Name: 시간 경과 브라이트 실체 현미경으로 Zebrafish의 애벌레에서 조직 복구를 캡처 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-01-31T14:00:00.000+00:00
Duration: 14 min 29 s
Description: 배우세요 제브라피시 꼬리 지느러미 재생을 입체 현미경으로 실시간 관찰하는 방법을. Danio rerio 애벌레를 이용한 이 기술은 조직 복구 역학을 연구하는 데 활용됩니다.

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제브라피시 유지 보수를 위해 MDI 생물학 연구소 동물 핵심 서비스 시설에 감사드립니다. 이 간행물에 보고된 연구는 미국 국립보건원(National Institutes of Health) 산하 국립일반의학연구소(National Institute of General Medical Sciences)의 P20GM104318(COBRE) 및 P20GM103423(INBRE) 및 국방부 – USAMRAA(W81XWH-BAA-1) 보조금의 지원을 받았습니다.

제브라 피쉬 (진주층의 변형) 설립 프로토콜에 따라 사육 제기되었다. 모든 노력이 마취 및 안락사에 대한 1 mM의 Tricaine 0.4 mM의 Tricaine을 사용하여 고통을 최소화하기 위해 만들어졌다. 해당위원회 (MDI 생물 실험실 동물 코어 IACUC 번호 13 ~ 20)에 의해 승인 된 제브라 피쉬 배아 및 유충의 동물 관행에 엄격한에 따라 처리되었다. 본 연구는 프로토콜 # 14-09에서 국립 인간 게놈 연구소 동물 관리 및 사용위원회, MDIBL 기관 보증 # 1 A-3562-01에 의해 승인되었다. 주 : 다음 단계에 요약되어 애벌레 제브라 피쉬의 지느러미 재생을 캡처 이미지를 만드는 절차를 : 애벌레 단계에 제브라 피쉬의 1. 제기 <ol><li> 계란을 수집하고 0.00004 %의 메틸렌 블루 보충 탈 이온수에 0.03 % 인스턴트 오션 염을 포함하는 100 × 25mm 페트리 접시에 약 50 알을 놓습니다. 28.5 ° C 배양기에서 O / N을 품어. </li> &lt;리&gt; 다음 날 아침 유리 피펫 죽은 배아를 제거하고 탈 이온수 (라고 배아 매체)의 0.03 % 즉시 바다 소금 스트레이너에 계란을 씻어. 주 : 바람직한 될 수도있다 링거 18 행크스 18, 19 E2, E3 (20), (21) 및 Danieau 매체. </li><li> SUP&gt; 접시에 신선한 배아 매체를 추가합니다. 착색 된 균주를 사용하는 경우 PTU 멜라닌 및 유생 따라서 착색을 방지하는 바와 같이, 임의로, 0.2 mM의 1- 페닐 -2- 티오 우레아 (PTU)를 추가한다. 배아가 더 이일 게시물 수정 또는 기타 원하는 애벌레 단계까지 인큐베이터에서 개발 보자. </li></ol> 이미징 회의소 2. 준비 <ol><li> 방법 1 : PVC 또는 테프론 튜브로 만든 영상 챔버 (그림 1) 참고 :이 방법은 조개와 아담스 (1998) (22)과 유사하다. <ol><li> 25mm 외부와 하드웨어 상점에서 음용수 등급 플라스틱 또는 테플론 튜브 획득다 20mm 내경. 양쪽에 편평한 표면과 약 10mm 두께의 고리를 만들 튜브를 잘라. 가장자리를 부드럽게하기&gt; 200 사포를 사용합니다. </li><li> 따뜻한 물과 70 % 에탄올로 반지를 청소하고 그들에게 자연 건조를 할 수 있습니다. </li><li> 피펫 팁과 함께, 링의 절반에 실리콘 그리스를 적용하고 75mm X 25mm 유리 커버 슬립에 반지를 연결합니다. 또한, 실리콘 그리스 대신 피펫 팁 가득 3 ML의 주사기를 사용합니다. 참고 :이, 3 ML의 주사기로 실리콘 그리스를 삽입 먼저 30 ML의 주사기에 실리콘 그리스를 추가하고 3 ML의 주사기를 채우기이를 사용하는 어렵 기 때문에. </li></ol></li><li> 방법 2 : 영상 실 등의 페트리 접시의 준비. <ol><li> 뚜껑 (그림 2A)에 부착 된 유리 커버 슬립 35 또는 60 mm 직경의 배양 접시를 획득. Distel &amp; Koester는 (2007) (23)의도 3에 도시 된 바와 같이 선택적으로, H, 충분히 작은 개구부를 드릴오래된 작은 페트리 접시의 뚜껑에 커버 슬립과 3 ML의 주사기와 외부에 실리콘 그리스를 적용합니다. 깨끗한 피펫 팁을 사용하여 조심스럽게 외부 (그림 2B)에 원형 또는 원하는 두께의 사각형 커버 슬립을 연결합니다. </li></ol></li><li> 아가로 오스 단단히 이미징 절차를 수행하는 동안 부착 숙박을 장착에 사용되는 것을 보장하기 위해, 반지 안쪽 미세 플라스틱 메쉬를 연결합니다. 우선, 각 미세 가위를 사용 내륜 직경의 크기로, 철물점 수득 윈도우 화면으로 이루어지는 메시를 잘랐다. 그 후 메시의 중앙으로&gt; 유충의 두 배 크기의 작은 사각형을 잘라 (도 1, 2). </li><li> 커버 슬립과 챔버 링 (그림 1A) 사이의 인터페이스에 비 독성 실리콘 그리스의 4 개의 작은 점을 적용합니다. </li><li> 유리 커버 슬립의 바닥에 단단히 메쉬를 연결하는 집게를 사용합니다. </li></ol> 3. 설치 및 사전 INJ의 영상어인 유충 (이 단계는 선택 사항입니다) 참고 : 지느러미 재생 후 절단 평면 제브라 피쉬 애벌레에서 인식 할 수없는 것처럼이 단계는, 절단 및 재생 핀 길이 사이의 비교에 적합합니다. <ol><li> 시편의 고정을위한 배아 매체에서 0.5 ~ 1.2 % 낮은 용융 아가로 오스 솔루션을 준비합니다. </li><li> 전자 레인지에서 아가로 오스를 가열하고 가열 블록에 42 ° C로 미리 예열되어 1.5 ml의 튜브에 액체 아가로 오스를 전송합니다. </li><li> 뜨거운 아가로 오스는이 온도에서 몇 주 동안 유지 될 수 42 ° C로 냉각 보자. 이 동물에 해가 될 수있는 바와 같이, 아가로 오스 위 42 ° C에 유충을 피펫 팅하지 않도록하십시오. </li><li> 직경 60mm 페트리 접시에 배아 배지에서 0.4mm의 Tricaine (pH가 7) 10 ㎖을 사용하여 여러 유충 마취. Zebrafish의 책 조리법 (18)에 따라 Tricaine을 준비합니다. <ol><li> 99 1000 희석 : 대안 적으로, 한 10 ㎖를 사용하여60mm 직경 페트리 접시에 % 2- 페녹시 에탄올. 진행하기 전에 자신의 터치 반응을 평가하기 위해 출장 microloader 피펫 팁과 유충을 들여다 봅니다. 만 응답하지 유충을 사용합니다. </li></ol></li><li> 유리 파스퇴르 피펫을 사용하여 42 ° C 아가로 오스 솔루션으로 하나의 유충을 전송합니다. 그렇지 않으면 아가로 오스가 너무 희석 응고되지는 않습니다, 아가로 오스에 과도한 액체를 전송하지 마십시오. </li><li> 피펫에 남아있는 액체를 버리고 작은 페트리 접시 (35 또는 60 mm 직경)에 아가로 오스의 한 방울과 유충을 전송합니다. 꼬리 지느러미의 이미징 측면에 유충을 배치합니다. </li><li> 아가로 오스가 응고 허용합니다. 플라스틱 피펫 팁과 아가로 오스를 평가; 너무 액체의 경우 팁 아가 침수된다. 아가로 오스가 확정되면, 작은 들여 쓰기 피펫 팁과 접촉시 볼 수 있습니다. 응고에 이어, Tricaine 솔루션을 추가하고 시간 경과 영상 나중에 사용되는 실체를 진행합니다. <li> 시간 경과 소프트웨어 실체 현미경을 사용합니다. 시간 경과 영상 나중에 사용되는 적절한 객관적이고 배율을 선택합니다. 여기에, 실체 현미경에 3.5 X, 16mm 작동 거리 대물 렌즈를 사용합니다. 원하는대로, 대안 현미경의 대물 렌즈를 사용하지만 이미지를 만드는 절차시 발생할 수있는 XY 드리프트와 지느러미의 성장을 고려하여 적절한 배율을 선택합니다. </li><li> 현미경에 카메라 탐지 모드를 선택합니다. </li><li> 소프트웨어에서 화면의 애벌레를 보려면 &#39;라이브&#39;모드를 선택합니다. </li><li> 자동으로 밝기를 감지하는 &#39;등록 정보&#39;창을 엽니 다. </li><li> 수동 현미경 트랜스 조명 기지에서 명암을 조정합니다. </li><li> 시야에서 유충을 이동 및 배경 없음을 최소화하기 위해 음영 보정 기능을 선택이세. </li><li> 다시보기의 필드에 유충을 놓고 스냅 샷을. 이미지를 저장합니다. </li><li> 먼저 머리에서 아가로 오스를 긁어 유충에서 아가로 오스를 제거합니다. 