Name: 세포와 조직에서 코엔자임 A의 정량화 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2019-09-27T14:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 51 s
Description: 배우세요 세포와 조직에서 코엔자임 A를 정량화하는 신뢰할 수 있는 방법을. 고압 액체 크로마토그래피를 활용하여 대사 및 신경퇴행 연구에 필수적인 CoA 수준을 정확히 측정할 수 있습니다.

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저자는 CoA 치료, Inc., BridgeBio LLC의 자회사, 건강 보조금 GM34496의 국립 연구소, 그리고 미국 레바논 시리아 관련 자선 단체에 의해 제공되는 후원 연구에 대한 자금을 인정.

이 프로토콜에 언급 된 동물 절차는 프로토콜 323 및 556에 따라 수행되었으며 세인트 주드 어린이 연구 병원 기관 동물 관리 및 사용위원회에서 특별히 승인했습니다.
1. 솔루션 준비
참고: 모든 용액과 절차에 명시된 경우 초순수를 사용하십시오.
<ol><li>물에 1 mMM 수산화 칼륨 (KOH)을 준비합니다.</li>
	<li>0.25 M KOH를 물에 준비하십시오.</li>
	<li>물에 1 M Trizma-HCl을 준비하고 pH 8.0으로 조정합니다.</li>
	<li>아세토니트릴(옵티마 그레이드)에서 100mMMMM모노브로모비마네(mBBr)를 준비합니다. mBBr의 스톡 솔루션은 빛에 노출되면 모노브로모비만을 바이마네26으로포토이즈할 수 있기 때문에 어둠 속에서 유지되는 경우 수개월 동안 -20°C에서 안정적이다.</li>
	<li>고체 상 추출 (SPE) 컬럼을위한 세척 버퍼를 준비하십시오 : 50 % 메탄올 (옵티마 등급) + 2 % 아세트산.</li>
	<li>SPE 컬럼용 용출 완충제를 준비하십시오: 50 mM 암모늄 포메이트를 함유하는 95% 에탄올(HPLC 등급).</li>
</ol>2. 코아-바이마네 표준의 준비
<ol><li>평판 좋은 소스 (예 : Avanti 극지 지질, Inc.)에서 고품질의 CoA 표준을 구입하십시오.</li>
	<li>20 mM Tris, pH 8에서 CoA의 고농도 재고 용액을 준비하십시오. 고농도 스톡에서의 CoA의 양은 λ260 nm에서 분광광도 흡광도에 의해 결정또는 확인된다(Θ = 16,800M-1∙cm-1). mBBr의 4 배 어금니 초과를 추가; 10 초 동안 높은 에 소용돌이. 예를 들어 버퍼에서 10mM CoA의 경우 40mMMBBr을 추가합니다. mBBr은 모든 CoA가 유도되도록 초과하여 추가됩니다.</li>
	<li>mBBr로 CoA를 유도하기 위해 흔들리지 않고 어둠 속에서 4 시간 동안 실온에서 배양하십시오. mBBr은 CoA의 티올 기와 반응하며, pH 및 온도의존도27이다. mBBr의 첨가는 CoA를 수용성 형광(또는 자외선 흡수제) CoA-bimane(CoA-bimane)으로 변환한다; 그림 2).</li>
	<li>100 μL 아세트산과 와류를 10s의 높은 위에 추가하여 반응을 멈추십시오.</li>
	<li>2,000 x g에서 15 분 동안 원심 분리기를 사용하여 침전제를 제거합니다.</li>
	<li>SPE 컬럼을 사용하여 상급체를 정리하여 미반응 mBBr을 제거하였다(아래에 설명). 용출액의 여과 및 원심분리는 SPE 컬럼 정리 후 필요하지 않습니다(섹션 5.8).</li>
	<li>미리 계량 된 튜브에 CoA-bimane을 포함하는 SPE 컬럼에서 용출액을 수집하고 질소 가스에서 건조하고 CoA-bimane의 알려진 수량으로 표준 교정 곡선을 계량하고 구성합니다.<ol>
<li>HPLC에 의한 순도에 대한 CoA-bimane 표준을 확인하십시오(아래 참조) λ260(아데닌 모에티) 및 λ393(bimane moiety) 및 크로마토그램의 두 피크의 우연의 일치모두에서 흡광도 검출을 확인합니다.</li>
		<li>λ260 nm(+= 16,800M-1∙cm-1)를사용하여 고농도 스톡에서 CoA-bimane 표준의 양을 확인한다.</li>
	</ol>
</li>
	<li>CoA-bimane 표준을 사용하여 실험 샘플에서 CoA-bimane식별을 위해 HPLC 보존 시간을 등록합니다.</li>
