습니다. 필터를 1,000g에서 거꾸로 2분 동안 돌 려 사이토카인을 함유한 농축된 컨디셔닝 배지를 수집합니다.
다음으로, 갓 만든 보충된 DMEM으로 수집량을 400마이크로리터로 늘리고 튜브를 얼음 위에 보관합니다. 이 분석을 위해, 미세아교세포 배양을 확립하기 위해 설명된 것과 동일한 방법을 사용하여 냉동 스톡으로부터 시상하부 세포를 확립합니다. 궁극적으로 이를 사용하여 200마이크로리터의 보충된 DMEM에 웰당 5,000개의 세포가 있는 검은색 벽의 투명 바닥 플레이트를 시드합니다.
배양 24시간 후, 100마이크로리터의 배지를 제거하고 활성화된 미세아교세포 배양에서 수집한 100마이크로리터의 여과 및 농축 배지로 교체합니다. 그런 다음 표준 조건에서 플레이트를 24시간 동안 배양합니다. 다음날 각 웰에 22마이크로리터의 레사주린 시약을 추가하고 20분 동안 배양을 계속합니다. 그런 다음 다중 모드 분광 광도계를 사용하여 형광 측정을 수행하여 상대 형광 단위 측면에서 세포의 생존 가능성을 추정합니다.