유충 부드럽게 덮인 microloader 피펫 팁 또는 곤충 핀 남아있는 아가로 오스에서 떨어져 머리를 당겨 아가로 오스에서 미끄러 수있는 방법. </li><li> 유리 파스퇴르 피펫으로 신선한 Tricaine 용액에 유충을 전송합니다. </li></ol> 4. 절단 수술 분석 <ol><li> 배아 매체를 이용하여 1.5 % 아가 용액을 준비하고, 페트리 접시에 얇은 층을 붓는다. 아가로 오스가 응고 보자. </li><li> 실체 현미경 하에서 응고 아가로 오스에 유충 옆으로 배치하고 약간의 압력 (그림 3A)와 23 G 주사기 바늘 꼬리 지느러미를 절단. </li></ol> 5. 시간 경과 이미징을위한 유충 설치 <ol><li> 3.5 (그림 3B) - 단계 3.1에 설명 된대로 진행합니다. </li><li&gt;, 영상 실 링 (2.1 단계)에 유충을 포함하는 42 ° C에서 0.5 ~ 1.2 % 액 아가로 오스의 드롭을 전송 유충의 방향과 아가로 오스 응고 수 있습니다. Tricaine 솔루션 반지를 입력합니다. 페트리 접시 챔버 (2.2 단계) 사용하는 경우 또는, 뚜껑 커버 슬립 위에 유충을 탑재하고 Tricaine 솔루션 뚜껑을 입력합니다. </li><li> 발생하는 적절한 상처 치유 또는 조직 재생을 허용하려면, 조심스럽게 출장 microloader 피펫 팁 또는 곤충 핀을 사용하여 말초 꼬리 지느러미를 둘러싼 아가로 오스를 긁어. 핀 반복 (그림 3C)를 다치게하지보십시오. </li><li> 아가로 오스 제거가 포함 된 Tricaine 솔루션을 가만히 따르다와 신선한 Tricaine 솔루션을 실 반지를 입력합니다. </li><li> 챔버 링의 상단에 실리콘 그리스를 적용하고 75mm X 25mm 유리 슬라이드를 연결합니다. 그들이 시야 이미징에 방해가 될 수 있고, 시간이 지남에 유충을 건조하는 바와 같이, 챔버에 공기 주머니를 피하기 위해보십시오. </li><li> 페트리 접시 등을 사용하는 경우촬상 챔버는 하부 챔버의 상부 림에 실리콘 그리스를 도포하고 Tricaine 용액과 하부 챔버를 채운다. 조심스럽게 뚜껑 Tricaine 솔루션을 가만히 따르다하고 공기 주머니를 방지하기 위해 약간의 각도로 아래쪽 챔버의 Tricaine 용액에 유충을 담가 뚜껑을 뒤집습니다. 챔버는 실리콘 그리스로 인해 봉인됩니다. </li></ol> 6 시간 경과 영상 <ol><li> 23, 24 (그림 4) 현미경 주위 배양 챔버를 .Place과 열을 켜에 기술 된 바와 같이 가열 배양 챔버를 조립합니다. 20 분 또는 온도가 안정 될 때까지 - 10 28 ° C의 온도를 조정합니다. </li><li> 가열 된 배양 챔버의 전면을 열고 목표를 향해 위로 향하게 커버 슬립과 현미경 스탠드에 영상 실을 배치합니다. </li><li> 시야의 2/3이 비어 유지하는 방식으로 애벌레 핀을 배치합니다. 이것은 캡처 보장유충의 위치를​​ 변경하지 않고 성장과 촬상 절차의 과정을 통해 핀의 재생. <ol><li> 이전 시야 강도 또는 아가로 오스의 잠재적 인 변화의 변화를 방지하기 위해 시간 경과 기록 작업을 시작하기 30 분 ~ 28 ° C에 탑재 된 유충을 조정합니다. 또한, 짧은 조정 시간 후 영상을 시작하는 미리 예열 버퍼를 사용한다. </li></ol></li><li> 시간 경과 기록 작업을 설정하려면를 AxioVision 소프트웨어의 6D 다차원 취득 창을 열고 Z-스택과 시간 경과 옵션을 선택합니다. </li><li> Z-스택 탭과 슬라이스 모드에서) 선택, 슬라이스 두께를 선택하고 시작 / 정지 모드를 선택합니다. </li><li> 스택의 상부 및 하부 위치를 정의한다. </li><li> 경과 탭에서, 간격 및 동영상의 기간을 선택하고 시작 버튼을 누르면 동영상을 시작한다. 우리는 30 분 간격으로 충분하며,이 간격은 과도한 데이터를 생성하지 않는 것으로 나타났습니다; 그러나 shorteR 간격이 사용될 수있다. </li><li> 유충은 사전 조정되지 않은 경우 첫 번째 시간 동안 위치 및 z 스택 크기를 확인합니다. 필요한 경우 유충이 이동 한 수 있으므로, 하루 만에 다시 유충의 위치를​​ 변경. </li><li> 시간 경과 기록 작업의 끝 부분에 파일을 저장하고 후 처리 및 Imaris 25 오픈 소스 소프트웨어 패키지 이미지 J (26)와 피지 (27)로 사용 가능한 이미지 분석 소프트웨어를 사용하여 정량화를 진행합니다. </li></ol> 7. 데이터 분석 <ol><li> 지느러미의 길이를 결정. <ol><li> 이미징 소프트웨어에서 저속 동영상을 열고 소프트웨어 성능을 향상시키기 위해 독점적 인 파​​일 포맷의 파일을 저장한다. </li><li> 예상 스택 개별 섹션을 표시하는 직교 뷰를 선택합니다. 드리프트 보정의 경우, 피지 메뉴에서, 플러그인, 다음 등록하고, &#39;올바른 3D 드리프트&#39;를 선택합니다. 이 피지 창을 열고 드리프트 보정을 수행합니다. 옳은Imaris 명소 함수의 회전 드리프트. 또한, 이미지 J의 StackReg과 TurboReg 플러그인을 설치하고 피지를 가져옵니다. StackReg 플러그인에서 원하는 변환 알고리즘을 선택합니다. </li><li> 거리 (예를 들면, 상처 직경 또는 지느러미 길이)를 측정하기 위해, 왼쪽 상단 도구 모음에서 &#39;추가 새로운 측정 포인트&#39;옵션을 선택합니다. <ol><li> 왼쪽 하단 메뉴에서 &#39;눈에 보이는 통계 값의 구성 목록&#39;에서 통계 값을 표시 할 선택합니다. </li><li> 설정 탭에서 &#39;라인 모드&#39;에서 &#39;쌍 (AB, CD ...)&#39;를 선택합니다. </li><li> 선택 &#39;이름&#39;과 &#39;거리&#39; &#39;속성 라벨&#39;을에서 측정 라인 옆에 점 A와 B 사이의 거리를 표시합니다. </li><li> &#39;편집&#39;모드로 전환하고, 척색의 끝에서 첫 번째 점을 선택 SHIFT 버튼을 누른 상태. 이어서 원위 핀 여백 번째 포인트를 선택하기 위해 동일한 구성을 사용한다. </li><li> &#39;통계&#39;탭에서 표시하고 이미지의 거리를 내보낼 수있는 오른쪽 하단에있는 디스크 버튼 (모두 내보내기)를 선택합니다. </li><li> 오른쪽 이미지 아래 슬라이더를 이동하여 선택된 시점의 측정을 반복한다. 대신 새로운 측정점을 생성 이전 것들 먼저 마우스 왼쪽 버튼 포인트를 선택하고 동시에 새로운 위치에서의 시프트 및 왼쪽 마우스 버튼을 눌러 다른 장소로 옮겨 질 수있다. </li></ol></li><li> 대안 측정점 옵션, 거리를 측정하는 슬라이스 뷰어를 이용한다. 슬라이스 뷰 모드에서 원하는 위치로 이동하고 마우스 왼쪽 버튼으로 제 1 및 제 2 위치를 클릭합니다. 거리가 표시됩니다. 이 옵션은 그러나 데이터 수출을 허용하지 않습니다. </li></ol></li><li> ImageJ에의 지느러미 길이와 면적을 결정. <ol><li> .zvi 파일 형식을 인식하는 플러그인을 사용하여 ImageJ에에서 시간 경과 영화를 엽니 다. 또한, 숨어에서로드ickTime 파일이나 TIFF 순서. 주 : 비 압축 TIFF 파일 형식을 사용하는 경우, 화상 사이즈가 지정 될 필요가 없다. </li><li> 파일 정보없이 다른 파일 형식을 열 경우, 먼저 이미지를 거리 단위를 정의하는 &#39;분석&#39;메뉴에서 &#39;설정 규모&#39;를 선택합니다. &#39;픽셀의 거리&#39;에 &#39;집합 스케일 메뉴&#39;형, 화소 값에 대한 &#39;알려진 거리&#39;에 입력 이하 (이는 화상에 가하고 스케일 바 화소 수를 측정함으로써 얻을 수있다 다음) 결과를 얻기 위해 측정을 클릭하고 &#39;길이의 단위&#39;(일반적으로 &#39;μm의&#39;). 그런 다음 확인을 클릭합니다. </li><li> 핀 영​​역 측정 도구 모음의 &#39;프리 핸드 선택&#39;도구를 선택하고 마우스 왼쪽 버튼을 누르고 아래로 동안 핀의 윤곽을 따라 그려 핀 영역을 간략하게 설명하십시오. 지느러미 길이 측정을 위해 &#39;스트레이트&#39;줄 도구를 선택하고 수 원하는 점 사이에 선을 그립니다측정. </li><li> 핀의 면적과 길이를 표시하는 &#39;분석&#39;에서 &#39;측정&#39;옵션을 클릭합니다. 영화의 여러 시점에 대한 필요한만큼 자주이 단계를 반복합니다. </li></ol></li><li> 데이터를 통계 소프트웨어를 수 사용하는 것은 그래픽으로 표시 될 수있다. </li></ol>

