Name: 마우스 척수의 세포 역학의 두 광자 이미징 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-02-22T16:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 44 s
Description: 배우세요 마우스 척수에서 이광자 이미징을 이용해 GFP 표지 신경전구세포와 YFP 표지 축삭의 실시간 상호작용을 관찰하는 방법. 이 기술은 척수 손상 후 재생 메커니즘 연구에 활용됩니다.

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이 작업은 미국 국립보건원(NIH) 보조금 R01 GM-41514(M.D.C.), R39 GM-048071(I.P.), R01 NS-074987(T.E.L.) 및 국립다발성 경화증학회(NMSS) 협력 센터 연구상 CA1058-A-8(C.M.W., T.E.L. 및 M.D.C.), NMSS 보조금 RG4925, NIH 교육 보조금 T32-AI-060573(M.L.G.), NMSS 박사후 연구원 FG 1960-A-1(J.G.W.에게) 및 George E. Hewitt Foundation for Medical Research(M.P.M.)의 자금 지원.

참고 : 윤리 문 : 동물 처리를위한 프로토콜은 캘리포니아, 얼바인, 프로토콜 # 2010년부터 2943년까지 대학의 기관 동물 관리 및 사용위원회 (IACUC)에 의해 승인되었다. 척수 1. 제거 <ol><li> 챔버를 안락사에 ~ 100 % 액체 이소 플루 란, USP 적신 종이 타월을 놓고 위에 마른 종이 타월을 배치합니다. 마우스가 이소 플루 란 접촉되지 않도록 마른 종이 타월 위에 챔버에 마우스를 놓고 챔버가 포함되어 있는지 확인합니다. 마우스가 안락사 될 수 있도록 호흡 중단 후, 1 분 정도 기다립니다. </li><li> 마우스를 안락사 보장하기 위해 목의 척추 절개를 수행합니다. 이 척수에 손상을 줄 수 있습니다 자궁 경부 전위를 수행하지 마십시오. </li><li> 젖은 모발, 70 % 에탄올로 마우스 스프레이. </li><li> (약 자궁 얇은 판 1에서 척추를 노출 C1를 마우스의 뒷면에서 머리와 피부를 제거하는 날카로운 미세 가위를 사용하여) 성례의 얇은 판 4 (S4)에. </li><li> # 10 메스 블레이드를 사용하여, 근육과 지방에서 분리하는 척주의 왼쪽과 오른쪽을 절개. 이 척수의 제거가 훨씬 쉽게 만들 것입니다. </li><li> 옵션 : 곡선 루어 rongeurs 추가 살을 멀리 퍼하는 데 사용할 수 있습니다. </li><li> 톱니 모양의 Graefe 씨 집게와 척수 척추의 상단을 누른 상태에서 척수를 만지지 않도록 조심하면서, 최대 C1에 노출 된 척추에 곡선면 티타늄 곡선 Vannas 가위를 삽입합니다. </li><li> 모든 길 오른쪽에있는 티타늄 곡선 Vannas 가위를 밀어 하나의 작은 상처를합니다. 작은 크런치 소리가 들리지와 가위가 척추를 잘라으로 생각해야한다. 코드의 맨 왼쪽에이 컷을 반복합니다. 너무 빨리 이동하거나이 가위 코드의 손상 위험하므로 절단 너무 큰 확인하지 않도록주의하십시오. </li><li> 하나의 얇은 판은 척추의 측면이 절단되면 집게로 해제 할 수 있어야합니다. R보유 척수 척추를 뒤로 당겨 계속 S4까지 각각의 얇은 판에 대해이 단계를 EPEAT. 참고 :이 이식 사이트로 삭감되면 이식 사이트 위의 척추 가능성이 붙지 않습니다. 바로 이식 사이트 아래에 시작하는 절차를 진행합니다. </li><li> 옵션 : 이식 사이트이며, 측정 및 ~ 이식 사이트에 20mm 주동이의 꼬리 잘라 곳을보​​고 아래 척추를하다. 