Name: 상처 치유의 생쥐 모델 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-05-28T13:00:00.000+00:00
Duration: 5 min 39 s
Description: 배우세요 실리콘 스플린트를 이용한 생쥐 절개 상처 치유 모델로 인간과 유사한 상피화, 증식, 혈관신생을 촉진하는 방법을 연구하세요. 이 기술은 치료제 효능 평가에 탁월합니다.

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저자는 국민 건강과 호주의 의학 연구위원회 (NHMRC) (: 632512 프로젝트 부여 ID)의 자금 지원을 인정하고 싶습니다. 루이스 던은 국립 심장 재단 경력 개발 원정대에 의해 NHMRC 초기 경력 친목과 크리스티나 Bursill에 의해 지원되었다.

1. 부목​​ 및 폐색 드레싱의 준비 <ol><li> 0.5 mm 두께의 실리콘 시트 및 사용 가위 나 실리콘 디스크를 만들 수있는 생검 펀치에 10mm 원을 설명합니다. </li><li> 센터 10 밀리미터 원의 중간에 5mm 생검 펀치 부목으로 사용되는 디스크처럼 - &quot;도넛&quot;을 형성하는 구멍을 만들기 위해 단단히 누르십시오. </li><li> 이러한 Opsite 및 원형 드레싱을 만들 때 사용하는 가위로 투명 폐색 드레싱에 10mm 원을 설명합니다. </li></ol> 2. 실험 동물 <ol><li> 수행 할 모든 실험 동물 윤리위원회의 승인을 얻습니다. </li><li> 상업 개종 (예를 들어, 잭슨 연구소)에서 8 주 이전 (22~26g) 남성 C57BL/6J 마우스를 사용합니다. </li><li> 21의 표준 조건에서 쥐를 유지 ° C와 음식과 물을 무료로 액세스 할 수있는 12 시간 빛 어두운주기. </li><li> (선택 사항) : 당뇨병은 알약 복강 인제로 6~7주 오래된 마우스에서 유도 될 수정기적으로 혈당 모니터링 (AccuChek glucometer에)에 의해 확인 된 고혈당과 165 ㎎ / ㎏ 스트렙토 조 토신 (구연산 버퍼, 산도 4.5)의 ction의. 당뇨병 쥐 다뇨가있을 수 있습니다 그래서 그들의 침구 습기를 제거하고 가중치를 면밀히 모니터링해야 더 자주 변경해야 할 수 있습니다. </li></ol> 3. 마취 및 수술 준비 <ol><li> 100 % 산소 isoflurane을 5 %을 (유량 1 L / 분)을 사용하여 전신 마취를 유도하고 isoflurane을 1-3%을 사용하여 마취를 유지합니다. </li><li> 억제 된 마우스의 깊은 페달 반사를 확인하고 발생하기 쉬운 위치에 마우스를 놓습니다. </li><li> 더 뒤로 아래로 두 견갑골 사이 3cm로 목 기지에서 가위로 털을 제거하여 수술 영역을 준비합니다. </li><li> 탈모 크림 라이트 응용 프로그램은 2 분 이상 더 이상 적용 할 수 있습니다. 젖은 거즈 면봉은 모든 크림을 보장 할 수 있으며, 나머지 모피가 제거됩니다. </li><li> 로 피부를 닦아알코올 면봉와 10 %의 두 응용 프로그램 포비돈 요오드 (베타 딘)과 마우스를 주름 잡아 드리운다. </li></ol> 4. 절단 및 상처의 부목 <ol><li> 쥐 상처 치유 모델의 도식 표현은 그림 1에 제시되어있다. </li><li> (그림의 2A-2B 참조) 어깨 높이에서 마우스의 정중선의 양쪽에 상처 두 개의 원형 패턴을 설명하기 위해 멸균 4mm 생검 펀치를 사용합니다. </li><li> 개요 및 panniculus carnosus (그림 2E) 등의 피하 조직 (그림 2C-2D)를 통해 확장 전층 상처를 만들 수 홍채 가위의 중간에 피부를 들어 올려 톱니 모양의 집게를 사용하고, 소비세 원형 조각 