Name: 배아 칙의 망막에서 비켜 Electroporation에 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-02-05T13:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 15 s
Description: 배우세요 병아리 배아 망막 표적 주사 및 체외 전기천공 기법을 통해 유전자 발현과 망막 발달을 연구하는 방법을. 이 기술은 단일 세기 수준에서 망막 세포 유형을 시각화하여 발달생물학 및 신경과학 연구에 활용됩니다.

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우리는 그의의 HD 카메라 이용 (캐논 VIXIA HFS100) 동안 집게 Maaz Enver 감사드립니다. 이 작품은 NIH (EY018738), 척수 연구에서 뉴저지위원회 (08-3074-SCR-e-0과 10-3091-SCR-E-0) 및 부시 바이오 메디컬 연구 대상에서 교부금에 의해 부분적으로 지원되었다.

이전에 사소한 수정과 함께 다른 주피터 동영상 2, 서류 3 설명된대로 프로토콜의 일부 지역이 수행되므로 우리는 여기에 자세히들을 논의하지 않습니다. 1. 에그 처리 및 니들 준비 <ol><li> 계란이 최대 1 일주일 동안 약 13도 ° C에서 쿨러 와인에 저장할 수 있습니다. 온도가 너무 높은 경우에는 낮은 온도가 높은 사망률을 초래하면서, 태아는 비정상적으로 개발하기 시작합니다. 일단 와인 쿨러에서 알을 꺼내 큰 엔드와 세로로 계란을 설정할 품어 준비가 된 것입니다. 37.5 ° C 배양기에서 그들을 투입하기 전에 최소한 2 시간 동안 실내 온도에 계란을 보관. </li><li> 햄버거와 해밀턴 단계 22 4-5에 나와 있습니다 배아를 얻기 위해 배아 4 일 약 96-1백시간 대한 알을 품어. </li><li> 뽑아 유리 모세관 튜브에서 micropipette의 바늘을 준비하고 해부 마이크로 미만의 팁을하다0.1 μm의 직경과 20mm 테이퍼에 관한 팁 오프닝을 얻을 수있는 핀셋과 범위. 더 큰 팁을 바늘은 어려움이 작은 조언 DNA의 솔루션을로드하고 제공하는 데 문제가있는 동안 vitelline 막 시작 한거지 있습니다. </li><li> micromanipulator에 탑재된 0.1 ML 해밀턴 Gastight 주사기에 바늘을 연결합니다. 주사기에 바늘을 부착할 수 Masterplex 실리콘 튜브의 작은 조각을 사용합니다. 연결 때문에 꼭 어떤이 첨부 파일을 봉인하기 위해 미네랄 오일을 추가할 필요가 없습니다. </li><li> 3-6 μg / μl와 parafilm의 조각에 빠른 그린 (0.025 %)의 0.2 μl를 이르는 농도와 리포터 플라스미드 DNA 용액 2 μl를 섞는다. 빠른 녹색 염료는 주사를 시각화하는 데 도움이 될 것입니다. 천천히, 혼합물과 바늘을로드합니다. </li><li> 180 °에 대해 부드럽게 계란을 회전하고 몇 분 후 원래 위치로 다시 회전하고 electroporation을 위해 설정을 기다릴 내부의 멤브레인에서 vitelline 멤브레인을 풀고있다. </li><li> 그렇게해야 닦아배아에 감염을 피하기 위해 70 %의 에탄올과 EPS 및 난각. </li><li> 즉시 AA 크기의 포셉 한 쌍을 가진 에어 셀 위에 계란에 작은 구멍을 만듭니다. 알 껍질을 깰하지 않도록주의하십시오. 작은 조각에게 작은 창을 만드는 한 번에 하나씩 제거합니다. 조심스럽게 vitelline 막에 닿지 않고 집게를 사용하여 내부 멤브레인를 제거합니다. </li></ol> 2. 사출 및 Electroporation <ol><li> 시선을 입력하고 부리쪽으로 향하고 혈관의 기본 번들로 측면 뇌 또는 심장, 위치 바늘 콘트라 손상을 방지합니다. </li><li> 바늘의 갑작스런 약한 추진하여 vitelline 막, 공막엔, 망막 및 유리체 유머를 통해 피어스. 