참고 : 더 일반적으로 15mm보다 더 멀리 이동하지 않는 이식의 NPC로 필요하지 않습니다 NPC의 이식. 척수의 필요한 양은 이식 세포 유형의 실험 및 이동 특성에 의존 할 것이다. 이식 사이트에 등거리 주동이의 꼬리 컷을 만들기 이미징 동안 더 쉽게 위치 할 수있는 이식 사이트를 가능하게 할 것이다. </li><li> # 11 블레이드와 메스를 사용하여 조심스럽게 오른쪽에있는 신경을 절감하고 주동이의 끝에서 시작하여 척수의 복부 측면의 왼쪽. 이 w병이보다 용이하게 복부 척추로부터 제거 될 수 있도록 척수. 참고 : 빨리 완료는 (1.7-1.11 단계), 척수가 건조하지 않습니다. 그러나, 1X PBS 촉촉한 유지하는 코드로 투여 될 수있다. </li><li> 마우스 전환 등 척수가 아래로 향 마우스를 저장할 수 있습니다. 조심스럽게 폐쇄 톱니 모양의 Graefe 씨의 집게를 사용하여 척수를 껍질. 척수 새김없이 신중 척수 손상 단일 편에서 해제 될 수 있도록 나머지 신경절을 잘랐다. </li><li> 척수는 RPMI-1640에 있는지 확인하고 2P 현미경에 전송 얼음에 놓습니다. </li></ol> 이미징 척수 2. 준비 <ol><li> 아가로 오스 척수를 포함하기 <ol><li> 촬영하기 전에 얼음에 냉장 RPMI-1640에 고립 된 척수를 유지합니다. </li><li> 아가 로스 (저 겔화 온도)을 칭량하고 1X PBS 5 ml의 5 % 용액을 제조 하였다. AG를 용해 15 초 동안 5 % 아가로 오스 용액을 마이크로파일어나 37 ° C로 냉각 솔루션을 보자. </li><li> 복부면이 위를 향하도록 파라 필름 한 장에 배치하여 척수를 준비합니다. </li><li> 피펫 척수의 복부 측면에 걸쳐 5 % 아가로 오스 솔루션의 약 5 ml의. 아가 로스를 실온으로 냉각시켜 고화하자. 전체 응고 약 5 분 소요됩니다. </li><li> 22mm 사각형 커버 슬립에 조직 접착제의 가벼운 코트를 적용합니다. </li><li> 파라 필름에 복부 측면을 배치, 임베디드 척수 전환. 몸 윗면은 지금 직면한다. 등쪽에 커버 슬립을 준수하고, 접착제를 응고 RMPI의 아가로 오스 포함 된 척수 / 커버 슬립 준비 잠수함. 과잉 면도날을 사용하여 아가로 오스를 응고 제거합니다. </li></ol></li><li> 현미경 무대에서 척수를 장착 <ol><li> 커버 슬립의 바닥에 바셀린을 적용합니다. 이것은 재관류 동안 제제를 안정화한다. </li><li> 척수 제제를 놓고25X 찍기 목표를 향해 위로 향하도록 복부 측면과 현미경 무대에 잘 이미징. 맞춤형 이미징 아니라 약 20mm, 깊이 50mm 길고, 곳곳에서 50mm입니다. </li><li> 이미지 산소 예열과 준비 (37 ° C), superfusing 동안 혈청이없는 (95 : 이산화탄소 carbogen : 5 산소) RPMI-1640 배지를. <ol><li> 전 따뜻한 물을 욕조에 37 ° C에 미디어 그것은 미디어 병에 튜브를 삽입하여 튜브 펌프에 연결합니다. </li><li> 챔버에 튜브의 연결에서 37 ° C 히터 장치에서 미디어 온도​​를 유지합니다. Superfuse 미디어 우물가를 통해 3 ㎖ / 튜브 펌프 (그림 1B)에 연결된 튜브를 사용하여 분. </li></ol></li></ol></li></ol> 복부 척수 3. 2P 이미징 <ol><li> 현미경 설정 <ol><li> 900 nm의 조정 사파이어 레이저 : 카멜레온 울트라 티를 사용하여 Thy1-EYFP 척수의 이미지를 획득. 