조직의. </li><li> 정중선 (그림 2F)의 반대편에 상처 과정을 반복합니다. </li><li> 실리콘 부목의 각 측면에서 플라스틱 보호 코팅을 제거합니다. </li><li> cyanoacryla을 적용테 접착제 (예를 들어, 최고 접착제 또는 크레이지 접착제) 실리콘 부목의 한쪽. </li><li> 센터 상처에 부목 (그림 2G) 및 앵커 위치 (그림 2H)을 보장하기 위해 중단 된 6-0 나일론 봉합사로 부목. </li><li> 다른 상처에 부목 과정을 반복합니다. </li><li> 이 시간 시점에서 필요한 경우, 하나의 상처 (그림 2I), 그리고 다른 차량 제어를 테스트 할 치료 화합물 (100 μL)을 적용합니다. </li><li> 투명 폐색 드레싱 (예를 들어, OpSite) (그림 2J-2K)으로 상처를 덮습니다. </li><li> 통치자는 부목 아래에 배치 현미경이 (2리터 그림) 촬영됩니다. </li></ol> 6. 수술 후 관리 <ol><li> Carprofen은 (5 ㎎ / ㎏) 수술 후 통증 완화를 위해 서브 피부 주사를 통해 매일 한 번 관리됩니다. </li><li> 수술 동물은 개별적으로 갇힌 및 열 미터에서 유지 한 후ATS가 완전히 회복 될 때까지. </li><li> 통증과 체중 감소의 증상에 대한 회 동물을 모니터링 할 수 있습니다. 우리가 통증이나 체중 감소의 더 심한 행동 디스플레이를 관찰합니다. </li></ol> 7. 상처 측정 및 치료 <ol><li> 상처는 매일 측정 할 수 있습니다. </li><li> 5 % isoflurane을 가스 (유량 1 L / 분)을 사용하여 전신 마취를 유도 한 후 마우스의 깊은 감각 반사 보장은 1-3 %의 isoflurane을 사용하여 표시되지 않습니다. </li><li> 집게로 조심스럽게 껍질 폐색 드레싱. </li><li> 상처 직경을 측정하기 위해 수술 캘리퍼스를 사용합니다. 우리는 X, Y 및 Z 축 (그림 2m-2O)뿐만 아니라 나중에 참조 할 수있다 (그림 2 P)에 대한 현미경 따라 3 개의 측정 값의 평균을 가지고 간다. </li><li> 선택 사항 :이 때 동물이 레이저 도플러 영상 (그림 2 분기)를 사용하여 혈액 관류에 대한 평가 할 수 있습니다. </li><li> 치료 화합물 및 차량 제어를 다시 응용 프로그램 perfor 수 있습니다이 시점에서 의대. </li><li> 깨끗하고 투명한 폐쇄성 드레싱 후 다시 적용하고 완전히 회복 될 때까지 동물은 따뜻하게 유지됩니다. </li><li> 참고 : 부목이 제대로 확보되지 않을 경우 상처는 쉽게 계약 할 것이다 (그림 2R). </li></ol> 8. 조직 학적 분석 <ol><li> 마취의 과다 복용 10 일 후에 쥐를 안락사. </li><li> 집게를 사용하고 메스 칼날이 껍질 멀리주의 부목 봉합을 제거합니다. </li><li> 주위 상처 영역에서 폭, 전체 절제술을 만들고 인산 4 % 파라 포름 알데히드의 조직을 배양하기 위해 홍채 가위를 사용하여 4 ° C에서 하룻밤 (PBS) 염분 버퍼. </li><li> ° C -80에서 단층 화합물 및 동결의 조직과 장소에주의 dabbing하여 과량의 용액을 제거 ° C. 4에서 추가로 24 시간 동안 PBS 용액에 17 % 자당에 조직을 전송 </li><li> 헤 마톡 실린과 에오신 염색은 상처 구조와 상피 차이를 시각화하는 데 사용할 수 있습니다. Neovascularisation은 모세 혈관의 수 (폰 빌레 브란트 인자를 사용)를 결정하기 위해 면역 조직 화학 분석에 의해 평가 될 수있다. </li></ol>

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</ol>

저자는 공개 아무것도 없어.

