Name: 선충류의 바디 크기 규정에 참여 유전자에 대한 화면으로 RNA로 인한 간섭 수유 전략을 사용하여 C. elegans (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-02-13T12:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 22 s
Description: 배우세요 RNAi 수유 기법을 사용하여 C. elegans의 체형 크기를 조절하는 유전자를 식별하는 방법을. 이 기법은 대규모 유전자 스크리닝과 DBL-1/TGF-β 신호전달 경로 연구에 활용됩니다.

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우리는 다양한 개발 시간 지점에서 동물의 숫자를 제공하기 위해 제임스 클락을 감사드립니다. C. 본 연구의 elegans 변종은 연구 자원에 대한 NIH 국립 센터 (NCRR)에 의해 지원됩니다 Caenorhabditis 유전학 센터에서 얻은되었습니다. 이 작품은 CUNY에서 JL과 CSD에 CIRG 1817에 의해 지원되었다, 그리고 NIH 1R15GM073678-01와 CSD로 1R15GM097692-01에 의해 우리는 원고에 대한 의견에 박사 윌리엄 J 쌀, 박사 Nathalia Holtzman, 그리고 멜리사 Silvestrini 감사드립니다. 이 작품은 뉴욕시 대학 (S. Xiong)의 대학원 센터에서 박사 학위에 대한 요구 사항의 일부 이행 실시되었다.

