2025년 4월 25일
Acinetobacter baumannii의 빠르고 정확한 검출을 촉진하기 위해 A. baumannii 감염을 식별하기 위해 LbaCas12a 엔도뉴클레아제와 함께 Recombinase Polymerase Amplification(RPA)을 사용하는 프로토콜을 제시합니다.
제 연구는 호흡기 질환과 감염에 중점을 두고 있습니다. 이 분야에서 발전하고 있는 현재 기술과 전체 프로젝트 분야의 연구 격차를 다룰 것입니다. 여기서 이야기하는 주요 기술에는 차세대 시퀀싱, CRISPR, 단일 세포 RNA 시퀀싱 및 장기 분석 모델이 포함됩니다. 그들은 표준 심장 질환에 대한 진단과 관련하여 어려운 수치를 가지고 있으며 더 나은 치료법을 제시합니다. 내 프로토콜은 Acinetobacter baumannii의 신속하고 특이적인 검출에 대한 필요성을 해결하여 시간이 많이 걸리고 배양 기반 기술과 같은 현재 진단 문제의 한계를 극복합니다.
[해설자] 시작하려면 표준 설계 원칙에 따라 프라이머 설계 도구를 사용하여 12쌍의 프라이머를 설계합니다. 4개의 순방향 프라이머와 3개의 역방향 프라이머를 얻어 12개의 프라이머 쌍을 구성합니다. National Center for Biotechnology Information의 Primer-BLAST 도구를 사용하여 각 프라이머 쌍의 특이성과 효능을 평가합니다. 그런 다음 LbaCas12a CRISPR RNA 스캐폴드 서열을 고정 서열로 사용하여 CRISPR RNA 또는 가이드 RNA 또는 gRNA를 설계합니다. 표적별 세그먼트를 통합하여 프로토스페이서 인접 모티프 또는 PAM이 비상보적 가닥의 5-프라임 말단에 위치하도록 합니다. 양성 재조합 플라스미드의 구성을 위해 먼저 정방향 및 역방향 프라이머 세트를 사용하여 Acinetobacter baumannii 16S rDNA 세그먼트를 증폭합니다. 화면에 표시된 대로 50마이크로리터 PCR 반응 혼합물을 준비합니다. PCR 기계에서 PCR 사이클링 조건을 설정합니다. 양성 PCR 산물을 정제한 후 BamHI 및 SalI 효소로 분해된 PUC57 벡터로 복제합니다. 양성 재조합 플라스미드를 멸균된 이중 증류수로 10배 단위로 연속적으로 희석합니다. 추가 실험을 위해 희석된 플라스미드를 섭씨 영하 20도에서 보관합니다. 다음으로, 프라이머가 없는 재수화 완충액, A. baumannii의 정방향 및 역방향 프라이머, 이중 증류수를 최종 부피 465마이크로리터로 혼합합니다. RPA 키트에서 효소 반응 튜브로 옮기기 전에 혼합물을 소용돌이치고 잠시 회전시킵니다. 완전히 섞고 25마이크로리터의 280밀리몰 아세테이트 마그네슘을 추가합니다. 다음으로, 마이크로리터당 10⁷ 카피를 포함하는 양성 재조합 플라스미드 1마이크로리터를 서로 다른 프라이머 쌍이 있는 용액 A에 피펫팅합니다. 용액을 섭씨 39도에서 20분 동안 배양합니다. 그런 다음 RPA 정제 키트를 사용하여 증폭된 산물을 정제합니다. 정제된 제품을 120볼트의 1% 아가로스 겔에 10분 동안 실행하여 가장 밝고 넓은 밴드를 가진 프라이머 쌍을 식별합니다. RPA 증폭 시스템을 최적화하려면 용액 A의 최종 부피를 465마이크로리터로 조정하면서 다른 모든 반응 성분의 농도를 일정하게 유지합니다. 그런 다음 적절한 양의 RNA가 없는 이중 증류수를 첨가하여 주어진 최종 프라이머 농도를 얻고 배양합니다. RPA 생성물을 정제 및 전기영동한 후 밴드 강도 및 분포를 분석하여 최적의 프라이머 농도와 배양 시간을 식별합니다. 용액 B를 준비하려면 단일 가닥 DNA 리포터, CAST12a 반응 완충액, CRISPR RNA CAST12a 및 이중 증류수를 최종 부피 15마이크로리터로 혼합합니다. 