바늘은 안구의 다른 쪽 끝을 통해 pierces 경우 어떤 주요 혈액 혈관을 손상하지 않는 한 그냥가요이어야합니다. </li><li> 천천히 개방의 가장자리에 바늘을 뒤로 물러나게하고 안구의 외벽에 거의 미동 놓으십시오. </li><li> Insert 공막엔와 망막 사이의 하위 망막 우주로 바늘. </li><li> 당신은 안구의 측면을 복잡하게하고 볼록한 만들어 망막의 안쪽으로 밀어 녹색 솔루션을 시각화 때까지 DNA를 주입. </li><li> 귀하의 바늘 배치가 올바르지 않은 경우 다음의 눈을 볼의 중간을 채우는 유리체 유머 내부 확산의 DNA 용액을 볼 수 있습니다. 당신이 망막에 손상을 경우에도 너무 많이 나서 유전자 솔루션은 안구 밖으로오고있다 볼 수 있습니다. </li><li> 천천히 바늘을 제거하고 즉시 PBS에 몸을 담글 후 계란 내부에 병렬 전극 배치합니다. 주입 눈이 전극 사이에 위치되도록하는 방식으로 양수로 잠수함에 전극을 누르십시오. 그들을 배치하는 동안 전극과 함께 모든 주요 혈관이나 심장을 만지는 피하십시오. 그 DNA는 하위 망막 우주에서 긍정적인 전극에 대한 망막에 이송 될 수 있도록 마이너스 전극은 주입 측면에 있어야합니다. 전기950 MS 간격으로 50 MS위한 15V의 5 펄스와 망막을 porate. </li><li> 조심스럽게 전극을 제거하고 투명 스카치 테이프의 조각과 계란의 창문을 봉쇄. </li><li> 라벨 및 인큐베이터에 다시 투입하기 전에 주입 계란 날짜를 기입하십시오. 일반적으로, 그것은 전체 electroporation 프로세스를 완료하는 데 5-3 분 정도 소요됩니다. </li><li> GFP 발현은 electroporation 후 8시간 초부터 볼 수 있습니다. 배아는 수확하기 전에 원하는 단계에 도달할 때까지 그러나 기다릴 수 있습니다. </li></ol> 3. 대표 결과 우리의 연구에서 우리는 망막 세포 개발에 관여하는 유전자 발현의 조절을 연구하기 위해 다양한 플라스미드 구조를 사용합니다. 이 비디오에서는 pCAG-GFP (transfection 제어)이 성공적인 분사와 electroporation을 수행하는 데 사용되었다. 그러나 리포터 유전자 (GFP, RFP 등)와의 플라스미드 구조를 사용할 수 있습니다. GFP 발현은 ele 후 8시간 초부터 볼 수있다하더라도ctroporation, 우리는 일반적으로 하루 6 달걀 (E6)와 일부터 수확 시작합니다. Electroporated 망막은 배아 밖으로 해부하고 내장과 sectioning 전에 형광 해부 현미경 하에서 분석했다. 일반적으로 리포터 유전자 발현은 성공적인 electroporation (그림 1) 후 최소 망막의 4 분의 1에서 볼 수 있습니다. transfected 망막 조직은 더 이상 세포 morphologies의 명확한 시각화를 위해 sectioning을 통해 분석되었다. 셀 유형 특정 마커 (Brn3a, Pax6 등) 셀 - 특정 GFP의 표현의 허용 특성화 (그림 2)를 사용하여 Immunohistochemistry. <img src="/files/ftp_upload/3792/3792fig1.jpg" align="Figure 1" /> 1 그림. 기자 플라스미드 결과 긍정적인 GFP의 표현의 성공적인 electroporation. 닭 배아 망막은 주입과 electroporated 배아 일 4에서와 배아 일 6 시에 수확했다. 망막의 최소 25 %는 성공적으로 (= 탑 뷰, B transfected되었다= 아래보기). 스케일 바 = 1mm. <img src="/files/ftp_upload/3792/3792fig2.jpg" align="Figure 2" /> 그림 2. GFP의 특성화는 immunohistochemistry를 사용하여 망막 세포를 표현. E7 단계에서 망막 조직을 표현 GFP는 고정하고 sectioned했다. 이러한 섹션은 다음 각 셀을 특정 마커 물들일되었다. Brn3a은 Pax6가 수평 amacrine 및 신경절 세포 (B)를 결정하는 데 사용하는 도중에 신경절 세포 (A)를 결정하는 데 사용되었다. 스케일 막대 = 50 μm의.