	<li>CoA-bimane 표준의 고농도 스톡의 알리쿼트(aliquots)를 빛으로부터 보호하고 -20°C에서 최대 2년 동안 보관하였다. 반복된 해동 및 다시 동결을 피하십시오.</li>
</ol>3. 배양 된 세포에서 CoA의 추출 및 유도
<ol><li>늦은 하위 밀도에 접근 할 때 배양에서 부착 세포를 수확. 예를 들어, 인간 HepG2/C3A 세포는 6-8 x 106의밀도로 성장하거나 HEK 293T 세포는 100 mm 접시당 ~1.3 x 107의 밀도로 성장한다.<ol>
<li>CoA 결정에 중복 또는 삼중 문화권을 정기적으로 사용합니다. 실행 가능한 세포 수를 결정하기 위해 샘플 세포 배양과 병행하여 별도의 배양 접시를 배양합니다. HPLC 정제 후 106 -107 셀 당 CoA의 양을 계산합니다.</li>
	</ol>
</li>
	<li>접시 떨어져 흡인 배양 매체. 얼음처럼 차가운 인산완식염수(PBS)로 접시에 있는 세포를 빠르게 세척하여 잔류 배지를 제거하고 PBS를 접시에서 흡인합니다. 얼음처럼 차가운 물로 세포를 빠르게 씻어 잔류 PBS를 제거하고 접시에서 물을 빠르게 흡인하십시오. PBS 또는 물을 추가 할 때 부착 세포를 방해하지 마십시오.</li>
	<li>문화 요리에 얼음 차가운 물 1 mL을 추가합니다. 접시에 차가운 물에 세포를 긁어 0.25 M KOH 및 물 1.5 mL의 400 μL을 포함하는 유리 시험관으로 세포 현탁액을 전송합니다.<ol>
<li>10초 동안 높은 와류에 의해 현탁액을 격렬하게 섞습니다. 그런 다음 파라핀 필름으로 단단히 덮고 수조에서 흔들리지 않고 55 °C에서 1 시간 동안 배양하십시오. 샘플의 pH는 ≥ 12이어야 한다. 높은 pH는 CoA 티에스테르를 가수분해하는 데 중요하며 필요한 경우 KOH의 추가 aliquots로 조정할 수 있습니다.</li>
	</ol>
</li>
	<li>수확 배양 세포는 낮은 속도로 원심분리에 의해 현탁액에서 성장: 4°C에서 6 분 동안 136 x g. 얼음으로 차가운 PBS로 한 번 씻은 다음 찬물로 다시 잠시 씻은 다음, 마침내 2.5 mL의 차가운 물과 400 μL 0.25 M KOH로 다시 일시 중단하십시오. 전술한 바와 같이 55°C에서 격렬하게 혼합하고 배양한다.</li>
	<li>1M Trizma-HCl 160 μL과 100 mMMBBr의 10 μL을 추가하고 10초 동안 높은 와류로 섞습니다. 이것은 자유 CoA를 가진 mBBr 반응을 지원하기 위하여 대략 8에 pH를 가져옵니다. mBBr이 CoA의 티올과 반응하도록 암흑에서 2시간 동안 실온에서 샘플을 덮고 배양한다.</li>
	<li>아세트산 100 μL을 추가하고 반응을 멈추기 위해 10s의 높은 와류로 혼합하십시오.</li>
	<li>침전된 세포 파편을 제거하기 위해 15 분 동안 2,000 x g의 원심 분리기.</li>
	<li>아래에 설명된 SPE 컬럼 정리를 위해 유리 시험관에서 상급자를 제거하고 저장합니다.</li>
</ol>4. 조직에서 CoA의 추출 및 유도
<ol><li>동물 조직 조각을 약 0.5 cm 직경 이하의 해부하고 흡수성 종이에 짧게 (1-2 s)를 얼룩을 한 다음 액체 질소에 얼린 다음 처리 될 때까지 -80 °C에서 보관하십시오. 조직의 CoA는 가수 분해되거나 동결되지 않을 경우 티오에스테르로 변환됩니다. 이 단계는 조직에서 CoA의 최대 수율을 얻는 것이 중요하다.</li>
	<li>분석을 시작하기 전에 냉동 조직 조각 (5 - 60 mg)을 신속하게 계량하고 각 샘플의 무게를 기록하십시오. 이 습식 중량 측정은 HPLC 정제 다음의 CoA 함량 계산에 사용됩니다. 조직 조각의 완전한 해동을 피하십시오.</li>
	<li>로터-스테이터 균질화기로 프로브 및 조직 파괴를 삽입하기 위해 향하는 유리 시험관(예: 13 mm x 100mm 일회용)에 2 mL의 1 mL을 추가합니다. 튜브를 얼음 위에 보관하여 사용할 때까지 보관하십시오. 이것은 샘플이 차가운 온도에서 균질화되고 CoA가 균질화 중에 발생하는 열로 인해 파괴되지 않도록하기 위해 수행됩니다.</li>
	<li>30s에 대한 유리 시험관 (차가운 1 mM KOH 함유)에서 조직 (30 – 40 mg)을 전달 및 균질화하십시오.</li>
	<li>0.25 M KOH의 500 μL을 추가; 10 초 동안 높은 에 소용돌이 모든 샘플균질화 될 때까지 얼음에 유지. 이것은 총 CoA (무료 CoA + 가수 분해 CoA 티에스테르)를 산출하기 위해 CoA 티에스테르를 가수 분해하기 위해 12 이상의 샘플의 pH를 가져올 것이다.</li>