1. 대상 유전자 시퀀스을 지니고 RNAi 수유 플레이트 준비 <ol><li> 상업적으로 이용 가능한 RNAi 라이브러리 (예를 들면 소스 BioScience LifeSciences에서) 사용하는 경우, 1.4 단계로 진행합니다. 또한, 표준 복제 프로토콜, 벡터 L4440, 8 RNAi 플라스미드 일반적으로 사용되는 웜으로 대상 유전자 시퀀스를 복제. </li><li> 박테리아 변종 HT115 (DE3), 25 μg / ML carbenicillin과 LB 한천 플레이트에 문화를 및 12.5 μg / ML의 테트라 사이클린에 재조합 플라스미드를 변환하고, 향후 사용을위한 단일 클론을 선택합니다. </li><li> 한편, 실험에 대한 제어로 사용하기 위해 박테리아 변종 HT115에 빈 벡터 L4440을 변환 할 수 있습니다. </li><li> 37 번 하루 아침에 100 μg / ML 암피실린 1 ML LB의 국물 ° C.의 문화 재조합과 빈 모두 L4440 운반 세균 테트라 사이클린은이 RNAi 효율을 감소한다는 사실로 인해 추가되지는 않습니다. </li><li> 밤새 cultu에 100 μg / ML 암피실린과 함께 앞으로 5 ML의 LB의 국물을 추가다시, 37에서 다른 4-6 시간에 품다 ° C. </li><li> 종자 0.5 ML 재조합 또는 빈 L4440 운반 RNAi 웜 접시에 박테리아 문화를. 클론 이름으로 모든 접시를 붙입니다. </li><li> 접시를 선택 37에서 하룻밤 배양 ° C 세균 잔디를 성장하기 위해, 이것들은 목표 유전자 순서에 상관없이 RNAi 판입니다. 최소 2 플레이트는 각 조건에 대해 준비해야합니다. </li></ol> 2. RNAi 수유 접시에 문화 웜 <ol><li> 불꽃은 백금 와이어 웜 피크의 끝을 소독. 6-10 네번째 애벌레의 단계 (L4)이 중 재조합 또는 빈 L4440를 포함 각 RNAi 판에 나온 것 데리러 선택 웜을 사용, 동물 식품 소스로 박테리아를 사용합니다. </li><li> 광고에 나온 것 ... 20 ° C (C. elegans에 대한 표준 문화 조건) 밤에 성장하자, 그들은 다음 날 젊은 성인이 될 것입니다. </li><li> 새로운 상응 표시 및 준비 RNAi 판에 6-10 청소년을 전송합니다. </li><li> 하자성인 4-6 시간에 알을 낳고, 다음 판의 모든 성인을 제거,이 단계는 자손을 동기화하는 것입니다. 어머니가 제거되면 시간을 계산하기 시작합니다. 이 시간 제로입니다. </li><li> 20 접시를 길러 ° C 동물​​이 특정 발달 단계에기를,이 프로토콜에, 우리는 phenotypic 분석을위한 청년를 선택합니다. 정상적인 속도로 개발 knockdowns를 들어, 72 시간의 배양은 젊은 성인이되는 동물 충분합니다. 그러나, 여러 유전자가 다른 동물의 개발에 영향을 미칩니다. RNAi가 다른 속도로 성장 동물을가 발생하면, 젊은 성인은 자궁에 완료 외음부 개발 및 2-6 배아 (비옥 한 경우)과 L4를지나 그 더 이상 24 이상의 시간으로 식별 할 수 있습니다. 다른 발달 단계를 확인하려면 수사관이 가이드로 생식샘과 외음부 개발을 사용해야합니다. </li></ol> 3. RNAi의 점수 바디 크기 Phenotypes이 웜을 치료 <ol><li> 유리 슬라이드에 색상 라벨 테이프의 두 레이어를 놓습니다. 의 두 개SE 유리 슬라이드. 그런 다음 테이프 두 슬라이드 사이에 새 유리 슬라이드를 놓습니다. 물에 2% 아가로 오스를 녹여, 새로운 유리 슬라이드의 중심에 한 방울을 적용 한 후 아가로 오스는 이전과 같이 구 설명 2 %의 얇은 층을 만들기 위해 상단에 두 번째 유리 슬라이드를 누릅니다. </li><li> 아가로 오스가 확정되면, 상단 유리 덮개를 제거, 아가로 오스 패드와 슬라이드 웜을로드 할 준비가되어 있습니다. 클론 이름 라벨 슬라이드. </li><li> 아가로 오스 패드에 10 μl 25 MM 앤 3 추가,이를 고정하는 할머니 3 솔루션으로 30-40 동물을 선택 한 후 상단에 coverslip을 넣어, 재조합과 빈 모두 RNAi - 처리 동물을 L4440-수행하기위한 반복. </li><li> 이미지 2.5x 목적 렌즈를 사용하여 해부 현미경으로 웜, 여기에 우리가 소프트웨어 Qcapture을 지원과 함께 Leica 디지털 카메라를 사용합니다. </li><li> 교정을 위해 먼저 표준 마이크로 미터 통치자의 이미지를 캡처합니다. 그런 다음 이미지 Pro 소프트웨어에서 이미지를 열고 선택한 다음 &quot;측정&quot;을 클릭하고 &quot;보정&quot;을 선택&quot;공간 보정 마법사&quot;. 선택 &quot;활성화 된 이미지를 보정&quot;으로, &quot;다음&quot;을 클릭하십시오. 입력 보정을위한 이름과 공간 참조 단위 마이크로 미터로 설정되어 있는지 확인합니다. 그런 다음 &quot;만들기 참조 보정&quot;버튼을 확인하고 &quot;다음&quot;을 클릭합니다. 을 클릭 &quot;그리기 기준선.&quot; 참조 규모 줄이 나타납니다. 마이크로 미터의 끝과 일치 할 수있는 규모의 바 위치를 변경 한 다음 참조가 1,000 대를 나타냅니다 나타냅니다. , &quot;OK&quot;, &quot;다음&quot;, 그리고 &quot;마침&quot;을 클릭합니다. </li><li> 소프트웨어가 교정되면, 웜 이미지를 엽니 다. 그런 다음, &quot;선택 공간&quot;을 클릭 한 다음 &#39;보정&#39;을 선택하고 &#39;측정&#39;메뉴에서 선택합니다. 풀다운 메뉴에서 마이크로 미터 교정을 위해 만든 파일 이름을 선택합니다. 그런 다음 &#39;측정&#39;메뉴에서 &#39;측정&#39;을 선택합니다. 열리는 창에서 자유 그리기 도구를 선택하고 컴퓨터를 마우스 (그림 1)과 꼬리에 머리에서 동물 몸의 중심을 통해 라인을 그린다. 길이는 창에보고됩니다. 지금대상 유전자 RNAi와 빈 L4440 벡터로 처리 제어 동물로 치료 동물의 몸 길이 : 당신이 데이터의 두 그룹이 있습니다. </li><li> Microsoft Excel 파일, 또는 다른 적절한 통계 소프트웨어로 길이 측정을 보냅니다. 각 샘플에 대한 평균과 표준 편차를 계산하여 데이터를 분석 할 수 있습니다. 그런 다음 학생의 t-테스트를​​ 사용하여 샘​​플을 비교합니다. </li></ol>

