Name: 대사율의 측정에 초파리 Respirometry를 사용하여 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-06-24T15:00:00.000+00:00
Duration: 4 min 31 s
Description: 학습하세요 Drosophila melanogaster의 대사율 측정 방법을 respirometry를 통해. 이 실험은 CO2 생성량을 측정하여 유전자 돌연변이가 대사에 미치는 영향을 비교 분석하고 대사 질환 연구에 활용됩니다.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

우리는 우리의 연구 자금에 대한 최대 플랑크 사회에게 감사의 말씀을 전합니다.

Respirometers 1. 준비 <ol><li> 50 μL 모세관 마이크로 피펫의 삽입을 허용하는 면도날 1,000 μL 피펫 팁을 잘라 가능한 똑바로 피펫 팁을 얻을하려고합니다. </li><li> 피펫으로 거품의 조각을 놓고 피펫 팁에 아래로 누르십시오. </li><li> CO 2 흡수의 작은 금액을 추가하고 폼의 두 번째 부분으로 포함되어 있습니다. </li><li> 마이크로 피펫은 피펫 팁에 삽입되는 장소에 접착제를 적용합니다. </li><li> 접착제가 건조 할 수 있도록 밤새 호흡계를 남겨주세요. 호흡계의 회로도는 그림 1A에 표시됩니다. </li></ol> 측정 상공 회의소 2. 준비 <ol><li> 눈에 보이는 발색이 발생합니다 비율로 에오신와 물을 혼합하여 챔버의 솔루션을 준비합니다. </li><li> 챔버에 에오신 / 물 솔루션을 붓는다. </li><li> 센티미터 스케일과 챔버의 측면 중 하나를 레이블. </li></ol><ol><li> 마커로 개별 respirometers 레이블을 지정합니다. </li><li> 2 CO 각 호흡계 안에 원하는 유전자형의 3-5 파리를 배치하는 다른 방법을 사용하여 파리를 마취. </li><li> 플라 퍼티를 사용하여 단단히 상단에 respirometers를 밀봉. </li><li> 파리가 약 15 분 동안 마취에서 회복 할 수 있습니다. </li><li> 대기 제어로 사용되는, 파리 않고 한 호흡계를 준비​​합니다. </li></ol> 4. 실험을 수행 <ol><li> 챔버의 상부에서 상단과 하단에 열려 1.5 ㎖의 에펜 도르프 튜브 홀더를 부착하여 챔버 respirometers 매달아. </li><li> 아래로 끝이 색 용액에 잠수함 수 있도록 챔버에 마이크로 피펫 팁과 respirometers를 삽입합니다. </li><li> 온도 및 압력 fluct에서 강한 분리를 제공하기 위해 뚜껑 덮개와 챔버 사이 바셀린 추가상황들. </li><li> 뚜껑을 닫고 시스템이 15 분 동안 평형 수 있습니다. </li><li> 각 마이크로 피펫 내의 액체의 레벨이 표시되어 있는지 확인하고 챔버의 사진을 가지고 이렇게 스케일 (그림 1b에 도시 예 참조). </li><li> 1 ~ 2 시간 후, 사진을 촬영. </li><li> 실험이 완료되면, respirometers에서 파리를 제거하고 원하는 경우 무게 나 더 필요한 경우 유리 병에 다시 전송합니다. </li></ol> 결과 5. 분석 <ol><li> 오픈 ImageJ에 소프트웨어 (11)를 사용하여 이미지를 획득. </li><li> 각 그림의 배율을 사용하여 소프트웨어의 픽셀 스케일링을 설정합니다. </li><li> 액체가 시작 (D1)에서 촬영 한 이미지의 판단 기준 지점에서 여행 그 거리 (Δd 및) 실험의 끝 (D2)를 측정한다. 개략적 인 예는 그림 1C에 표시됩니다. </li><li> 식으로 제작 CO 2 (μL / 시간 / 플라이)의 양을 계산한다 </li></ol><img alt="그림 1" fo:content-width="2in" src="/files/ftp_upload/51681/51681eq1.jpg" /> 센티미터 마이크로 피펫 관의 R은 = 반지름 ΔD = 거리는 액체가 센티미터로 측정 시료의 마이크로 피펫에 이동했다 ΔC = 거리는 액체 (초파리없이) 음성 대조군 샘플의 마이크로 피펫에 이동했다 사용 파리의 N = 번호 h = 시간

