0 조회수 • 3:22 분 • July 8th, 2025
1개의 구멍 그리드에 장착된 건강한 제브라피쉬 유충과 뇌 손상을 입은 제브라피쉬 유충의 수지로 포매되고 화학적으로 고정된 초박형 뇌 절편을 가져 와십시오.
절편은 현미경 이미징 중 이미지 대비를 향상시키기 위해 중금속으로 염색됩니다.
그리드를 샘플 홀더에 놓고 홀더를 현미경 챔버로 옮깁니다.
전자빔을 생성하는 전자총 아래에 그리드를 정렬합니다.
전자기 렌즈 (electromagnetic lens) 와 코일 (coil) 의 배열은 전자 빔을 섹션에 집중시킵니다.
샘플 홀더를 이동하여 단면을 래스터 패턴으로 스캔합니다.
전자빔이 조직 절편을 통과함에 따라 염색된 전자 밀도 영역은 더 많은 전자를 산란시키는 반면, 염색되지 않은 영역은 전자를 전송합니다.
검출기는 이러한 전자 신호를 수집하여 고해상도 뇌 이미지를 생성합니다.
대조군과 비교하여 손상된 뇌는 손상 유발 신경변성의 특징인 수많은 세포내 봉입물을 포함하는 식세포 미세아교세포를 나타냅니다.
주사 전자 현미경 또는 SEM에 샘플을 장착하려면 다중 그리드 샘플 홀더에 섹션이 있는 트랜스퍼 박스의 그리드를 배치하고 SEM의 챔버로 옮깁니다. 텍스트 프로토콜에 따라 검출기를 정렬한 후 스캔할 전체 영역이 이미지 창에 맞도록 축소하여 샘플을 사전 조사합니다. 조리개가 120마이크로미터로 변경되고 이미지의 초점이 흐려지면 축소 영역 스캔 옵션을 사용하여 스캔 영역을 가능한 한 좁게 만듭니다.
그런 다음 프레임 속도를 약 1-2초 안에 스캔하도록 설정합니다. 그런 다음 최소 100배 확대하고 작은 영역을 10초 동안 스캔합니다. 해당 부위의 밝기가 여전히 변하면 사전 조사를 계속하십시오. 이 영역이 주변 환경에 비해 밝기가 변하지 않으면 사전 조사로 충분합니다.
초점이 맞춰져 있는 동안 가장 밝은 영역이나 특징을 선택하고 세부 사항이 보이도록 스캔 속도를 설정합니다. 현미경 소프트웨어에서 히스토그램을 주의 깊게 관찰하여 밝기와 대비를 조정하여 모든 픽셀을 다이내믹 레인지에 유지합니다. 가장 어두운 영역과 피처에 대해서도 동일한 작업을 수행합니다. 밝은 영역으로 돌아가서 히스토그램의 양쪽에 약간의 공간이 있는지 다시 확인하십시오.
4-6단계에서 4-8단계의 경우 전체 영역이 다이내믹 레인지 내에 있도록 밝기와 대비를 매우 신중하게 조정해야 합니다.
스캔할 전체 영역이 이미징 창에 맞도록 축소하고 대면적 획득 프로그램을 시작합니다. 그런 다음 마법사 옵션을 사용하여 화면에서 영역을 선택하여 모자이크를 설정합니다.
필요한 세부 사항에 따라 2-5나노미터의 픽셀 크기를 사용하고 주사 투과 전자 현미경 또는 STEM의 경우 체류 시간을 3마이크로초로 설정합니다. 최적화를 눌러 현미경 설정을 확인하면 필요한 시간이 표시됩니다. 그런 다음 외부 스캔 생성기를 다시 켜고 계속을 누릅니다.
본 논문은 전자현미경을 사용하여 제브라피시 치어의 뇌 절편을 이미징하는 방법론을 상세히 설명합니다. 주요 목적은 건강한 뇌 조직과 손상된 뇌 조직을 비교하여 신경퇴행성 변화를 확인하는 것입니다.
제브라피쉬 치어 뇌 손상의 고해상도 이미징은 초미세 구조 수준에서 신경퇴행성 표현형을 시각화함으로써 초기 표적 검증 단계에서 기전적 위험을 감소시킬 수 있게 합니다. 이러한 접근 방식은 세포 병리학적 특징을 기능적 결과와 연결함으로써 전임상 모델의 예측 신뢰도를 높이며, 신경퇴행성 질환 연구 프로그램의 진행 여부(go/no-go) 결정에 중요한 정보를 제공합니다. 본 방법은 재현 가능하고 정량적인 형태학적 판독값을 통해 발견 단계부터 전임상 검증까지의 중개 연구 연속성을 향상시킵니다.
이 방법은 타겟 검증부터 전임상 영상 단계까지의 발견 연속체(discovery continuum)에 통합되어, 표현형 스크리닝 히트(phenotypic screening hits)에 대한 초미세구조적 확인을 제공하고 조직병리학적 충실도에 기반한 진행/중단(go/no-go) 기준 설정을 지원합니다.
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마지막 업데이트: 29 8월 2026