Name: 리빙 셀의 Subcellular 수준과 초 Timescale에 작은 GTPase 활동의 Spatio-시간적 조작 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-03-09T13:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 27 s
Description: 학습하세요 광 유도 FKBP-FRB 이분화를 이용한 소형 GTPase 활성의 시공간적 제어 방법을. 라이브 세포 이미징에서 UV 광 조사로 막 수준에서 정밀한 단백질 활성 조작이 가능합니다.

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이 연구는 NIH 연구 기금 (DK090868과 TI의 GM092930)에 의해 지원되었다. 갇힌 rapamycin 유사체에 대한 출원 특허가있다.

1. 플라스미드 DNA의 Transfection <ol><li> 37.5 μl DH 2 O.로 형광 단백질로 태그 : 플라스미드 DNAs, 0.5 μg 멤브레인-닿는 곳에 FRB (이하 LDR로 지칭)와 0.5 μg FKBP-Tiam1을 (RAC 활성 T-세포 림프종의 침략과 전이 - 유도 단백질 1) 추가 1 μl FuGENE HD를 추가합니다. </li><li> 20 분 동안 상온에서 소용돌이와 부화. 한편, 단계 1.3-1.8로 진행합니다. </li><li> 50 μl 폴리-D-라이신과 8 아니라 챔버의 각 잘 씻으십시오. </li><li> DH 2 O를 사용하여 각 우물의 중심을 씻으 </li><li> 80~85% 합류 NIH-3T3 세포를 Trypsinize 10 ML 문화 매체 (10 % FBS가있는 DMEM)에 희석. </li><li> 정지 375 μl를 제거하고 3 분 동안 1,750 rpm으로 원심 분리기. </li><li> 펠렛을 방해하지 않도록주의되는 미디어를 기음. </li><li> DMEM w / 10 % FBS와 resuspend의 750 μl를 추가합니다. </li><li> DH 2 O / 유전자 / FuGENE의 HD 솔루션에 세포 현탁액을 넣고 가볍게 섞는다. </li><li> 250 추가각도에 대한 세포 / DNA를 정지 μl (3 우물까지 작성됩니다.) </li><li> 37 transfected 세포를 품어 ° C와 15-18 시간에 대한 5퍼센트 CO 2. </li></ol> 2. cRb-솔루션의 작성 <ol><li> 합성 갇힌 rapamycin-비오틴의 adduct (cRb). 자세한 내용은 &quot;cRb의 합성 구조&quot;를 참조하십시오. 간단히, caging 및 비오틴 moieties는 별도로 준비가되어 있습니다. caging 잔기 그때 rapamycin (LC 실험실)에 복합이며, 제품은 이후 cRb를 살만큼 클릭 반응 7 수단을 이용하여 비오틴 잔기에 결합. </li><li> DMSO의 cRb 중 1 μm의 주식 솔루션을 준비합니다. </li><li> 0.5 ML Eppendorf 튜브에 PBS 250 μl에 1mg 아비딘를 해산. </li><li> 녹아 아비딘에 cRb 주식 솔루션 1 μl를 추가합니다. 반전을 여러 번하여 섞는다. </li><li> cRb - 아비딘 켤레축을 (cRb-양보하는 15 분 동안 상온에서 부화) 솔루션입니다. </li><li> 언바운드 작은 분자를 제외하고 정화 cRb - 크기 - 제외 컬럼을 사용합니다. </li></ol> 3. 현미경과 Subcellular 레벨 라이트 일루미 네이션 <ol><li> 세럼은 12 시간 동안 FBS없이 DMEM에 transfected 세포를 굶어. </li><li> 부드럽게 세포 밖 미디어를 대기음하고 준비한 400 nm의 cRb - 솔루션 (단계 2.6에서) 250 μl를 추가합니다. </li><li> 빛 치료 전후 subcellular 해상도 세포를 생활에 단백질 역학을 시각화하기 위해 회전 디스크 현미경은 (그림 2A) 사용되었다. 자외선 조명은 에피 형광 라이트 (그림 2B)와 자외선 LED가 라이트 (365 나노미터)의 광학 장치를 결합하여 달성되었다. </li><li> MetaMorph 소프트웨어는 transfected 세포의 형광 이미지를 매 15 초 캡처하는 데 사용되었다. </li><li> 자외선에 의해 흥분 형광 염료로 코팅 유리 접시를 사용하여 조명 장소의 좌표와 크기를 정의합니다. 크기는 수다른 배율로 객관 렌즈를 적용하여 서로 다른 코어의 크기와 광학 섬유를 선택하여 다양한됩니다. </li><li> 세포 주변에 막 ruffling, 비추다의 자외선 빛을 배경 수준을 결정 후에. 다음 두 단계화된 효과를 이전 대조하는 것입니다. </li><li> 글로벌 수은 램프에서 제공하는 365 nm의 조명과 함께 세포를 조사하다. </li><li> , uncaged DMSO의 후 PBS (400 nm의 결승전)에 따라서 원래의 rapamycin를 해산하고, 글로벌 효과를 유발하는 이미징 챔버에 솔루션을 추가합니다. </li></ol> 4. 