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저자가 공개하는 게 없다.

제시된 방법은, 시야의 실체에 생체 시간 경과 이미징 제브라 피쉬의 유충을 살고있는 비교적 간단한 셋업을 사용하여 상처 치유 및 조직 재생을 관찰 할 수 있습니다. 이 절차는 결과를 최적화 우리가 테스트 한 특정 중요한 측면이 필요합니다 : 지속적으로 성장하는 애벌레 제브라 피쉬의 성장 장애를 최소화 한) 저 아가로 오스 농도 (~ 0.5 %), 2) 핀 주위에 아가로 오스의 제거는 중요하지 않습니다 치유 과정을 불명료하게, 3) 플라스틱 메쉬 아가 트래핑 절차 내내 안정 위치에서 아가로 오스 및 동물을 유지하고, 4) 유충의 생존에 필수적인 적정 온도 제어 환경. 우리는 판지 위에 테이핑 버블 랩을 이용하는 가열 배양실 (23, 24), 및 기간 동안 최소한의 변동과 온도 및 적절한 공기 순환을 제어하는 유선 돔 히터를 적응이미지를 만드는 절차. 이 간단하고 비용 효율적인 챔버 어떤 현미경에 맞게 제조 할 수있다. 유사한 가열 배양 챔버는 이미징 마우스와 병아리 개발 24,29 활용되고있다. 우리는 미리 절단 애벌레 미리 절단 이미지를 장착하는 것이 좋습니다, 절단을 위해 탈착 및 시간 경과 이미징 다시 마운트. 이 최종 영상 실에서 하나의 단계에서 다음 단계를 수행 가능하지만, 우리의 경험에서 우리는 조직을 눈물 깨끗한 절단을 초래하지 않는 유리 커버 슬립에 꼬리 지느러미를 절단하는 것은, 최적이 아닌 것을 발견했다. 주사기 바늘을 이용하여 아가로 오스 계 절단 방법은 원래 카와카미 동료 (2004) 16에 의해 설명되고, 우리의 경험에서, 또한 절단을 수행하는 것이 적합했다. 따라서, 우리가 제시 단계 오히려 복잡한 일련의 잘 정당화하고 최적의 재생 결과를 보장한다. 우리는 larv을 보여 주었다2 DPF에서 알 제브라 피쉬는 아가로 오스와 Tricaine 솔루션 1.5 일 이미지화 할 수 있습니다. 우리는 촬상 제시된 기간 동안 시험편의 건강에 지장이없는 인스턴트 바다 염으로 제조 최적화 Tricaine 산도 (pH 7이었으며) 용액을 사용 하였다. 우리는 이전에 그러나 또한 Danieau 매체에 Tricaine을 사용하여 적어도 이일 (30) 공 초점 현미경에 애벌레 제브라 피쉬 DPF 2.5의 시간 경과 영상을 허용하는지 보여 주었다. 따라서, 최적의 버퍼 상태 유생 건강 및 이미징의 길이를 연장 할 수있다. 대안 적으로, 더 낮은 농도 Tricaine 우리가 아니라 적어도 60 시간 동안 28 ° C에서 유충 및 성체 단계에서 용납 발견 마취 또는 2- 페녹시에 사용될 수있다. 지느러미 재생의 결함을 방지하기 위해, 우리는 이미징 전에 꼬리 지느러미에서 아가로 오스를 제거했습니다. 우리의 데이터는 1.5 일 이내에 지느러미가 약 60 %로 거듭나 있음을 보여줍니다. 이 회복 속도 3 일을 정의 이전 연구와 일치16 DPF 6 제브라 피쉬의 유충 최대의 꼬리 지느러미 재생을위한 평균 시간이야. 아가 로스에 다른 방법은 그러나 영상의 물고기를 탑재하는 데에 이용 될 수있다. 예를 들어, 얇은 플라즈마는 빛 시트 현미경 (32) 추천 된 31 플루오르 에틸렌 프로필렌 (FEP) 튜브 메틸 셀룰로오스로 코팅 매우 낮은 아가로 오스 농도 (0.1 %)로 채워진를 혈전 우리의 제시 방법에 적합 할 수있다. 그들은 시편 인해 이러한 미디어의 응고의 부족으로 챔버의 하단에 장착해야하지만, 우리는, 메틸 0.1 % 아가 로스를하지 않는 것이 좋습니다. 메틸 매우 높은 농도는 또한 우리의 경험을 바탕으로 공기 주머니를 생성하고, 이러한 이미지를 만드는 절차를 방해 할 수 있습니다. 이들 배지는 하부 챔버를 사용하여 바람직한 경우, 대물 렌즈와 표본 사이에 적절한 작동 거리가 존재하는 것이 중요하다. 그것은 m 주목해야한다이 애벌레 건강 (32)을 방해 할 수 있으므로, 설치 매체로 에틸 셀룰로오스는, 단지 일일 최대 권장합니다. 뚜껑에 시편을 장착하는 것은 느린 중력 아래로 표류의 원인이 될 수 있습니다. 이 때문에 하나 하나의 평면 또는 최종 동영상을 조립 추출 될 수있다 초점면에있는 경우에만 이미지로 투사 할 수 있습니다 각 시점에서 이미지 여러 섹션에 좋습니다. 하부 측실에 표본을 이미지 하방 전위 드리프트를 피하기 위해 다른 방법 일 수있다. 플라즈마는 시편을 안정화 할 수있다, 따라서 외부 감싸는 층 (EVL, 주피) (31)에 충실 것 같은 플라즈마 혈전은 드리프트를 방지하는 데 유용 할 수 있습니다. 그러나, 이것은 물론 긴 유생 지브라 피쉬가 유생 건강 또는 지느러미 재생을 방해하지 않고 혈장 응고 유지 될 수있는 방법으로, 테스트를 할 필요가있다. 우리 영화가 개별 섹션을 이용하여 조립 한 (26 μm의)이미징 절차를 수행하는 동안 핀의 잠재적 인 Z-드리프트를 차지 핀 (~ 10 μm의)과의 전체 두께를 덮여 기록 Z-스택,의. 3-D 정보를 유지하기 위해, 단일 이미지로 Z-스택을 투영하는 것도 가능하다. 이것은 화상의 흐림이 발생할 수 있기 때문에, 브라이트 컨벌루션은 바람직 할 수있다. 이러한 Deconvolve 또는 Autoquant X3와 같은 소프트웨어가 이러한 목적으로 사용될 수있다. 대안 적으로, (Tadrous 33에 기재되어 있음)은 수학적 알고리즘 높은 신호 대 잡음비 (SNR)의 점 - 확산 함수를 얻기 위해 적용될 수있다. 높은 SNR을 얻기 시야 디컨 볼 루션의 주요 장애물 중 하나를 나타냅니다. 이 방법은 높은 콘트라스트와 얇은 샘플 두께가 필요하지만, 아마도 인해 감소 폭 꼬리 지느러미의 이미지에 적합 할 것입니다. 제시된 촬상 방법의 명백한 이점은 CCD 카메라를 갖춘 어떤 실체에 빠르게 적응할 수 있다는D 경과 소프트웨어 및 저비용 대안 고가 촛점 이미징 시스템을 제공한다. 이 방법은 세포 검출 용 형광을 이용하지 않는 반면, 셔터 제어 및 사후 컨벌루션 이미징 소프트웨어 (34)를위한 자동화 된 시스템을 이용하여 이러한 애플리케이션을 위해 확장 될 수있다. 이는 더 긴 시간주기에 걸쳐 단일 세포 또는 세포 내 해상도 상처 재생 및 수리 과정을 관찰 할 수 있도록한다. 광학 선명도와 쉽게 배아와 애벌레 제브라 피쉬와 함께 처리 할 수​​ 있으며, 어떤 실체 현미경이 방법의 적응성은 교실에서 기본 척추 생물학을 가르치고에 적합합니다. 이 방법은 조직 수리 및 재생의 기초가되는 기본적인 생물학적 과정의 더 나은 이해를 학생들에게 제공 할 수 있습니다. 비슷한 방법으로 촬영 된 다른 생물학적 과정은 제브라 피쉬 배아 발달 23,34 심장이다기능 (미 출판). 이 방법은 유전자 및 약물 학적으로 조작 된 유충의 모니터링 상처 수리 및 재생을위한 가능성을 제공합니다.

손상 후 조직 복구 과정을 조직화하는 유기체의 능력은 생존에 결정적이다 1. 모든 동물은 상처를 치유할 수 있는 능력을 가지고 있지만, 조직이 재생되는 정도는 종에 따라 크게 다르다. 제브라피시(zebrafish), 도롱뇽, 개구리 올챙이와 같은 척추동물은 부속지, 눈의 일부, 심장, 중추신경계 등 잃어버린 조직을 재생하는 놀라운 능력을 가지고 있다 2-4. 아프리카 가시쥐와 토끼와 같은 포유류 종은 귓바퀴 5-7에 있는 구멍을 재생할 수 있으며, 인간과 쥐는 태아와 청소년기 8-12단계에서 손가락 끝과 간의 일부를 재생합니다. 특정 종이 다른 종보다 조직을 더 효과적으로 재생하는 이유와 방법은 아직 잘 이해되지 않았지만, 유사한 유전 경로의 존재는 이러한 메커니즘이 큰 재생 잠재력이 없는 종에서 휴면 상태일 수 있음을 시사합니다 13,14. 따라서 만족스러운 재생 결과를 가진 종의 조직 복구 및 재생 메커니즘을 설명하는 것은 인간의 재생에 도움이 될 것입니다.
우리는 시간 경과 명시야 입체 현미경으로 재생을 보여주기 위한 패러다임으로 유충 제브라피시 꼬리 지느러미를 선택했습니다. 제브라피시 유충 꼬리 지느러미는 내측에 위치한 중간엽 세포를 둘러싸고 있는 피부에 신경을 공급하는 체성 감각 축삭돌기가 있는 2층의 접힌 상피로 구성된 더 복잡한 성체 구조에 비해 해부학적으로 단순합니다 15. 해부학적 차이에도 불구하고, 유충 꼬리 지느러미 재생은 분자 서명과 성장 반응 측면에서 성체 지느러미 재생과 다소 비슷합니다 16,17. 성충 지느러미와 비교했을 때, 유충 꼬리 지느러미 재생을 영상화하는 것은 다음과 같은 몇 가지 장점이 있습니다: 1) 유충 지느러미 재생은 단 2-3일 이내에 완료됩니다 16, 2) 유충은 저융점 아가로스에 장착할 수 있으며, 3) 유충은 난황낭의 존재로 인해 수정 후 ~ 5일(DPF)까지 먹이를 필요로 하지 않습니다. 따라서 제브라피시 유충은 생체 내에서 조직 복구 역학을 관찰하는 데 이상적입니다.
제시된 방법을 사용하면 지느러미 재생의 초기 과정의 기초가 되는 상세한 역학을 캡처할 수 있습니다. 많은 연구에서 형광 기반 컨포칼 현미경을 사용하여 배아 및 유충 제브라피시의 세포 및 세포 내 생물학적 과정을 연구했습니다. 그러나 정교한 컨포칼 이미징 설정은 모든 사람이 접근할 수 있는 것은 아니며 다른 이미징 기술에 비해 매우 비쌉니다. 이와는 대조적으로, 제시된 방법론은 Axiovision 소프트웨어와 타임 랩스 모듈이 장착된 Discovery V12 실체 현미경을 사용하므로 조직 거동을 검사하기 위해 값비싼 이미징 장비에 대한 보다 저렴한 대안을 제공합니다. 우리는 이 방법이 최소한의 비용으로 높은 시간 해상도로 조직 재생을 이미징하는 데 활용될 수 있음을 보여줍니다. 이 방법의 함의는 기초 생물학을 넘어 장기 배양을 사용한 포유류 재생 연구를 발전시키고 약리학 및 유전자 스크리닝을 통한 치료 개발을 위해 확장될 수 있으며 교실 환경에서 교육 도구로 사용될 수 있습니다.