에서의 레이저 파워를 감쇄&lt;5 % 표본은 최소 광독성 (16)을 보장합니다. 촬상 안정을 보장하기 위해 드리프트 및 조직 및 세포 손상을 방지하기 위해 단일 ​​인라인 히터 용액을 이용하여 일정한 37 ℃에서 산소 - 관류 RPMI-1640을 환류시켜두면 온도를 유지한다. </li><li> eGFP는 및 EYFP 형광 신호를 분리하기 위해, 의도적으로 시인성을 향상시키기 위해 녹색 발광을 분할, 세 개의 채널로 2P 발광을 분리하는 일련의 520 nm의 단일 에지 이색 및 560 nm의 단일 에지 이색 성 빔 스플리터를 배치했다. 참고 :이 채널은 파란색 - 녹색 (발광 &lt;520 ㎚), (520-560 nm의) 녹색 - 노란색과 빨간색 (발광&gt; 560 ㎚)라고합니다. 광전자 배증 관은 각 채널의 광을 방출 감지합니다. </li></ol></li><li> 관심의 위치 이미징 영역 <ol><li> 접안 렌즈와 시야 광원을 이용하여, 기준점을 설정하는 척수의 복부 가장자리에 침지 대물 초점. </li><li> 반드시 주변 광원을 끄고 자상 있는지 확인레이저 셔터를 열어 2P 여기에 가려움. </li><li> 가능하면 관심 분야에 대한 조직을 검색 할 때, 최종 이미지를 획득 할 때보다 낮은 해상도 설정, 디지털 줌없이 높은 볼륨, 높은 스캔 속도를 사용합니다. 관심 영역에 대한 조직 검색이 시스템의 전형적인 설정은 다음과 같습니다 해상도 : 256 픽셀; 볼륨 : X = Y 600 μm의 = 600 μm의, Z = 0-300 μm의. </li><li> 척수의 배쪽 가장자리 근처 EYFP 축삭을 준수하십시오. 콜라겐 (파란색)에서 두 번째 고조파 신호는 척수 조직의 가장자리에 밝은 될 것입니다. EYFP 축삭 그냥 콜라겐에서 2 차 고조파 신호에 지느러미 찾아 EYFP 신호는 녹색 - 노란색 채널에 보여집니다. </li><li> 척수 준비 (14)의 길이 방향의 중앙에 이식 사이트를 찾습니다. eGFP는-NPC 이식 다음 마우스 일일를 들어, 깊은 조직으로 z 평면에서 빔 경로를 중심으로 이식 사이트를 찾습니다. 이식 사이트 위스콘신LL 동물 사이에 다소 차이가 있지만, 일반적으로 복부 가장자리에서 ~ 200 μm의 거리에 있습니다. 1 일 후 이식 후 쥐의 복부 및 측면 가장자리에 가까운, 백색질에 eGFP는-의 NPC의 클러스터를 관찰합니다. </li></ol></li><li> 최종 이미지를 획득 <ol><li> 512 픽셀의 이미지 해상도를 취득; 볼륨 : X = 270 Y μm의 = 212 μm의, 및 z = 100 μm의 사용 Slidebook 6 소프트웨어. 2.5 μm의 단위로 순차적 초점면을 인수하여 Z-스택을 컴파일합니다. </li><li> 척수에있는 모든 마이그레이션 객체의 신속한 정량을 보장하기 위해 오프셋 적절한 인터레이스와 양방향 검사를 수행합니다. 척수는 약 1 프레임 / 초입니다 내에서 이상적인 획득 프레임 속도가 휴대 전화 속도를 결정하는 것을 확인합니다. 주 : 이미징 설정은 포착 프레임 율, 해상도 및 촬상 촬상 볼륨으로 개별 사용자 선호도로 변경 될 수있다. 큰 이미지 볼륨은 일반적으로 GIV에서 획득을 더 오래 걸립니다욕실 해상도. </li><li> 이러한 비트 평면 Imaris 7.7 같은 영상 분석 소프트웨어를 자르기, 매끄러운 및 의사 색조 Slidebook 이미지 파일을 분석. Slidebook와 Imaris의 자동화 된 프로세스를 사용하여 연속적인 영상 볼륨을 빗질하여 최종 시간 경과 비디오를 생성합니다. </li></ol></li></ol>