<ol><li>Melnyk, C. W., Molnar, A., Baulcombe, D. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intercellular+and+systemic+movement+of+RNA+silencing+signals%5BTitle%5D)+AND+%22Embo+J%22%5BJournal%5D)">Intercellular and systemic movement of RNA silencing signals.</a> Embo J. 30, 3553-3563 (2011).</li>
<li>Wall, N. R., Shi, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Small+RNA%3A+can+RNA+interference+be+exploited+for+therapy%5BTitle%5D)+AND+%22Lancet%22%5BJournal%5D)">Small RNA: can RNA interference be exploited for therapy.</a> Lancet. 362, 1401-1403 (2003).</li>
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<li>Timmons, L., Court, D. L., Fire, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ingestion+of+bacterially+expressed+dsRNAs+can+produce+specific+and+potent+genetic+interference+in+Caenorhabditis+elegans%5BTitle%5D)+AND+%22Gene%22%5BJournal%5D)">Ingestion of bacterially expressed dsRNAs can produce specific and potent genetic interference in Caenorhabditis elegans.</a> Gene. 263, 103-112 (2001).</li>
</ol>

관심 없음 충돌이 선언 없습니다.

이 프로토콜에서는, 우리는 C.의 몸 크기 결함이있는 돌연변이의 식별을위한 우리의 방법을 설명 RNAi 먹이로 elegans. 이 방법은 TGF-β 신호 구성 요소의 식별에 적용됩니다. 이러한 구성 요소가 매우 진화 15 일까지 보존되어 있으므로, 이러한 화면은 metazoans에서 TGF-β 신호의 분자 메커니즘을 elucidating에 관련이 있습니다. 이러한 화면 설계의 중요한 고려 사항은 시작 변형입니다. 린 - 15B와 rrf-3 이전 연구 12,13와 일치 제어 변종보다 RNAi 먹이에 더 민감합니다, 우리는 모두 eri-1이 그렇게 보여주고 있습니다. eri - 나에도 불구 그러나, 린 - 15B는 강한 표현형을 보여, 동물 잘 성장하고 몇 자손을 생산 없습니다. 따라서, 대규모 화면에서, 우리는이 긴장의 phenotypes 점수를 충분히 동물이없는 것입니다. 결과...