<table><tbody><tr><td colspan="4">Reagents</td></tr><tr><td>Bullseye Agarose</td><td>MidSci</td><td>BE-GCA500</td><td></td></tr><tr><td>저용융 아가로스</td><td>Fisher BioReagents</td><td>BP1360-100</td><td></td></tr><tr><td>1-phenyl-2-thiourea</td><td>Alfa Aesar</td><td>L06690</td><td></td></tr><tr><td>인스턴트 오션 수족관 소금</td><td>애완 동물 가게</td><td></td><td></td></tr><tr><td>메틸렌 블루(0.1% 용액)</td><td>시그마</td><td>M9140</td><td></td></tr><tr><td>트리카인(에틸 3-아미노벤조에이트 메탄설포네이트)</td><td>시그마-알드리치</td><td>E10505</td><td></td></tr><tr><td>2-페녹시에탄올</td><td>시그마-알드리치</td><td>77699</td><td></td></tr><tr><td>페트리 접시 35 x 15 mm</td><td>BD 팔콘</td><td>351008</td><td></td></tr><tr><td>페트리 접시 60 x 15 mm</td><td>BD 팔콘</td><td>351007</td><td></td></tr><tr><td>페트리 접시 100 x 25 mm</td><td>BD 팔콘</td><td>351013</td><td></td></tr><tr><td>5.75 인치 boroschillate 유리 피펫</td><td>Fisher</td><td></td><td></td></tr><tr><td>35mm 유리 상단 유리 바닥 접시 (유리 : 0.085-0.115mm)</td> <td>MatTek Corporation</td><td>D35-20-0-TOP</td><td></td></tr><tr><td>Superfrost / Plus 현미경 슬라이드</td><td>Fisherbrand</td><td>12-550-15</td><td></td></tr><tr><td>유리 커버 슬립</td><td>전자 현미경 서비스</td><td>72191-75</td><td></td></tr><tr><td>유리 커버 슬립</td><td>Warner Instruments</td><td>CS-18R15</td><td></td></tr><tr><td>Phifer Phiferglass 곤충 스크린 숯 - 48"</td><td>Home Depot</td><td></td><td></td></tr><tr><td>고진공 그리스</td><td>Dow Corning</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Microloader 피펫 팁 20 &마이크로; l</td><td>Eppendorf</td><td>930001007</td><td></td></tr><tr><td>Fine Scissors - Sharply Angled Up</td><td>Fine Science Tools</td><td>14037-10</td><td></td></tr><tr><td>3 ml Luer-Lok&trade; 일회용 주사기&nbsp;</td><td>BD</td><td>309657</td><td></td></tr><tr><td>60 ml Luer-Lok&trade; 일회용 주사기</td><td>BD</td><td>309653</td><td></td></tr><tr><td>23 G 주사기 바늘</td><td>BD</td><td>305145</td><td></td></tr><tr><td>Dumont #5 펜치</td><td>파인 사이언스 도구</td><td>11295-00</td><td></td></tr><tr><td colspan="4">Equipment</td></tr><tr><td>LabDoctor Mini Dry Bath</td><td>MidSci</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Discovery.V12 복합 현미경&nbsp;</td><td>자이스</td><td></td><td></td></tr><tr><td>플랜 Apo S 3.5X 대물</td><td>자이스</td><td></td><td></td></tr><tr><td>AxioCam MRm&nbsp;</td><td>Zeiss</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Axiovision 소프트웨어, 릴리스 4.8.2SP1 (12-2011)</td><td>Zeiss</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

시간 경과 브라이트 실체 현미경으로 zebrafish의 애벌레에서 조직 복구를 캡처

Capturing Tissue Repair in Zebrafish Larvae with Time-lapse Brightfield Stereomicroscopy

제브라피시 유충 꼬리 지느러미는 미분화 중간엽을 둘러싸고 있는 두 개의 피부층으로 구성된 유충 지느러미 주름의 간단한 구조와 유충 꼬리 지느러미가 2-3일 이내에 빠르게 재생되기 때문에 조직 재생을 연구하는 데 이상적입니다. 이 시스템을 사용하여 타임랩스 비디오 명시야 입체 현미경으로 절단된 꼬리 지느러미의 수리 역학을 캡처하는 방법을 보여줍니다. 우리는 지느러미 절단이 절단 상처의 수축과 상처 가장자리 주변의 세포 압출을 유발하여 후속 제거로 이어진다는 것을 입증합니다. 지느러미 재생은 짧은 지연 후 근위에서 원위 방향으로 진행됩니다. 또한 유충의 발달 성장은 모든 단계에서 관찰 될 수 있습니다. 제시된 방법은 간단한 현미경 설정에서 지느러미 발달 및 성장과 같은 전체 조직 규모의 거동을 관찰하고 분석할 수 있는 기회를 제공하며, 이는 타임 랩스 기능이 있는 모든 실체 현미경에 쉽게 적용할 수 있습니다.

