Name: 쥐에서 사 여과 속도의 경 피 측정 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-10-21T15:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 25 s
Description: 배우세요 쥐에서 경피 사여과 속도 측정법을 통해 신장 기능을 정밀하게 평가하는 방법을. 마취 없이 의식 있는 상태에서 반복 측정이 가능하여 급성 및 만성 신장 질환 연구에 탁월합니다.

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이 작품에 대 한 신장 질병 (VCKD), 밴 더 빌 트 센터에 의해 지원 되었다 그리고 다음 교부 금에 의해 부분적으로 투자 되었다: 국방부 PR161028 및 R01DK112688 (마크 드 Caestecker)
Ls, 오후 지원 인정 및 MRC, EPSRC BBSRC 자금 영국 재생 의학 플랫폼 "안전 성과 효능, 이미징 기술 허브에 국한"에 의해 BW (미스터/K026739/1).

모든 동물 실험은 영국 및 미국에 현지 지침에 따라 수행 했다. 리버풀 대학에서 실시 하는 실험 영국 동물 (과학적인 절차) 행위 1986에 따라 부여 된 라이센스 하에서 수행 되었다 그리고 리버풀 대학 윤리 위원회에 의해 승인 했다. 밴 더 빌 트 대학 메디컬 센터에서 실시 하는 모든 동물 실험은 밴 더 빌 트 기관 동물 관리 및 사용 위원회에 의해 승인 되었다.
1. 준비 FITC-sinistrin
<ol><li>40 mg/mL FITC sinistrin 버퍼링 하는 인산 염 (PBS)를 준비 합니다. 참고: Aliquots에 저장 될 수-20 ° C 질;에 눈에 띄는 감소와 함께 몇 개월 동안 그러나 여러 freeze-thaw 주기는 피해 야 한다. FITC sinistrin은 빛에 민감한-빛 으로부터 보호 튜브.</li>
	<li>FITC sinistrin 각 마우스에 필요한 볼륨을 계산:<ol>
<li>측정의 매일에 각 마우스 무게.</li>
		<li>권장된 복용량은 그램 체중 당 0.15 mg FITC-sinistrin 이다.</li>
	</ol>
</li>
</ol>2. 마우스 준비
<ol><li>GFR 측정을 진행 하면서 쥐에 대 한 별도 감 금 소를 준비 합니다. 흡수 성 종이 타 올 및 식품의 몇 가지 알 약을 제공 합니다.</li>
</ol>3. 마우스 (GFR 측정 전에 1-2 일)에서 머리카락을 제거합니다.
<ol><li>Anesthetize 3 %isoflurane 마우스 그리고 마우스는 자 고, 일단 유지와 마우스의 호흡 속도 따라 1.5-2 %isoflurane 마 취. 경향이 열 패드에 마우스를 놓습니다.</li>
	<li>마우스의 뒷면의 한쪽에서 모피의 대부분을 제거 하는 모피의 방향에 대하여가 전기 면도기를 사용 합니다. 목 및 갈비뼈에서 뒷 다리의 상단에서 면도.</li>
	<li>목화 꽃 봉 오리 (그림 1A)를 사용 하 여 면도 영역으로 탈모 크림의 얇은 레이어를 적용. 크림 가능한 피부에 가까이 적용 모피의 방향에 대 한 목화 꽃 봉 오리를 이동 합니다.</li>
	<li>면봉과 따뜻한 물 세척 하 여 1-3 분 후 크림을 제거 합니다. 피부 측정 후 매우 빨간색과 염증이 나타납니다 경우 측정을 수행 하지 마십시오 고 탈모 피부 손상을 방지 하려면 72 시간 이내에 반복 되지 않습니다.</li>
</ol>4. 경 피 GFR 모니터 준비
<ol><li>사용할 수 있는 패치의 두 가지 크기 중 하나를 사용 합니다. 첫 번째 크기에서 2.5 x 3 c m2 이며, 마우스에서 측정을 위해 직접 사용할 수 있습니다. 다른 패치 크기에서 6 x 3 cm2 와 쥐 또는 더 큰 동물에 사용 되는 의미 하지만 쥐에 사용 하기 위해 더 작은 크기에 삭감 될 수 있다.</li>
	<li>패치의 한쪽에서 백업 껍질과 접착제 측면에서 분명 창 위에 정확 하 게 Led 포지셔닝 GFR 장치 막대기.</li>
	<li>배터리의 크기와 배터리에 헝겊의 한쪽 막대기을 초과 접착 패치를 잘라.</li>
</ol>5. 경 피 GFR 모니터 연결
