January 23rd, 2012
Calmodulin (CAM) 풀다운 분석은 다양한 단백질과 CAM의 상호 작용을 조사하기 위해 효과적인 방법입니다. 이 방법은 캠 결합 단백질의 효과적이고 구체적인 분석을 위해 CAM - 세파 로스 구슬을 사용합니다. 이것은 세포 기능의 CAM 신호를 탐험하기위한 중요한 도구를 제공합니다.
이 절차의 전반적인 목표는 칼슘 의존성 방식으로 Cal Modlin에 결합하는 단백질을 테스트하는 것입니다. 이것은 먼저 관심 단백질을 수집함으로써 달성됩니다. 다음으로 단백질 결합을 위해 칼모듈린 혈청 속도가 준비됩니다.
그런 다음 단백질을 칼모듈린 혈청 속도로 배양합니다. 마지막으로, 칼슘 의존성 방식으로 결합하는 단백질이 암시됩니다. 궁극적으로, 서양의 혈액 분석을 통해 칼슘의 유무에 관계없이 칼모듈린에 결합하는 단백질을 보여주는 결과를 얻을 수 있습니다.
calm 크로마토그래피 및 면역 침전과 같은 다른 기존 방법에 비해 이 기술의 주요 장점은 단백질과 시간이 덜 필요하다는 것입니다. 이 방법은 칼슘 의존성 방식으로 암소 모들린에 결합하는 단백질, 번역 후 변형이 암소 모들린에 대한 결합에 어떤 영향을 미칠 수 있는지와 같은 암소 모들린 신호 분야의 주요 질문에 답하는 데 도움이 될 수 있습니다. 비드 처리 단계가 필수적이고 비드의 소생 및 유지에 대한 설명은 직접 않고는 따라가기 어렵기 때문에 이 방법의 시각적 시연이 중요합니다.
균질한 조직을 준비하기 위해 관심 있는 재조합 단백질을 발현하는 플라스미드를 함유한 바이러스를 유기형 해마 절편에 주입합니다. 이 예에서 재조합 단백질은 GFP 태그가 지정된 Neuro Grandin입니다. 바이러스 주입 후 약 12-18시간 후에 조직이 하룻밤 사이에 단백질을 발현하도록 하고 페트리 접시에 1ml의 해부 완충액을 추가합니다.
인서트가 있는 배양된 조직을 페트리 접시에 옮기고 삽입물에 2ml의 해부 완충액을 추가하여 메스를 사용하여 조직을 담그십시오. 거꾸로 된 목초지 피펫으로 삽입 멤브레인에서 조직을 부드럽게 긁어내어 5-10개의 유기형 해마 조직 조각을 수집합니다. 부유 조직을 1.5ml 마이크로 원심분리기 튜브로 옮깁니다.
다음으로, 1500 RCF에서 1분 동안 샘플을 원심분리합니다. 박리 완충액에서 조직을 분리하려면 흡인으로 상층액을 조심스럽게 제거합니다. 펠릿을 방해하지 않도록 하십시오.
사용된 각 슬라이스에 대해 절단 팁이 있는 1밀리리터 피펫으로 조직을 30-60마이크로리터의 균질화 완충액에 추가한 다음 균질화를 원래 튜브로 되돌리기 전에 유봉을 사용하여 철저히 균질화합니다. 세포 파편을 제거하기 위해 1100 RCF에서 남은 균질액을 10분 동안 원심분리하고 펠릿의 오염을 피하면서 흡인에 의해 스내트를 조심스럽게 수집합니다. 상등액의 10%를 입력의 샘플로 분취합니다.
사용을 위해 cal sero beads를 준비하는 동안 남은 상등액을 얼음 위에 보관하십시오. 나중에, 각 풀다운 피펫에 대해 400 마이크로 리터의 현탁 cal Modlin Sero를 상대적으로 평평한 바닥을 가진 2 밀리리터 마이크로 원심 분리 튜브로 속도를 조절하여 배양 중에 표면적과 비드와의 용액 상호 작용을 최대화하고, 마이크로 원심 분리 튜브를 측면으로 회전시켜 비드를 적신 다음 21에서 비드를 원심 분리하고, 000. 30초 동안 RCF.
그리고 흡인에 의해 상층액을 조심스럽게 제거합니다. 칼슘 cal modlin 결합 단백질을 끌어 내리는 데 사용되는 비드에 2 밀리 몰 염화칼슘을 포함하는 각각의 균질화 완충액 100 마이크로 리터에서 비드를 세척하기 위해 비드를 방해하지 않도록하십시오. 또는 apo cal modlin 결합 단백질을 끌어 내리는 데 사용되는 구슬에 대한 2 밀리 몰 E-D-T-A-A 알려진 칼슘 킬레이터.
튜브를 Resus에 부드럽게 두드립니다. 비드와 원심분리기를 1500 RCF에서 1분 동안 매달아 둡니다. 흡인에 의해 상층액을 조심스럽게 제거하고, 단백질이 칼모듈린 스페로에 결합하여 아래로 당겨지도록 비드를 방해하지 않도록 합니다.