이 피부 상처 치유의 실험 쥐 모델입니다. 이 모델의 중요한 특징은 인간의 발생 과정이 유사하고, 재 상피화 및 새로운 조직의 형성이 발생할 수 있도록 상처 수축을 방지하는 실리콘 부목의 사용이다. 이 모델은 다목적 생리적 및 병리 모두 (예를 들면 당뇨병) 설정에서 상처 치유를 평가하는 데 사용할 수 있습니다. 모델은 경제적 인 환경에서 잠재적 인 상처 치유 나 혈관 치료를 평가하는 데 사용할 수 있습니다. 자신의 컨트롤로 작동하는 각각의 마우스로, 동물의 수는 최소화됩니다. 이 모델에 필요한 수술 기법 따라서이 모델은 널리 비교적 적은 수술 경험을 가진 사람들에 의해 사용될 수 있습니다, 매우 정교한하지 않습니다. 그것은 부목이 적절하게 준수하고 봉합과 피부에 정박하는 것이 필수적이며, t 그 재현성과 정확한 정량을 보장하기 위해여기에 두 개의 상처를 만드는 사이의 지연을 최소화입니다. 쥐 상처의 성향이 빠르게 때문에 마우스 부목을 매일 모니터링을 필요로 ...

손상된 상처 치유 중요한 병적 상태와 세계적으로 사망에 대한 책임이며, 이는 당뇨병 1,2의 환자에 특히 사실이다. 인간, 상처 치유는 3 중복 의미가있는 프로세스의 연속이다. 직후에 남긴 상처, 염증 프로세스가 시작됩니다. 염증 세포는 세포 증식, 이동 및 혈관 신생 과정을 촉진 인자를 놓습니다. 재 상피화 및 새로운 조직의 형성 이후에 같은 콜라겐 매트릭스 단백질의 세포 사멸하고 다시 조직을 모두 수반 개조의 단계가있다. 상처 치유의 복잡성은 현재 체외에서 복제 된이 동물 모델의 사용을 필요로 할 수 없습니다. 지금까지, 상처 치유 연구는 치료 과정은 동일하고 인간에게 비교를 보장하기 위해, 같은 돼지 같은 큰 동물 모델에 한정되어있다. 그러나 큰 애니을 사용하여이러한 연구를위한 LS 집에 어려울 항상 실제 4 수 없습니다 수 있습니다. 실험실 쥐 쉽게 유전자 5-7 역학적 조사 조작 할 수있는 경제적 인 동물 모델을 나타냅니다. 그러나 생쥐 상처 수축 8의 과정 차적으로 인해 인간의 다르게 치료. 이것은 부분적으로 인간에서 크게 결석 panniculus carnosus라는 광범위한 피하 횡문근 층 때문입니다. 마우스,이 근육 층은 피부가 독립적으로 깊은 근육의 이동 할 수 있으며 피부 아래에 입힐 수있는 총알의 급속한 수축에 대한 책임이 있습니다. 이 제한을 극복하기 위해, 쥐 상처 치유는 부목을 사용한다 (그림 1) 8,9에 의해 인간의 상처 치유를 복제하도록 구성 할 수 있습니다. 이 비디오에서 우리는 다시 epithelializa의 인간 프로세스를 상처 수축을 제거하고 더 가깝게 근사 splinted 쥐 상처 모델을 보여TION 및 새로운 조직의 형성. 이 모델에서 panniculus carnosus을 포함 두 개의 전층 절개는 마우스의 정중선의 양쪽에 배부 한에 생성됩니다. 실리콘 부목은 접착제의 도움으로 상처 주위에 배치하고 부목는 중단 된 봉합사로 고정되어 있습니다. 각 마우스함으로써 동물의 수를 줄이고, 하나의 상처를 치료하고 다른 차량 제어를받는과 함께 자신의 제어 역할을합니다. 국소 응용 프로그램에 따라 투명 폐쇄성 드레싱이 적용됩니다. 또한 국소 응용 프로그램 및 / 또는 상처 영역 10,11의 측정을 위해 필요한 경우 드레싱을 제거 할 수 있습니다. 에서 실험 완료, 상처 봉합, 형태 학적 구조와 신생 혈관의 정도는 면역에 의해 평가 될 수있다. 이 경제 모델을 수행하기 쉬운 또한 당뇨병이나 다른 pathophysiologies의 맥락에서 상처 치유를 평가하기 위하여 이용 될 수있다.