<ol><li>Doh, S. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Analysis+of+retinal+cell+development+in+chick+embryo+by+immunohistochemistry+and+in+ovo+electroporation+techniques%5BTitle%5D)+AND+%22BMC.+Dev.+Biol%22%5BJournal%5D)">Analysis of retinal cell development in chick embryo by immunohistochemistry and in ovo electroporation techniques.</a> BMC. Dev. Biol. 10, (2010).</li>
<li>Blank, M. C., Chizhikov, V., Millen, K. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+Ovo+Electroporations+of+HH+Stage+10+Chicken+Embryos%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">In Ovo Electroporations of HH Stage 10 Chicken Embryos.</a> J. Vis. Exp. (9), e408-e408 (2007).</li>
<li>Nakamura, H., Funahashi, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Introduction+of+DNA+into+chick+embryos+by+in+ovo+electroporation%5BTitle%5D)+AND+%22Methods%22%5BJournal%5D)">Introduction of DNA into chick embryos by in ovo electroporation.</a> Methods. 24, 43-48 (2001).</li>
<li>Hamburger, V., Hamilton, H. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+series+of+normal+stages+in+the+development+of+the+chick+embryo.+1951%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Dyn.%22%5BJournal%5D)">A series of normal stages in the development of the chick embryo. 1951.</a> Dev. Dyn.. 195, 231-272 (1992).</li>
<li>Hamburger, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+stage+series+of+the+chick+embryo%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Dyn%22%5BJournal%5D)">The stage series of the chick embryo.</a> Dev. Dyn. 195, 273-275 (1992).</li>
</ol>

동물 실험의 모든 Rutgers 대학 기관 동물 보호 시설위원회에 의해 승인되었다.

망막 주사를 타겟 및 E4 단계에서 배아 망막에서 비켜 electroporation에 특별히 단일 세포 수준에서 모두 6 개 주요 망막 세포 유형을 시각화하는 능력의 결과로 망막 전구 세포를 타겟팅할 수 있습니다. HH10에서 비켜 electroporation에서 (~ E1.5)을 대상으로 광 소포는 눈을 형성 발전 전지를 transfect 수 있습니다. 그러나 이러한 세포는 현재 매우 높은 매출액을 가지고 있으며이 방법은 망막 세포에 대한 특정되지 않습니다. 그것은 높은 세포 회전율 속도가 입은 안정적인 표현을 방지하는 것입니다. E4으로 배아는 안구의 주요 구조는 모든 형성하지만 망막에있는 세포의 대다수가 여전히 망막 줄기 세포임을 충분히 젊은되는만큼 개발되었습니다. 이 방법은 또한 흥미 유전자는 망막의 정상 개발 및 / 또는 질병 연구를 타겟팅할 수 있습니다 기능 연구 / 손실을 얻기 위해 적용할 수 있습니다. 우리는이 기술을 발표 후이전...