먼저 SNAT를 두 개의 동일한 볼륨으로 분할합니다. 분취액당 상태에 따라 적절한 양의 염화칼슘 또는 EDTA를 상층액에 최종 농도 2밀리몰까지 첨가합니다. 적절한 균질화 완충액에서 세척된 비드에 상층액을 추가합니다.
튜브를 가볍게 두드려 섞습니다. 셰이커에서 섭씨 4도에서 3시간 동안 샘플을 배양합니다. 우리는 바인딩의 효율성을 높이기 위해 30분마다 구슬을 매달아 놓습니다.
그런 다음 1500 RC F에서 3분 동안 샘플을 원심분리합니다. 결합되지 않은 단백질 샘플로 50마이크로리터의 상등액을 제거하고 흡인에 의해 남아 있는 스내트를 조심스럽게 제거하고 폐기합니다. 100마이크로리터의 적절한 균질화 완충액으로 비드를 이전과 같이 세 번 세척합니다.
이 절차에서 가장 어려운 단계는 효율적인 방식으로 표적 단백질을 추출하는 것입니다. 성공을 보장하는 가장 좋은 방법은 올바른 종류의 튜브를 사용하여 비드 손실을 최소화하고 용리 완충액 가온에서 비드를 적절하게 재현탁하는 것입니다. 사전에 용출 완충액은 또한 50마이크로리터의 엘루시안 완충액에서 단백질을 비드로 용리하는 데 크게 도움이 될 수 있습니다.
칼슘을 함유한 완충액에 균질화되어 결합된 시료는 EDTA를 함유한 완충액에 암시되고 EDTA를 함유한 완충액이 있는 시료는 칼슘으로 암시됩니다. 구슬을 실온에서 셰이커에서 30분 동안 배양합니다. 약 5분마다 튜브를 부드럽게 두드려 구슬을 섞습니다.
1500 RCF에서 비드를 3분 동안 원심분리하고 흡인에 의해 결합된 단백질 샘플에 대한 50마이크로리터의 SNAT를 조심스럽게 제거합니다. 구슬을 방해하지 않도록 하십시오. SDS 페이지 및 웨스턴 블로팅(western blotting)을 수행하여 반대 조건에서 관심 단백질을 양성 대조군으로 식별합니다.
Cal Modlin과 결합하는 것으로 알려진 Prop Pro 단백질. 이 그림은 내인성 신경 그랜딘과 비교하여 GFP TAG Neuro Grandin의 Cal MODLIN 결합을 테스트하는 Cal Modlin 풀다운 분석의 예를 보여줍니다. 동질성 입력은 GFP neuro Grandin이 내인성 neuro Grandin의 알려진 결합에 기초하여 예상대로 내인성 neuro grandin 및 calcium calmodulin 의존성 kinase 2 외에 발현되었음을 보여줍니다.
GFP에 의하여 표를 붙인 Neuro Grandin는 칼슘의 결석에서 암시되고 칼슘의 면전에서 묶지 않았다. 대조적으로, 대조군 칼슘 칼모듈린 의존성 키나아제 2는 칼슘이 있는 경우에만 암시되었으며 칼슘이 없을 때는 결합되지 않았습니다. 이는 칼모듈린 비드가 제대로 작동하고 EEU가 효율적임을 보여줍니다.
가장 중요한 것은, 이것은 GFP 신경 미소가 내인성 모양과 유사한 방식으로 Apoch Cal Modlin에 묶는다는 것을 보여주며, GFP 태그가 재조합 단백질의 기능을 변경하지 않았다는 것을 시사합니다. 이 기술을 마스터하면 SDS 페이지 및 서양 혈액 분석을 포함하지 않고 적절하게 수행하면 6시간 내에 완료할 수 있습니다.이 절차를 시도하는 동안 칼슘 농도의 변화는 전체 실험을 손상시킬 수 있으므로 모든 샘플과 튜브에 적절한 조건에 대한 라벨을 붙이는 것을 기억하는 것이 중요합니다. 이 동영상을 시청한 후에는 칼슘 의존적 방식으로 CAL 모듈에 결합하는 특정 단백질의 능력을 효율적으로 결정하는 방법을 잘 이해하게 될 것입니다.
관심 단백질을 수집하고, 적절하게 준비된 공동 조절제 SRO 속도로 배양하고, 결합된 단백질을 피하고, 서양의 혈액 분석을 사용하여 테스트합니다.
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칼모듈린(CaM) 풀다운 분석은 칼슘에 의존적인 방식으로 다양한 단백질과의 CaM 상호작용을 조사하는 데 사용되는 방법입니다. 이 기술은 CaM 결합 단백질의 효율적이고 특이적인 분석을 위해 CaM-세파로즈 비드를 활용하여 세포 기능에서의 CaM 신호전달에 대한 통찰력을 제공합니다.
Understanding calcium-dependent protein interactions is critical for target validation in neuroscience and signaling pathways. The CaM pull-down assay enables efficient assessment of calmodulin-binding proteins under defined calcium conditions, supporting mechanistic de-risking in early discovery. This approach provides quantitative, reproducible data to prioritize targets with strong functional relevance to synaptic plasticity, muscle contraction, and immune response.
The CaM pull-down assay fits within early discovery to assess target engagement before lead identification, particularly for modulators of calcium signaling.