<ol><li>3.1 단계에서 설명한 대로 isoflurane와 마우스 anaesthetize 고 열 패드에 발생 하기 쉬운 마우스를 놓습니다. 경 피 GFR 모니터의 배치와 FITC-sinistrin;의 사출에 대해서만 마우스 anesthetize FITC 감퇴의 측정에 대 한 마 취에서 회복 하기 위해 수 있습니다.</li>
	<li>70% 에탄올과 미리 면도 피부를 청소. 마우스 아래 알레르기 실크 테이프의 약 12 cm 배치 (그림 1B; 되도록 너무 넓은 마우스에 대 한 테이프의 폭 1.5-2 cm로 감소 되어야 한다).</li>
	<li>마우스의 오른쪽에만 약 2 cm이 고 나머지는 왼쪽에는 테이프를 배치 합니다. 쉬운 배치 및 측정 후 제거 테이프의 오른쪽의 한 모서리를 접어. 5.3와 5.6 단계 왼쪽 오른쪽 지침 동물의 오른쪽에 장치 배치 이며 필요한 경우에 동물의 왼쪽에 장치 배치를 위해 교환할 수 있다.</li>
	<li>장치에 배터리를 연결, 배터리에서 역행을 제거 하 고 안전 하 게 장치 위에 그것을 배치. 장치를 사용할 준비가 이며 푸른 빛 발광 다이오드 (Led) 점멸 시작 될 때 데이터 수집 시작.</li>
	<li>백업 장치에서 제거 하 고 면도 피부에 장소. Led는 갈비뼈-창 노출 하지 않아도 너무 가까이 그것은 척추 나 사지 (그림 1C) 그런 장치를 놓습니다.</li>
	<li>흰색 테이프 장치를 보호 합니다. 보안 오른쪽 먼저 (그림 1D), 장치, 그 후에 포장 마우스와 장치 (그림 1E) 왼쪽의 모든 가장자리 단단히 포장. 이상적으로, 장치, 테이프의 왼쪽된 측면에 대해서만 설명 하 고 오른쪽 마우스의 복 부 아래에서 끝납니다.</li>
	<li>마우스의 시체의 원주와 함께 그것을 눌러 테이프를 부착 합니다. 테이프는 확고 하 게, 하지만 하지 단단히 붙어 있이 필요가 있다. 너무 느슨한 경우 장치 이동 합니다 주위에 너무 많은 원인과 운동 인공 물. 그러나, 그것은 너무 꽉 호흡 또는 운동 제한 또는 피부에 너무 많은 압력을 박 았 않을 한다.</li>
	<li>장치를 읽고 꾸준히 배경 있도록 FITC sinistrin 주입 하기 전에 3 분 그대로 둡니다. 이 시간에 따뜻한 열 패드 또는 장갑 꼬리 가득 따뜻한 물 (해당 되는 경우이 경로 사용 하 여) 꼬리 정 맥 주입에 대 한 준비로.</li>
</ol>6. FITC sinistrin 주입
<ol><li>FITC-sinistrin (이 수로 반올림 됩니다 가장 가까운 10 μ) 주입에 필요한 계산 된 양의 인슐린 주사기를 준비 합니다.</li>
	<li>FITC sinistrin 꼬리 정 맥 또는 복고풍 궤도 주입에 의해 관리. FITC sinistrin 클리어런스 곡선에 여러 봉우리를 피하기 위해 하나의 부드러운 하지만 빠른 bolus에서 관리 한다. FITC sinistrin 관리에 여러 시도를 보다만 부분 복용량을 관리 하는 것이 낫다.</li>
</ol>7. 측정 GFR
<ol><li>Isoflurane 마 취에서 및 측정 기간 동안 자체에 마우스를 놓습니다.</li>
	<li>1.5 h에 대 한 장에 마우스를 관찰 하 고 장치를 제거. 의식 마우스에서 장치를 제거 하는 것은 빠르고, 효율적으로, 마우스에 의해 일반적으로 잘 용납 하지만 새 사용자는이 단계에 대 한 마우스를 anaesthetize 선호 수 있습니다.<ol>
<li>한 옵션으로 isoflurane와 마우스 anaesthetize.</li>
		<li>다른 옵션으로 마우스 케이지, 위에 마우스를 장치 제거 하는 동안 금속 막대기를 잡고 수 있도록 그물 선반에 장소.</li>
	</ol>
</li>
	<li>한 빠른, 부드러운 운동, 배꼽 아래에서 흰색 석고 테이프를 당겨 하 고 피부에서 장치와 검은 석고를 제거. 그 배터리 끊어지지 않습니다 장치에서 아직 다는 것을 조심 하십시오.</li>
	<li>그것의 가정 케이지를 마우스를 반환 합니다.</li>
</ol>8. 읽기 및 데이터 평가
<ol><li>조심 스럽게 장치에서 배터리를 분리</li>
	<li>장치를 USB 케이블에 연결 하 고 컴퓨터에 케이블을 연결</li>
	<li>오픈 읽기 소프트웨어 (Sensor_ctrl_app.exe)</li>
	<li>순서에서 "연결", "읽기", "이름", 클릭 하 고 프로그램을 닫습니다 "저장"</li>
	<li>처리 하 고 해당 설명서에 설명 된 대로 데이터 분석 소프트웨어에서를 평가합니다</li>
</ol>