제시된 기술은 절단에 대한 응답으로 조직의 수리 역학을 규명하는 것이 적합하다. 영화는 지느러미 절단 처음에 존재하는 액틴 마이 오신 케이블을 통해 수축을 특징으로하는 지갑 문자열 효과, 트리거 것을 보여 28 핀을 배 (그림 5를, B). 부수적으로, 세포는 상처 (동영상 참조)에서 압출된다. 수축 따라서 가능성이 세포 사멸을 받아야하는 운명 세포를 추방 할 수있는 수단이 될 수있다. 우리의 결과는 더 지느러미 재생은 약 14 시간 포스트 절단 될 때까지 시작하지 않는 반면 (그림 5C 절단 다음 36 시간의 시간 과정을 통해 지느러미 길이와 면적으로 측정 된 유충의 발육 성장이 독립적으로 재생 (동영상)가 발생 것을 보여 , D). 1.5 일 후 총 회생 핀 성장은 원래 핀 길이 (도 5E)의 약 60 %였다. 함께 찍은, 이러한 결과는 절단의 TR을 보여<html> 핀 수축, 상처, 및 시간적으로 지연된 응답에서 재생 세포의 압출 iggers. 압출 가능성 세포 세포 사멸을 겪는 향하는 동안, 이러한 세포의 성질은 더 명확하게 될 필요가있다. <img alt="그림 1" src="/files/ftp_upload/52654/52654fig1.jpg" /> 그림 1. 이미징 챔버 링 어셈블리 표시됨 (A)은 실리콘 그리스로 커버 슬립에 부착되는 플라스틱 링이다. 플라스틱 메쉬 실리콘 그리스를 4 개의 작은 도트와 챔버의 내부에 부착된다. (B) 장착 유충을 포함하는 챔버 Tricaine 용액으로 채우고 유리 슬라이드는 상부에 부착된다. (C) 2 일 된 애벌레 (화살표) 메쉬 관련하여 크기를 묘사하기 위해 더 높은 배율로 표시됩니다 탑재.&quot;_blank&quot;&gt;이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오. <img alt="그림 2" src="/files/ftp_upload/52654/52654fig2.jpg" /> 그림 2. 영상 실 어셈블리 배양 접시에서 만든. 표시됨 (A)는 유리 커버 슬립에 부착 된 플라스틱 메쉬 상업용 유리 상부 바닥 유리 페트리 접시. 표시됨 (B)은 뚜껑 및 실리콘 그리스로 외부에서 부착 된 커버 슬립에 뚫린 구멍에 자기 구성 페트리 접시 챔버이다. 메쉬 및 유충 Tricaine 용액을 포함하는 챔버 내부에 장착된다. 챔버를 밀봉하기 위해, 실리콘 그리스가 바닥 챔버와 연결된 상단 뚜껑의 상단, 외부 테두리에 적용된다. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52654/52654fig2large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> <iMG ALT = &quot;그림 3&quot;SRC = &quot;/ 파일 / ftp_upload / 52654 / 52654fig3.jpg&quot;/&gt; 절단 및 이미징을위한 유충의 설치 3. 계획을 그림. (A) 절단의 경우, 아가로 오스 코팅 된 배양 접시에 마취 유충을 놓고 주사기 바늘로 꼬리 지느러미를 절단. 취부 (B)가, 42 ° C 액체 아가로 채워진 1.5 ㎖의 튜브에 전송 피펫으로 유충을 전송하고 촬상 챔버로의 유충을 포함하는 드롭 피펫 물고기의 방향 및 배아 배지로 오스 고형화 커버. (C) 출장 microloader 피펫 팁 또는 유사한 도구를 사용하여 꼬리 지느러미에서 아가로 오스를 긁어와 신선한 매체와 배아 매체를 교체합니다. (D) 영상 실체 현미경 아래 꼬리 지느러미. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52654/52654fig3large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> 4. 자기 구성 가열 배양 챔버를 그림. 표시됨 (AC)는 판지, 버블 랩과 벨크로로 만든 가열 배양 챔버입니다. (원래 닭고기 달걀 배양을 위해 설계) 유선 돔 히터 알루미늄 테이프를 사용하여 챔버에 부착되어 있습니다. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52654/52654fig4large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> <img alt="그림 5" src="/files/ftp_upload/52654/52654fig5.jpg" /> 5. 핀 재생 역학 그림. 이용 꼬리 지느러미 절단 분석과 정량 방법 (A) 방식은 핀 길이 (빨간색 화살표)과 지역 (지느러미의 붉은 개요)를 결정합니다. (B) 꼬리 지느러미 절단는 처음에 지느러미의 수축, REGE 다음 트리거nerative 조직 파생물. 가로 치수의 증가에 의해 입증되는 바와 같이, 핀은 또한 발달 성장을 겪는다. 표시됨 (C)는 14 ~ 고전력 증폭기에 선형 회생 성장 초기 계시 시간의 함수로서 핀 길이이다. 핀 영역 (D) 부량은 초기에 핀의 수축에 기인 할 수있는 크기로 감소 보여준다. ~ 14 시간 후, 선형 속도로 핀 크기가 증가. 절단하기 전에 지느러미 길이의 36 시간 후 (E) 비교 ~ 60 %의 재성장을 보여줍니다. 스케일 바 : 100 μm의 약어 : 프리 앰프, 미리 절단; 시간은 절단, 고전력 증폭기를 게시; 회생, 재생; 앰프, 절단는 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52654/52654fig5large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52654/movie1.mp4">영화</a> . 36 시간 경과 위에 핀 재생시간. 표시됨은 재생의 과정 동안 2.5 일 이전 유충의 꼬리 지느러미입니다. 시작 30 분 후 절단 회생 성장은 3.5 배 대물 렌즈를 사용하여 실체 현미경에 30 분 간격으로 이미징된다.

명시야 기반 입체 현미경을 사용하여 전체 조직 규모에서 제브라피시 유충 꼬리 지느러미 재생의 역학을 캡처하기 위한 프로토콜을 제시합니다. 이 기술을 사용하면 단일 세포 해상도로 재생 역학을 캡처할 수 있습니다. 이 방법론은 CCD 카메라와 타임랩스 소프트웨어가 장착된 모든 실체현미경에 적용할 수 있습니다.

시간 경과 브라이트 실체 현미경으로 Zebrafish의 애벌레에서 조직 복구를 캡처

The zebrafish larval tail fin is ideal for studying tissue regeneration due to the simple architecture of the larval fin-fold, which comprises of two ...