	<li>가수 분해를 지원하기 위해 흔들리지 않고 수조에서 55 °C에서 2 시간 동안 샘플을 배양하십시오.</li>
	<li>150 μL의 1M Trizma-HCl 및 10 0 mMMBr의 10 μL를 추가하십시오; 10초 동안 높은 소용돌이. 이것은 자유 CoA를 가진 mBBr 반응을 지원하기 위하여 대략 8에 pH를 가져옵니다.</li>
	<li>모든 CoA가 mBBr로 유도되도록 어둠 속에서 2 시간 동안 실온에서 샘플을 인큐베이션합니다.</li>
	<li>100 μL의 아세트산과 와류를 높은 위에 넣고 10s를 첨가하여 반응을 멈추십시오.</li>
	<li>2,000 x g에서 15 분 동안 펠릿 침전 세포 파편.</li>
	<li>SPE 컬럼 정리를 위해 유리 시험관에서 상급자를 제거하고 저장하십시오(아래에 설명됨).</li>
</ol>5. 고체 상 추출 (SPE) 열을 가진 견본 정리
<ol><li>실온에서, 각 일회용 2-(2-pyridyl)-에틸 실리카 겔 컬럼(1 mL 크기)을 세척 완충액 1mL로 평형화하여 피리딜 작용제가 양성자화되고 음이온 교환기로서 기능할 수 있도록 합니다. 2-(2-피리딜)-에틸 실리카 겔은 기본 pH에서 CoA-바이마네에 이상적인 약한 음이온 교환기이다. 2-(2-피리딜)-에틸 실리카 겔은 pKa를 6이고 용출은 pH ≥7을 수행한다.</li>
	<li>샘플 상급자(4.11단계)를 컬럼에 추가하고 용리액을 수집합니다.</li>
	<li>1 mL의 워시 버퍼로 컬럼을 두 번 씻어 보유되지 않은 종을 제거하십시오.</li>
	<li>1 mL의 물로 컬럼을 한 번 씻으시고.</li>
	<li>1 mL의 용출 완충액으로 컬럼을 별도의 유리 시험관(12 mm x 75 mm)으로 2회 세척하여 CoA-bimane을 수집하였다.</li>
	<li>건조 건조 질소 가스 에서 튜브에서 건조 CoA-bimane 샘플. 건조된 시료는 추가 사용 시까지 실온에서 안정적입니다. 밀봉 하 고 튜브를 완전히 덮고 보관 하십시오.</li>
	<li>HPLC 분석을 위해 준비되면 300 μL의 물에 시료를 다시 일시 중단하고 10초 동안 높은 와류로 격렬하게 혼합합니다.</li>
	<li>재중단된 샘플을 원심분리기 튜브 필터(0.22 μm 셀룰로오스 아세테이트, 2 mL 크기)로 옮기고, 10분 동안 5,000 x g에서 원심분리기를 사용하여 침전제를 제거합니다.</li>
	<li>여과된 샘플을 HPLC 주입에 적합한 유리 병으로 이송합니다.</li>
</ol>6. CoA-bimane의 HPLC 정제 및 측정
<ol><li>버퍼를 준비합니다. 완충A: 50 mMKH2PO4,pH 4.6; 버퍼 B: 아세토니트릴(옵티마 그레이드).</li>
	<li>HPLC 시스템의 전원을 켜는 것입니다. 참고: 당사 실험실의 HPLC 시스템은 2489 자외선 가시(UV-Vis) 흡광도 검출기와 Empower 3 소프트웨어로 제어되는 2475 형광 검출기가 장착된 Waters e2695 분리 모듈입니다. 이 시스템에는 자동 샘플 인젝터도 있습니다.</li>
	<li>제미니 C18, 3 μm 100 Å, 4.6 mm x 150 mm 컬럼을 0.5 mL/min의 유량으로 사용하여 각 샘플(예를 들어, 20 μL)을 주입합니다. 기둥 온도는 25°C입니다. λ393 nm에서 UV/가시 검출기 흡광도를 측정하고 λex = 393 nm, λem = 470 nm에서 형광 검출을 측정합니다. 보존 시간은 각 샘플 세트 앞에 CoA-bimane 표준 곡선을 실행하여 결정됩니다.</li>
	<li>각 샘플에 대한 CoA-bimane 피크 아래 의 면적을 기록하고 표준 곡선과 비교하여 HPLC 컬럼에 주입된 CoA-bimane의 pmol을 계산합니다. CoA-bimane 흡광도 표준 곡선은 조직 샘플에 사용되며, CoA-bimane 형광 표준 곡선은 조직 배양 샘플에 사용됩니다.</li>
	<li>CoA-bimane 값이 각 샘플에 대한 총 CoA를 나타내므로, 배양 시료에 대한 생존 가능한 세포의 수로 정규화하거나, 조직 샘플에 대한 mg 습식중량(그림 6). 또는, 각 샘플에 대한 DNA 또는 단백질 함량에 대한 정규화 다음 총 CoA 값을 계산합니다. DNA 또는 단백질 함량은 KOH 첨가 전에 시료 제제 동안 제거되는 샘플 aliquots를 사용하여 별도로 결정될 수 있다.</li>
</ol>