<table border="1"><tbody><tr><td></td><td></td><td></td><td> RNAi 웜 판 17.7 g 웜 매체 믹스 60g의 한천 3리터에 H 2 O를 추가합니다. 압력솥. 3 ML 1M IPTG (살균), 3 ML 25 MG / ML Carbenicillin을 (무균)을 추가 한 후 60mm 배양 접시에 부어. 웜 판 17.7 g 웜 매체 믹스 0.6 g의 스트렙토 마이신의 황산 60g의 한천 3리터에 H 2 O를 추가합니다. 압력솥. 60mm 배양 접시에 넣어. 웜 매체 믹스 55g 트리스-CL 24g 트리스-OH 310g Bacto 펩톤 800 MG의 콜레스테롤 200g NaCl 철저하게 섞어서 덩어리를 방지해야합니다,이 가루 혼합물을 사용하기 전에 몇 개월 동안 저장 될 수 있습니다. 2퍼센트 아가로 오스 0.5 g 아가로 오스 광고D 25 ML DH 2 O. 전자 레인지의 열 용해 될 때까지. 1M 이소 프로필 β-D-1-thiogalactopyranoside (IPTG) 2g IPTG in10 ML DH 2 O를 해산 1M 앤 3 6.5 g 앤 3 100 ML에 DH 2 O를 추가합니다 25 MM 앤 3 2.5 ML 1M 앤 3 100 ML에 DH 2 O를 추가합니다 Caenorhabditis 유전학 센터에서 Caenorhabditis elegans 플라스미드 L4440 (암피실린 저항 유전자를 운반) 16, 박테리아가 HT115 (DE3)을 (또한 테트라 사이클린 - 저항 유전자를 운반 RNAse III 유전자 (dsRNAse)에 대한 결함 IPTG inducible T7의 효소 포함) 변형 60mm 페트리 요리 100mm 배양 접시 14 ML 둥근 바닥 팔콘 문화 관 유리 슬라이드 유리 coverslips 1-20 μl pipettor 20-200 μl pipettor 200-1000 μlpipettor 1-200 μl pipet 팁 200-1000 μl pipet 팁 1.5 ML Eppendorf 튜브 백금 와이어 웜 픽 </td></tr></tbody></table>

선충류의 바디 크기 규정에 참여 유전자에 대한 화면으로 rna로 인한 간섭 수유 전략을 사용하여<em&gt; c. elegans</em

Using RNA-mediated Interference Feeding Strategy to Screen for Genes Involved in Body Size Regulation in the Nematode C. elegans

두 번 스트랜드 RNA로 인한 간섭 (RNAi)는 대상 유전자 표현 1-3를 비판 할 효과적인 전략이다. 그것은 식물, 무척추 동물 및 vertebrates 등 많은 모델 시스템에 적용되었습니다. 생체 4,5에서 RNAi를 달성하기위한 다양한 방법이 있습니다. 예를 들어, 대상 유전자는 RNAi 벡터로 변환 한 후 영구적 또는 transiently 셀 라인 또는 유전자 최저 효과를 달성 할 기본 세포로 변환 될 수 있으며, 대안 특정 대상 유전자 (RNAi oligos)에서 두 번 스트랜드의 oligonucleotides를 합성 transiently 수 있습니다 대상 유전자를 침묵하는 세포 라인 또는 기본 세포로 변환, 또는 합성 두 번 좌초 RNA 분자는 생명체로 microinjected 할 수 있습니다. 선충류 C. 이후 elegans는 박테리아가 대상 유전자에 대한 이중 가닥 RNA을 표현과 함께 동물 먹이, 식품 소스로 박테리아를 사용하는 가능한 전략 6 제공합니다. 여기 RNAi 먹이를 제공방법은 몸 크기 표현형의 점수를합니다. C. 몸 크기 elegans는 주로 TGF-β에 의해 규제되어 있습니다 - 같은 리간드 DBL-1,이 분석은 TGF-β 신호 구성 요소를 7 식별에 적합합니다. 우리는 RNAi 먹이 실험을 반복하는 두 RNAi 지나치게 긴장 등의 다양한 변종을 사용. 우리의 결과는 rrf-3 스트레인가 우리에게 가장 예상 RNAi의 표현형 준 것으로 나타났다. 방법은 수행 할 수 쉽게 재현, 쉽게 계량입니다. 또한, 우리의 프로토콜은 특수 장비의 사용을 최소화하기 때문에 작은 실험실 또는 주로 대학 기관에서 사람들에게 적합합니다.

우리의 연구에서, 우리는 DBL-1/TGF-β 경로의 몸 크기 조절에 중점을두고 있습니다. 야생 형 동물 7,10,11에 비해 짧은 몸 길이 등의 작은 몸 크기 DBL-1 경로 결과의 함수의 손실. C.에 따라서 화면 elegans의 몸 크기 돌연변이 TGF-β 신호 구성 요소와 수식을 식별 할 수 있습니다. DBL-1 신호는 세포 표면 수용체와 세포 Smad 신호 변환기 12 포함 보존 TGF-β 신호 전달 경로에 의해 중재됩니다. dbl-1/ligand, SMA-2, SMA-3, sma-4/Smads 및 : 신체 사이즈 돌연변이의 식별을 위해 먹이가 RNAi의 효과를 테스트하기 위해, 우리는 DBL-1 경로 구성 요소를 다운 노크도이 기술을 사용 sma-6/receptor. 우리의 연구를 들어, 두 개의 서로 다른 RNAi 지나치게 C.를 사용 elegans는 긴장 실험을 수행 할 수 : ...