<table border="1"><tbody><tr><td> 시약의 이름 </td><td> 회사 </td><td> 카탈로그 번호 </td><td> 댓글 </td></tr><tr><td> 수정된 병원체 프리 (SPF) 흰색 레그혼종 닭고기 달걀 </td><td> 일출 농장 (Catskill, NY) </td><td></td><td></td></tr><tr><td> 치킨 계란 인큐베이터 </td><td> GQF 제조, 사바나, 조지아 </td><td> 모델-1550 </td><td> 60 %의 습도와 37.5 ° C.로 설정 </td></tr><tr><td> 유리 모세관 튜브 </td><td> 세계 정밀 악기 주식 회사 </td><td> TW150F-4 </td><td></td></tr><tr><td> 0.1 ML의 주사기 </td><td> 해밀턴 (주) 리노, 네바다 </td><td> Gastight 1710 </td><td> 또는 1ml 주사기 잘으로 사용할 수 있습니다 </td></tr><tr><td> Masterflex 실리콘 (과산화수소) 튜브 </td><td> 콜 - Parmer </td><td> HV-96400-13 </td&gt; <td> 주사기로 유리 바늘을 부착을위한 작은 조각 (1 센티미터) 잘라내기 </td></tr><tr><td> 족집게 </td><td> 뒤몽 </td><td> AA </td><td></td></tr><tr><td> Micromanipulator </td><td> 세계 정밀 악기 주식 회사 </td><td> M3301-M3 </td><td></td></tr><tr><td> 플라스미드 DNA와 </td><td></td><td></td><td> pCAG-GFP는 박사 코니 Cepko로부터 차용되었다 </td></tr><tr><td> 빠른 그린 FCF </td><td> 시그마 - 올드 리치 </td><td> F7252 </td><td> PBS와 0.025 %로 희석 </td></tr><tr><td> 펄스 발생기 </td><td> 하버드 장치, MA </td><td> BTX ECM 830 </td><td> 스퀘어 웨이브 제너레이터 </td></tr><tr><td> 전극 </td><td> 하버드 장치, MA </td><td> BTX 모델 514 </td><td> 우리 전극은 3-5mm 떨어져 잊어버리고 있었다 </td></tr><tr><td> 흑백 디지털 카메라 </td><td> 자이스 혈구, 독일 </td><td>xiocam MRM </td><td></td></tr><tr><td> 형광등 해부 현미경 </td><td> Leica 이크로 시스템즈, 독일 </td><td> Leica MZ16FA </td><td></td></tr><tr><td> 입식 형광 현미경 </td><td> 자이스 혈구, 독일 </td><td> 자이스 혈구 Axio 영상기 A1 </td><td></td></tr></tbody></table>

배아 칙의 망막에서 비켜 electroporation에

In Ovo Electroporation in Embryonic Chick Retina

닭 배아 망막 높은 척추 동물의 망막 개발을 공부하는 훌륭한 도구입니다. 때문에 대형 및 외부 발전으로 인해, 그것은 재조합 DNA / RNA 기술을 사용하여 병아리 배아 망막를 조작하는 비교적 매우 쉽습니다. 태아의 망막에 DNA / RNA 구조의 Electroporation은 망막 개발하는 동안 망막 줄기 / 전구 세포에서의 유전자 조절을 연구하는 큰 잇점을 가지고있다. 이러한 리포터 유전자 분석, 표현을 통해, 유전자 등 (shRNA) 허물고 유전자 등 assays의 다른 유형은 electroporation 기술을 사용하여 수행할 수 있습니다. 이 비디오는 타겟 망막 주사를 보여주고 배아 일 4 (E4)에 관한 햄버거와 해밀턴 무대 22-23,에서 배아 여자의 망막에 비켜 electroporation 인치 마커로 녹색 형광 단백질 (GFP)을 표현하는 플라스미드 DNA를 직접으로 전달됩니다 의하여 여기 비켜 electroporation 기술에 신속하고 편리하게 보여줄병아리 배아 subretinal 공간과 망막 줄기 / 전구 세포로 DNA의 이해를 촉진하기 위해 전기 펄스에 의해 따라갔다. E4에서 망막 주입과 electroporation의 새로운 방법은 E1.5 2 시에 주입과 electroporation의 전통적인 방법으로 어렵게되었습니다 후반 태생의 뉴런 1을 포함한 모든 망막 세포 유형의 시각화 수 있습니다.