<ol><li>Van Voorhies, W. A., Khazaeli, A. A., Curtsinger, J. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Testing+the+%26%2334%3Brate+of+living%26%2334%3B+model%3A+further+evidence+that+longevity+and+metabolic+rate+are+not+inversely+correlated+in+Drosophila+melanogaster%5BTitle%5D)+AND+%22J+Appl+Physiol%22%5BJournal%5D)">Testing the &#34;rate of living&#34; model: further evidence that longevity and metabolic rate are not inversely correlated in Drosophila melanogaster.</a> J Appl Physiol. 97, 1915-1922 (2004).</li>
<li>Ross, R. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Age-specific+decrease+in+aerobic+efficiency+associated+with+increase+in+oxygen+free+radical+production+in+Drosophila+melanogaster%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Insect+Physiology%22%5BJournal%5D)">Age-specific decrease in aerobic efficiency associated with increase in oxygen free radical production in Drosophila melanogaster.</a> Journal of Insect Physiology. 46, 1477-1480 (2000).</li>
<li>van Voorhies, W. A., Khazaeli, A. A., Curtsinger, J. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Selected+contribution%3A+long-lived+Drosophila+melanogaster.+lines+exhibit+normal+metabolic+rates%5BTitle%5D)+AND+%22J+Appl+Physiol%22%5BJournal%5D)">Selected contribution: long-lived Drosophila melanogaster. lines exhibit normal metabolic rates.</a> J Appl Physiol. 95, 2605-2613 (2003).</li>
<li>Hulbert, A. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Metabolic+rate+is+not+reduced+by+dietary-restriction+or+by+lowered+insulin%2FIGF-1+signalling+and+is+not+correlated+with+individual+lifespan+in+Drosophila+melanogaster%5BTitle%5D)+AND+%22Experimental+Gerontology%22%5BJournal%5D)">Metabolic rate is not reduced by dietary-restriction or by lowered insulin/IGF-1 signalling and is not correlated with individual lifespan in Drosophila melanogaster.</a> Experimental Gerontology. 39, 1137-1143 (2004).</li>
<li>Ueno, T., Tomita, J., Kume, S., Kume, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dopamine+modulates+metabolic+rate+and+temperature+sensitivity+in+Drosophila+melanogaster%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+ONE%22%5BJournal%5D)">Dopamine modulates metabolic rate and temperature sensitivity in Drosophila melanogaster.</a> PLoS ONE. 7, (2012).</li>
<li>Takeuchi, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Changes+in+temperature+preferences+and+energy+homeostasis+in+dystroglycan+mutants%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Changes in temperature preferences and energy homeostasis in dystroglycan mutants.</a> Science. 323, 1740-1743 (2009).</li>
<li>Kucherenko, M. M., Marrone, A. K., Rishko, V. M., Magliarelli Hde, F., Shcherbata, H. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Stress+and+muscular+dystrophy%3A+a+genetic+screen+for+dystroglycan+and+dystrophin+interactors+in+Drosophila.+identifies+cellular+stress+response+components%5BTitle%5D)+AND+%22Developmental+Biology%22%5BJournal%5D)">Stress and muscular dystrophy: a genetic screen for dystroglycan and dystrophin interactors in Drosophila. identifies cellular stress response components.</a> Developmental Biology. 352, 228-242 (2011).</li>
<li>Marrone, A. K., Kucherenko, M. M., Wiek, R., Gopfert, M. C., Shcherbata, H. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hyperthermic+seizures+and+aberrant+cellular+homeostasis+in+Drosophila+dystrophic.+muscles%5BTitle%5D)+AND+%22Scientific+Reports%22%5BJournal%5D)">Hyperthermic seizures and aberrant cellular homeostasis in Drosophila dystrophic. muscles.</a> Scientific Reports. 1, 47 (2011).</li>
<li>Khazaeli, A. A., Van Voorhies, W., Curtsinger, J. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Longevity+and+metabolism+in+Drosophila+melanogaster%3A+genetic+correlations+between+life+span+and+age-specific+metabolic+rate+in+populations+artificially+selected+for+long+life%5BTitle%5D)+AND+%22Genetics%22%5BJournal%5D)">Longevity and metabolism in Drosophila melanogaster: genetic correlations between life span and age-specific metabolic rate in populations artificially selected for long life.</a> Genetics. 169, 231-242 (2005).</li>
<li>Elia, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Energy+equivalents+of+CO2+and+their+importance+in+assessing+energy+expenditure+when+using+tracer+techniques%5BTitle%5D)+AND+%22The+American+Journal+of+Physiology%22%5BJournal%5D)">Energy equivalents of CO2 and their importance in assessing energy expenditure when using tracer techniques.</a> The American Journal of Physiology. 260, (1991).</li>
<li>Schindelin, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fiji%3A+an+open-source+platform+for+biological-image+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Methods%22%5BJournal%5D)">Fiji: an open-source platform for biological-image analysis.</a> Nature Methods. 9, 676-682 (2012).</li>
<li>Bharucha, K. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+epicurean+fly%3A+using+Drosophila+melanogaster.+to+study+metabolism%5BTitle%5D)+AND+%22Pediatric+Research%22%5BJournal%5D)">The epicurean fly: using Drosophila melanogaster. to study metabolism.</a> Pediatric Research. 65, 132-137 (2009).</li>
<li>Rajan, A., Perrimon, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Of+flies+and+men%3A+insights+on+organismal+metabolism+from+fruit+flies%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Biology%22%5BJournal%5D)">Of flies and men: insights on organismal metabolism from fruit flies.</a> BMC Biology. 11, 38 (2013).</li>
</ol>