<ol><li>Schreiber, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transcutaneous+measurement+of+renal+function+in+conscious+mice%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Physiology+-+Renal+Physiology%22%5BJournal%5D)">Transcutaneous measurement of renal function in conscious mice.</a> American Journal of Physiology - Renal Physiology. 303 (5), F783-F788 (2012).</li>
<li>MediBeacon. Related Publications. , Available from:
 <a target="_blank" href="http://www.medibeacon.com/preclinical/publications/">http://www.medibeacon.com/preclinical/publications/</a> (2018).</li>
<li>Friedemann, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Improved+kinetic+model+for+the+transcutaneous+measurement+of+glomerular+filtration+rate+in+experimental+animals%5BTitle%5D)+AND+%22Kidney+International%22%5BJournal%5D)">Improved kinetic model for the transcutaneous measurement of glomerular filtration rate in experimental animals.</a> Kidney International. 90 (6), 1377-1385 (2016).</li>
<li>Schock-Kusch, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reliability+of+transcutaneous+measurement+of+renal+function+in+various+strains+of+conscious+mice%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Reliability of transcutaneous measurement of renal function in various strains of conscious mice.</a> PLoS One. 8 (8), e71519(2013).</li>
<li>Schock-Kusch, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transcutaneous+assessment+of+renal+function+in+conscious+rats+with+a+device+for+measuring+FITC-sinistrin+disappearance+curves%5BTitle%5D)+AND+%22Kidney+International%22%5BJournal%5D)">Transcutaneous assessment of renal function in conscious rats with a device for measuring FITC-sinistrin disappearance curves.</a> Kidney International. 79 (11), 1254-1258 (2011).</li>
<li>Herrera Pérez, Z., Weinfurter, S., Gretz, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transcutaneous+Assessment+of+Renal+Function+in+Conscious+Rodents%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Transcutaneous Assessment of Renal Function in Conscious Rodents.</a> Journal of Visualized Experiments. (109), 53767(2016).</li>
<li>Cowley, A. W. Jr, et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Progression+of+glomerular+filtration+rate+reduction+determined+in+conscious+Dahl+salt-sensitive+hypertensive+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Hypertension%22%5BJournal%5D)">Progression of glomerular filtration rate reduction determined in conscious Dahl salt-sensitive hypertensive rats.</a> Hypertension. 62 (1), 85-90 (2013).</li>
<li>Scarfe, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Measures+of+kidney+function+by+minimally+invasive+techniques+correlate+with+histological+glomerular+damage+in+SCID+mice+with+adriamycin-induced+nephropathy%5BTitle%5D)+AND+%22Scientific+Reports%22%5BJournal%5D)">Measures of kidney function by minimally invasive techniques correlate with histological glomerular damage in SCID mice with adriamycin-induced nephropathy.</a> Scientific Reports. 5, 13601(2015).</li>
<li>Lazzeri, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endocycle-related+tubular+cell+hypertrophy+and+progenitor+proliferation+recover+renal+function+after+acute+kidney+injury%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Communications%22%5BJournal%5D)">Endocycle-related tubular cell hypertrophy and progenitor proliferation recover renal function after acute kidney injury.</a> Nature Communications. 9 (1), 1344(2018).</li>
<li>Street, J. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+role+of+adenosine+1a+receptor+signaling+on+GFR+early+after+the+induction+of+sepsis%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Physiology+-+Renal+Physiology%22%5BJournal%5D)">The role of adenosine 1a receptor signaling on GFR early after the induction of sepsis.</a> American Journal of Physiology - Renal Physiology. 314 (5), F788-F797 (2018).</li>
<li>Skrypnyk, N. I., Harris, R. C., de Caestecker, M. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ischemia-reperfusion+model+of+acute+kidney+injury+and+post+injury+fibrosis+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Ischemia-reperfusion model of acute kidney injury and post injury fibrosis in mice.</a> Journal of Visualized Experiments. (78), (2013).</li>
<li>Wang, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endotoxemic+acute+renal+failure+is+attenuated+in+caspase-1-deficient+mice%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Physiology+-+Renal+Physiology%22%5BJournal%5D)">Endotoxemic acute renal failure is attenuated in caspase-1-deficient mice.</a> American Journal of Physiology - Renal Physiology. 288 (5), F997-F1004 (2005).</li>
<li>Eisner, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Major+contribution+of+tubular+secretion+to+creatinine+clearance+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Kidney+International%22%5BJournal%5D)">Major contribution of tubular secretion to creatinine clearance in mice.</a> Kidney International. 77 (6), 519-526 (2010).</li>
<li>Bankir, L., Yang, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((New+insights+into+urea+and+glucose+handling+by+the+kidney%2C+and+the+urine+concentrating+mechanism%5BTitle%5D)+AND+%22Kidney+International%22%5BJournal%5D)">New insights into urea and glucose handling by the kidney, and the urine concentrating mechanism.</a> Kidney International. 81 (12), 1179-1198 (2012).</li>
<li>Qi, Z., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Serial+determination+of+glomerular+filtration+rate+in+conscious+mice+using+FITC-inulin+clearance%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Physiology+-+Renal+Physiology%22%5BJournal%5D)">Serial determination of glomerular filtration rate in conscious mice using FITC-inulin clearance.</a> American Journal of Physiology - Renal Physiology. 286 (3), F590-F596 (2004).</li>
<li>Peters, A. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+kinetic+basis+of+glomerular+filtration+rate+measurement+and+new+concepts+of+indexation+to+body+size%5BTitle%5D)+AND+%22European+Journal+of+Nuclear+Medicine+and+Molecular+Imaging%22%5BJournal%5D)">The kinetic basis of glomerular filtration rate measurement and new concepts of indexation to body size.</a> European Journal of Nuclear Medicine and Molecular Imaging. 31 (1), 137-149 (2004).</li>
<li>Chapman, M. E., Hu, L., Plato, C. F., Kohan, D. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bioimpedance+spectroscopy+for+the+estimation+of+body+fluid+volumes+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Physiology+-+Renal+Physiology%22%5BJournal%5D)">Bioimpedance spectroscopy for the estimation of body fluid volumes in mice.</a> American Journal of Physiology - Renal Physiology. 299 (1), F280-F283 (2010).</li>
</ol>