본 영상에서는 타임랩스 이미징을 통해 스테레오 현미경으로 조직 복구 역학을 포착하는 방법을 시연합니다. 이를 위해 먼저 제브라피시 배아를 꼬리지느러미가 절단 수술을 용이하게 수행할 수 있을 만큼 충분히 발달한 유생 단계까지 성장시킵니다. 이는 일반적으로 부화 후에 이루어집니다.두 번째 단계는 주사바늘을 사용하여 꼬리지느러미를 절단하는 것입니다. 세 번째 단계는 유생을 이미징 챔버에 고정하고 실체 현미경으로 타임랩스 영상을 촬영하는 것입니다. 마지막 단계는 Bit Plains S 또는 오픈 소스 소프트웨어인 Image J와 같은 이미지 분석 소프트웨어를 활용하여 꼬리지느러미 재생 정도를 정량화하는 것입니다. 안녕하세요. 저희 연구실에서는 제브라피시를 모델로 하여 상처 치유와 조직 재생을 연구하고 있습니다.오늘은 명시야 스테레오 현미경을 사용하여 이러한 과정의 역동성을 실시간으로 포착하는 방법을 시연하겠습니다. 제브라피시 유생의 꼬리 지느러미를 이용하여 조직 재생의 초기 과정을 포착하는 방법을 보여드리겠습니다. 본 영상 기법은 단순한 현미경 설정에서도 전체 조직 규모의 거동을 관찰하고 분석할 수 있는 기회를 제공하며, 타임랩스 기능이 갖춰진 모든 스테레오 현미경에 쉽게 적용할 수 있습니다.이제 시작하겠습니다. 제브라피쉬를 유생 단계까지 사육합니다. 꼬리 지느러미의 상처 치유는 부화 이후 단계에서 가장 잘 관찰할 수 있는데, 이 시기에는 꼬리 지느러미가 충분히 발달하여 척수나 다른 조직을 손상시키지 않고도 쉽게 절단술을 수행할 수 있기 때문입니다.인접한 곳에서 알을 수집하여 28 °C 인큐베이터에서 하룻밤 동안 배양합니다. 다음 날 아침, 죽은 배아를 제거하고 0.03% instant ocean aquarium salt 용액이 포함된 배아 배지로 헹굽니다. 필요한 경우, 유생의 색소 침착을 방지하기 위해 0.003% pheno thyroid가 포함된 배아 배지를 디쉬에 추가합니다.본 시연에서는 배아가 인큐베이터 내에서 수정 후 2일까지 발달하여 유충이 난막에서 부화할 때까지 기다린 후 이미징 챔버를 준비합니다. 이 단계에서는 이미징 챔버를 제작하는 두 가지 방법을 제시합니다. 첫 번째 방법은 일반 철물점에서 구입할 수 있는 음용수 등급의 PVC 또는 테플론 튜브로 이미징 챔버를 제작하는 것입니다.커버슬립 부착에 적합한 크기인 외경 25 millimeter 및 내경 20 millimeter의 튜빙을 사용하십시오. 튜빙을 가급적 균일하게 10 millimeter 두께의 링 모양으로 자릅니다. 사포를 사용하여 가장자리를 매끄럽게 다듬은 후, 물과 에탄올로 헹굽니다.챔버를 공기 중에서 건조시키십시오. 두 번째 방법은 기성품인 매트 테크(matte tech) 유리 바닥 및 유리 상단 이미징 챔버를 사용하거나, 작은 페트리 접시로 이미징 챔버를 직접 제작하는 것입니다. 이미징 챔버를 직접 제작하려면 35 또는 50 mm 페트리 접시를 사용하고 뚜껑에 10 mm 구멍을 뚫으십시오.다음으로 커버슬립 외부에 실리콘 그리스를 바르고, 마운팅 아가로스가 단단히 부착되어 있도록 깨끗한 피펫 팁을 사용하여 25 by 25 millimeter 크기의 정사각형 또는 원형 커버슬립을 외부에 부착합니다. 이미징 과정 중에 커버슬립 내부에 미세 플라스틱 메시를 부착합니다. 이는 메시를 내부 링 직경 크기로 자른 후, 메시 중앙에 유충 크기의 약 3배 정도 되는 작은 직사각형 모양으로 절개하여 수행할 수 있습니다.손상 전 유충의 마운팅 및 이미징 단계입니다. 이 단계는 추후 지느러미 재생 정도를 정량화하는 데 적합합니다. 먼저, 표본 고정을 위해 배아 배지(embryo medium)에 0.5% low melt agarose 용액을 준비하고, 42 °C로 유지된 agarose 용액에 마취된 유충을 옮깁니다.가열 블록 내에서, 애벌레를 agros 한 방울과 함께 작은 페트리 접시에 옮기고 애벌레를 옆으로 눕혀 배치합니다. 캡이 씌워진 마이크로 로더 팁을 사용하여 agros를 응고시킨 후 trica 용액을 추가합니다. 이후에 사용할 실체 현미경으로 이동합니다.타임랩스 이미징을 위해, 본 시연에서는 zeiss discovery V 12 실체 현미경과 Axio vision 소프트웨어를 사용합니다. 먼저, 이미징에 적합한 대물렌즈와 배율을 선택하여 현미경 설정을 조정하십시오. 그런 다음 Axio vision 소프트웨어 내 현미경 설정에서 카메라 검출 모드를 선택하십시오.라이브 모드를 선택하여 화면에서 유충을 확인합니다. 속성 창을 열어 밝기를 자동으로 감지하거나 현미경 투과조명 베이스에서 대비를 수동으로 조절하십시오. 유충을 시야 밖으로 이동시킨 후 쉐이딩 보정 기능을 선택합니다.배경 소음을 최소화하기 위해 유충을 다시 시야 내에 배치하고 스냅샷을 촬영하십시오. 상처를 입히는 준비를 위해 이미지를 저장하십시오. 먼저 머리에서 에어로졸을 긁어내어 에어로졸로부터 유충을 제거하십시오.이렇게 하면 머리 부분을 나머지 aeros 절단 분석법에서 부드럽게 당겨 유충이 aeros에서 빠져나올 수 있게 됩니다. instant ocean 염수 용액을 사용하여 1.5% aeros 플레이트를 준비합니다. 실체 현미경 하에서 유충을 굳어진 aros 위에 옆으로 놓은 다음, 23 gauge 주사 바늘을 사용하여 꼬리 지느러미의 원위부를 절단합니다.타임랩스 이미징을 위한 유충 고정. 두 가지 타임랩스 이미징 방법을 제시하겠습니다. 첫 번째 방법에서는 유충을 고정한 후 챔버 링(chamber ring) 내에서 유충을 이미징하는 방법을 보여드리겠습니다.캡이 씌워진 마이크로 로더 피펫 팁을 사용하여 원위 꼬리 지느러미 주변에 응고된 아가로스를 조심스럽게 긁어냅니다. 이는 적절한 상처 치유 또는 조직 재생을 가능하게 합니다. 조직을 고정하지 않은 상태에서 지느러미에 반복적으로 손상을 주지 않도록 주의하십시오. 이 과정 중에 오래된 용액을 교체하여 이미징 절차를 방해하는 불필요한 잔해물을 챔버에서 제거하십시오.새로운 Trica 용액을 사용하여 챔버 상단에 실리콘 그리스를 도포하고, 챔버 링을 새로운 Trica 용액으로 채웁니다. 유리 슬라이드를 상단에 덮어 챔버를 밀폐하는 방법 두 가지를 적용합니다. 이 방법에서는 유리 덮개가 있는 페트리 접시에서 유충을 이미징하는 방법을 보여드리겠습니다.유충을 커버 슬립이 있는 뚜껑 위에 고정하고, 뚜껑을 trica 용액으로 채웁니다. 꼬리지느러미에서 agros를 긁어냅니다.다음으로, 하단 챔버의 상단 테두리에 실리콘 그리스를 바르고 챔버를 trica 용액으로 채웁니다. 