대표 결과 대표적인 결과의 예제는 그림 3에 표시됩니다. 셀룰러 가장자리 근처의 작은 지역에서 자외선의 조사가 급속화된 형성을 유도하는 것은 조사 지역 및 인근에만 주름. 이 whi 모두, 우리는 그때 전세계 자외선으로 세포를 반구, 실제로 현지 활동이었다, 또는 대량 매체에 rapamycin을 추가했는지 확인하려면채널은 세포막에 걸쳐 세계적인 주름 형성을 유도. 정량 분석​​을 위해, 우리는 네 quadrants로 타겟 세포를 나누어, 그리고 주름의 현지시 각 사분면에 형성뿐만 아니라 컨트롤 (그림 4) 등 다양한 조건 하에서 글로벌 자극을 다음의 주파수를 계산. 그것은 오직이 자외선 조사의 조합, cRb-, 지방 ruffling을 유도 적절한 FKBP-FRB 구조입니다. <img alt="그림 1" src="/files/ftp_upload/3794/3794fig1.jpg" /> 그림 1. 갇힌 rapamycin-아비딘 켤레축 (cRb-)과 자외선을 사용 spatially 국한 단백질 dimerization의 도식. 자외선 조사는 화학 dimerizer (HE-Rapa, C40-O-(2 - 히드록시 에틸) rapamycin)과 그 부산물의 릴리스 결과, rapamycin과 비오틴 사이의 링커를 클리브. 발표 dimerizer 다음 세포로 diffuses 및 FKBP-POI (관심있는 단백질)와 플라즈마 memb 사이에 dimerization을 유도rane은 조사 지역 (파란색 동그라미)의 근처에 FRB를 정박. UV 조사없이 FKBP와 FRB는 따라서 아무런 효과를 생산 안되고, (적십자) 연관시키지 않습니다. (저작권 @ ACS2011) 6 <img alt="그림 2" src="/files/ftp_upload/3794/3794fig2.jpg" /> 그림 2. 맞춤 공촛점 형광 현미경 사진. 공촛점 현미경 () 정면보기 (Axiovert 200, 자이스 혈구를 거꾸로 읽었). 에피 형광 및 자외선 조명을위한 커플링 단위의 (b)는 클로즈업, 최고 볼 수 있습니다. <img alt="그림 3" src="/files/ftp_upload/3794/3794fig3.jpg" /> 그림화된 자외선 조사에 의해 유도된 transfected NIH3T3 세포 3. Spatially 국한 주름 형성. YFP 태그가 추가된 FKBP-Tiam1 (RAC 활성)과 LDR (FRB를 멤브레인 - 고정)으로 transfected되는 NIH3T3 fibroblast 세포의 공촛점 형광 이미지는 L과의 가장자리 근처의 좁은 지역에서 조사를 받았습니다15 초이 대량 미디어 cRb-켤레축의 면전에서 210 초부터 시작을위한 365 nm의에서 ED 라이트. 이 치료는 1560 초 rapamycin 최종 400 NM의 1063 초 및 글로벌 또한 1 초위한 수은 램프와 글로벌 일루미 네이션 다음되었다. 세포는 처음 ()에서 거의 ruffling 활동을 보여주 없지만 보여주 spatially화된 조명 후에 ruffling 국한 (노란색 동그라미) (B). 세포는 로컬 주름 형성은 RAC의 spatially 제한된 활성화로 인한 것을 나타내는 글로벌 일루미 네이션과 rapamycin (CD)가 추가되는 이후 글로벌 주름 형성을 보여주었다. 스케일 바 : 10 μm의. (저작권 @ ACS2011) 6 <img alt="그림 4" src="/files/ftp_upload/3794/3794fig4.jpg" /> 그림 4. transfected NIH3T3 세포의 quadrants의 주름 형성의 빈도. cRb-A와 다음 글로벌 자외선 조사는 13 세포에서 수행되었다. cRb -와 로컬 자외선 조사 </s&gt; 또한 (노 자외선 조사)를 tron​​g, 아비딘 여부에 상관없이 현지 자외선 조사는 각각 13, 5, 6 세포에 구현되었다. 관찰된 세포들은 아무도 자외선 조사, 또는 함께 또는 대용량 미디어 아비딘없이 현지 자외선 조사없이 cRb-으로 주름 형성을 보여주 없습니다. 우리는 낮은 배경 주름 형성과 함께 세포에서 데이터를 수집하지만, 그건 우리가 rapamycin (최종 400 NM)의 이외의 결과로 세계적인 주름 형성을 확인하여 각 실험 후 확인 rapamycin 유발 주름 형성의 용량을했습니다. 이러한 결과는 cRb - 지방 자외선 조사가 세포의 지방 주름 형성에 필요한 것을 보여주었다. (저작권 @ ACS2011) 6 약어 : FKBP : FK506 결합 단백질 FRB : FKBP-rapamycin-결합 단백질 Tiam1 : T-세포 림프종의 침략과 전이 - 유도 단백질 1 (RAC GEF) LDR : 린 - DSAG 링커-FRB (린 : 린 키나제의 N-터미널 11 아미노산) HE-Rapa : C40-O - (2 - 히드록시 에틸) rapamycin cRb : 비오틴 잔기와 갇힌 rapamycin cRb-: 아비딘하기 cRb 복합