D S-K, JF와 YS MediBeacon GmbH는 제조 업체에 직원 및 경 피 GFR 모니터의 대리점 있습니다. D S-K 및 JF는 특허 및 특허 출원 발표 기술에 대 한 발명가.

이 원고와 함께 교육 비디오 제공 실용적인 지침 경 피를 사용 하 여 마우스에 GFR 모니터. 절차에서 가장 중요 한 단계는 동물의 뒤, 그리고 안전 하 게 복 부 주위에 테이프를 배치에 장치의 올바른 첨부 파일. 가장 좋은 위치는 흉 곽 약간 왼쪽 이나 오른쪽, 중간의 끝났습니다. 패치 및 장치는 피부에 단단히 고정 되어 있이 필요가 있지만 그들은 해서는 안됩니다 너무 조이는 그들은 제한 하는 호흡, 운동, 또는 장치, 피부 혈액 순환에 영향을 미칠이 결함이/부정확 한 측정 이어질 것 이다. 또한, 이후 모니터링 후 그들은 마 취에서 회복 의식 마우스에서 발생 합니다, 작은 운동 유물으로 경 피 측정에서 운동 결과에서 낮은 방해와 시체 일부 장치의 배치를 수정 합니다. 이러한 이유로, 그것은 중요 한 장치 배치 되지 않습니다 너무 가까이 위 사지 쥐 그들의 어깨를 자유롭게 움직일 수 있도록.
그것은 탈모에 영향을 미치는 예비 데이터를 나타내는 경 피 GFR 증가의 측정 직전 그 탈모와 FITC sinistrin 클리어런스의 측정 depilate 쥐 GFR 측정 전에 1 ~ 2 일 하는 것이 중요 합니다 FITC sinistrin의의 명백한 반감기 이 메커니즘은 알려져 있지 않습니다. 따라서, 여러 시간 포인트와 실험 사이 신뢰성 높은 측정을 얻기 위하여 그것은 GFR 측정 진행 하기 전에이 과정에서 회복 하기 위해 피부 수 있도록 사전에 쥐를 depilate 하는 것이 좋습니다. 탈모 크림 피부에 화학 손상을 방지 하기 위해 이전 응용 프로그램의 72 h 내 피부 같은 지역에 적용 하지 합니다. 많은 경우에, 모피 다시 성장을 몇 일 또는 주까지 걸리며 그래서 탈모 크림 72 h 이내 다시 적용 쉽게 피할 수 있습니다.
때문에 최대 50% 혈 청의 크는 쥐13, 관 섹션에 의해 배설 때 있기 때문에 증가 재흡수 신장 tubules에서 우 레 아의 마우스는 탈수14, 혈 청 크와 벤은 신장 기능의 가난한 마커. 그러나, 그들의 편의 때문에 이러한 분석 실험 쥐에서 아키와 CKD의 전 임상 연구에서 신장 기능의 주요 조치로 사용 될 계속. 그러나, 정상 또는 정상 신장 기능13근처 쥐 크 배설을 관 분 비의 주요 기여와 일치, 혈 청 크가 보였다 FITC-sinistrin 허가와 약간 상관 관계가 높은 공간 속도에서 (낮은 FITC-sinistrin 하프), 그 크는 구분 하지 않는 정도의 가벼운 신장 부상으로 쥐에 있는 신장 기능을 나타내는. 반면, 롤빵 온화한 신장 손상 된 쥐에서 FITC-sinistrin 허가와 잘 연결, 더 가혹한 신장 상해 (하프 라이프 FITC sinistrin 높은)와 쥐에서 롤빵 및 FITC-sinistrin 허가 가난한 상관관계는. 이것은 가능성이 심각한 신장 부상으로 아픈 동물에 탈수와 관련 된 요소 재흡수의 효과 의해 발생 합니다.
다른 모든 bolus 클리어런스 또는 GFR 측정에 대 한 지속적인 주입 기술에 비해 경 피 GFR 측정의 주요 이점은 신중 하 게 초과 혈액 또는 소변 컬렉션 필요 하지 않습니다 이다. 이러한 낮은 총 혈액 볼륨 및 쥐에 비해 비뇨 기 출력 특히 쥐에서 도전 될 수 있습니다. 또한, 마우스 장치 및 주입, 첨부 파일에 대해서만 하지만 클래식 bolus 클리어런스 실험15필요에 따라 여러 venipunctures 처리를 해야 합니다. 또한, 마 취의 기간은 짧은, 그리고 따라서 그것은 시간이 지남에 따라 개별 쥐에 반복된 측정을 수행할 수 있습니다. 주파수는 측정을 수행할 수 있습니다 주로 반복 된 마 취 세션에 쥐, 정 맥 주사, 그리고 현지 기관 규정에 대 한 연구원의 적성의 건강 상태에 따라 달라 집니다. 건강 한, 손상 되지 않은 생쥐에서 경 피 GFR 측정 마우스에 최소한의 또는 더 불리 한 효과 함께 매일, 수행할 수 있습니다. 그러나, 부상된 쥐 아키 또는 CKD에서 고통을 하지 않을 수 있습니다 건강 한 쥐로 반복 된 마 취 세션을 용납 하 고 따라서 측정의 주파수를 감소 한다.
쥐 GFR 측정 bolus 정리 방법에 비해 경 피 GFR 측정의 주요 제한은 배설 활동 시간이 지남에 상대적 형광 강도에 변화 그리고 절대 추적 농도 측정만입니다. 이 때문에,만 세포 외 볼륨16정규화 GFR의 매우 가까운 견적을 운동, 배설의 단일 지 수 감퇴의 속도 상수를 측정 수는. ML/min에서 GFR을 표현 하는 동물의 세포 외 볼륨1을 수행 FITC sinistrin의 플라즈마 농도의 동시 측정 했다 이전 연구에서 설정 된 변환 인수를 사용 하 여 예상할 수 있다. 그러나,이 변환 인수 수 있습니다 제대로 예상 하지 extracellular 액체 볼륨 똑같이 모든 마우스에서 잘 유체 볼륨 다양 한 나이 포함 하는 외부 요인에 의해 영향을 받을 수 있습니다, 이후 성, 수 화 상태 (수술에 의해 영향을 받을 수 있는 개입 뿐 아니라 신장 상해), 그리고 무게17. 그러나, 주입 마우스에서 GFR을 평가 하는 방법 bolus 달리 transcutaneous GFR 측정은 덜 연산자 종속 다양성으로 그것 투약 오류 또는 오류 혈액 컬렉션의 타이밍에 영향을 받지 않습니다.
Transcutaneous GFR 측정 기술의 또 다른 한계는 기준선 신호 교대 피부 fluorophores 및 장치 부착 및 트레이 서 사출에 필요한 마 취의 표백으로 인해 측정의 과정에서 발생할 수 있습니다. 이 제한3보정 알고리즘 구현 하 여 Friedemann와 동료에 의해 해결 되었다. 이 알고리즘의 구현 GFR 평가의 지속적인 주입 기술에 비해 경 피 기술의 정밀도 개선을 이끌어 냈다.
자주 묻는 질문은 여부 다른 마우스 긴장에 피부 착 색 경 피 FITC sinistrin 클리어런스에 영향을 줍니다. 피부 착 색 감소 FITC sinistrin 신호 강도 어두운 안료 흡수 블루 여기 및 녹색 방출 이후 FITC sinistrin 측정에서 신호. 그러나, FITC sinistrin의 배설 율은 전체의 독립적인 신호 강도. 또한, 측정된 된 신호는 낮은, 배경 신호 안료 생쥐에서 낮은도 합니다. 배경 신호 피부 fluorophores의 autofluorescence와 여기 빛의 반사의 혼합물 이므로 우리 배경-최대 신호 비율 비교, 또는 심지어 개선, 색칠 한 동물에는 하는 것이 나타났습니다. 또한, 운동 유물, 주변 피부에의 노출에 의해 발생 하는 빛을 반영, 반사 된 빛은 피부 안료에 의해 흡수 또한 이후 안료 생쥐에서 감소 된다.
결론적으로, 우리가 제시 하는 기술 의식, 자유롭게 모든 피부 타입의 마우스 이동에 GFR의 정확한 측정을 허용 한다. 기술은 혈액 샘플링의 독립적으로, 그것은 사용할 수 있습니다 반복적으로 같은 동물에 GFR의 아키의 유도 후 발생 하는 급격 한 변화 측정에 대 한 뿐만 아니라 CKD 모델, 경도 관측을 위해.