우리는 공개 아무것도 없어.

이 프로토콜에서는, 우리는 파리에있는 CO 2 생산을 측정하기위한 저렴하고 신뢰할 수있는 방법에 대해 설명합니다. 우리는이 실험을 수행하는 빠르고, 쉽고, 다른 연구 1, 6, 9와 계약에 재생 가능한 데이터를 생성하는 것으로 나타났습니다. 여기에 설명 된 프로토콜은 쉽게 연구소의 예산 및 재료에 맞게 수정할 수 있습니다. 각 개별 호흡계의 구조는 한 챔버가 밀폐 남아 적응 될 수있다. 그러나, 더 이상 얇은 마이크로 피펫 짧은 사람을보다 정밀도를 제공합니다. 외부 챔버의 사용은 오랜 실험을 손상 유의 주위 온도 및 압력의 변화가 없기 때문에 선택적 일 수있다. 이는 대조군과 생물학적 시료 측정 사이 큰 변동의 분석에 의하여 결정될 수있다. 또한, 이산화탄소 흡수제로는, F에 독성이없는 한 모든 종류의 할 수있다거짓 (예를 들어, 수산화 칼륨). 이 기술이 제대로 작동하는지 확인하기 위해 부정적인 제어 할 가장 중요합니다. 호흡계 완전히 밀봉되지하기위한...

생화학 Kreb의주기는 탄수화물, 지방, 그리고 CO 2 생성 단백질에서 파생 된 아세트산의 산화를 통해 ATP를 생성합니다. 초파리에서, O 2 입력은 직접 CO 2 출력과의 상관 관계 및 대사 1의 수준을 반영한다. 따라서, CO 2 출력의 측정은 성공적 노화와 신진 대사 2-5 관련 연구에 이용되고있다. 여기에 우리의 실험실은 전문 장비가 필요없이 최대 18 개의 시료에서 CO 2 생산을 측정 할 수 있도록, 이전에 설계 실험 설정을 수정했다. 기타 우리는 이전에 근육 영양 장애 관련 단백질, Dystroglycan (DG) 6-8 불충분 파리의 신진 대사 속도의 차이를 보여주기 위해이 방법을 사용했습니다. O 산화 대사에 사용되는 2 호흡 폐기물로 배출되는 CO 2로 변환됩니다. construc손으로 만든 respirometers의 기는 O 2 소모의 속도의 측정을 위해 허용하는 기술되어있다. 파리 효율적으로 기체 상태에서 제거, CO 2 배출을 흡수하는 물질로 밀폐 용기에 배치됩니다. 가스 부피 (감소 압력)의 변화는 폐쇄 호흡계에 부착 유리 모세관 유체의 변위에 의해 측정된다. 다른 것보다이 기술의 주요 장점은 비용이다. 이전 연구는 가스 분석기 및 기술적으로 진보 된 respirometry 시스템 1.9을 사용하여 초파리에 의한 CO 2 생산을 측정했다. 더 복잡한 장비에도 불구하고, 여기에 기재된 방법의 감도는보고 된 값 (표 1)과 유사하다. 또한, 여러 가지 다른 그룹은 초파리 4-6에서 상대 신진 대사 속도를 결정하기 위해이 기술의 변화를 사용했습니다. 따라서, 이러한 분석은 reliab에를 생성하는데 사용될 수있다르, 모든 실험실에 설치 될 수 있으며, 교육 목적으로 사용할 수있는 특수 장비를 구입하지 않고 초파리의 신진 대사에 관련된 데이터를 재현. 일반적으로, 생체의 신진 대사를 결정하는 허용 기법 CO 2 생산을 측정하는 소비 O 2 또는 둘 3,4,9. 하지만, 그것은 O 2의 1 당량은 CO 2의 1 당량을 생성하는 가정 할 수있다, CO 2의 정확한 비율은 발생 10을 활용 한 대사 기판에 따라 달라집니다. 따라서 정확하게 에너지 단위 대사량을 결정하기 위하여 그것 O이 소비 및 CO 2 생산 양을 측정 할 필요가있다. 이 때문에, 여기에 기재된 방법은 동물이 아닌 절대 값 사이의 CO 2 생산의 차이를 비교하는 특별히 중요한 것이다. 우리의 기술은 포의 기간에 걸쳐 여러 동물 CO 2 생산을 통합따라서 전자 (1 ~ 2 시간) 및 동물의 활동의 평균을 반환합니다. 실험 동물은 측정이 다른 활동의 수준과 반드시​​ 신진 대사를 반영 할 수있는 제어 동물보다 활성화되어 있다고 믿을만한 이유가있는 경우.

