August 20th, 2018
선법 myograph 혈관 부드러운 근육 기능과 화면 새로운 약물을 조사 하는 데 사용 됩니다. 우리 보고 마우스 mesenteric 동맥의 isometric 수축 측정 및 혈관 평활 근의 새로운 relaxants 심사에 대 한 자세한 프로토콜.
우리 연구실은 수년 동안 혈관 평활근 수축성을 측정하기 위해 와이어 근 그래프 방법을 사용해 왔습니다. 우리는 이 기술을 사용하여 평활근 수축의 메커니즘을 연구합니다. 우리는 이 방법을 사용하여 고혈압 치료를 위한 새로운 약물을 탐색합니다.
이 기술의 주요 장점은 용기 세그먼트가 장착 후 최소 4시간 동안 생존하고 높은 칼륨으로 인한 수축성을 여러 번 유지한다는 것입니다. 다중 채널 시스템은 신약에 대한 높은 수준의 치료 스크리닝을 위한 기회를 제공합니다. 안락사된 쥐의 몸을 복부가 위를 향하도록 고정하고 복부를 70% 에탄올로 적십니다.
그런 다음 가위를 사용하여 사타구니에서 복부 정중선을 따라 피부를 자른 후 첫 번째 절개 시작부터 각 다리를 절개합니다. 양쪽 피부를 뒤로 당긴 다음 비슷한 절개를 하여 복막을 엽니다. 그런 다음 가위를 사용하여 식도, 결장 및 기타 결합 조직을 잘라 혈관 조직을 신체에서 공급하여 위장관을 완전히 격리합니다.
HEPES-Tyrode 또는 H-T 용액으로 위장관의 혈액을 헹군 후, 실온에서 장간막 동맥 박리를 위해 분리된 분절을 코팅된 페트리 접시에 옮깁니다. 위, 제주눔, 회장, 맹장을 시계 방향으로 펴고 위와 맹장을 각각 왼쪽과 오른쪽에 고정합니다. 실체 현미경의 투과 광원을 켜고 핀으로 장을 고정하여 절개된 장간막 동맥을 노출시킵니다.
그런 다음 집게로 동맥 주위의 지방 조직을 고정하고 박리 가위로 모든 결합 조직을 잘라 동맥을 조심스럽게 분리합니다. 겸자로 여분의 동맥을 잡고 장간막 동맥 나무를 차가운 칼슘 이온 프리 H-T 용액으로 옮기고 담그십시오. 장간막 아케이드의 장 벽 근위부 동맥의 1.4mm 부분을 잘라내고 두 개의 집게를 사용하여 이 동맥 부분의 양쪽을 조심스럽게 엽니다.
2.5cm 길이의 스테인리스 스틸 와이어 두 조각을 준비하고 같은 접시에 넣습니다. 집게를 사용하여 동맥의 한쪽 끝을 부드럽게 조입니다. 그런 다음 다른 집게를 사용하여 두 개의 와이어를 동맥 내강에 하나씩 조심스럽게 삽입합니다.
전선이 똑바로 유지되고 내피에 닿지 않도록 하십시오. 두 개의 집게를 사용하여 나사산 용기 외부에 두 와이어를 동시에 고정하고 페트리 접시에서 HT 용액으로 채워진 근그래프 챔버로 용기를 조심스럽게 옮깁니다. 챔버의 턱을 나사로 분리하여 장착할 공간을 확보한 다음 두 개의 집게를 사용하여 삽입된 두 와이어 중 하나의 양쪽을 잡고 용기를 턱 틈에 놓습니다.
cl의 양쪽을 감습니다.amp마이크로미터에 연결된 턱의 나사에 와이어를 감습니다. 왼쪽 나사를 시계 방향으로 돌려 고정합니다. 그런 다음 집게를 사용하여 와이어를 곧게 펴십시오.
그런 다음 시계 방향으로 돌려 오른쪽 나사를 고정합니다. 용기가 항상 턱 틈 안에 있는지 확인하되 손상을 방지하기 위해 턱을 만지지 마십시오. 마이크로미터를 사용하여 두 개의 턱을 닫습니다.
두 개의 턱이 충분히 가깝지만 서로 닿지 않는지, 고정되지 않은 와이어가 고정 와이어 위에 있는지 확인하십시오. 오른쪽 집게를 사용하여 힘 변환기에 연결된 턱 모서리에 있는 나사가 풀린 와이어를 조심스럽게 접고 오른쪽 나사를 시계 방향으로 감습니다. 그런 다음 나사를 고정하십시오.
와이어 왼쪽의 풀림과 감기를 반복하고 왼쪽 나사를 고정합니다. 다음으로, 두 턱 사이의 틈이 두 개의 와이어를 수용할 수 있도록 마이크로미터를 조심스럽게 회전하여 용기를 늘리지 않고 턱을 약간 떨어뜨립니다. 그런 다음 집게를 사용하여 마이크로미터 쪽의 와이어를 변환기 쪽에 있는 와이어의 수평면으로 이동합니다.