경 피 성 사용 GFR 모니터 마우스에서 2012 년에서 슈 라이버와 동료에 의해 처음 보고 되었다 고이 기술을 사용 하 여 얻은 GFR 측정 비교 하 여 유효성을 검사 결과 함께 얻은 FITC sinistrin bolus 정리에서의 직접 측정 직렬 혈액 샘플1. 날짜 하려면, 35 피어-검토 한 결과 간행물 있는 transcutaneous GFR 모니터 쥐 및 쥐에 사용 되어 왔다 (저널 기사 및 전 임상 GFR 모니터 사용 되었다 회의 초록의 정기적으로 업데이트 목록에서 찾을 수 있습니다는 MediBeacon 웹사이트2)입니다. 쥐와 쥐에 경 피 GFR 측정 간행물1,3,,45, 숫자에서 설명 하고있다 그리고 쥐에 있는 그것의 사용을 보여 주는 비디오 자습서 게시6되었습니다. 그러나, 쥐에서 측정 추가 기술 도전을 선물 한다. 여기, 우리는 경 피 GFR 모니터에서 마우스를 사용 하 여 첫 번째 자세한 실용적인 가이드를 제공합니다.
다양 한 쥐 모델에서 신장 기능을 평가 하기 위해 경 피 GFR 모니터의 사용을 선호 하 수사를 시작 하는 이유는 이유 있다. FITC sinistrin 클리어런스의 경 피 측정 신장 기능 신장 기능 혈 청 크와 혈액 우 레 아 질소 (롤빵)7,등의 전통적인 매개 변수에 비해 더 민감하고 정확한 측정을 제공 하기 위해 표시 되었습니다. 8. 향상 된 평가 알고리즘을 구현 하 여 Friedemann와 동료 시스템 정밀 골드 표준, GFR 측정3에 대 한 지속적인 주입 기술에 비해 도달 시연. 최근 연구는 또한 동물의 혈액을 방해 하지 않고 급성 신장 손상 (AKI)의 유도 후 신장 기능 뿐만 아니라 기능 복구에 초기 변화를 공부 하 transcutaneous GFR 모니터를 사용 하 여 순차 분석을 사용할 수 있습니다 나타났습니다. 볼륨 또는 hemodynamics, 이후 분석 결과 순차적 필요로 하지 않는 혈액 샘플링9,10. 높은 정밀도와 같은 동물에 반복적으로 감도 GFR을 측정 하는 능력이이 기술은 다양 한 다른 연구 분야에 대 한 매력적인 게. 경 피 GFR 모니터 기본 및 변환 연구를 위한 대학에서 뿐만 아니라 소설 화합물의 독성을 평가 하기 위해 제약 회사에 의해 사용 되었습니다.

<table><tbody><tr><td>경피 GFR 모니터(장치 1개, 배터리 2개 및 충전기 1개와 함께 제공)</td><td>MediBeacon GmbH</td><td>TDM-MH001</td><td>판독 소프트웨어: MPD Lab; 분석 소프트웨어: MPD Studio</td></tr><tr><td>추가 배터리</td><td>MediBeacon GmBH</td><td>PWR-BT0001</td><td></td></tr><tr><td>첨부 패치</td><td>MediBeacon GmbH</td><td>소형: PTC-SM001; 대형: PTC-LG001</td><td></td></tr><tr><td>FITC-sinistrin</td><td>MediBeacon GmbH</td><td>FTC-FS001</td><td></td></tr><tr><td>저자극성 실크 테이프</td>(<td>예: Durapore(1538-2) 또는 Kendall(7138C) 또는 Leukosilk(01032-00)</td><td></td><td></td></tr><tr><td>마취실, 이소플루란, 산소</td><td></td><td></td><td></td></tr>, <tr><td>히트 패드</td><td></td><td></td><td></td></tr>, <tr><td>전기 면도기</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>, 제모(제모), 크림</td><td>예: Veet 또는 Nair</td><td></td><td></td></tr><tr><td>면봉, 면봉,</td><td></td><td></td><td></td></tr> 면<tr><td>봉</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>타이머</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>70% 에탄올 물티슈</td><td></td><td></td><td></td></tr> 스케일</tbody></table>

쥐에서 사 여과 속도의 경 피 측정

Transdermal Measurement of Glomerular Filtration Rate in Mice

사 여과 비율 (GFR)의 경 피 분석 급성 신장 손상 및 만성 신장 질환의 마우스와 쥐 모델에서 신장 기능을 평가 하는 데 사용 되는 설립된 기술입니다. 의식, 자유롭게 움직이는 동물의 뒷면에 피부에 직접 연결 되어 exogenous GFR 추적기 fluorescein isothiocyanate (FITC)의 배설 활동을 측정 하는 소형된 형광 검출기의 측정 시스템 구성 활용된 sinistrin (아날로그는 눌린)입니다. 이 시스템 쥐에 자세하게에서 설명 하고있다. 그러나, 그들의 더 작은 크기 때문에 쥐에서 transcutaneous GFR 측정 추가 기술 도전을 선물 한다. 이 문서에서 우리는 따라서가지고 수행이 분석 결과 쥐에서 수 년의 누가 쥐 3 개의 다른 수 사관의 결합 된 경험을 바탕에 경 피 GFR 모니터의 사용에 첫번째 상세한 실용적인 가이드를 제공 합니다.