이 비디오의 전반적인 목표는 타겟 망막 주사를 수행하는 방법을 보여주기입니다<em&gt; 비켜에서</em배아 일 4 (E4)에 관한 햄버거와 해밀턴 단계 22-23,에서 병아리 배아 망막으로의 DNA / RNA 구조의&gt; electroporation. 이 기술은 유전자 발현, 유전자 조절, 그리고 여자의 망막 개발에 형태학의 변화를 연구하는 것은 매우 유용합니다.

배아 칙의 망막에서 비켜 Electroporation에

닭 배아 망막은 고등 척추동물의 망막 발달을 연구하기 위한 매우 우수한 도구입니다. 크기가 크고 외부에서 발달한다는 특성 덕분에, 이는...

안녕하세요, 저는 Mohammed Islam입니다. 저는 Rutger University 생의학공학과 Lee 교수님 연구실의 대학원생입니다. 오늘은 표적 망막 주사와 in vivo 전기천공법 수행 방법을 보여드리겠습니다.닭 배아의 경우, 부화 후 약 96시간이 경과한 배아 4일 차 단계의 닭 배아 망막을 사용할 것입니다. 이 기술은 망막 발달 연구를 위한 새로운 방법으로 간주됩니다. 이 방법은 특히 망막 전구 세포를 표적으로 하여, 모든 망막 세포 유형을 단일 세포 수준에서 시각화할 수 있게 합니다.또한, 관심 유전자를 표적으로 하여 망막의 정상적인 발달 또는 질환을 연구하는 기능 획득 또는 상실 연구에도 적용할 수 있습니다. X는 약 13 °C의 와인 냉장고에 최대 일주일 동안 보관할 수 있습니다. 온도가 너무 높으면 배아가 비정상적으로 발달하기 시작하며, 온도가 너무 낮으면 폐사율이 높아집니다.배양 준비가 되면 와인 냉장고에서 알을 꺼내 큰 쪽이 위로 향하도록 수직으로 세웁니다. 37.5 °C Yes 배양기에 넣기 전, 최소 2시간 동안 실온 상태로 둡니다. 알을 약 96시간 동안 배양하며, 이는 배아 발달 4일째(Embry Day four)에 해당합니다.Hamburger 및 Hamilton 단계 22의 배아를 얻기 위해, 풀드 글라스 모세관 튜브로부터 PP 마이크로피펫 니들을 제작하고, 해부 현미경 하에서 핀셋으로 팁 끝을 부러뜨려 직경 약 0.1 µm의 개구부와 2 mm의 테이퍼를 형성합니다. 팁의 크기가 너무 크면 비텔린 막을 관통하기 어렵습니다. 반면, 팁이 너무 작으면 DNA 용액을 흡입하고 주입하는 데 어려움이 있습니다. 제작된 니들을 마이크로 매니퓰레이터에 장착된 Hamilton 위장 시린지에 연결합니다.바늘을 주사기에 연결하려면 작은 조각의 master plex 실리콘 튜브를 사용하십시오. 연결 부위가 묶여 있으므로 밀폐를 위해 미네랄 오일을 추가할 필요는 없습니다. 이 연결 부위를 밀폐하려면, 3~6 µg/µL 농도의 리포터 플라스미드 DNA 용액 2 µL와 fast green 0.2 µL를 작은 조각 위에 섞으십시오. 주변의 fast green 염료는 주입 과정을 시각화하는 데 도움이 됩니다. 혼합물을 바늘에 천천히 채워 내막으로부터 유리막을 분리하십시오. 알을 약 180도 정도 부드럽게 회전시키고 몇 분 동안 기다리십시오.