<table><tbody><tr><td>프레스 투 씰(Press-to-seal) 실리콘 시트 0.5mm 두께</td><td>Invitrogen</td><td>P18178</td><td>외경 1cm, 내경 0.5cm의 "도넛"으로 절단</td></tr><tr><td>생검 펀치 5mm</td><td>Steifel</td><td>BC-B1-0500</td><td>절제할 상처 부위의 윤곽을 그리려면</td></tr><tr><td>Vannas 가위 8.5cm 곡선</td><td>세계 정밀 기기 </td><td>501232</td><td>상처 절개 및 절제용</td></tr><tr><td>Dumonte #7b 펑크, 11cm</td><td>World Precision Instruments</td><td>501302</td><td>절개 및 절개 시 피부를 잡기 위해 </td></tr><tr><td>Graefe 집게, 톱니 모양 10cm</td><td>World Precision Instruments</td><td>14142</td><td>피부에 실리콘 스플린트 부착을 돕기 위해</td></tr><tr><td>바늘 홀더, 부드러운 턱, 곡선형, 12.5cm</td><td>World Precision Instruments</td><td>14132</td><td></td></tr><tr><td>Malis 집게, 매끄럽고 직선, 12cm</td><td>Codman and Shurtleff, Inc (J& 앰프; J)</td><td>80-1500</td><td>실리콘 링을 피부에 봉합하기 위해</td></tr><tr><td>통치자, 0.5mm 그라데이션</td><td>n/a</td><td></td><td></td></tr><tr><td>캘리퍼스 0.25mm 그라데이션</td><td>Duckworth and Kent</td><td>9-653</td><td>상처 부위</td></tr><tr><td>측정 Opsite FlexiFix 투명 접착 필름. 10cm x 1m</td><td>Smith & 조카</td><td>66030570</td><td></td></tr><tr><td>Rimadyl (Carprofen)</td><td>Pfizer</td><td>462986</td><td></td></tr></tbody></table>

상처 치유의 생쥐 모델

Murine Model of Wound Healing

상처 치유 및 복구는 인간의 삶에서 발생하는 가장 복잡한 생물학적 과정이다. 부상 후, 여러 생물 학적 경로가 활성화됩니다. 예를 들어, 당뇨병 환자에서 발생하는 손상 상처 치유, 같은 절단 등의 심각한 불리한 결과를 초래할 수 있습니다. 상처 복구를 촉진 새로운 에이전트를 개발하기 위해 증가 자극 그러므로 있습니다. 이러한 테스트는 이러한 종종 비실용적 돼지와 같은 큰 동물 모델에 국한되어 있습니다. 그들은 경제적 인 기계적인 조사를 허용 유전자 조작, 의무이기 때문에 쥐, 이상적인 전임상 모델을 나타냅니다. 그러나, 그것은 주로 수축을 통해 발생할 때 마우스 치유가 인간의 근본적으로 다른 상처. 우리의 생쥐 모델은 상처 주위에 부목을 통합하여이를 극복한다. 상처를 부목으로 복구 프로세스가 긴밀를 반영 상피, 세포 증식 및 혈관 신생, 그때 의존인간의 상처 치유의 생물학적 처리합니다. 일관성과 치료를 필요로하는 반면,이 쥐 모델은 복잡한 수술 기법을 포함, 예를 들어, 혈관 신생을 촉진하거나 염증을 억제 할 수 유망한 에이전트의 강력한 테스트를 할 수 없습니다. 두 개의 상처가 준비되어 더욱이, 각각의 마우스 시험 화합물과 같은 동물에 차량 제어 모두의 응용 프로그램을 사용, 자신의 제어 역할을합니다. 결론적으로, 우리는 인간의 그것과 비교할 상처 치유의 실제, 배우기 쉬운, 강력한 모델을 보여줍니다.