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저자는 경쟁하는 이해관계가 없습니다.

실시간은 그대로 조직의 2P 영상은 탈수 초 마우스 척수에 이식 다음 NPC의 반응 속도 및 상호 작용을 조사하기 위해 필요합니다. 생체 내에 2P 촬상 일반적 살아있는 쥐 척수의 등쪽에 휴대 동성을 결정하는 데 사용되며, 탈수 초성 질환 17-19에서 척수 탈수 초를 연구하기 위해 사용되었다. 이식의 NPC가 2P 현미경을 사용하여 현장에서 이미지에 너무 깊이 자리 잡고 복부 백질로 이동하기 때문에, 생체 준비가 필요하다. 이 방법론은 손상 및 비 손상 척수 6 이식의 NPC의 운동성 및 재유 수화 반응 속도를 결정하기 위해 우리의 실험실에서 사용되어왔다. 생체 내 준비뿐만 아니라 세로 방향으로 척수의 검색을 사용뿐만 아니라 가로 방향으로 복부 측면 6,20에서 . 이 t에서 세포 이동의 차이 (속도와 방향)과의 상호 작용 분석을 위해 수 있습니다이식 사이트에 인접하고, 이식 사이트 (6)에서 다양한 거리에서 ran...

실험자가 면역 뇌척수염 (EAE) 및 neuroadapted 마우스 형 간염 바이러스 (MHV)과 두개 내 감염을 포함하여 탈수 초화의 마우스 모델은, 분자 경로 및 질병과 관련된 세포의 상호 작용을 연구하는 훌륭한 도구입니다. 그들은 주도하고 FDA의 효과는 주로자가 면역 및 염증 일의 중단을 대상으로, 제약 요법을 승인 지원했다. 내생 재유 수화가 실패하지만 일단, 현재 승인 된 치료는 효과적으로 중추 신경계의 탈수 초 병변을 복구하지 않습니다. 따라서, 질병의이 단계에서 복구에 초점을 맞춘 치료는 만성 증상과 삶의 질 향상 등의 개선을 위해 중요하다. 최근, 신경 전구 세포 (NPC들)은 염증과 탈수 초화의 영역을 대상으로 잠재적 인 재생 치료 양상으로 최전선에왔다. 몇몇 연구 endogeno을 유도하는 능력의 NPC를 강조우리는 재유 수화 및 재유 수화 2-8에 직접 참여한다. NPC의 재유 수화가 직접 관여되어 있기 때문에, 다음과 같은 내인성 세포 이식 그들의 동력학 및 상호 작용을 이해하는 것이 필수적이다. 이식 후, NPC가 다음 rostrally 및 이식 사이트 5,9에 꼬리 쪽 상대 백질 손상의 영역에 배쪽으로 이동한다. 이주의 반응 속도는 환경 단서에 대한 응답에 차이가; 비 손상된 척수에 이식 NPC가 손상된 척수 6에 이식 NPC들보다 더 큰 속도를 가지고있다. 철새 기간이 지나면 그대로 척수 6 손상된 척수 상대적으로 더 높은 비율로, NPC가 광범위하게 확산 옮겼다. 마지막으로, NPC의 대부분은 희소 돌기 아교 세포로 분화 및 직접 재유 수화의 4,6,9을 시작합니다. 탈수 초 병변은 복잡하고 여러 단계에서 세포의 다양한 인구를 포함 할 수 있습니다ctivati​​on. 예를 들어, 활성화 된 다발성 경화증 (MS) 병변은 활성화 T 세포, M1의 미세 아교 세포 및 M1 식세포하지만 만성 자동 MS 병변은 주로 약간의 염증 세포 (10-13)와 반응성 성상 세포로 구성 될 수의 현저한 인구를 포함 할 수있다. 때문에 이펙터 세포의 다양성, 탈수 초화의 마우스 모델에서 이광자 (2P)는 촬상 병변 내의 로컬 셀룰러 상호 작용의 이해를 돕기 위해 매우 유용한 도구이다. MS 많은 널리 사용 MS 연구 모델에서, 병변의 대부분 의한 병변의 깊이와 척수 높은 지질 함량 척수, 생체 내에의 2P 촬상 접근 할 수없는 영역의 복부 측에 위치한다. 복부 척수를 따라 병변 내에서 이러한 문제와 연구 세포 - 세포 상호 작용을 회피하기 위해 우리는 생체 2P 이미징 준비 6 간단한을 개발했다. 이 연구는 보여 이전의 방법 간행물, 최대 다음MHV 유도 (14)의 탈수 초화 JHMV 균주 다음 마우스의 척수에 증강 된 녹색 형광성 단백질 (EGFP) 발현의 NPC 이식 절차. 5 주 된 쥐 JHMV에 감염 14 일 후 감염에 흉부 레벨 9에 eGFP는-NPC가 이식된다. 여기에 제시된 프로토콜은 생체 아가로 오스 준비를하기 위해선, 척수를 추출, 향상된 노란색 형광 단백질 (EYFP) 발현 축삭과 이미지 이식 eGFP는-NPC 상호 작용하는 방법에 대한 자세한 단계를 제공합니다. 뉴런 특이 Thy1 EYFP 프로모터하에 발현 된 마우스는이 절차 (15)에 사용 하였다. 만 축삭의 일부는 개별 축삭을 이미징 유용하게 EYFP을 표현한다. 여기에서 우리는 칠일 이식 후에서 제거 척수를 보여; 그러나, 척수는 식후 어느 시점에서 추출 될 수있다. 우리가 손상된 축색의 NPC와 상호 작용을 표시하는 동안, 우리는 프로토콜 형광 마커 유전자와 조합하여 사용할 수있다다른 세포 유형 마우스 척수 걸쳐 일어나는 세포 상호 작용의 다수를 알아보고자 하였다.