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MWF, CS 및 SJ는 논문을 썼고, MWF 및 CS는 데이터와 수치를 제공했으며, COR는 실험을 설계하고 원고를 비판적으로 검토했습니다. SJ와 COR는 이 문서에서 언급한 PZ-2891 화합물을 다루는 세인트 주드 어린이 연구 병원이 보유한 "판토테네이트 키나아제의 소분자 변조기"(PCT/US17/39037) 출원 중인 특허 출원에 대한 발명자입니다.

여기서 우리는 흡수 또는 형광 출력 검출기를 가진 HPLC가 있는 많은 실험실에서 접근할 수 있는 광범위한 선형 검출을 가진 세포 및 동물 조직에서 총 CoA를 정량화하기 위한 신뢰할 수 있는 단계별 절차를 보여줍니다. 양자택일로, 질량 분석법은 CoA와 CoA 티에스테르를 평가하기 위한 일반적인 기술입니다, 그러나 계측의 비용 및 방법론의 발달 및 데이터의 해석을 위해 요구된 전문화한 지식 때문에 널리 이용되지 않습니다. 질량 분석법에서 자유 CoA의 정량화를 위한 내부 표준으로 사용하기에 적합한 동위원소 표지 CoA는 상업적으로 사용할 수 없으며, 무료 CoA는 아세틸-CoA와 같은 CoA 티에스테르와 동일한 감도를 가진 기기에 의해 검출되지 않습니다. 따라서 출력 데이터를 CoA 표준 교정 곡선과 비교하지 않는 한 자유 CoA 수준은 질량 분석법에 의해 과소 평가되는 경우가 많습니다.
우리는 우리의 실험실에서 이전에 사용 된 다른 방법으로 여기에 설명 된 방법을 비교하고 마...