(주 0 직경 / 일 X 지름) - 상처 폐쇄 곡선은 상처의 평균 직경을 계산하여 백분율, 즉 100로 결과를 표현 의해 결정됩니다. 이 실험에서 치료 화합물 (또는 차량 제어)는 상처에 매일 적용되었다. 치료 화합물을 크게 가속 상처 봉합 (그림 3). 그것은 부목의 제거가 빠른 상처의 수축 (그림 2R)으로 이어질 인간의 관찰 상처 치유의 패턴에서 분기되므로 부목은 실험 기간 동안 유지해야하는 것이 중요하다. <img src="/files/ftp_upload/50265/50265fig1.jpg" alt="그림 1" fo:content-width="3in" fo:src="/files/ftp_upload/50265/50265fig1highres.jpg" /> 그림 1. 쥐 상처 치유 모델의 도식 표현.이</s...

생리와 병리 설정에서 치료 화합물을 평가하는 데 사용할 수있는 피부 상처 치유의 쥐 모델.

Wound healing and repair are the most complex biological processes that occur in human life. After injury, multiple biological pathways become activated. ...

본 절차의 전반적인 목적은 상처 부위에 부목을 대어 수축을 방지하고 상피화, 단독 세포 증식 및 혈관 형성을 촉진하는 상처 모델을 만드는 것입니다. 이를 위해 먼저 등쪽 피부를 준비하고 정중선 양측에 두 개의 전층 절제성 상처를 만듭니다. 그 다음, 상처 위에 부목을 배치하고 봉합하여 고정합니다.그 후 상처의 크기를 측정하고 치료제를 도포합니다. 마지막으로 상처 부위에 밀폐 드레싱을 부착하고 마우스가 회복되도록 합니다. 최종적으로, 피부 절제 상처 치유 모델은 상처, 상피화 및 증식과 혈관 신생을 포함한 관련 과정을 평가하는 데 사용됩니다.이 기술이 다른 방법보다 갖는 주요 장점은 상처 수축이 방지된다는 점입니다. 이는 상피화 증식과 혈관 신생을 촉진하여 실제 상처 치유 과정에 더 가깝게 모사합니다. 인간의 경우, 이 방법은 치료 화합물의 효능을 평가하는 데 특히 유용하며, 각 마우스가 자체 대조군 역할을 하므로 연구에 필요한 동물 수를 최소화할 수 있습니다.먼저 부목을 만들기 위해 부목 재료와 폐쇄성 드레싱을 준비합니다. 우선 실리콘 시트에 10mm 크기의 원을 그린 다음, 가위나 생검 펀치를 사용하여 실리콘 디스크를 만듭니다. 이어서 10mm 디스크의 중앙에 5mm 생검 펀치를 맞춘 후, 세게 눌러 부목으로 사용할 도넛 모양의 링을 만듭니다.Ops site와 같은 투명 폐쇄성 드레싱을 사용하여 동일한 크기의 원형 드레싱을 만듭니다. 먼저, 마취된 마우스의 마취 깊이가 적절한지 확인합니다. 