<table><tbody><tr><td>Isoflurane, USP</td><td>Piramal Critical Care, Inc</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>파인 가위</td><td>파인 사이언스 툴</td><td>14060-09</td><td>날카로운</td></tr><tr><td>메스 블레이드 #10</td><td>파인 사이언스 도구</td><td>10010-00</td><td></td></tr><tr><td>메스 핸들</td><td>파인 사이언스 툴</td><td>10003-12</td><td></td></tr><tr><td>루어 롱거스</td><td>파인 사이언스 툴</td><td>16001-15</td><td></td></tr><tr><td>그레이프 겸자</td><td>Fine Science Tools</td><td>11052-10</td><td></td></tr><tr><td>Vannas 가위</td><td>Fine Science Tools</td><td>15615-08</td><td></td></tr><tr><td>메스 블레이드 #11</td><td>Fine Science Tools</td><td>10011-00</td><td></td></tr><tr><td>RPMI-1640</td><td>Gibco</td><td>12-115F</td><td></td></tr><tr><td>아가로스, 저겔화 온도</td><td>Sigma</td><td>A9414-25G</td><td></td></tr><tr><td>Parafilm</td><td>Fisher Scientific</td><td>13-374-12</td><td></td></tr><tr><td>Vetbond (조직 접착제)</td> <td>3M</td><td>1469SB</td><td></td></tr><tr><td>22mm 사각 커버 슬립</td><td>Fisher Scientific</td><td>12-547</td><td></td></tr><tr><td>25X 디핑 대물, 1.1 NA</td><td>Nikon</td><td>CFI Apo LWD 25XW</td><td></td></tr><tr><td>단일 인라인 솔루션 히터</td><td>Warner Instruments</td><td>64-0102</td><td></td></tr><tr><td>520 nm 단일 가장자리 이색성 빔 스플리터</td><td>Semrock</td><td>FF520-Di02-25x36</td><td>Brightline</td></tr><tr><td>560 nm 단일 가장자리 이색성 빔 스플리터</td><td>Semrock</td><td>FF560-FDi01-25x36</td><td>Brightline</td></tr><tr><td>광전자 증배관</td><td>Hamamatsu</td><td>R928</td><td></td></tr><tr><td>C/L 가변 속도 튜빙 펌프</td><td>Masterflex</td><td>77122-22</td><td></td></tr><tr><td>디지털 온도계</td><td>Comar Instruments</td><td>3501</td><td></td></tr><tr><td>Chameleon Ultra Ti:Sapphire laser&nbsp;</td><td>Coherent</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>Slidebook 6 소프트웨어</td><td>3i</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>Imaris 7.7 소프트웨어</td><td>Bitplane</td><td>N/A</td><td></td></tr></tbody></table>

마우스 척수의 세포 역학의 두 광자 이미징

Two-photon Imaging of Cellular Dynamics in the Mouse Spinal Cord

2광자(2P) 현미경은 살아 있고 손상되지 않은 조직 내부의 깊은 곳에서 세포 역학과 상호 작용을 밝히는 데 사용됩니다. 여기에서는 쥐의 척수에서 살아있는 세포를 촬영하는 방법을 제시합니다. 이 기술은 신경염증성 탈수초성 장애를 겪고 있는 척수에 이식한 후 신경 전구 세포(NPC) 역학을 분석하는 데 매우 적합합니다. NPC는 축삭 손상 부위로 이동하고, 증식하고, 희소돌기아교세포로 분화하고, 직접 재수초화에 참여합니다. 따라서 NPC는 만성 탈수초성 질환을 개선할 수 있는 유망한 치료법입니다. 이식된 NPC는 척수의 복부 쪽의 손상된 부위로 이동하기 때문에 기존의 생체 내 2P 이미징은 불가능하며 이전에는 조직화학적 염색 접근 방식을 사용하여 정적 상호 작용에 대한 정보만 사용할 수 있었습니다. 이 방법은 복부 척수에 이식된 NPC를 이미지화하기 위해 생성되었지만, 전체 척수에 걸쳐 이식된 세포와 내인성 세포에 대한 수많은 연구에 적용할 수 있습니다. 이 기사에서는 향상된 노란색 형광 단백질 발현 축삭돌기와 향상된 녹색 형광 단백질 발현 이식된 NPC를 사용하여 척수의 준비 및 이미징을 보여줍니다.

<html> 외식 척수 촬상 프로토콜 척수 내의 형광을 시각화하는데 이용 될 수 있지만, 우리는 대표적인 결과 EYFP-축삭-eGFP는 NPC와 상호 작용을 보여준다. 첫째, 우리는 그림 1A에 포함 된 복부 척수 준비를 보여줍니다. 다음으로, 우리는 그림 1B에서 2P 현미경 설정 및 주요 구성 요소를 보여줍니다. (2) 복부 척수 내에서 단일 Z-스택에 eGFP는 및 EYFP 형광을 보여줍니다. 연속 Z - 스택의 취득은 그대로 조직 내에서 실시간으로 세포 역학을 분석하는 시간 경과 비디오를 생성하기 위해 컴파일 할 수 있습니다. 520 nm의 단일 에지 이색 및 560 nm의 단일 에지 이색 성 빔 스플리터를 사용하여 프로토콜에 명시된 바와 같이, 및 eGFP는 EYFP 신호를 분리 할 수​​있다. 개별 채널은 녹색과 노란색 사용 이미징 소프트웨어를 모조 할 수 있습니다. <p class="jov...