코엔자임 A (CoA)는 모든 살아있는 유기체의 필수 보조 인자이며 판토테네이트 (판토테닉 산의 소금) 또는 비타민 B5라고도하는 판토테산산에서 합성됩니다. CoA는 아세테이트와 숙시네이트와 같은 짧은 사슬 산, 프로피오네이트 및 메틸말로네이트와 같은 분기 사슬 산, 팔미테이트 및 올레테이트와 같은 긴 사슬 지방산, 매우 긴 사슬 지방산과 같은 유기산의 주요 세포 내 담체입니다. 고도 불포화 지방산, 및 valproic 산과 같은 xenobiotics. 유기산은 CoA와 동위적으로 티오에스테르 연계를 형성하여 중간 물질 대사에서 100개 이상의 반응에서 기질로서의 사용을 가능하게 한다1. CoA 티에스터는 또한 알로스테릭 조절제 및 전사 활성제입니다. 그것은 지금 평가2 셀룰러 총 CoA 공급규제3,4; 따라서, CoA 가용성은 제한될 수 있고, CoA 결핍은 CoA생합성5에영향을 미치는 유전적 무질서에 의해 예시된 바와 같이 치명적일 수 있다. 판토테네이트 키나아제는 CoA 생합성의 첫 번째단계(도 1)와판토테네이트 키나아제 관련 신경변성, PKAN이라고 불리며, PANK2 유전자6의돌연변이에 의해 유발된다. COASYN 유전자에 의해 인코딩된 CoA 신타제는 CoASYN 유전자의 마지막 두 단계를촉매(그림 1)및 COASY 단백질 관련 신경 변성이라고 하며, COASYN 유전자7의돌연변이에 의해 유발된다. PKAN과 CoPAN 은 모두 뇌의 철분 축적과 관련된 신경 퇴행성 질환과 CoA 결핍이 질병 병리의 밑에 유전됩니다.
총 CoA의 세포 수준은조직 8및 총 CoA가 다양한 생리학적, 병리학적 및 약리학적 상태 하에서 증가 또는 감소할 수 있다. 간 CoA는 공급 상태에서 급식 상태9로연료 전환 시 증가하고, 간 CoA 수준은 렙틴 결핍 비만 마우스10에서비정상적으로 높다. 간 CoA는 만성 에탄올 섭취에 반응하여감소11. Pank2 녹아웃 마우스 모델에서뇌 CoA 수준은 주산기 동안 우울하지만, 이후 성인 단계에서 뇌 CoA 함량은 야생형 수준과 동일하며, 개발 시 적응형 CoA 반응을 나타낸다12. 유전자 발생 또는 유전자 전달 방법에 의한 조직 CoA 함량의 조작은 대사 및 신경 기능에 영향을 미치는13,14,15. PKAN 또는 CoPAN에 대한 잠재적 치료법의 전임상 개발은 효능16,17,18,19,20의 지표로서 세포 또는 조직 CoA 측정을 포함한다. . 이러한 모든 조건및 이들의 대사 또는 기능적 결과에 대한 평가는 총 CoA의 측정을 위한 정량적 방법을 요구한다.
생물학적 시료에서 CoA를 측정하기 위한 정확하고 신뢰할 수 있는 분석방법은 많은 실험실에서 기술적 과제입니다. 불행하게도, 천연 CoA 티에스테르의 유사체가 효소21을활용하는 CoA 에스테르의 연구에서 기계론적 프로브로 널리 사용되어 왔지만, 손상되지 않은 세포에서 CoA 또는 CoA 티에스테르를 평가하거나 정량화하는 데 사용할 수 있는 프로브는 없습니다. CoA의 변환, 자유 설피 드릴 (-SH) moiety, CoA 티오 에스터 (또는 그 반대의 경우도 마찬가지)는 다른 환경으로 전송하는 동안 세포 또는 동물 조직에서 신속하고 세포 용해 동안. 세포에 있는 수많은 acyl-CoA 합성및 아실 CoA 티에스테르아제는 CoA 풀 내의 상호 변환을 중재하고, 기질로 CoA 티에스테르를 이용하는 추가 효소는 화학적 또는 물리적으로 담금질될 때까지 생물학 견본에서 활성 상태로 남아 있습니다 의미. 아실 트랜스퍼라제에 의한 CoA에서 카르니틴으로의 아실-그룹의 오프로딩은 CoA/CoA 티오에스테르 분포를 변경할 수 있는 반응 네트워크 내의 한 예입니다. 방사성 추적자는 세포에서 CoA 합성의 속도를 측정하는 데 사용할 수 있습니다. 생물학적 샘플에서 CoA 및 CoA 유도체를 측정하는 현재 의 방법은22를 검토되었으며 결합된 효소 분광광도 분석법, 고압 액체 크로마토그래피 및 질량 분광법 기반 절차를 포함합니다. 그러나, 이러한 방법은 종종 특정 CoA 분자 종에 초점을 맞추고 전체 CoA 풀의 변화에 장님입니다. 결합된 효소 해석은 일반적으로 낮은 검출 감도로 인해 더 많은 양의 입력 물질을 필요로 하며 선형성이 제한적입니다.
우리의 실험실은 배양 된 세포와 동물 조직에서 총 CoA를 정량화하기위한 신뢰할 수있는 절차를 개발했습니다. 이 전략에는 CoA 종의 전체 스펙트럼을 유지하고 분석하기 위한 노력을 하기보다는 시료 준비 중에 무료 CoA만 을 산출하는 모든 CoA 티에스테르의 가수분해가 포함됩니다. 이 절차는 샘플 준비, CoA 유도화, 고압 액체 크로마그래피(HPLC) 및 흡광도에 의한 유도된 CoA의 정량화에 따른 개별 공표 방법의 편집입니다. 형광 검출23,24,25. 이 절차를 사용하여 얻은 CoA 결정은 CoA 규정의 우리의 이해와 CoA 결핍의 처리를 위한 치료 접근의 발달을 가능하게 했습니다.