다른 챔버에 동맥을 장착한 후 모든 챔버를 장비에 연결하고 챔버를 덮습니다. 100% 산소 공급 장치와 온도 프로브를 연결하고 섭씨 37도까지 가열을 시작합니다. 차트 작성 소프트웨어를 엽니다.
시작 버튼을 눌러 녹음을 시작합니다. DMT 메뉴에서 관심 채널을 선택하여 해당 채널에 대한 DMT 정규화 창을 엽니다. 창에 다음 상수 값을 입력합니다.조직 끝점 a1, 0.1; 조직 종말점 a2, 4; 와이어 직경, 40.
그러면 창에 계산된 용기 길이가 1.40mm로 표시됩니다. 해당 조직 챔버의 마이크로미터를 읽습니다. 마이크로미터 판독 상자에 값을 입력하고 Add Point' 버튼을 클릭합니다.
이 값은 X의 초기 값이며, 60초 지연 후 창에는 이 마이크로미터 값에 해당하는 힘과 유효 압력이 표시됩니다. 동시에 마이크로미터 판독 상자가 활성화됩니다. 마이크로미터를 시계 반대 방향으로 돌려 정규화되는 용기를 늘립니다.
마이크로미터 판독 상자에 마이크로미터 값을 입력하고 포인트 추가' 버튼을 클릭합니다. 다시 60초의 지연 시간을 기다립니다. 용기를 IC-1로 늘리는 데 필요한 계산된 마이크로미터 설정인 마이크로미터 X-1 값이 창에 표시될 때까지 용기를 계속 늘리고 마이크로미터 값을 추가합니다.
마이크로미터를 X-one 값으로 설정합니다. 정규화 후 15-20분 동안 챔버의 혈관을 평형화합니다. 평형이 이루어지면 H-T 용액을 5ml의 고칼륨 용액으로 교체하여 10분 동안 수축을 유도하여 고칼륨 용액으로 용기에 챌린지를 합니다.
신선한 고칼륨 용액에서 10분 배양을 반복한 후 5ml의 HT 용액으로 3-4회 세척합니다. 다시 말하지만, 수축을 유도하기 위해 5ml의 고칼륨 용액을 용기에 투여합니다. 5분 후, 0.5마이크로리터의 네오리엔시닌 원액을 챔버에 첨가하여 1마이크로몰 네오리엔시닌의 최종 농도에서 혈관을 이완시킵니다.
몇 분 후 힘이 안정되면 0.5 마이크로 리터의 네오리 엔센닌 원액을 더 첨가하여 농도를 2 마이크로 몰로 높입니다. 매번 1마이크로리터의 원액을 첨가하여 농도를 4, 6, 8 및 10마이크로몰로 증가시켜 용량 반응 곡선을 생성합니다. 정규화 절차 동안 선박은 IC-100의 값에 도달할 때까지 여러 번 늘어났으며 각 늘어난 주기에는 강력한 수축, 빠른 이완 및 60초 내 힘 유지가 포함되었습니다.
높은 칼륨 용액에 의해 유도된 혈관 평활근의 수축은 일반적으로 강건한 단계와 지속적인 단계의 두 단계를 보였습니다. 우리는 다중 와이어 근경사진 시스템을 사용하여 마우스 장간막 동맥의 등척성 수축성을 측정하는 방법을 설명했습니다. 이 방법은 혈관 평활근의 기능을 평가하고 평활근의 이완제를 선별하는 데 사용할 수 있습니다.
이 방법과 다른 방법의 주요 차이점은 장착 단계에 있습니다. 여기에 사용된 이 단계는 수행하기 쉽고 조직이나 장치를 손상시키지 않습니다. 이 절차에 따라 EP 및 Angiotensin II와 같은 다른 자극제도 이 작용제에 민감한 일부 새로운 약물을 찾기 위해 평활근 수축을 자극하는 데 사용할 수 있습니다.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
와이어 마이오그래프 기법은 혈관평활근 수축성을 평가하고 잠재적인 치료제를 스크리닝하는 데 사용됩니다. 이 방법을 통해 평활근 수축 메커니즘을 조사하고 고혈압 치료제를 평가할 수 있습니다.
The wire myograph technique enables precise measurement of vascular smooth muscle contractility, supporting target validation and mechanistic de-risking in hypertension drug discovery. By providing quantitative, reproducible force measurements in disease-relevant mouse mesenteric arteries, the method enhances predictive confidence for screening novel relaxants and assessing therapeutic potential early in the discovery pipeline.
The method fits within the discovery continuum from target validation through lead identification, providing contractility data that informs go/no-go decisions prior to preclinical investment.