수술 부위의 털을 모두 제거한 후, 베타딘과 알코올을 반복적으로 도포하여 피부를 세척합니다.준비가 되면 멸균된 4 mm 생검 펀치를 사용하여 마우스 어깨 높이의 정중선 양측에 두 개의 원형 패턴 외곽선을 그립니다. 다음으로 톱니 모양 핀셋을 사용하여 외곽선 중앙의 피부를 들어 올리고 홍채 가위로 상처를 냅니다. 이때 panus osis를 포함한 피하 조직까지 완전히 절개하십시오.양측에서 조직을 절제하여 두 개의 원형 상처를 만듭니다. 실리콘 스플린트의 양면에서 플라스틱 보호 코팅을 제거하고 한쪽 면에 시아노아크릴레이트 접착제를 도포합니다.부목을 상처 부위 중앙에 맞춘 후, 6-0 나일론 봉합사로 단순 결절 봉합하여 고정합니다. 다른 상처 부위에도 동일한 부목 고정 과정을 반복합니다. 이 단계에서, 한쪽 상처를 대조군으로 사용하면서 다른 쪽 상처에 치료 화합물을 도포할 수 있습니다.대조군 차량(vehicle control)의 경우, 부목 아래에 자를 배치하고 광학 현미경 사진을 촬영합니다. 앞서 준비한 원형 드레싱 조각 중 하나로 상처 부위를 덮습니다. 진통제를 투여한 후, 가온된 케이지에서 동물이 회복될 수 있도록 합니다.동물들은 통증 징후와 체중 감소 여부를 확인하기 위해 하루에 두 번 모니터링합니다. 상처 크기를 측정하려면, 앞서 설명한 대로 동물에게 마취를 실시하고 핀셋으로 밀폐 드레싱을 조심스럽게 벗겨냅니다. 수술용 캘리퍼를 사용하여 여러 지점에서 상처 직경을 측정해 평균값을 구하고, 추후 참고를 위해 광학 현미경 사진을 촬영합니다.이 시점에서 동물의 혈류 관류 상태를 평가할 수 있습니다. 레이저 도플러 이미저를 사용하여 상처 부위에 깨끗하고 투명한 밀폐 드레싱을 적용하고, 동물이 완전히 회복될 때까지 따뜻하게 유지하십시오. 부목이 제대로 고정되지 않은 경우, 마취제 과다 투여로 인한 안락사 후 상처 부위가 쉽게 수축한다는 점에 유의해야 합니다. 포셉과 메스 날을 사용하여 봉합사를 제거하고 상처 부위에서 부목을 조심스럽게 떼어내십시오.아이리스 가위를 사용하여 상처 부위 주변과 하단에 넓고 완전한 절제를 수행합니다. 조직을 제거한 후, 표준 절차에 따라 고정합니다. 상처 구조와 상피 간극을 시각화하기 위해 헤마토실린 및 에오신 염색을 사용할 수 있습니다.또한, 면역조직화학 분석을 통해 모세혈관의 수를 결정하여 신생혈관 형성을 평가할 수 있습니다. 상처 폐쇄 곡선은 상처의 평균 직경을 계산하고 그 결과를 백분율로 표시하여 결정합니다. 본 예시에서는 치료 화합물이 대조군과 비교했을 때 상처 폐쇄를 크게 가속화하였습니다.이 기술을 숙달하면 적절히 수행했을 때 30분 이내에 완료할 수 있습니다. 이 절차를 수행할 때는 실험 간의 일관성을 유지하기 위해 동일한 간격의 봉합사로 부목을 단단히 고정하는 것이 중요합니다.