이 섹션에서 우리는 경 피 GFR 모니터의 사용의 대표적인 결과 제시. 경 피 모니터는 다양 한 마우스 긴장 및 아키와 CKD2의 모델에서 사용 되었다.
그림 2 동시 contralateral 신 가진 국 소 빈 혈 reperfusion 상해 (IRI) 전후 남성 BALB/c 마우스에서 대표적인 FITC sinistrin 클리어런스 곡선을 보여준다. FITC sinistrin 건강 한 쥐 (그림 2A)에서 순환에서 급속 하 게 지워집니다 하지만 클리어런스 아키 (그림 2B, C)와 쥐에 극적으로 지연 됩니다. 매우 심각한 아키와 쥐에 있을 수 있습니다 하지 사 여 (그림 2C)과의 완전 한 부재를 나타내는 FITC sinistrin 형광 90 분 측정 기간 동안에 어떤 변화 든 지.
경 피 GFR 측정 최소한 침략 적 이며 여러 시간 점에 동일한 쥐에 있는 신장 기능 변화를 모니터링 하는 데 사용할 수 있습니다. 그림 3 묘사 GFR 순차 경 FITC sinistrin 피 클리어런스 측정 기준에 의해 결정에 변화와 IRI (동시 contralateral 신으로 일방적인 허 혈) 유도 후 1, 2, 4 일. FITC sinistrin 클리어런스 반감기 (그림 3A)를 포함 하는 데이터 표시와 GFR (그림 3B) Schreiber 외1설명 된 대로 측정된 FITC sinistrin 클리어런스 반감기에서 계산.
그림 4, 만성 신장 병 (CKD) 설명된11로 지연된 contralateral 신 뒤 장기간된 일방적인 IRI를 수행 하 여 남성 BALB/c 마우스에서 유도 되었다. GFR는 경 피 FITC-sinistrin 허가 초기 IRI 후 26 일에 의해 평가 되었다. FITC sinistrin 하프 라이프 (그림 4A), 증가 하 고 따라서 (그림 4B), GFR의 감소가이 쥐에 손상된 신장 기능을 나타냅니다. 이러한 데이터 transcutaneous GFR 측정 CKD와 쥐에 있는 신장 기능에 변화를 측정 하는 데 사용 될 수 보여 줍니다.
그림 5A 는 FITC sinistrin 하프 라이프와 상관 관계가 밀접 하 게 관 상해의 반 정량 조직학 평가 전체 GFR 측정 손상 되지 않은 쥐와 IRI 유도 아키의 다른 심각도와 쥐를 통해 보여줍니다. 대조적으로, 혈 청 크와 혈액 우 레 아 질소 (롤빵) 보여 긍정적인 FITC sinistrin 클리어런스 (그림 5B, C)와 함께 약한 상관 관계를 나타내는 transcutaneous GFR 측정의 신장 보다 안정적인 측정을 제공 하지만 부상 (관 부상 점수) 다음 중 혈 청 크 보다 아키 IRI 유도 또는 롤빵.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/58520/58520fig1.jpg"> 그림 1: 경 피 GFR 모니터 연결. 머리 제거 (A), (B), 마우스 아래 테이프의 배치의 사진에 마우스의 피부 (C), 마우스와 장치 (D E) <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/58520/58520fig1large.jpg" target="_blank">바랍니다 테이프를 배치 하 여 장치 보안 장치의 배치 하려면 여기를 클릭합니다 이 그림의 확대 이미지 보기.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/58520/58520fig2.jpg"> 그림 2: 국 소 빈 혈 reperfusion 상해 (IRI) 동시 contralateral 신 전후 남성 BALB/c 마우스에서 예제 FITC-sinistrin 허가 곡선. 클리어런스 곡선 (A), 기준선과 나타내는 동일한 마우스에서 IRI 수술 (B)이이 마우스에 신장 기능 손상 후 1 일에서. (C) 허가 IRI 수술 후 1 일 더 심각 하 게 부상된 마우스에서 곡선. 아무 클리어런스 FITC sinistrin의 측정 기간 동안 신부전을 나타내는 했다. 원시 데이터를 표시 하는 검은 데이터 포인트, 블루 라인 3-구획 맞는 나타내고 녹색 선은 95% 신뢰 간격을 나타냅니다. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/58520/58520fig2large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/58520/58520fig3.jpg"> 그림 3: 남성 BALB/c 마우스, 나이 8-10 주 동시 contralateral 신으로 일방적인 허 혈을 받았다 (n = 5). GFR 평가 기준에서 1, 2, 및 4 일에 수술 후 고 가짜 운영 통제 쥐와 비교 (n = 5). FITC sinistrin 하프 라이프 (A)에서 사용 되었다, 생쥐의 몸 무게와 (B)의 GFR을 계산. 데이터 요소는 개별 동물 나타내고 오차 막대와 표준 오류를 나타냅니다. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/58520/58520fig3large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.</a>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/58520/58520fig4.jpg"> 그림 4: 남성 BALB/c 마우스 나이 8-10 주 하루 8에서 지연된 contralateral 신으로 일방적인 허 혈을 받았다 (n = 5). GFR 하루 26에 의해 평가 되었다와 건강 한 통제 나이 일치 하는 쥐에 비해 (n = 5). FITC sinistrin 하프 라이프 (A)에서 사용 되었다, 생쥐의 몸 무게와 (B)의 GFR을 계산. 데이터 요소는 개별 동물 나타내고 평균 및 표준 편차 오차 막대를 나타냅니다. 관 부상 정기 산 Schiff 얼룩이 신장 섹션에 멀게 관찰자 (L.R.)에 의해 괴 사 및 캐스트 형성의 정도에 따라 0-50은 득점 했다. 이 방법은 왕 및 동료12에서 적응 시켰다. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/58520/58520fig4large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.</a>
<img alt="Figure 5" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/58520/58520fig5.jpg"> 그림 5: 신장 기능/손상의 3 측정의 상관 관계 (관 상해의 조직학 평가 (n = 39), 혈 청 크 (n = 30) 그리고 혈액 우 레 아 질소 (롤빵) (n = 30)) FITC sinistrin 클리어런스 (하프 라이프)와. 남성 BALB/c 마우스 받았다 일방적인 신장 작은 꽃 자루 클램핑 (25-45 분) 또는 동시 contralateral 신 아키의 다른 심각도 유도 하는 것으로 위장 수술의 다양 한 기간 및 신장 기능 매개 변수 및 histopathology 하루 4에 평가 했다 IRI 후. 관 부상 점수 (A; FITC-sinistrin 허가 함께 강한 긍정적인 상관 관계를 보였다 R2 = 0.88), 혈 청 크 (B), 및 롤빵 (C) FITC-sinistrin 허가 함께 약한 상관 관계 하지만 긍정적인 보였다 (R2 = 0.64, 0.52, 각각). <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/58520/58520fig5large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.</a>

여기 우리가 설명 의식에 사 여과 비율 (GFR)을 측정 하는 프로토콜 자유롭게 경 피 GFR 모니터를 사용 하 여 마우스를 이동.