<table><tbody><tr><td>2-(2-피리딜)-에틸 실리카 겔 SPE 컬럼</td><td>Millipore-Sigma</td><td>54127-U</td><td></td></tr><tr><td>코엔자임 A</td><td>Avanti 극성 지질</td><td>870700</td><td></td></tr><tr><td>쌍둥이자리 C18 3 &mu; 남 100 &Aring; HPLC 컬럼</td><td>Phenomenex</td><td>00F-4439-E0</td><td></td></tr><tr><td>모노브로모비만 ThermoFisher</td><td>Scientific</td><td>M-1378</td><td></td></tr><tr><td>옴니팁 프로브 조직 파괴자</td><td>Omni International</td><td>32750H</td><td></td></tr><tr><td>파라필름</td><td>Fisher</td><td>S37440</td><td></td></tr><tr><td>PowerGen 125 전동 로터 고정자 균질기</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>NC0530997</td><td></td></tr><tr><td>Spin-X 원심분리기 튜브 필터</td>, <td>CoStar</td><td>8161</td><td></td></tr>, <tr><td>Trizma-HCl</td>, <td>Fisher</td><td>T395-1</td><td></td></tr>, <tr><td>Waters 2475, 형광 검출기</td>, <td>Waters</td><td>2475</td><td></td></tr>, <tr><td>Waters 2489, UV-Vis 검출기</td>, <td>Waters</td><td>2489</td><td></td></tr>, <tr><td>Waters e2695, 분리 모듈</td>, <td>Waters</td><td>e2695</td><td></td></tr></tbody></table>

세포와 조직에서 코엔자임 a의 정량화

Quantification of Coenzyme A in Cells and Tissues

신흥 연구는 세포 코엔자임 A (CoA) 공급이 성장, 신진 대사 및 생존에 해로운 영향을 미치는 제한될 수 있음을 밝혔습니다. 세포 CoA의 측정은 상대적으로 낮은 풍부함과 무료 CoA를 CoA 티에스테르로의 동적 변환으로 인해 도전이며, 차례로 수많은 대사 반응에 참여합니다. 많은 생물 의학 실험실에서 사용하기에 적합한 검출의 넓은 선형 범위와 분석법을 산출하기 위해 샘플 준비 동안 잠재적 인 함정을 탐색하는 방법이 설명된다.

배양 된 세포 및 조직에서 총 CoA의 검출을위한 비교적 빠르고 신뢰할 수있는 방법은 mBBr을 사용하여 형광제에 CoA의 티올을 유도한 다음 역상 HPLC를 사용하여 유도 된 CoA-bimane을 정제함으로써 개발되었습니다. 표준 곡선이 먼저 생성되고, 여기서 CoA-bimane 표준의 알려진 양이 개별적으로 주입되고 CoA-bimane 크로마토그램의 피크 아래 영역이 입력 CoA-bimane의 함수로서 플롯됩니다(그림4). CoA-bimane은 λ393 nM에서 흡수 최대를 가지며 대표적인 HPLC 프로파일은 표 1의용출 프로그램을 사용하여 C18 HPLC 컬럼상에서 CoA-bimane 표준의 유지 시간을 나타낸다(그림3). 흡광도 또는 형광 단위를 측정하여 검출된 CoA-bimane의 대표적인 표준 곡선은 그림 4A</s...