우리는에서 대상 유전자와 점수 몸 크기 표현형을 노크 RNAi 먹이 기술을 사용하는 방법을 보여줍니다<em&gt; C. elegans</em&gt;. 이 방법은 같은 DBL-1/TGF-β 신호의 몸 크기 조절에 관여 것과 같은 관심의 잠재적 유전자 구성 요소를 식별하기 위해 대규모 화면에 사용 될 수 있습니다.

선충류의 바디 크기 규정에 참여 유전자에 대한 화면으로 RNA로 인한 간섭 수유 전략을 사용하여<em&gt; C. elegans</em

이중 가닥 RNA 매개 간섭(RNAi)은 표적 유전자의 발현을 억제(knock down)하는 효과적인 전략입니다1-3. 이는 많은 모델 시스템에 적용되어 왔으며...

이 비디오는 C. elegans의 성장과 신체 크기를 조절하는 유전자를 식별하는 절차를 보여줍니다. RNA 간섭(RNA interference) 또는 RNAi를 사용하여 후보 유전자를 비활성화하기 위해, 먼저 표적 유전자를 겨냥한 이중 가닥 RNA를 발현하는 박테리아가 포함된 플레이트를 준비합니다. 그 후 4단계 유충 단계의 자웅동체(hermaphrodites)를 RNAi 플레이트로 옮깁니다.성체 초기 단계에 도달하면, 알을 낳도록 새로운 RNAI 플레이트로 옮깁니다. 몇 시간 후, 성체를 제거하여 동기화된 배아 집단을 확보합니다. 원하는 발달 단계에서 후손을 수집하여 슬라이드에 고정합니다.마지막으로, 벌레의 현미경 이미지를 획득합니다. 이미지 분석을 통해 유전자 불활성화로 인한 신체 크기의 변화를 확인할 수 있습니다. 이 방법은 TGF beta 신호 전달 경로의 조절 인자를 식별하는 데 사용될 수 있을 뿐만 아니라, 인슐린 신호 전달 경로와 같이 C. elegans의 배아 이후 발달을 조절하는 다른 경로에도 적용될 수 있습니다.표적 유전자 서열을 일반적인 worm RNAi plasmid인 vector L 4 4 4 0 A에 클로닝하여 이 절차를 시작하고, 재조합 plasmid를 박테리아 균주 HT one 15 DE three에 형질전환하십시오. 형질전환된 박테리아를 25 micrograms per milliliter의 carbonic과 12.5 micrograms per milliliter의 Tetracycline이 포함된 LB agar 플레이트에서 배양한 후, 향후 사용을 위해 단일 클론을 선택하십시오.한편, 공벡터 L 4 4 4 0를 박테리아 균주 HT one 15에 형질전환합니다. 실험 대조군으로 사용하기 위해, 형질전환된 박테리아를 100 µg/mL의 ampicillin이 함유된 1 mL LB 배지에서 37 °C로 하룻밤 동안 배양합니다.Tetracycline은 RNAI 효율을 감소시키기 때문에 첨가하지 않습니다. 밤새 배양한 배양액에 100 µg/mL의 ampicillin이 포함된 LB broth 5 mL를 추가로 넣고 37 °C에서 4~6시간 동안 더 배양합니다. 배양이 완료되면, 적절한 클론 이름이 표시된 RNAI worm 플레이트에 실험군 또는 대조군 박테리아 0.5 mL를 접종합니다.각 조건당 최소 두 개의 플레이트를 준비해야 합니다. 플레이트를 37 °C에서 하룻밤 동안 배양합니다. 다음 날,표적 유전자 서열의 포함 여부에 따라 RNAi를 발현하는 박테리아 층이 형성되어 있어야 합니다. 동물들은 이 박테리아를 먹이원으로 사용하게 됩니다. RNAi 급이 플레이트가 준비되면, 백금선 끝을 화염 멸균합니다.