Transdermal analysis of glomerular filtration rate (GFR) is an established technique that is used to assess renal function in mouse and rat models of ...

오늘, 우리는 마우스에 있는 사구 여과 또는 tGFR의 경피 측정의 기술을 시연할 것입니다. 내가 언급 할 가치가 있다고 생각하는이 방법의 기능의 숫자가 있습니다. 우선, 현재 tGFR은 마우스에서 신장 기능을 평가하는 가장 정확한 방법입니다.둘째, tGFR은 마취의 합병증을 피하기 위해 마우스를 의식적으로 자유롭게 이동시켜 수행됩니다. 셋째, 이 기술을 마스터하면 하루에 30~40tGFR 측정을 수행하는 것이 합리적입니다. 마지막으로, tGFR 측정은 체외 마우스에서 반복적으로 수행될 수 있다.이것이 의미하는 바는 급성 및 만성 질환 환경에서 신장 기능의 직렬 측정을 수행할 수 있다는 것입니다. 이 기술의 주요 장점은 연구원이 높은 정밀도와 감도로 자유롭게 움직이는 마우스를 의식적으로 구체 여과 속도 또는 GFR을 측정할 수 있다는 것입니다. tGFR 측정 1~2일 전에 발가락 핀치에 대한 반응이 부족하다는 것을 확인한 후, 열패드에 마취된 마우스를 배치한다.전기 면도기를 사용하여 성장 방향에 따라 잘라 서 마우스 뒤쪽의 한쪽에서 목까지 그리고 갈비뼈를 가로 질러 대부분의 털을 제거합니다. 면 봉오리를 사용하여 노출된 피부에 얇은 탈필 크림을 발라 크림을 피부에 최대한 가깝게 바르고 깨끗한 면봉과 따뜻한 물로 1~3분 후에 크림을 제거합니다. 시술 당일, 패치 뒷면을 벗겨내고 투명 창 바로 위에 배치된 발광 다이오드로 패치의 접착제 측에 장치를 붙이기 전에 GFR 장치의 크기로 6~3cm 의 접착제 패치를 트림한다.그런 다음 패치의 작은 조각을 배터리에 붙입니다. 모니터를 부착하려면 마취 된 마우스를 경향이있는 위치에 배치하려면 70 %에탄올로 미리 면도 된 피부를 청소하고 길이로 찢어서 약 12 센티미터 크기의 테이프의 폭을 조정합니다. 테이프를 마우스 아래에 2센티미터로 두면 테이프의 오른쪽 가장자리에 접는 후 쉽게 배치하고 제거할 수 있습니다.다음으로 배터리를 장치에 연결하여 배터리에서 백업을 제거하고 배터리를 장치에 안전하게 배치합니다. 장치를 사용할 준비가 되어 있고 파란색 LED가 깜박이기 시작하면 데이터 수집이 시작됩니다. 장치의 패치에서 백업을 제거하고 LED를 노출하는 창이 테이프로 장치의 오른쪽을 고정하는 갈비뼈 위에 있도록 장치를 면도 된 피부에 놓습니다.마우스의 이동성을 제한하거나 피부에 너무 많은 압력을 가하지 않고 장치의 안전한 부착을 보장하는 것이 중요합니다. 그런 다음 테이프의 왼쪽을 마우스와 장치 주위에 단단히 감쌉니다. 장치가 3분 동안 안정적인 배경 판독값을 기록하도록 허용합니다.한편, 헤드 패드로 꼬리를 따뜻하게 하고 가장 가까운 10 마이크로리터로 반올림된 주입을 위해 FITC-sinistrin의 적절한 실험용 부피로 인슐린 주사기를 적재한다. FITC-시니스트린을 매끄럽지만 빠른 볼러스로 정맥 내 투여합니다. 사용자가 성공적으로 하나의 볼루스에서 FITC-sinistrin을 관리 하는 데 필요한 으로 IV 주사에 편안 하 게 하는 것이 중요 한 보다는 통관 곡선에 여러 피크를 초래할 것 이다 여러 시도 이상.tGFR을 측정하려면 마우스를 전체 재조정이 있을 때까지 모니터링하여 마우스를 자체 케이지에 배치하고 FITC-sinistrin 클리어런스를 1.5시간 동안 기록할 수 있도록 합니다. 측정 기간이 끝나면 마우스를 케이지 위에 와이어 랙에 놓고 마우스가 금속 막대를 잡고 배 아래에서 테이프를 한 번 빠르게 매끄럽게 움직입니다. 그런 다음 장치에서 테이프를 제거하고 배터리가 장치에서 분리되지 않도록주의하는 피부에서 패치를 제거하고 마우스를 케이지로 반환합니다.데이터를 평가하려면 배터리를 조심스럽게 분리하고 USB 케이블을 사용하여 장치를 컴퓨터에 연결합니다. 읽기 소프트웨어를 열고 연결, 읽기, 이름 바꾸기 및 저장을 클릭합니다. 그런 다음 제조업체의 지침에 따라 프로그램 및 프로세스 및 분석 소프트웨어의 데이터를 평가합니다.FITC-sinistrin은 건강한 마우스의 순환에서 급속히 제거되는 동안, 이 정리는 급성 신장 손상을 가진 마우스에서 극적으로 연기됩니다. 매우 심각한 급성 신장 손상을 가진 마우스에서는, 전체 90 분 측정 기간 도중 FITC-sinistrin 형광의 아주 작은 또는 전혀 간격이 구체 여과의 완전한 부재를 나타내는 있을 수 있습니다. 경피 GFR 측정은 최소 침습적이므로 여러 시간 지점에서 개별 동물의 신장 기능 변화를 모니터링하는 데 사용할 수 있습니다.실제로 이 대표적인 실험에서 순차적인 측정은 허혈 재관류 손상 후 0, 1, 2 및 4 일 에서 신장 기능의 변화를 입증했습니다. 본 마우스 만성 신장질환 모델에서 FITC-시니스트린 의 반감기반감기에서 GFR에 대한 역관계는 이러한 동물에서 관찰된 손상된 신장 기능과 직접 상관관계가 있을 수 있다. 실제로 FITC-sinistrin 반감기는 부상되지 않은 마우스및 허혈 재퍼퓨전 손상으로 인한 급성 신장 손상의 다른 단절을 가진 마우스에서 전체 범위의 GFR 측정에 대한 관 상해의 반정적 조직학적 평가와 밀접한 관련이 있습니다.대조적으로, 혈청 크레아티닌과 혈액 우레아 질소는 혈청 크레아티닌 또는 혈액 우레아 질소보다 신장 손상의 보다 더 신뢰할 수 있는 측정을 제공한다는 것을 나타내는 FITC-sinistrin 클리어런스와 긍정적이지만 약한 상관관계를 나타낸다. GFR의 경피 측정은 크레아티닌 과 BUN과 같은 전통적인 바이오마커보다 신장 기능의 더 민감한 척도입니다. 이것은 전임상 연구에서 신장 질환에 대한 새로운 치료법의 효능에 대한 보다 정확한 평가를 제공합니다.이 방법의 가장 중요한 단계는 마우스 뒷면에 장치를 적절히 부착하고 FITC-sinistrin의 성공적인 IV 투여입니다. 이 단계는 마우스에 있는 GFR의 정확한 평가를 얻기 위하여 필수적입니다.