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<li>Takai, Y., Sasaki, T., Matozaki, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Small+GTP-binding+proteins%5BTitle%5D)+AND+%22Physiol.+Rev%22%5BJournal%5D)">Small GTP-binding proteins.</a> Physiol. Rev. 81, 153-208 (2001).</li>
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관심의 어떠한 충돌 선언 없습니다.

우리는 초 시간 척도에 대한 정밀한 subcellular 위치에 Rho GTPase 활동을 조작하기 위해 FKBP-FRB heterodimerization 시스템 소설 갇힌 화합물을 함께 고용 기법을 설명했다. 현재의 접근 방법의 세 한계가 있습니다. 메서드가 플라즈마 막 걸쳐 dimerizer의 확산을 방지하거나 허용을 기반으로하고 있기 때문에 첫째, 대상 세포 위치는 플라즈마 막 또는 그 주변 있어야합니다. cRb의 화학 구조에 더 최적화 화합물이 빛을 조사까지 d​​imerization을 유도하지 않고 세포를 입력할 수 있습니다. 이러한 dimerizer으로, 우리는 이론 어디에서나 세포 내부 분자를 신호 활동을 조작할 수 있습니다. 둘째, 화학 dimerizers, FKBP-FRB의 dimerization 복합, 또는 활성 내생 신호 분자의 분자 확산은 크게 의도된 효과의 정확한 감금에 영향을 미칠 수 있습니다. 이 효과는 특히 발음에서 나중에 포인트와 자외선 조사 (...

<table border="1"><tbody><tr><td> 시약 / 장비의 명칭 </td><td> 회사 </td><td> 카탈로그 번호 </td></tr><tr><td> Rapamycin </td><td> Tecoland </td><td> RAPA99 </td></tr><tr><td> FuGENE HD </td><td> 로슈 </td><td> 04709691001 </td></tr><tr><td> 아비딘 </td><td> 시그마 </td><td> A9275-10MG </td></tr><tr><td> DMSO </td><td> 시그마 </td><td> D2650-5X5ML </td></tr><tr><td> 크기 - 배제 칼럼 </td><td> GE 헬스케어 </td><td> 스핀 트랩 G-25 </td></tr><tr><td> 유리 바닥 8 아니라 챔버 </td><td> 써모 과학 </td><td> 12-565-47 </td></tr><tr><td> 간접 형광 현미경 </td><td> 자이스 혈구 </td><td> Axiovert200M </td></tr><tr><td> 자외선은 광원을 LED가 </td><td> Rapp Opto 전자 </td><td> UVILED </td></tr><tr><td> 공촛점 스피닝 디스크 </td><td> Yokogawa 전기 주식 회사 </td><td> CSU10 </td></tr><tr><td> CCD 카메라 </td><td> 하마 마츠 Photonics </td><td> 오카-ER </td></tr><tr><td> 100x 목적 렌즈 </td><td> 자이스 혈구 </td><td> 계획 고차 색지움 </td></tr></tbody></table> cRb의 합성 구조 (저작권 ACS2011) 6 <a href="/files/ftp_upload/3794/3794scheme1_lg.jpg"><img src="/files/ftp_upload/3794/3794scheme1.jpg" alt="계획 1" /></a> 합성 조건 : () BnBr, K 2 CO 3, DMF (B) f.HNO 3 AcOH (C) TFA (D) Propargyl-BR, K 2 CO 3, DMF, (마) 글리세롤, 고양이.에게 pTsA, 톨루엔 (F) NaBH 3 CN, TiCl 4, MeCN (G) TF 2 O, Pyridin (H) 메탄올 HCL,은 (i) LiAlH 4, THF (J) TsCl, 피리딘, 채널이 망할 CIA 2 (K) 앤 3, DMF (L) 8, 2,6 - 디-T-butylpyridine, 채널이 망할 CIA 2 (M) 13 CuSO 4, 아스코 브 산, 2 - 프로파놀, H 2 O, CH 2 CIA 같으니 2.