마우스 척수 이미징을위한 새로운 생체 준비. 이 프로토콜은 척수 걸쳐 라이브 세포 상호 작용의 두 광자 이미징을 허용한다.

Two-photon (2P) microscopy is utilized to reveal cellular dynamics and interactions deep within living, intact tissues. Here, we present a method for ...

다음 실험의 전반적인 목적은 마우스 척수 내에서 형광 표지된 이식 신경전구세포(NPC)와 형광 축삭 간의 상호작용을 실시간으로 이미징하는 것입니다. 이는 NPC가 이식된 마우스의 척수를 조심스럽게 적출하여 5% aros에 매립한 후 커버슬립에 부착함으로써 수행됩니다. 척수의 방향을 조정하여 척수 내 어느 영역에서든 형광을 관찰할 수 있습니다.두 번째 단계에서는, 생존 가능한 NPC를 이미징하기 위해 척수 표본을 이광자 이미징 스테이지에 올리고, 최대 10시간 동안 따뜻하고 산소가 공급된 RPMI 배지로 지속적으로 관류합니다. YFP와 GFP 방출광을 분리하기 위해 적절한 단일 엣지 이색 빔 분할기를 사용합니다. 최종적으로, 이광자 이미징을 통해 손상된 척수 내에서 GFP를 발현하는 NPC와 YFP를 발현하는 축삭 간의 상호작용을 실시간으로 시각화할 수 있습니다.이 방법은 손상된 축삭의 NPC 이식 후 재수초화에 필요한 분자 및 세포 신호 단서가 무엇인지, 그리고 이러한 재수초화 사건의 역학은 어떻게 되는지와 같이 신경퇴행 분야의 핵심 질문에 답하는 데 도움이 될 수 있습니다. 배측 척수 영상 촬영에만 사용할 수 있는 간헐적 이광자 영상 촬영과 같은 기존 방법과 비교했을 때 이 기술의 주요 장점은, 척수 복측 깊숙이 이동한 이식 NPC의 영상 촬영이 가능하다는 점입니다. 척수 절단을 통해 안락사를 확인한 후, 마우스를 70% ethanol로 적시고, 날카롭고 정밀한 가위를 사용하여 동물의 등 쪽 털과 피부를 제거하여 대략 경추판 1(C1)부터 천추판 4(S4)까지의 척주를 노출시킵니다.다음으로, 10번 날이 장착된 메스를 사용하여 척주 좌우에 절개선을 만들어 주변 근육 및 지방 조직으로부터 척주를 분리하고, 척주 주변과 상단의 과잉 조직을 잘라냅니다. 이렇게 하면 척추뼈를 더 쉽게 제거할 수 있습니다. 그런 다음 톱니 모양의 그레이 포셉으로 척추 상단을 잡고, 척수와 닿지 않도록 주의하면서 곡면이 위로 향하게 하여 티타늄 곡선 반 가위를 C1의 노출된 척주 내부로 삽입합니다.가위를 오른쪽 끝까지 밀어 넣고 작게 한 번 자릅니다. 가위가 척추뼈를 자를 때 작은 바스락거리는 소리가 들리고 느껴져야 합니다. 척수 왼쪽 끝에서도 동일하게 절단하되, 너무 빠르게 작업하거나 너무 크게 자르지 않도록 주의하십시오. 이는 척수를 손상시킬 위험이 있기 때문입니다.추골의 측면을 절개하고 나면, 단일 층판을 포셉으로 들어 올릴 수 있어야 합니다. S4에 도달할 때까지 각 층판에 대해 좌우 절개를 반복하십시오. 그동안 척수 추골을 계속 잡고 뒤로 당겨줍니다.척추를 이식 부위까지 절단하면 이식 부위 상단의 척추뼈가 떨어져 나갈 수 있습니다. 척추를 S4까지 절단한 후, 이식 부위를 더 잘 확인할 수 있도록 척추뼈를 눕히고 이식 부위에서 머리 방향(rostral)과 등 쪽(caudal)으로 약 20mm 지점을 절단하십시오. 이제 11번 메스 날이 장착된 스칼펠을 사용하여 척수 복측의 좌우 신경절을 머리 쪽 끝부터 조심스럽게 절단하십시오.그런 다음 동물을 뒤집어 척수가 아래를 향하게 잡고, 톱니 모양의 닫힌 중량 겸자를 사용하여 꼬리 끝부분부터 척수를 조심스럽게 벗겨냅니다. 그 후 척수에 상처를 내지 않도록 주의하며 남은 신경절을 조심스럽게 절단하여 척수를 손상 없이 한 덩어리로 들어 올릴 수 있게 하고, 영상 촬영 준비를 위해 척수를 얼음 위에 놓인 배지에 넣습니다. 신경 조직을 복측이 위로 향하게 하여 파라필름 시트 위로 옮깁니다.그 다음, 37 °C로 갓 준비한 5% agro 용액 약 5 mL를 척수 위에 피펫으로 분주하고 실온에서 굳힙니다. 