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Research

연구

JoVE Journal

Medicine

의학

생쥐의 사구체 여과율(glomerular filtration rate in mice)의 경피 측정

2 광자 현미경 높은 해상도 intavital을 활용하는 기술을 직접 시각화 및 표면 사구체에서 gloemrular 여과를 정량화한다. 이 방법은 정상과 질병 상태 모두에서 거대 분자의 투과 특성을 직접 측정 할 수 있습니다.

뮌헨의 Wistar 쥐에서 2 광자 현미경을 사용하여 형광 고분자의 사구체 투과율을 정량화

사구체 여과율 (GFR)의 측정은 신장 기능 평가를위한 황금 표준입니다. 여기서 우리는 두 단계 지수 붕괴 모델 플라즈마 GFR의 계산에 하나의 알약 주입, 형광 이소 티오 시아 네이트의 결정 (FITC) 이눌린을 사용하여 의식 쥐 GFR의 결정을 허용하는 높은 처리량 방법을 설명합니다.

의식 쥐의 사구체 여과율의 측정을위한 높은 처리량 방법

이 프로토콜의 목적은 쥐의 사구체 여과율, 소변 유량, 나트륨 및 칼륨 배설을 측정하고 계산하는 원리와 기술을 시연하는 것입니다. 이 시연은 학생들에게 신장 기능을 측정하는 방법에 대한 전반적인 개념적 이해를 제공하는 데 사용할 수 있습니다.

생리학 실험실 데모 : 쥐의 사구체 여과 속도

사구체여과율(GFR) 측정은 전반적인 신장 기능을 평가하기 위한 황금 표준입니다. 그러나 이 매개변수를 측정하는 기존 절차는 번거롭고 많은 시간을 투자해야 합니다. 여기에서는 사구체여과(GFR)를 경피적으로 결정하기 위한 더 빠르고 최소 침습적인 방법에 대해 설명합니다.

의식 설치류에서 신장 기능의 경피 평가

이 프로토콜에는 전체 신장 작업 업 사 질병 마우스 모델에서을 수행 하는 설명 합니다. 사 병의 모든 마우스 모델에 적용할 수 있는 사 기능의 자세한 기능, 구조, 및 기계적 분석 방법 허용.

신장 기능 사 질병 마우스 모델에서의 평가

여기에서, 우리는 고과민성, 비방사성 추적자를 사용하여 마우스에 있는 사구체 투과성을 시험하는 프로토콜을 제시합니다. 이 방법은 작은 소변 볼륨을 가진 반복적인 소변 분석을 허용합니다.

플루오레세인 이소티오차네이트-폴리수크로오스 70을 가진 마우스에서 사구체 투과성의 고감도 측정

사구체 여과율(GFR)은 신장 기능을 평가하는 데 이상적인 지표입니다. 그러나 연속 혈액 및 소변 분석과 함께 이눌린 주사를 사용하는 표준 측정 방법은 비실용적입니다. 이 기사에서는 새끼 돼지에서 GFR을 경피로 측정하는 실용적인 방법을 설명합니다.

기계적으로 환기된 새끼 돼지의 사구체 여과율의 경피 측정

biopotential의 연속 측정에 사용되는 상용 원격 측정 송신기의 이식을위한 수술 기법 (1 리드 ECG), 자유롭게 이동 마우스의 심장 박동, 핵심 체온과 전위의 활동이 표시됩니다. 복구를 개선 권고 및 사후 수술 치료 및 통증 완화를위한 프로토콜, 웰빙 및 생존율도 제공됩니다.

ECG, 심장 박동, 코어 바디 온도 및 자유 이동 실험실 마우스의 활동에 데이터를 항복 Radiotelemetry 송신기의 주입

약시는 종종 한 쪽 눈의 강력한 억제와 함께하는 시각 피질의 발달 장애입니다. 우리는 측정 및 가상 현실 고글 혹은 휴대용 아이팟 터치 장치를 사용하고 배포 할 수 있습니다 약시 환자에서 interocular 억제 치료를위한 새로운 기술을 제시한다.

약시의 억제의 측정 및 치료

매우 높은 주파수의 초음파는 작은 동물의 심장 이상을 검사 할 수있는 강력한 라이브 이미징 도구입니다. 그 noninvasiveness는 태아의 생리 학적 상태를 유지 할 수 있습니다. 여기서, 우리는 자궁에서 E18.5에서 태아의 심장 박동수를 측정하는 M-모드 초음파의 사용을 보여줍니다.

비 침습 M-모드 초음파 심장 검진 법에 의한 마우스의 심장 박동의 자궁 측정

배우세요 쥐에서 경피 사여과 속도 측정법을 통해 신장 기능을 정밀하게 평가하는 방법을. 마취 없이 의식 있는 상태에서 반복 측정이 가능하여 급성 및 만성 신장 질환 연구에 탁월합니다.

쥐에서 사 여과 속도의 경 피 측정

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