그다음 백금선을 사용하여 6~10마리의 4단계 유충(L4) C. elegans 자웅동체나 성충을 각각의 RNAi 플레이트에 옮깁니다. 자웅동체를 20°C에서 하룻밤 동안 배양합니다. 다음 날이면 개체들이 청년기 성충이 됩니다.이들을 적절하게 라벨링하여 준비한 새로운 RNAI 플레이트로 옮깁니다. 성충이 알을 낳을 수 있도록 플레이트를 20 °C에서 4~6시간 동안 배양합니다. 배양 후, 자손 세대를 동기화하기 위해 플레이트에서 모든 성충을 제거합니다.성체를 제거한 후, 시간 측정을 시작합니다. 이때를 0시간으로 합니다. 플레이트를 20 °C에서 배양하여 동물이 목표하는 발달 단계까지 성장하도록 합니다.여기서는 표현형 분석을 위해 청년기 성체를 선택합니다. 정상적인 속도로 발달하는 넉다운(knockdown)의 경우, 72시간의 배양이 필요합니다. 유전자에 따라 동물의 발달에 미치는 영향이 다르므로 배양 시간을 조정해야 할 수도 있음을 유의하십시오.RNAi로 인해 동물의 성장 속도가 달라지는 경우, VUL 발달이 완료되고 자궁 내에 2~6개의 배아가 있는 L4 단계 이후 24시간 이내의 개체를 성체 초기 단계로 식별할 수 있으며, 이는 여기 표시된 바와 같습니다. 다른 발달 단계를 식별하려면 연구자는 생식샘 및 VUL 발달 상태를 기준으로 삼아야 합니다. 동물이 적절한 단계까지 성장하면, RNAi 처리된 벌레의 신체 크기 표현형을 측정할 준비를 하십시오.다음으로, 여기에 표시된 것처럼 1 mm 두께의 유리 표본 슬라이드 위에 색상 라벨 테이프를 두 겹으로 붙입니다. 이러한 유리 슬라이드를 두 개 만듭니다. 그 후, 테이프가 붙은 두 슬라이드 사이에 새로운 유리 슬라이드를 놓고, 물에 녹인 2%Agros 한 방울을 떨어뜨립니다.새 유리 슬라이드의 중앙에 다른 유리 슬라이드를 위에 눌러 얇은 agar 패드를 만듭니다. agar가 굳으면 위에 있던 유리를 제거합니다. agar 패드가 있는 슬라이드가 준비되었으므로 이제 벌레를 접종합니다.슬라이드에 클론 이름을 표시합니다. aros 패드에 25 millimolar sodium azide 10 µL를 첨가합니다. 그런 다음 이전과 같이 백금선을 사용하여 30~40마리의 개체를 sodium azide 용액으로 옮깁니다.동물을 고정하기 위해 상단에 커버 슬립을 덮습니다. 재조합 및 공벡터 L 4 4 4 0 RNAi 처리 동물 모두에 대해 이 과정을 수행합니다. 다음으로, 2.5 x 대물렌즈가 장착된 해부 현미경 아래에 마이크로미터 슬라이드를 놓습니다.Q Capture 또는 유사한 소프트웨어를 사용하여 마이크로미터 자의 이미지를 캡처하고 저장합니다. 그 다음, 현미경 아래에 벌레를 배치하고 이미지를 캡처합니다. 먼저 체장을 측정하려면 Image Pro 소프트웨어에서 마이크로미터 자 이미지를 엽니다.그런 다음 measure를 클릭하고 calibration을 선택하십시오. 이어서 calibrate the active image가 선택된 상태에서 spatial Calibration wizard를 선택하십시오. Next를 클릭하십시오.캘리브레이션 이름을 입력하고 공간 참조 단위가 마이크론(microns)으로 설정되었는지 확인하십시오. 그런 다음 '참조 캘리브레이션 생성(Create a reference calibration)' 버튼을 체크하고 '다음(Next)'을 클릭하십시오. '참조선 그리기(draw reference line)'를 클릭하십시오.참조 스케일 바가 나타납니다. 