<table><tbody><tr><td>BlauBrand IntraMark 50 &마이크로; l 마이크로피펫</td><td>VWR</td><td>612-1413</td><td></td></tr><tr><td>소다 라임</td><td>Wako</td><td>CDN6847</td><td></td></tr><tr><td>Eosine&nbsp;</td><td>Sigma</td><td>031M4359</td><td>액체의 가시적인 착색을 생성할 수 있는 모든 염료를 사용할 수 있습니다</td></tr>. <tr><td>Thin Layer Chromatorgaphy (TLC) 개발 챔버</td><td>VWR</td><td>21432-761</td><td>뚜껑으로 닫을 수 있는 모든 투명 유리 챔버</td></tr><tr><td>마취제, Lull-A-Fly Kit</td><td>Flinn</td><td>FB1438</td><td></td></tr><tr><td>Power Gel Glue</td><td>Pritt</td><td></td><td></td></tr><tr><td>1 ml 피펫 팁</td><td>Any</td><td></td><td></td></tr><tr><td>거품,</td><td>모든</td><td></td><td></td></tr><tr><td>plaesticine 퍼티,</td><td>모든</td><td></td><td></td></tr><tr><td>메스</td>, <td>모든</td><td></td><td></td></tr><tr><td>핀셋</td>, <td>모든</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

대사율의 측정에<em&gt; 초파리</em&gt; respirometry를 사용하여

Measurement of Metabolic Rate in Drosophila using Respirometry

대사 장애는 인간의 건강에 영향을 미치는 문제가 자주 발생합니다. 따라서 신진 대사를 조절하는 메커니즘을 이해하는 것은 매우 중요한 과학적 작업입니다. 인간의 많은 질병의 원인이 유전자는 초파리의 다른 질환의 개발에 관련된 신호 전달 경로를 연구 할 수있는 좋은 모델을 만들고, 비행 동성이있다. 또한, 초파리의 온순함은 신진 대사를 조절 할 수 있습니다 새로운 치료 표적을 식별에 도움이 유전 화면을 단순화합니다. 이러한 화면을 수행하기 위해 파리의 대사 상태의 변화를 확인하는 간단하고 빠른 방법이 필요하다. 일반적으로, 이산화탄소 생산 산화 기질 및 에너지 비용이 대사 상태에 대한 정보를 제공하는 좋은 지표이다. 이 프로토콜에서 우리는 파리에서 CO 2의 출력을 측정 할 수있는 간단한 방법을 소개합니다. 이 기술은 잠재적으로 신진 대사 속도에 영향을 미치는 유전 적 교란의 식별에 도움이 될 수 있습니다.

이 방법은 우리가 야생형 (오레곤 R)에서 CO 2 생산 남성은 18, 25 일에 파리, 29 ° C 및 DG에 돌연변이 파리를 측정 민감하다는 것을 보여주기 위해. 파리는 25 ° C에서 제기 한 후 측정에 앞서 5 일 동안 실험 온도로 이동했다. 이 ectothermic 종 예상 한 바와 같이, CO 2의 양은 온도 (그림 2)로 증가 생산. 우리는 과거에 설탕 무료 다이어트는 모두 야생 유형의 신진 대사 속도를 줄이고 DG 돌연변이 7 파리 것으로 나타났습니다. DG의 손실은 증가 신진 대사 수준 (그림 2)로 연결됩니다. <img alt="그림 1" fo:content-width="5in" src="/files/ftp_up...