Research

연구

JoVE Journal

Medicine

의학

이 비디오에서는 상세한 분자 분석을 위해 적절한 시점에서 대장내시경으로 인한 상처 부위를 분리하는 절차를 설명합니다. 이 분석은 위장관의 염증성 상태에서 상처 치유 과정을 이해하는 데 도움이 됩니다.

대장내시경 유도 쥐 상처 모델: 치유 과정을 이해하기 위해 결장에서 생검 유도 상처 침대를 분리하는 방법

우리는 비-침략 적 vivo에서 이미징 프로토콜을 간소 하 고 비용 효율적인, L-012, chemiluminescent luminol 아날로그, 시각화 하 고 계량 상처 excisional 마우스 모델에서 생성 된 반응성 산소 종 (선생님)을 활용 하 여 설명 합니다.

Vivo에서 영상에는 Murine 반응성 산소 종의 상처 모델

여기서, 우리는 1차 섬유아세포를 이용한 시험관내 스크래치 분석및 마우스에서 의 피부 상처 치유 분석실험을 위한 프로토콜을 제시한다. 두 방법 모두 시험관 내 및 생체 내 상처 치유를 평가하는 간단한 방법입니다.

스크래치 마이그레이션 분석 및 등갈 피부 접기 챔버 에서 생체 외 및 상처 치유의 생체 내 분석

여기서, 2개의 뮤린 상처 치유 모델이 기술되고, 하나는 세포 및 사이토카인 상처 치유 반응을 평가하기 위해 고안되고 다른 하나는 상처 폐쇄의 속도를 정량화하도록 설계된다. 이 방법은 가난한 상처 치유의 각종 양상에 의하여 기계장치를 결정하기 위하여 당뇨병과 같은 복잡한 질병 모형으로 이용될 수 있습니다.

등지성 폴리비닐 알코올 스폰지 이식 및 절제 꼬리 피부 상처 모델을 사용하여 급성 상처 치유의 평가.

이 연구의 목적은 화상 상처 치유의 뮤린 모델을 개발하는 것이었습니다. 예열된 황동 템플릿을 사용하여 마우스의 등불 피부에 열 화상이 유도되었다. 연소된 조직은 유전적으로 유사한 기증자 마우스의 꼬리에서 수확한 피부 이식으로 파괴되고 겹쳐졌습니다.

동종 유전자 이식편으로 재구성된 화상 상처의 뮤린 모델

이 프로토콜은 마우스에서 양자, 전체 두께 절제적 상처를 생성하는 방법과 이후에 형태 분석을 위해 상처를 모니터링, 수확 및 준비하는 방법을 설명합니다. 여기에는 직렬 조직학적 섹션을 사용하여 형태학적 결함을 정의하고 정확하게 정량화하고 감지하는 방법에 대한 심층적인 설명이 포함되어 있습니다.

뮤린 흥분 상처 치유 모델 및 조직학적 형태화 상처 분석

여기서는 전형염색 접근법과 결합된 전 생체 내 인간의 피부를 사용하여 상처 수리를 평가하기 위한 최적화된 기술을 시연합니다. 이 방법론은 잠재적인 상처 치료의 평가를 위한 전임상 플랫폼을 제공합니다.

인간 Ex 생체 내 상처 모델 및 피부 수리를 정확하게 평가하기 위한 전산 염색 접근법

이 연구는 두 가지 중요한 실험 기법을 제시합니다: 상처 봉합을 평가하기 위한 쥐 상처 모델의 구축과 세포 생존력을 보존하기 위해 쥐 피부에서 단세포 현탁액을 준비하는 것입니다.

마우스 상처 모델 및 단일 세포 현탁액 준비

디지털 가열 장치를 사용하여 마우스의 화상 상처 치유 모델을 구축하기 위한 간소화된 프로토콜이 제시됩니다. 피부에 만들어진 체스판과 같은 실험 부위는 상처 치유 분석을 위한 추가 기능 분석을 용이하게 합니다.

체스판과 같은 화상 상처 치유 모델 디지털 난방 장치를 기반으로 한 마우스의

상처는 전 세계적인 보건 문제를 나타냅니다. 이 연구는 상처 측정 변동성을 최소화하기 위해 디지털 플레니메트리를 활용한 표준화된 사진 부스를 개발했습니다. 14일 동안 생쥐의 상처를 모니터링한 결과, 처음에는 상처 부위와 둘레가 증가한 후 점차 봉합되는 것으로 나타났습니다. 이 방법론은 전임상 모델에서 상처 봉합 동역학을 평가하는 데 도움이 될 수 있습니다.

마우스 모델에서 상처 봉합 동역학을 평가하기 위한 디지털 플레니메트리

치유 과정의 다양한 단계에서 생리학적 또는 병리학적 조건에서 다양한 치료제를 평가할 수 있는 쥐 피부 상처 모델이 기술되었습니다. 또한, 조직 복구 기간 동안 상처 수축 속도를 모니터링하기 위한 수동 평면측정 프로토콜도 상세히 안내되어 있습니다.

쥐 수술 피부 상처 모델: 상처 치유 연구 및 생체재료 평가를 위한 접근법

배우세요 실리콘 스플린트를 이용한 생쥐 절개 상처 치유 모델로 인간과 유사한 상피화, 증식, 혈관신생을 촉진하는 방법을 연구하세요. 이 기술은 치료제 효능 평가에 탁월합니다.

상처 치유의 생쥐 모델

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