뚜껑에 있는 trica 용액을 조심스럽게 따라낸 후, 뚜껑을 뒤집어 유충을 하단 챔버의 trica 용액에 담급니다. 이때 약간의 각도를 주어 진행할 수 있습니다. 기포가 생기는 것을 방지하기 위해 챔버를 실리콘 그리스로 밀봉하며, 28 °C의 적정 온도가 유지되는지 확인하기 위해 타임랩스 이미징을 수행합니다.단열을 위한 판지 에어캡으로 만든 가열 배양 챔버와 열원으로 사용하는 닭알 부화용 유선 돔을 조립합니다. 현미경 주변에 배양 챔버를 배치하고 온도를 28 °C로 조절합니다. 약 10~20분 동안 또는 온도가 안정될 때까지 가열 배양 챔버의 앞면을 열고 이미징 챔버를 현미경 위에 배치합니다.커버 슬립이 대물렌즈를 향해 위쪽을 보도록 세웁니다. 촬영 과정 동안 지느러미의 성장과 재생 과정을 포착할 수 있도록, 시야의 3분의 2가 비어 있는 상태가 되게끔 유생의 지느러미를 배치합니다. 소프트웨어의 60 다차원 획득(multi-dimensional acquisition) 창에서 유생의 위치를 다시 조정할 필요 없이, Zack 탭의 슬라이스 모드에서 Z stack 및 타임랩스(time-lapse) 옵션을 선택합니다.슬라이스 두께를 선택한 다음 시작/정지 모드를 선택하십시오. 타임랩스 표에서 스택의 상단 및 하단 위치를 정의하십시오. 간격과 동영상 길이를 선택한 후 시작 버튼을 눌러 녹화를 시작하십시오.첫 1시간 이내에 유충의 X축 및 Z축 경계를 확인하십시오. 성장이나 아가로스 조성의 차이로 인해 유충의 위치가 변했을 수 있으므로, 필요한 경우 시간이 지남에 따라 유충의 위치를 다시 조정하십시오. 타임랩스 녹화가 끝나면 파일을 저장하고 후처리 및 정량화 단계의 데이터 분석을 진행하십시오.이 섹션에서는 imas 방법 1을 통해 생성된 데이터를 분석하는 몇 가지 방법에 대해 논의합니다. 먼저, imas 소프트웨어를 사용하여 지느러미 성장을 결정하는 방법에 대해 설명하겠습니다. Amaris 소프트웨어에서 타임랩스 영상을 열고 파일을 MRS 파일 형식으로 저장하십시오.소프트웨어 성능을 향상시키려면, 직교 뷰(orthogonal view)를 선택하여 영상을 투영 방식으로 표시하십시오. 지느러미 길이를 측정하려면, 왼쪽 상단 툴바에서 새로운 측정 지점 추가(add new measurement points) 옵션을 선택하십시오. 표시할 통계 값 설정(configure list of visible statistics value) 목록에서, 라인 모드에서 표시할 통계 값을 선택하십시오.설정 탭에서 라벨 속성의 쌍(pairs)을 선택하고, 측정선 옆에 점 A와 B 사이의 거리를 표시하기 위해 이름(name)과 거리(distance)를 선택하십시오. 편집 모드로 전환한 후 Shift 버튼을 누른 상태에서 원위부 지느러미의 첫 번째 점을 선택합니다. 그런 다음 동일한 설정을 사용하여 노 어코드(no accord)의 원위단에 있는 두 번째 점을 선택하십시오. 거리가 이미지에 표시되며, 통계 탭에서 내보낼 수 있습니다.우측 하단의 디스크 버튼 'export all'을 선택하여 모두 내보냅니다. 측정 지점 옵션 외에도, 슬라이스 뷰어의 슬라이스 뷰 모드를 사용하여 거리를 측정할 수 있습니다. 원하는 위치로 스크롤한 후 마우스 왼쪽 버튼으로 첫 번째 지점과 두 번째 지점을 클릭하면 거리가 표시됩니다.하지만 이 옵션은 데이터 내보내기를 지원하지 않습니다. 이제 오픈 소스 소프트웨어인 Image J를 사용하여 지느러미 면적을 결정하는 방법을 간략하게 설명하겠습니다. Zeiss Axio vision 파일 형식을 인식하는 플러그인을 사용하여 Image J에서 타임랩스(TimeLapse) 영상을 엽니다.또는 압축되지 않은 TIFF 시퀀스를 불러오십시오. 이렇게 하면 파일에 정보가 보존되어 있지 않더라도 'analyze select set scale'에서 거리와 픽셀 및 기지의 거리를 정의하여 파일 정보가 저장되도록 할 수 있습니다. 또한, 단위 길이를 micrometers로 설정하십시오.툴바에서 자유 선택 도구(free hand selection tool)를 선택하고, 마우스 왼쪽 버튼을 누른 상태로 상처의 외곽선을 따라 그립니다. 상처의 가장자리를 따라 그리는 동안분석(analyze) 메뉴 아래의 측정(measure) 옵션을 클릭하여 상처 부위의 대표 결과 면적을 표시합니다. 지느러미 절단 후 36시간 동안 부분적인 재생이 일어납니다. 지느러미 면적 측정 결과, 절단 후 약 14시간까지는 세포 사멸로 인해 지느러미 조직이 감소하다가, 이후 얇은 재생 길이가 나타나는 것을 확인할 수 있습니다.절단된 지느러미와 재생된 지느러미를 비교하면 36시간 이내에 지느러미 길이가 2.48배 증가한 것을 볼 수 있습니다. 절단은 초기에 지느러미 주름 세포에서 유출되어 절단 상처 부위에 나타났다가 이후 사라지는 액틴-미오신 케이블의 수축을 특징으로 하는 퍼스스트링 효과(purse string effect)를 유발합니다. 초기에는 몸길이가 증가하지만 지느러미는 재생되지 않습니다.초기 단계 동안, 절단 후 약 14시간이 지나면 지느러미가 근위부에서 원위부 방향으로 자라나기 시작합니다. 요약하자면, 본 연구 결과는 절단이 상처 수축을 유발하며, 이것이 세포 압출을 촉진하는 데 필수적일 수 있음을 보여줍니다.과정이 완료되면 지느러미의 재생이 시작됩니다. 발달 단계의 지느러미 성장이 일어나는 것으로 보입니다. 이 과정과는 별개로, 본 연구에서는 살아있는 제브라피시 유생을 이용하여 조직 수복의 역동적인 과정을 관찰할 수 있는 방법을 제시하였습니다.본 절차는 결과물을 최적화하기 위해 당사가 검증한 특정 요소들을 필요로 합니다. 제시된 이미징 방법의 분명한 장점은 CCD 카메라와 TimeLapse 소프트웨어가 장착된 모든 스테레오 현미경에 쉽게 적용할 수 있다는 점입니다. 또한, 이는 더 고가인 공초점 이미징 시스템을 대체할 수 있는 저비용의 대안을 제공합니다.본 방법은 형광이나 세포 검출을 사용하지 않지만, 파쇄 제어 자동화 시스템과 이미지 획득 후 디컨볼루션(deconvolution) 소프트웨어를 활용함으로써 이러한 응용 분야로 확장할 수 있으며, 이를 통해 세포하 해상도로 상처 치유 및 재생 과정을 더욱 상세히 관찰할 수 있습니다. 이 방법은 학생들에게 조직 수복 및 재생의 근간이 되는 기초 생물학적 과정에 대한 더 깊은 이해를 제공할 수 있습니다. 제브라피시 배아와 유어의 광학적 투명성, 사용의 용이성, 그리고 모든 실체 현미경에 적용 가능한 시스템의 적응성 덕분에 강의실 환경에서 기초 척추동물 생물학을 교육하기에 적합합니다.