리빙 셀의 subcellular 수준과 초 timescale에 작은 gtpase 활동의 spatio-시간적 조작

Spatio-Temporal Manipulation of Small GTPase Activity at Subcellular Level and on Timescale of Seconds in Living Cells

위대한 spatiotemporal 정밀도와 작은 구아 노신의 triphosphatases (GTPases)의 Rho 가족의 동적 규제는 다양한 세포 기능과 이벤트가 1, 2 필수적입니다. 그들의 spatiotemporally 동적 특성은 실시간 3 그들의 활동 및 현지화의 시각화에 의해 발표되었습니다. 분자 수준에서 다양한 세포 기능에서의 역할 깊은 이해를 얻을하려면, 다음 단계는 정확한 subcellular 위치와 타이밍에 단백질 활동의 섭동 있어야합니다. (1) rapamycin-유도 FKBP-FRB의 heterodimerization와 rapamycin (2) 사진 caging 방법 : 이러한 목표를 달성하기 위해, 우리는 빛을 유발, 두 기술을 결합하여 작은 GTPases의 spatio-temporally 제어 활성화를위한 방법을 개발했습니다. rapamycin-매개 FKBP-FRB의 heterodimerization의 사용으로, 우리는 급속하게 작은 GTPases includi의 활성화 또는 불활 성화를 inducible하는 방법을 개발했습니다NG RAC 4, rapamycin은 FRB가 정박되어 플라즈마 막까지, FKBP-융합된 GTPases, 또는 그들의 activators의 translocation을 유도하는 Cdc42 4, RhoA 4 RAS 5. 이 heterodimerization 시스템과 커플링 들어, 우리는 또한 rapamycin의 analogs의 사진 caging 시스템을 개발했습니다. 사진 갇힌 화합물은 누구 활동 caging 그룹으로 알려진 photocleavable 보호 그룹과 억압되어 작은 분자이다. 완전히 heterodimerization 활동을 억제하기 위해, 우리는 세포 6 안의 화학 dimerizer로 거의없이 백그라운드 작업으로 이어지는, 그 결과 대규모 복합 단지 플라즈마 막 건너없는 그런 macromolecule에 닿는 곳에있다 갇힌 rapamycin을 설계했습니다. 그림 1은 우리의 방식을 보여줍니다 시스템. 이 두 시스템의 결합을 통해, 우리는 로컬 초 timescale에 플라즈마 막에 RAC 활성을 모집하고 subcellular 레바에 빛을 유발 RAC 인증을 획득엘 6.

빛으로 작은 GTPase 활동 spatio-시간적 제어를위한 방법을 설명합니다. 이 방법은 rapamycin-유도 FKBP-FRB의 heterodimerization 및 사진 caging 시스템을 기반으로합니다. 빛을 조사의 최적화는 subcellular 수준에서 작은 GTPases의 spatio-temporally 제어 활성화를 가능하게합니다.

리빙 셀의 Subcellular 수준과 초 Timescale에 작은 GTPase 활동의 Spatio-시간적 조작

매우 정밀한 시공간적 정확성을 갖춘 Rho 패밀리 소형 구아노신 삼인산화효소(GTPases)의 역동적 조절은 다양한 세포...