마이크로미터의 양 끝에 맞게 스케일 바의 위치를 조정하십시오. 그다음 해당 참조 표시가 1000 단위를 나타냄을 지정하십시오.확인을 클릭합니다. 다음 및 완료를 누릅니다. 소프트웨어 보정이 완료되면 벌레 이미지를 엽니다.그런 다음 measure 메뉴에서 calibration을 선택하고, select spatial을 클릭합니다. 드롭다운 메뉴에서 마이크로미터 보정을 위해 생성한 파일 이름을 선택하십시오. 그 후, 열리는 창의 measure 메뉴에서 measurements를 선택합니다.자유 그리기 도구를 선택하고 컴퓨터 마우스를 사용하여 동물의 머리부터 꼬리까지 몸의 중심을 따라 선을 그립니다. 측정된 길이는 창에 표시됩니다. 시야 내의 모든 동물에 대해 이 과정을 반복하십시오.길이 측정값을 Microsoft Excel 파일 또는 기타 적절한 통계 소프트웨어로 내보내십시오. 각 샘플의 평균과 표준 편차를 계산하여 데이터를 분석하십시오. 그 다음, Student's T-test를 사용하여 각 그룹의 결과를 비교하십시오.변환 성장 인자 베타(transforming growth factor beta) 또는 TGF beta 슈퍼패밀리 단백질 DBL1은 TGF beta 경로의 활성화에 필수적입니다. 신호 활성화에 반응하여 세포 내 smad 신호 전달 단백질이 핵으로 이동하여 유전자 전사를 개시합니다. TGF beta 경로가 억제된 개체는 야생형 동물보다 체장이 짧은 것을 포함하여 체구 크기가 더 작음을 확인할 수 있습니다.따라서 *C. elegans* 스크리닝을 수행합니다. 체구 돌연변이체는 먹이 공급을 통한 RNAi의 효율성을 테스트하여 체구 돌연변이체를 식별함으로써 TGF beta 신호 전달 성분 및 조절 인자를 찾아낼 수 있습니다. RNAi를 사용하여 4가지 서로 다른 *C. elegans* 균주에서 DBL-1 경로 성분인 SMA-3 및 SMA-6를 녹다운시켰습니다.테스트된 C elegance 균주는 RNAi 과민성 균주인 Lin 15 B와 RF three를 포함하여, 표준 야생형 균주인 N two 및 RNAi 민감도가 N two와 유사한 것으로 나타난 LIN 36 균주입니다. SMA three 또는 SMA six의 발현이 억제되었을 때, Lin 36에서의 SMA six RNAi를 제외하고 모든 동물은 대조군 동물보다 체구 크기가 유의미하게 작았습니다. RF three의 배경입니다.RNAi 처리 후 청년기 성체의 배경 체장은 벡터 단독 처리군의 84~95%였습니다. A one Lin 15 B 배경의 경우, RNAi 처리 후 청년기 성체의 체장은 대조군 동물의 68~86%였습니다. 그러나 A one lin 15 B 계통은 자손 수를 적게 생성합니다.이로 인해 이들은 대규모 스크리닝에 부적합합니다. 따라서 이러한 기술에는 RF 세 가지 균주(RF three strain)의 사용이 권장됩니다. 이 영상을 시청한 후에는 RNI 간섭 기술을 이용하여 성장과 체구 크기를 조절하는 유전자를 식별하는 방법에 대해 충분히 이해하게 될 것입니다.

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Caenorhabditis elegans는 건강, 수명 및 스트레스에 대한 탄력성을 조사하기위한 강력하고 저렴한 방법을 갖춘 우수한 모델 시스템 역할을합니다.

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