약 5분 후, 22 mm 정사각형 커버슬립에 조직 접착제를 얇게 도포하고, 매립된 척수를 복측이 아래로 향하게 하여 새로운 perfil 조각 위에 뒤집어 놓습니다. 노출된 배측에 커버슬립을 부착하고, 접착제를 굳히기 위해 준비물 전체를 신선한 배지에 담급니다.그 다음 면도날을 사용하여 과하게 응고된 아가로스(agarose)를 제거합니다. 이어서, 37°C 항온수조에서 가온된 배지 병에 튜빙 펌프와 연결된 튜브를 삽입합니다. 현미경 스테이지에 설치된 맞춤형 이미징 웰을 통해 가온된 배지를 분당 3 mL의 속도로 주입합니다.그 다음, 척수 표본의 복측이 25 x 침수 대물렌즈를 향해 위로 가도록 웰에 배치합니다. 이광자 현미경으로 척수 복측을 이미징하려면, 광독성을 최소화하기 위해 시료에 도달하는 레이저 출력을 5% 미만으로 감쇠시킨 900 nanometers로 조정된 울트라 티타늄 사파이어 레이저를 사용하십시오. 그런 다음 접안렌즈와 명시야 광원을 사용하여 침수 대물렌즈의 초점을 척수의 복측 가장자리에 맞춥니다.기준점을 설정하려면 주변 광원이 꺼져 있는지 확인하십시오. 그런 다음 레이저 셔터를 열어 가능한 경우 두 광자 인용을 전환하십시오. 관심 영역을 찾기 위해 조직을 탐색할 때는 최종 이미지를 획득할 때보다 더 낮은 해상도 설정, 디지털 줌 없이 더 넓은 부피, 그리고 더 빠른 스캔 속도를 사용하십시오.세포를 찾으려면, 먼저 이식 부위의 조직 가장자리에서 명시야 조명을 통해 샘플에 초점을 맞춘 다음 형광 모드로 전환하는 것이 가장 좋습니다. 이후 저배율의 넓은 X 및 Y 영역을 설정하면, 초점을 조직 깊숙이 이동시키면서 넓은 영역을 빠르게 관찰할 수 있습니다. 척수의 복측 가장자리 근처에 있는 EYFP 축삭을 관찰하십시오.여기서 파란색으로 관찰되는 콜라겐의 제2조화파 신호는 척수 조직의 가장자리에서 가장 밝게 나타납니다. 이제 적절한 이미지 캡처 소프트웨어를 사용하여 2.5 micron 간격의 순차적 초점 평면에서 최종 고해상도 이미지를 획득하여 Z 스택을 구성하십시오. 이 표현에서 GFP NPCs는 파란색으로, 손상된 YFP 축삭은 노란색으로 관찰되며, 의사 색상은 나중에 편집 소프트웨어를 사용하여 지정할 수 있습니다. 그런 다음 척수 내에서 이동하는 객체를 신속하게 정량화할 수 있도록 적절한 인터레이 오프셋을 적용하여 양방향 스캔을 수행하고, 척수 내의 세포 속도를 결정하기 위한 최적의 획득 프레임 속도가 초당 약 1.7 프레임으로 설정되었는지 확인하십시오.마지막으로, 적절한 소프트웨어를 사용하여 이미지 파일을 분석, 크롭, 스무딩 및 유사 색상(pseudo color) 처리하고, 자동화된 프로세스를 통해 연속적인 이미징 볼륨을 콤(comb)하여 최종 타임랩스 비디오를 생성합니다. 본 적출 척수 이미징 프로토콜은 척수 내의 모든 형광을 시각화하는 데 사용할 수 있으며, 여기의 이미지들은 복측 척수 내 단일 Z 스택에서 EGFP 신경 전구 세포와 EYFP 축삭 간의 대표적인 상호작용을 보여줍니다. 이후 연속적인 Z 스택의 획득 데이터를 컴파일하여 온전한 조직 내의 실시간 세포 역학을 분석하기 위한 타임랩스 비디오를 제작할 수 있습니다.실제로 520 nm 단일 엣지 다이크로익(dichroic) 필터와 560 nm 단일 엣지 다이크로익 빔 스플리터를 사용하면 EGFP와 EYFP 신호를 분리할 수 있으며, 여기에서 시연한 바와 같이 이미징 소프트웨어를 통해 각 채널을 녹색과 노란색으로 의사 색상(pseudo coloring) 처리할 수 있습니다. 이 절차를 수행할 때는 신경 조직을 과도하게 늘리거나 압착하거나 실수로 절단하지 않도록 주의하며 마우스에서 척수를 적절히 제거하는 것이 중요합니다. 본 프로토콜을 통해 형광 표지된 세포나 축삭의 모든 조합을 실시간으로 이미징할 수 있으며, 이를 통해 다양한 약물 처리나 조건 하에서의 이동 또는 재수초화의 역학(kinetics) 등 추가적인 질문에 대한 답을 얻을 수 있습니다.