이 비디오는 UV 광선을 사용하여 세포막에 있는 단백질의 활성을 조절하는 방법을 보여줍니다. 이를 위해 세포에 막 결합형 FRB 단백질과 FKBP가 융합된 표적 단백질을 공동 형질전환(cot transfected)합니다. 그 후 배지에 광케이지드(photo caged) 라파마이신 유도체를 첨가합니다.그 후 라이브 셀 이미징 중에 세포의 특정 영역에 UV 광선을 조사합니다. 라파마이신(rapamycin)과 비오틴(biotin) 사이의 링커가 절단되어 화학적 이량체화제와 그 부산물이 방출되며, 방출된 이량체화제는 세포 내로 확산되어 조사된 영역 내에서 FKBP가 표지된 표적 단백질과 세포막에 고정된 FRB 사이의 이량체화를 유도합니다. UV 조사가 없으면 FKBP와 FRB는 결합하지 않으므로 아무런 효과가 나타나지 않습니다.데이터 분석 결과, 관심 있는 FKBP 융합 단백질이 생리학적 효과에 기반하여 매우 국소적으로 모집됨을 알 수 있습니다. 약리학적 또는 유전학적 접근 방식과 같은 기존 방법과 비교했을 때 이 기술의 장점은 작용 속도, 표적 특이성 및 공간 해상도의 결합에 있습니다. 이 기술의 활용 가능성은 암세포의 이동 결과로 나타나는 암 전이 치료로까지 확장됩니다.따라서, 핵심 이동 인자의 활성을 조절함으로써 정확한 분자적 메커니즘을 밝혀낼 수 있으며, 이는 치료 및 완치를 위한 필수 전제 조건입니다. 시연 절차는 본 연구실의 대학원생인 Chris Paul Meyer와 기술원 Bob de Rose가 진행하겠습니다. 멸균된 마이크로 원심분리 튜브에 플라스미드 DNA, membrane tethered FRB, FLUORESCENTLY tagged FKBP, TIA one 및 탈이온수를 혼합하여 프로토콜을 시작하십시오. 혼합물에 1 µL의 a few gene HD를 첨가하고 볼텍싱합니다.튜브를 실온에서 20분 동안 배양합니다. 배양하는 동안, 8-웰 글라스 챔버 슬라이드의 각 웰에 poly-L-lysine 50 µL를 첨가하고 1분 동안 배양하여 표면을 코팅한 후, 용액을 흡입하여 제거하고 각 웰의 중앙을 탈이온수 50 µL로 세척합니다. 다음으로 80~85% 정도로 confluence 상태인 NIH 3T3 세포를 trypsin 처리합니다.세포가 분리된 후, 10% FBS가 포함된 DMEM 10 milliliters를 첨가하고, 현탁액 375 microliters를 15 milliliter 멸균 튜브로 옮겨 1,500 G에서 3분 동안 원심분리합니다. 원심분리 후, 배지를 조심스럽게 흡입하여 제거합니다. 10% FVS가 포함된 DMEM 750 microliters를 첨가하고 재현탁합니다.피펫으로 부드럽게 여러 번 상하로 섞어 펠렛을 현탁합니다. 마지막으로, 세포 현탁액을 형질전환 용액에 넣고 피펫 팁으로 살살 저어준 뒤, 챔버의 각 웰에 세포 형질전환 현탁액 250 µL를 분주합니다. 슬라이드를 밀어 넣고 배양합니다.37 °C에서 15~18시간 동안 유지합니다. 케이지 라파마이신(cage rapamycin), 비오틴 부가물을 합성하려면, 먼저 멸균된 원심분리 튜브에 DMSO를 사용하여 1 mM 농도의 CRB 스톡 용액을 준비합니다. 별도의 1.5 mL 미세 원심분리 튜브에 1 mg의 avadon을 250 µL의 PBS에 녹입니다.다음으로, caging moiety를 rapamycin에 접합합니다. 용해된 AVID에 CRB 스톡 용액 0.5 µL를 첨가하고 여러 번 뒤집어 섞은 후, 실온에서 15분 동안 배양합니다. 결합되지 않은 저분자 물질을 제거하고 CRB AVID 접합물을 정제하기 위해, G 25 크기 배제 컬럼을 PBS 300 µL로 평형화합니다.컬럼이 평형 상태에 도달한 후 5회 반복합니다. CRBA 용액 125 µL를 컬럼의 중앙 베드에 로딩합니다. 그 다음 실온에서 800 G로 2분 동안 원심 분리하여 용액을 내립니다. 세포 형질전환 후, 통과액을 1.5 mL 마이크로 원심분리 튜브에 수집합니다.