대사 질환은 인간에서 가장 흔한 질병 중 하나들이다. 유 전적으로 다루기 쉬운 모델 생물 D. melanogaster의 대사를 조절하는 신규 한 유전자를 확인하는데 사용될 수있다. 이 논문은 자신의 CO 2 생산을 측정하여 파리의 신진 대사 속도를 연구 할 수있는 비교적 간단한 방법을 설명합니다.

대사율의 측정에<em&gt; 초파리</em&gt; Respirometry를 사용하여

Metabolic disorders are a frequent problem affecting human health. Therefore, understanding the mechanisms that regulate metabolism is a crucial ...

본 실험 절차의 목적은 초파리의 이산화탄소 생성량을 측정하여 상대적인 대사율을 결정하는 것입니다. 이를 위해 먼저 초파리를 특수하게 제작된 호흡 바로미터(respir barometer)에 넣습니다. 그다음, 초파리가 들어 있는 호흡 바로미터를 크로마토그래피 챔버에 삽입하여 유색 수용액과 접촉시킵니다.시간이 지남에 따라, 전후 가스 환경에서 배출된 이산화탄소가 제거되어 압력이 감소함에 따라 액체가 호흡계로 이동합니다. 실험 이미지를 사용하여 호흡계 모세관의 치수를 기반으로 생성된 이산화탄소의 양을 계산합니다. 궁극적으로, 이 분석에서 얻은 데이터를 통해 실험군 초파리와 대조군 초파리 간의 상대적 대사율을 비교할 수 있습니다.먼저, 면도날을 사용하여 1000 µL 피펫 팁을 최대한 직선으로 자른 후, 마이크로 피펫을 1000 µL 피펫 팁에 삽입합니다. 다음으로, 피펫 안에 폼 조각을 넣고 아래로 밀어 넣습니다. 그런 다음 소다석회(soda lime)를 소량 추가하고 두 번째 폼 조각으로 고정합니다.마이크로 파이펫이 파이펫 팁에 삽입되는 부위에 접착제를 바르고 하룻밤 동안 건조시킵니다. 물과 에오신을 1:5 비율로 혼합하여 가시적인 색상이 나타나도록 챔버 용액을 준비합니다. 다음으로, 에오신과 물 혼합액을 챔버에 붓습니다.그런 다음 챔버의 수직 측면에는 센티미터 눈금을, 수평 측면에는 호흡계 라벨을 표시하십시오. 마커를 사용하여 각각에 라벨을 붙여 호흡계를 준비합니다. 여러 유전자형을 분석하는 경우, 호흡계 번호와 해당하는 유전자형을 반드시 기록해 두십시오.다음으로 미리 냉각시킨 금속판을 사용하여 초파리를 고정시키고, 원하는 유전형의 초파리를 3~5마리 배치합니다. 각 호흡계 내부의 호흡 압력계 상단을 플라스티신 퍼티로 단단히 밀봉하고, 초파리가 마취에서 회복될 수 있도록 15분 동안 둡니다. 대기 대조군으로 사용할 초파리가 없는 호흡계를 하나 준비합니다.다음으로, 1.5 milliliter einor 튜브 홀더를 장착합니다. 챔버 상단의 양쪽을 열고 호흡 바로미터를 챔버 내에 매달아 끝부분이 유색 용액에 잠기도록 합니다. 온도 및 압력 변동으로부터 더 강력한 격리를 제공하기 위해 덮개 뚜껑과 챔버 사이에 바셀린을 바릅니다.다음으로, 덮개를 닫고 시스템이 15분 동안 평형을 이룰 때까지 기다립니다. 그 후, 각 마이크로 피펫 내의 액체 높이와 스케일이 프레임 안에 들어오도록 챔버의 사진을 찍습니다. 1~2시간 후에

measurement-of-metabolic-rate-in-drosophila-using-respirometry

Research

연구

JoVE Journal

Biology

생물학

이 논문은 미량의 특정 방사성 표지 대사 기질을 파리에게 공급하는 Drosophila melanogaster의 연료 산화 측정 방법을 설명합니다. 연료 산화로 인해 생성된 호기된 방사성 표지된 CO2 가 수집되고 측정됩니다.