그 다음, 원래 위치로 다시 회전시킨 후 전기천공법(electroporation)을 위해 설정합니다. 배아의 감염을 방지하기 위해 핀셋과 난각을 70% ethanol로 닦아냅니다. 핀셋을 사용하여 기실(air cell) 바로 윗부분의 알에 작은 구멍을 냅니다.달걀 껍질이 깨지지 않도록 주의하십시오. 작은 조각들을 하나씩 제거하여 작은 창을 만듭니다. 뇌나 심장이 손상되지 않도록 생존막을 건드리지 말고 핀셋을 사용하여 내부 막을 조심스럽게 제거하십시오.화살표로 표시된 바와 같이, 눈으로 들어오는 주요 혈관다발의 반대편에 바늘을 위치시키고 부리 방향을 향하게 합니다. 생체막, 공막, 망막 및 유리체를 관통하여 찌릅니다. 바늘을 갑자기 밀어 넣어 바늘이 눈의 반대편 끝을 관통하더라도, 주요 혈관을 손상시키지 않는 한 괜찮습니다.개구부 가장자리에서 바늘을 천천히 뒤로 당겨 안구 외벽에 거의 접하도록 배치합니다. 공막과 망막 사이의 망막하 공간으로 바늘을 삽입합니다. 녹색 용액이 안구 측면을 채우고 망막을 안쪽으로 밀어내어 돌출부가 형성되는 것이 보일 때까지 DNA를 주입합니다.다음은 돌출부(bulge)가 형성되며 성공적으로 주입된 또 다른 좋은 사례이며, 이는 이 도식에 설명되어 있습니다. 바늘의 위치가 정확하지 않았다면, DNA 용액이 유리체 내부로 퍼지며 안구 중앙을 채우는 것을 볼 수 있을 것입니다. 또한, 망막에 과도한 손상을 입혔다면 DNA 용액이 안구 밖으로 흘러나오는 것을 확인할 수 있습니다.바늘을 천천히 제거하고 즉시 전극을 달걀 내부에 평행하게 배치합니다. PBS에 적신 후, 주입된 눈이 전극 사이에 위치하도록 전극을 눌러 양수 속에 잠기게 합니다. 전극을 배치하는 동안 주요 혈관이나 심장에 닿지 않도록 주의하십시오.DNA가 망막하 공간에서 망막 내의 양극 방향으로 이동할 수 있도록 음극을 주입 부위에 위치시켜야 합니다. 15 V의 전압을 50 ms 동안 5회 펄스로, 950 ms 간격으로 망막에 전해질 처리를 합니다. 전극을 조심스럽게 제거하고 투명 스카치테이프로 알의 창을 밀봉한 후, 주입된 알에 라벨과 날짜를 기입하여 배양기로 다시 옮깁니다.일반적으로 전기천공법의 전체 과정은 약 3분에서 5분 정도 소요됩니다. GFP 발현은 전기천공법 시행 후 이르면 8시간 뒤부터 관찰할 수 있습니다. 다만, 난자를 수확하기 전 배아가 원하는 상태에 도달할 때까지 기다려도 됩니다.이 영상이 귀하의 실험 수행에 도움이 되었기를 바랍니다. 시청해 주셔서 감사합니다.

in-ovo-electroporation-in-embryonic-chick-retina

Research

연구

JoVE Journal

Biology

생물학

비켜 electroporation의 여자는 조류 배아의 유전자 조작을 허용하는 기법입니다. 이 기법의 일반적인 응용 프로그램은 유전자와 putative 향상제 요소의 기능 분석을 포함합니다. 이 동영상은 HH 10 여자는 배아에서 신경 튜브 electroporation을 보여줍니다. 사출 기술과 적절한 계란 처리는 설명합니다.