이 방법은 배양 된 세포 및 동물 조직에서 샘플 준비를 설명하고, 샘플에서 코엔자임 A의 추출 및 유도체화를 설명하고, 유도된 코엔자임 A의 정제 및 정량화를 위한 고압 액체 크로마토그래피를 흡광도 또는 형광 검출.

세포와 조직에서 코엔자임 A의 정량화

Emerging research has revealed that the cellular coenzyme A (CoA) supply can become limiting with a detrimental impact on growth, metabolism and survival. ...

Coa라고 불리는 Coenzyme A는 세포 대사의 중요한 보조 요소입니다. 정량적 측정은 동물 모델의 영양 및 호르몬 상태에서 발생하는 변화를 보여줍니다. 이 방법은 간단하고 신뢰할 수있는 방법으로 CoA 파생 상품 및 무료 CoA를 포함한 셀룰러 CoA의 총 양을 양량.뇌 철 축적과 신경 변성의 여러 유형은 CoA 생합성 경로의 유전자에 있는 돌연변이와 연관됩니다. 이 방법은 모든 유기체가 생존, 성장 및 기능에 대한 CoA를 필요로하기 때문에 모든 생물학적 시스템에 적용 될 수있다. 처음 연구원은 시료를 절대적으로 차갑게 유지하고 수산화 칼륨으로 신속하게 옮기는 것이 중요한 샘플 준비의 첫 번째 단계로 어려움을 겪을 수 있습니다.수산화칼륨으로 옮기기 전에 일괄 처리된 시료수를 제한하고 실험 용 시료로 작업하기 전에 이송과 함께 연습합니다. 많은 연구원은 나중에 생화확적인 분석을 위한 생물학 견본의 준비에 있는 고체 상 추출에 익숙하지 않습니다. 우선, 배양 접시를 병렬로 배양, 생화학 적 분석을 위한 2개, 실행 가능한 세포 수의 측정을 위한 요리인배기를 배양하는 배구를 배양한다.배양이 후기 하위 밀도에 접근할 때, 예를 들어, 인간 HepG2/C3A 세포는 6~8배 의 밀도로 성장하여 6또는 HEK 293T 세포의 밀도로 성장하여 100mm 당 7배 에서 약 1.3배 의 밀도로 성장하여 배양에서 부착세포를 수확한다. 그런 다음, 같은 문화 요리에 얼음 차가운 물 1 밀리리터를 추가합니다. 식기의 차가운 물에 세포를 긁어 내고, 세포 현탁액을 0.25-어금니 칼륨 수산화칼륨과 1.5 밀리리터의 물 400마이크로리터를 포함하는 유리 시험 관으로 이송하여 12 위에 pH를 가져온다.10초 동안 높은 에서 소용돌이를 통해 서스펜션을 적극적으로 섞습니다. 그런 다음 파라핀 필름으로 단단히 덮고 수조에서 흔들리지 않고 1 시간 동안 섭씨 55도에서 배양하십시오. 그런 다음 1개의 어금니 트리즈마-염산염 용액 160마이크로리터와 100밀리마일러 mBBr의 10마이크로리터를 추가합니다.10초 동안 높은 에서 소용돌이에 섞으세요. 이것은 무료 CoA와 mBBr 반응을 지원하기 위하여 대략 8에 pH를 가져옵니다. 파라핀 필름으로 튜브를 덮고, mBBr이 CoA의 티올과 반응하기 위해 어둠 속에서 2 시간 동안 실온에서 샘플을 배양합니다.2시간 후, 아세트산 100마이크로리터를 넣고 10초 동안 소용돌이하여 반응을 멈춥시다. 튜브의 강수량 은 형성됩니다. 다음으로 원심분리기는 2, 000배 g에서 15분간.침전된 세포 이물질을 제거하려면, 고체 위상 추출 컬럼 청소를 위해 유리 시험관에 상체물을 이송하고 저장한다. 분석을 시작하기 전에, 로터 -stator 균질화로 프로브와 조직 중단의 삽입을 위해 설계된 유리 테스트 튜브에 1 밀리머 칼륨 수산화칼륨의 두 밀리리터를 추가합니다. 튜브를 사용할 때까지 얼음 위에 보관하십시오.냉동 조직 조각을 빠르게 계량하고 각 샘플에 대한 젖은 무게를 기록합니다. 조직을 유리 튜브로 옮기고 조직을 30초 동안 균질화합니다. 조직의 완전한 해동을 피하십시오.