방사성 표지 된 기판에서 이산화탄소 생산에서의 측정<em&gt; 노랑 초파리</em

이 논문에서 초파리의 permeabilized 직업적인의 고해상도 respirometry를 사용 하 여 산소 소비량을 측정 하는 방법을 설명 합니다. 이 기술은 조직의 고전적인 미토 콘 드 리아 격리 기술에 비해 최소한의 금액을 요구 하 고 얻은 결과 더 순수 관련.

조직의 최소 금액을 사용 하 여 초파리의 Permeabilized 섬유에 미토 콘 드리 아 산소 소비량의 측정

선물이 산소 소비와 초파리 melanogaster 애벌레와 성인 두뇌에 있는 세포 외 산성화를 측정 하기 위한 프로토콜. 신진 대사 분석기는 적응 하 고 최적화 된 프로토콜 활용 됩니다. 마이크로 조직 억제는이 프로토콜의 중요 한 구성 요소 설계 하 고이 분석에 그들의 사용을 위해 특히 창조 되었다.

초파리 melanogaster Larval 및 성인 두뇌의 변화 분석

전기량 호흡 측정법은 작은 유기체의 신진대사율을 측정하는 데 이상적입니다. 본 연구에서 Drosophila melanogaster에 대해 적응시켰을 때, 측정된O2 소비량은 이전 연구에서 야생형 D. melanogaster에 대해 보고된 범위 내에 있었습니다. 더 작고 덜 활동적인 CASK 돌연변이의 플라이당 O2 소비량은 야생형보다 현저히 낮았습니다.

전기량 미세호흡계를 사용한 초파리 멜라노가스터의O2 소비량 측정

여기서는 PINK1B9-null 돌연변이 초파리의 생체 에너지를 분석하기 위한 고분해능 호흡 측정 프로토콜을 제시합니다. 이 분석법은 SUIT(Substrate-Uncoupler-Inhibitor-Titration) 프로토콜을 사용합니다.

고분해능 호흡 측정법을 사용한 초파리 멜라노가스터 PINK1B9-Null 돌연변이의 미토콘드리아 기능 분석

이 비디오를 문서에서, 우리는 안정적이고 제어 형상과 odorant의 그라디언트의 건설을 허용하는 새로운 방법을 설명합니다. 우리는 간단히 다음과 그라디언트가 후각 결함 (전체 및 부분 후각 상실증)의 화면으로 사용할 수있는 방법을 설명하고 chemotaxis 행동보다 미묘한 기능을 연구하기 위해 서요.

Drosophila의 유충에서 냄새 기반 행동의 고해상도 측정

Drosophila melanogaster는 장수 규제의 분자 기초를 탐험하기위한 강력한 모델 생물이다. 이 프로토콜은 재현, 장수뿐만 아니라 잠재적 인 함정의 인구 기반의 측정 방법과 그들을 피하기 위해를 생성하는 단계에 대해 설명합니다.

의 수명 측정<em&gt; Drosophila melanogaster</em

사구체 여과율 (GFR)의 측정은 신장 기능 평가를위한 황금 표준입니다. 여기서 우리는 두 단계 지수 붕괴 모델 플라즈마 GFR의 계산에 하나의 알약 주입, 형광 이소 티오 시아 네이트의 결정 (FITC) 이눌린을 사용하여 의식 쥐 GFR의 결정을 허용하는 높은 처리량 방법을 설명합니다.

의식 쥐의 사구체 여과율의 측정을위한 높은 처리량 방법

여기에서 우리는 높은 처리량 검사를 가능하게 초파리의 비행 성능의 신속하고 정확한 측정하는 방법을 설명합니다.

비행 성능의 정확하고 빠른 측정을위한 개선 된 방법에<em&gt; 초파리</em

이 보고서는 TriKinetics Drosophila Activity Monitor를 사용하여 초파리 유충 활동을 측정하는 방법을 설명합니다. 이 장치는 적외선 빔을 사용하여 최대 16 마리의 개별 동물의 움직임을 감지합니다. 데이터를 분석하여 분석 챔버 내 동물의 비율 및 위치를 포함한 모션 매개변수를 나타낼 수 있습니다.

에서 애벌레 활동의 측정<em&gt; 초파리</em&gt; 활동 모니터

학습하세요 Drosophila melanogaster의 대사율 측정 방법을 respirometry를 통해. 이 실험은 CO2 생성량을 측정하여 유전자 돌연변이가 대사에 미치는 영향을 비교 분석하고 대사 질환 연구에 활용됩니다.

대사율의 측정에

더 많은 동영상 탐색