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Research

연구

JoVE Journal

Neuroscience

신경과학

마우스 척추를 안정화하고 반복 수행하는 법으로서...

두 광자 현미경을 사용하여 마우스 척수의 생체내 이미징에

출처: Maruoka, H., et. al. 깨어 있는 쥐의 미세아교세포 역학 및 신경 활동의 동시 이미징.J. Vis. Exp. (2022) 이 비디오는 시각적 자극 중 깨어 있는 쥐의 신경 활동과 미세아교세포 역학을 이미징하기 위한 이광자 현미경 절차를 보여주며 칼슘 과도 및 세포 상호 작용을 강조합니다.

깨어 있는 쥐에서 미세아교세포의 역학과 신경 활동의 동시 이미징(Simultaneous Imaging of Microglial Dynamics and Neuronal Activity in an Awake Mouse)

살아있는 동물의 타임랩스 영상은 온전한 뇌의 구조적 재구성에 대한 귀중한 정보를 제공합니다. 여기에서는 이광자 현미경으로 살아있는 쥐 피질의 형광 표지된 시냅스 구조를 경두개 이미징할 수 있는 얇은 두개골 제제를 소개합니다.

두 광자<em&gt; 생체</em&gt; 시닝 두개골 준비를 사용하여 마우스 피질 돌기 쪽의 영상

이 비디오에서는, 우리는 라이브 마우스의 등쪽 척수를 통해 만성 광학 영상 실을 주입하는 절차에 대해 설명합니다. 실, 수술, 만성 이미징 검토하고 증명한다.

종의 척추 상공 회의소를 주입하는 절차 생체 마우스 척수의 영상

Two-photon intravital imaging은 등쪽 기둥 외상성 척수 파쇄 손상이 있는 골수 키메라 동물의 원래 조직 환경에서 척수의 다양한 세포 유형 간의 상호 작용을 조사하는 데 사용할 수 있습니다.

마우스 지느러미 열 압박 손상에 마이크로 글 리아와 대 식세포와 축삭의 상호 작용의 생체 내에 이미징

우리는 vivo에서 이미징 방법 성인 Sprague-Dawley 쥐에 contusive 척수 상해 다음 동적 척추 혈관 변화 추적 하기 위한 두 개의 서로 다른 형광 성 염료를 사용 하 여 소개 합니다.

에 비보 듀오 컬러 이미징 혈관 역학 Contusive 척수 상해를 따르는 방법

이 프로토콜은 쥐의 척수에 유리 창을 이식하여 분사 내 현미경 검사법에 의한 시각화를 용이하게 합니다.

마우스에 있는 Laminectomy 및 척수 창 이식

이 방법은 살아있는 마우스의 해마에 광학적인 접근을 허용하는 만성 준비를 기술합니다. 이 제제는 몇 주 동안 신경 구조 가소성 및 활동 유발 세포 가소성의 세로 광학 이미징을 수행하는 데 사용할 수 있습니다.

살아있는 마우스에 있는 등도 해마 CA1의 세로 2 광자 화상 진찰

자극된 라만 산란(SRS) 현미경은 특정 화학 결합의 고유 진동을 기반으로 생체 분자의 라벨 없는 이미징을 가능하게 합니다. 이 프로토콜에서, 통합 SRS 및 이광자 형광 현미경의 도구 셋업은 살아있는 마우스의 척수에서 세포 구조를 시각화하기 위해 기술된다.

생체 내 결합 된 이광자 형광 및 자극 된 라만 산란 현미경을 사용한 생물학적 조직 이미징

여기에서 우리는 깨어 있는 마우스에서 소교세포 역학과 신경 활동의 동시 이미징을 위해 아데노 관련 바이러스 주입과 두개골 창 이식을 결합한 프로토콜을 설명합니다.

깨어 있는 생쥐의 소교세포 역학 및 신경 활동의 동시 이미징

배우세요 마우스 척수에서 이광자 이미징을 이용해 GFP 표지 신경전구세포와 YFP 표지 축삭의 실시간 상호작용을 관찰하는 방법. 이 기술은 척수 손상 후 재생 메커니즘 연구에 활용됩니다.

마우스 척수의 세포 역학의 두 광자 이미징

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