세포를 혈청 결핍 상태로 만들기 위해 배지를 FBS가 포함되지 않은 DMEM으로 교체하고 12시간 동안 배양합니다. 배양 후, 배지를 조심스럽게 흡입하여 제거하고 준비된 1 µM CRBA 용액 250 µL를 첨가합니다. 다음으로, 살아있는 세포 내의 단백질 동역학을 시각화하기 위해 365 nm UV LED 광원을 위한 결합 광학계가 갖춰진 UV 조명 스피닝 디스크 공초점 현미경을 사용합니다.에피 형광 조명을 사용합니다. UV 광에 의해 여기되는 형광 염료가 코팅된 유리 플레이트를 사용하여 조사 스폿의 좌표와 크기를 정의합니다. 이를 통해 조사될 영역을 미세하게 조정할 수 있습니다.100 x 대물렌즈와 epi 형광 조명을 사용하여 세포가 담긴 챔버 슬라이드를 스테이지 위에 놓습니다. 세포의 초점을 맞추고 관찰할 세포를 찾습니다. 이미지 촬영의 경우, 생리학적 효과의 배경 수준을 결정한 후 세포 촬영을 시작합니다.여기서는 세포의 선택된 한 구역에 UV 광선을 조사하여 언케이지드(uncaged) rapamycin을 해리시킴으로써 막 러플링(membrane ruffling)을 측정합니다. 우선 rapamycin을 DMSO에 녹인 후 PBS로 희석하여 최종 농도를 400 nanomolar로 맞춥니다. 전신 효과를 유도하기 위해 이 용액 100 microliters를 이미징 챔버에 첨가합니다. RAC의 국소적 활성화가 국소적 러플 형성을 유도할 수 있는지 판단하기 위해 20분 동안 15초 간격으로 형광 이미지를 캡처합니다.NIH 3T3 세포에 YFP가 표지된 RAC 활성화제 FKbp, TIA1 및 막 결합 형태인 LDR을 형질전환시켰습니다. 노란색 원으로 표시된 세포 가장자리에 FRB를 국소 조사한 후, 1063초부터 수은 램프를 이용해 1초 동안 전체 조사를 수행하였습니다. 여기서 볼 수 있듯이, 초기에는 막 러플링(membrane ruffling)이 거의 나타나지 않았습니다.하지만, 전체 조명 및 rapamycin 첨가 후에는 국소 조명에 따라 공간적으로 제한된 러플링(ruffling)이 관찰되었으며, 이는 FK bp TIA one의 세포막 전위를 유도합니다. 세포는 전체적인 러플 형성 양상을 보였으며, 이는 이전에 관찰된 국소적 러플 형성이 rac의 공간적으로 제한된 활성화에 의해 유도되었음을 나타냅니다. 정량적 분석을 위해 표적 세포를 4분면으로 나누었으며, 이 그래프에서 보는 바와 같이 국소 자극 및 전체 자극 후 각 분면에서의 러플 형성 빈도를 측정하였습니다.벌크 배지에서 Aden의 유무와 관계없이 UV 조사나 국소 UV 조사 없이 CRBA를 처리했을 때, 관찰된 세포 중 어느 것도 러플(ruffle) 형성을 보이지 않았습니다. 하지만 CRBA를 첨가하고 UV 조사를 수행했을 때, 전체 조사를 한 경우에는 모든 사분면에서 약 90%의 동일한 비율로 러플 형성이 관찰되었습니다. 반면, 1사분면만 조사했을 때 러플 형성 빈도는 100%였으며, 이에 비해 2사분면부터 4사분면까지는 각각 30%, 25%, 30%였습니다. 이러한 결과는 라파마이신의 국소적 언케이지징(uncaging)을 통해 단일 세포 내에서 매우 국소적인 생리학적 효과를 유도할 수 있음을 나타냅니다.이 사례는 rack 활성화로 인해 유발된 세포막 러플링(membrane ruffling)을 보여줍니다. 이 영상을 시청한 후에는 빛을 이용해 소형 G TPA 활성의 시공간적 제어를 달성하는 방법에 대해 충분히 이해하게 될 것입니다. 이 방법은 특정 단백질의 세포막 전이에 의존하는 모든 생리적 과정에 적용될 수 있습니다.본 실험 절차를 수행할 때, 각 단계마다 용액, 시약 및 세포를 새로 준비하는 것이 중요합니다. UV 광선을 사용하는 작업은 매우 위험할 수 있으므로, UV 보호 안경과 같은 보호 장구를 항상 착용해야 함을 유념하십시오.

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