수산화 칼륨 0.25-마이크로리터 500개추가. 10 초 동안 높은 소용돌이, 얼음에 유지. 이것은 총 CoA를 산출하기 위하여 CoA 티오에스테르를 가수분해하기 위하여 위의 견본의 pH를 12를 가져옵니다.파라핀 필름으로 튜브를 덮습니다. 배양 된 세포의 준비와 조직의 준비는이 절차에서 가장 중요한 단계입니다. CoA 분해를 방지하기 위해 수산화 칼륨을 신속하게 추가하는 것이 중요합니다.수조에서 2시간 동안 55도의 시료를 배양하여 가수분해를 지원합니다. 그런 다음, 1-m-mBBr 150 마이크로리터와 100밀리머 mBBr의 마이크로리터를 추가하여 무료 CoA로 mBBr 반응을 지원하기 위해 pH를 약 8개에 넣습니다. 10 초 동안 높은 소용돌이.파라핀 필름으로 튜브를 덮고 모든 CoA가 mBBr으로 파생되도록 어둠 속에서 2 시간 동안 실온에서 샘플을 배양합니다. 그 후, 아세트산의 100 마이크로 리터를 추가하고, 반응을 중지10 초 동안 높은 에 소용돌이. 원심분리기는 15분 동안 2, 000배 g에서 침전된 세포 이물질을 펠릿하고, 상체를 유리 시험관으로 이송하여 고체 상 추출 컬럼 을 정화한다.실온에서, 각 1밀리리터 일회용 2-2-pyridyl-ethyl 실리카 젤 컬럼을 1밀리리터의 세척 버퍼로 평형하여 피리딜 기능성 그룹이 양성되고 음이온 교환기로 작동하도록 합니다. 그런 다음 샘플 상체를 기둥에 피펫하고 용액을 수집합니다. 세탁 버퍼 1밀리리터로 컬럼을 두 번 씻고, 한 번은 1밀리리터의 물로 씻어 유지되지 않은 종을 제거합니다.다음으로, 별도의 유리 테스트 튜브로, CoA-bimane을 수집하기 위해 용출 버퍼 1 밀리리터로 컬럼을 두 번 세척합니다. 질소 가스 하에서 튜브에서 CoA-bimane 샘플을 건조시. 밀봉하고 튜브를 완전히 덮고 영하 20도에 보관하십시오.HPLC 분석을 위해 준비되면 300 마이크로리터의 물에서 샘플을 다시 중단하고 10초 동안 높은 에서 소용돌이를 통해 적극적으로 섞습니다. 리펜시프튜브 필터로 재중단된 샘플을 옮기고, 원심분리기를 10분 동안 5, 000배 g에서 전달하여 침전제를 제거합니다. 이어서, 여과된 시료를 HPLC 주입에 적합한 유리 유리 바이알로 이송한다.이 연구에서는 대표적인 HPLC 프로파일이 C18 HPLC 열에서 CoA-bimane 표준의 보존 시간을 보여줍니다. CoA-bimane 표준의 증가양은 개별적으로 주입되었고, CoA-bimane 크로마토그램의 피크 아래 영역은 입력 CoA-bimane의 함수로 플롯되었다. 표준 곡선은 393 나노미터의 파장에서 CoA-bimane의 흡광도의 크기를 반영했다.CoA-bimane의 형광은 또한 393 나노미터의 내분 파장 및 470 나노미터의 방출 파장에 반영되었다. 마우스 간 또는 인간 배양 C3A 세포에 대한 후속 HPLC 분리 및 전형적인 검출 프로파일은 용출 프로그램을 사용하여 11 분에서 12 분 사이의 유지 시간으로 빨간색 피크로 여기에 표시됩니다. mBBr과의 반응이 검출 가능한 결과를 산출하지 않으면, Trizma-HCl의 양은 pH를 약 8으로 낮추기 위해 조정되어야 할 수도 있다.비마네 유도체로서 설피드릴 또는 티오에스테르 모이티를 함유하는 추가 세포 분자를 검출할 수 있다. 예를 들어, 글루타티온-비마네는 HPLC 방법으로 검출될 수 있다. 이 기술은 그밖 연구원이 타입-2 당뇨병의 동물 모형과 같은 신진 대사 불균형과 관련되었던 CoA 기능 장애의 잠재적인 역할을 조사하는 것을 허용할 것입니다.연구원은 고체 상 추출에 사용되는 유기 용매로 작업 할 때 개인 보호 장비를 사용해야합니다.

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