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Research

연구

JoVE Journal

Developmental Biology

발생생물학

이 비디오에서는 여러 가지 빛깔의 공촛점 시간 저속 이미징 및 타겟 세포 절제에 대한 기술이 제공됩니다. 시간 저속 영상은 관심의 여러 세포 유형의 동작을 모니터하는 데...

트렌스 제닉 Zebrafish의 여러 가지 빛깔의 시간 저속 영상 : 타겟의 연결을 세포 절제에 의해 활성화 떠올리 망막 줄기 세포

출처: Volpe, B. A.,  et al. 제브라피시 신경마스트 세포에서 컨포칼 현미경 기반 레이저 절제 및 재생 분석. J. Vis. 특급{{TAG_ 31}} (2020) 이 비디오는 컨포칼 현미경을 사용하여 제브라피쉬의 신경마스트 간 세포 회수를 모니터링하고 타임 랩스 형광 이미징을 통해 세포 사멸 및 복구를 추적하는 방법을 보여줍니다.

컨포칼 현미경을 사용한 제브라피시의 레이저 절제 신경마스트 세포의 회복 모니터링

제브라 피쉬의 개발은 배아가 낮은 농도의 아가로 오스와 광학적으로 명확한 폴리머 튜브에 포함 된 빛 시트 현미경과 일에 따라 할 수있다.

다층 제브라 피쉬의 장기 라이트 시트 현미경에 장착

제브라 피쉬 배아 조직 특정 형광의 반 자동화 이미징을위한 프로토콜은 여기에 설명한다.

Zebrafish의 태아의 조직 특이 형광의 반 자동화 이미징

여기에 기재된 방법은 초점 및 평면 드리프트를 보정하는 광학 절편 및 재조정 간단한 전략을 수행 할 해부 현미경 형광을 사용하여 제브라 피쉬 배아 장기 발전 경과 분석을 허용한다.

해부 현미경을 사용하여 시간 경과 영상과 Zebrafish의 신장 개발의 분석 광학 단면에 대한 장착

이 원고는 zWEDGI에 설명 합니다 (zebrafish Wounding 및 성장 및 이미징 함정 장치)는 compartmentalized 장치 방향 및 zebrafish 애벌레를 억제 하도록 설계 되었습니다. 디자인 꼬리 transection 및 상처 치유와 재생의 고해상도 형광 현미경 이미지의 장기 수집을 허용합니다.

Zebrafish 애벌레의 향상 된 실험적인 조작에 대 한 장기 라이브 이미징 장치

여기서 우리는 제브라피쉬 호중구에서 화학유인성 수용체 역학의 라이브 이미징 및 정량적 분석을 수행하는 프로토콜을 설명합니다.

상처 반응 중 제브라피쉬 호중구의 케모카인 수용체의 라이브 이미징

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이 프로토콜은 광시트 이미징을 활용하여 제브라피시 유충의 심장 수축 기능을 조사하고 세포 추적 및 대화형 분석을 통해 심장 역학에 대한 통찰력을 얻습니다.

제브라피시 심장 수축의 4D 광시트 이미징

폴리에틸렌 테레프탈레이트(PET) 적층을 사용하여 미세유체 장치를 제조하는 혁신적인 방법은 여러 개의 살아있는 제브라피시 배아를 포획하고 이미징하는 비용과 복잡성을 크게 줄여줍니다.

저비용 폴리에틸렌 테레프탈레이트 라미네이션 미세유체역학(Low-cost Polyethylene Terephthalate Lamination Microfluidics) 설계로 멀티플렉스 제브라피시 이미징

배우세요 제브라피시 꼬리 지느러미 재생을 입체 현미경으로 실시간 관찰하는 방법을. Danio rerio 애벌레를 이용한 이 기술은 조직 복구 역학을 연구하는 데 활용됩니다.

시간 경과 브라이트 실체 현미경으로 Zebrafish의 애벌레에서 조직 복구를 캡처

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