HH 스테이지 10 치킨 태아의 비켜 Electroporations에서

여기에서 망막 신경절 murine 세포 (RGCs)의 유전자 발현을 조작 두 가지 기법을...

마우스 망막 신경절 세포의 유전자 발현에 대한 utero 및 전직 생체내의 Electroporation에

이득 또는 기능 연구의 손실 중 하나를 수행하기위한 목적으로 murine 망막 세포에 플라스미드 DNA의 결합을위한...

개발 마우스 망막의 생체내 Electroporation에

조건부 성인 zebrafish의 망막에서 대상 단백질의 표현을 분해하는 방법은 intravitreally 안티 센스 morpholinos를 주입하여 망막에 그들을 electroporating 포함하는, 설명되어 있습니다. 그 결과 단백질은 재생이나 그대로 망막에있는 단백질의 역할을 테스트 수 며칠에 대한 무너뜨렸다입니다.

Morpholinos의 생체내의 Electroporation에서 성인 Zebrafish의 망막에

기능과 midbrain dopaminergic 뉴런의 발달 동안 유전자의 규정을 평가하기 위해 관련된 방법을...

Dopaminergic 신경 세포 개발에서 유전자 기능을 유학 칙의 Midbrain에서 비켜 Electroporation에

배아 병아리 망막 세포 배양은 광 수용체 생물학의 연구에 유용한 도구를 구성한다. 우리는 이전에 배양 망막의 플라스미드 일렉트로 오보 EX에 기초한 효율적인 유전자 전달 기술을 개발했다. 이 기술은 상당히이 시스템에 대한 가능한 유전자 조작을하고, 현재 사용 가능한 프로토콜을 통해 형질 전환 효율을 증가시킨다.

차 세포 배양 연구 병아리 망막에 효율적인 유전자 전송 : 전 비켜 Electroporation에 접근

이 프로토콜은, 해부 실험 조작과 닭의 배아에서 문화 전체 망막 외식하는 방법을 설명합니다. 높은 성공률, 효능 및 재현성은 전기 및 / 또는 시약의 물질, 즉, 효소 억제제 플라스미드의 효과를 테스트하기 위해 필요할 때 이식편 배양 물은 유용하다.

일렉트로 화학 시약 트리트먼트의 닭 배아에서 전체 망막의 Explants

형광 라벨 tangentially 마이그레이션에 대 한 방법을 설명 셀 electroporation, 그리고 마이그레이션 시각화 하기 위해 플랫-마운트 문화에서 레이블이 지정 된 셀 이동의 시간 경과 영상 셀 개발 병아리 광섬유 tectum에 동작 .

개발 병아리 광섬유 Tectum에 접선 셀 이동의 시각화

우리는 ovo electroporation 및 Tol2 transposon 시스템을 사용하여 병아리 배아에 인공 마이크로 RNA 서열을 도입하고 게놈 통합하는 새로운 기능 상실 접근 방식을 개발했습니다. 이 기술은 개발 중 유전자 기능 연구를 위한 강력하고 안정적인 유전자 녹다운 방법론을 제공합니다.

인공 microRNA의 Tol2 Transposon-Mediated 형질전환 발현을 사용한 배아 병아리 망막의 기능 상실 접근법

병아리는 다양한 연구를 위해 비용 효율적이고 접근 가능하며 널리 이용 가능한 모델 유기체입니다. 여기에서는 조류 내이 발달 및 재생의 기초가되는 분자 메커니즘을 이해하기 위해 일련의 프로토콜이 자세히 설명되어 있습니다.

조류 내이 발달을 연구하는 Ovo 및 Ex Ovo 방법에서

배우세요 병아리 배아 망막 표적 주사 및 체외 전기천공 기법을 통해 유전자 발현과 망막 발달을 연구하는 방법을. 이 기술은 단일 세기 수준에서 망막 세포 유형을 시각화하여 발달생물학 및 신경과학 연구에 활용됩니다.

배아 칙의 망막에서 비켜 Electroporation에

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