July 26th, 2012
이 문서에서는 자세히 utero에서 대뇌 피질과 생쥐의 E14.5에서 해마를 electroporate하는 프로토콜을 설명합니다. 또한이 두 대뇌 지역에서 dendrites 및 쪽이을 연구하는 귀중한 방법임을 보여줍니다.
이 절차의 목적은 자궁, electroporation에서 사용하고, 쥐의 대뇌 피질과 해마에서 수상돌기와 척추를 시각화하고 유전적으로 조작하는 것입니다. 이것은 먼저 원하는 플라스미드, DNA 용액을 자궁 내 배아의 외측 심실에 주입함으로써 달성됩니다. 다음으로, Palo 전극의 다른 위치를 사용합니다.
DNA 주입에 따르면, 대뇌 피질 또는 해마는 전기 천공을 한 다음 원하는 출생 후 또는 성인 단계를 수행합니다. 생쥐를 관류하고 뇌를 수집합니다. 마지막으로, 뇌는 비브람(vibram)으로 절편화됩니다.
궁극적으로 수상돌기와 척추는 컨포칼 현미경을 사용하여 시각화할 수 있습니다. 단일 electroporation의 기술은 비 권리와 척추를 공부하는 방법과 비교된 몇몇 이점을 선물합니다. 실제로, 이 기술을 사용하면 먼저 생체 내에서 이 측면을 직접 연구할 수 있습니다.
더욱이, 전기 작업에서 녹아웃 마우스의 생성과 비교하여, 유전자 억제 또는 유전자 발현의 효과를 연구하고 특정 세포 구조뿐만 아니라 특정 발달 단계에서 백색과 척추를 착용하는 빠른 접근 방식입니다. inter electro operation에서 유도 시스템을 사용하는 것은 don write와 척추 발달에 관여하는 유전자 간의 기능적 상호 작용을 식별하는 데 유용한 도구이기도 합니다. 실제로, 예를 들어, 바이러스와 대조적으로, 동일한 세포 집단에서 여러 HNA 또는 여러 톤의 유전자를 결합하는 것은 빡빡합니다 DNA를 물에서 원하는 농도로 희석하고 빠른 녹색 염료를 최종 농도 0.05%로 첨가하기 시작하려면 마이크로 퍼펫 풀러를 사용하여 주입을 위해 유리 바늘을 당깁니다.
임신한 쥐를 불소를 사용하여 마취 유도실에 넣고 분당 최대 2리터까지 산소를 엽니다. 동물이 쓰기 반사 신경을 잃으면 수술 전 마스크로 바릅니다. IGEL 한 방울을 양쪽 눈에 바르고 전기 면도기를 사용하여 복부 털을 면도합니다.
클로르헥시딘으로 면도한 부위를 한 번 청소하여 날아다니는 머리카락을 모으십시오. 동물을 발열 패드에 등을 대고 수술 부위의 두 번째 마스크로 옮깁니다. 꽃잎 반사가 사라졌을 때 수술을 시작하십시오.
마스크와 멸균 장갑을 착용하고 멸균 커튼으로 동물을 덮으십시오. 클로르헥시딘으로 면도한 부위를 최소 3회 세척하십시오. 메스를 사용하여 피부를 통해 정중선을 따라 수직으로 절개합니다.
가위를 사용합니다. 선형 팔꿈치를 따라 복부 근육을 유사하게 절개합니다. 가장 접근하기 쉬운 배아를 선택합니다.
두 배아 사이에 고리 겸자를 놓고 배아 사슬을 복강에서 조심스럽게 빼냅니다. 이 시점부터는 멸균된 예열 PBS로 배아에 수분을 공급하십시오. 링 집게 사용.
양수 자루 내부의 배아 위치를 부드럽게 조작하고 고리 사이의 머리를 안정시킵니다. 배아를 자궁벽에 더 가깝게 밀어 올리도록 부드럽게 짜냅니다. 다른 손으로 모세혈관 홀더를 잡고 바늘을 반구 중앙에 조심스럽게 삽입하여 외심실을 겨냥합니다.
자궁벽 표면에서 바늘의 움직임을 최소화하고 혈관을 뚫지 않도록 주의하면서 페달을 밟아 약 0.5마이크로리터의 녹색 DNA 용액을 주입합니다. 포지티브 페달을 사용하여 배아의 머리 측면에 전극을 피질 전기천공을 위해 주입된 심실과 같은 쪽에 놓거나 주입된 심실의 반대쪽에 해마 전기천공을 놓습니다. 그런 다음 1초 간격으로 50밀리초 동안 지속되는 30볼트 전기 펄스 5개를 적용합니다.
태반에 전류를 가하면 배아가 죽을 수 있으므로 피하십시오 생존 가능성을 높이려면 복강인 PBS에서 완료되면 30분 이내에 모든 배아를 주입하고 전기 수술을 하고 고리 겸자를 사용하여 원래 위치에 있는 자궁 뿔을 교체하십시오. 비크릴 흡수성 봉합사를 사용하여 복부, 벽 및 피부를 닫으십시오. 동물이 깨어날 때까지 회복실에 눕힙니다.
그런 다음 수술 후 24시간 및 48시간 후에 발열 패드의 케이지로 옮깁니다. 쥐의 행동을 관찰하여 통증, 괴로움 또는 괴로움을 평가하고 동물의 무게를 측정하여 뇌를 분석합니다. 출생 후 단계에서는 바이브레이터를 사용하여 이전에 관류된 부분을 절단하고 후미 뇌는 수상 돌기와 척추를 이미지화하기 위해 아쿠아 폴리 마운트에 섹션을 장착합니다.
이 숫자는 대뇌 피질, 캘리포니아 1 및 해마의 치상회(dentate gyrus)에서 전기천공된 세포의 예를 보여주며, 유형 마우스는 GFP 구조물과 뇌가 출생 후 14일에 수확된 E 14.5에서 전기천공되었습니다. 소량의 DNA 용액을 주입함으로써 몇 개의 세포가 라벨링되어 고립된 GFP 양성 세포의 수지상 arborization과 더 높은 배율에서 척추를 시각화할 수 있습니다. 이 절차를 시도하는 동안, 소수의 세포만을 표적으로 하기 위해 소량의 DNA를 주입해야 한다는 것을 기억하고, 척추 또는 전기 신경에 쓰지 않는 것을 시각화하고 정량화할 수 있어야 한다는 것을 기억하는 것이 중요합니다.
이 문서는 E14.5의 마우스에서 뇌 피질과 해마의 자궁 내 전기 펄스 작용에 대한 프로토콜을 자세히 설명합니다. 이 방법은 이러한 뇌 영역의 수지상 가지와 가시를 연구하는 데 유용합니다.
In utero electroporation (IUE) enables rapid, in vivo genetic manipulation and visualization of neuronal structures in the developing mouse brain, directly addressing the need for physiologically relevant models in early CNS drug discovery. This approach supports mechanistic de-risking and target validation by allowing precise temporal and spatial gene modulation in the cerebral cortex and hippocampus. IUE's flexibility accelerates hypothesis testing and portfolio triage for neurodevelopmental and synaptic function targets.
IUE integrates at the interface of early discovery and preclinical research, bridging in vitro findings with in vivo validation for CNS targets.