5마이크로리터의 재조합효소 중합효소 증폭 또는 RPA 산물을 용액 B에 첨가하고 균질해질 때까지 완전히 혼합합니다. 샘플을 형광 정량 PCR 기기에 넣습니다. 특이성 테스트를 위해 참조 DNA 추출 키트를 사용하거나 박테리아를 물에 끓여 다양한 종의 DNA 주형을 얻습니다. 물을 음성 대조군으로 사용하십시오. 10나노그램 또는 1마이크로리터의 DNA 주형을 정방향 및 역방향 프라이머가 포함된 용액 A로 옮깁니다. 그런 다음 280밀리몰 아세테이트 마그네슘 25마이크로리터를 피펫팅합니다. 잘 섞고 섭씨 39도에서 20분 동안 배양합니다. 배양 후, 반응 생성물 5마이크로리터를 용액 B에 첨가하고 혼합합니다. 샘플을 형광 정량 PCR 기기에 넣습니다. 채널을 FAM으로 설정하고 총 60분 동안 섭씨 39도에서 매분 형광 신호를 읽습니다. RPA-CRISPR CAST12a 기반 검출 플랫폼의 감도 평가를 위해 마이크로리터당 1 - 10⁷ 카피 범위의 농도로 희석된 양성 재조합 플라스미드를 반응 주형으로 사용합니다. 물을 음성 대조군으로 사용하십시오. 플라스미드를 용액 A로 옮기고 아세테이트 마그네슘을 첨가한 다음 앞서 설명한 대로 배양합니다. 배양하고 용액 B로 옮긴 후 형광 부호를 읽으십시오.알. 프라이머 쌍 F3-R3는 재조합효소 중합효소 증폭에 가장 효과적인 것으로 확인되었으며, 아가로스 겔 전기영동에서 가장 밝고 밀도가 높은 밴드를 나타냅니다. 증폭을 위한 최적의 프라이머 농도는 0.44마이크로몰로 결정되었으며, 최적의 반응 시간은 20분이었습니다. CRISPR RNA1의 형광 강도는 시간이 지남에 따라 증가한 반면 CRISPR RNA2는 증가하지 않았기 때문에 A. baumannii 검출을 위해 CRISPR RNA1이 선택되었습니다. 특이성 분석 결과 A. baumannii 검출기 시스템이 A. baumannii DNA를 독점적으로 검출했으며 다른 박테리아 DNA 샘플에 대해서는 형광이 관찰되지 않았음을 확인했습니다. 이 시스템은 DNA 마이크로리터당 1개의 사본을 감지할 수 있어 매우 민감합니다. 측면 흐름 스트립 분석은 검출 방법의 높은 특이성을 확인했으며 다른 박테리아 종과의 교차 반응성을 보여주지 않았습니다. A. baumannii 분석은 마이크로리터당 10⁷ 카피에서 마이크로리터당 단일 카피까지 희석 전반에 걸쳐 DNA를 성공적으로 검출하여 UV 광선 하에서 견고성을 확인했습니다.
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이 연구는 LbaCas12a 엔도뉴클레아제와 결합된 재조합효소 중합효소 증폭(RPA)을 사용하여 아시네토박터 바우만니를 신속하고 정확하게 검출하는 프로토콜을 제시합니다. 이 방법은 전통적인 진단 기술의 한계를 해결하고, 감염을 식별하는 보다 효율적인 접근 방식을 제공합니다.
Rapid and specific detection of Acinetobacter baumannii is critical for translational infectious disease research and diagnostic assay development. The RPA/Cas12a-based system enables high-confidence identification of this pathogen, supporting early-stage target validation and reducing biological ambiguity in pipeline decisions. This approach enhances predictive value for downstream screening and portfolio triage in anti-infective R&D.
This RPA/Cas12a detection system integrates into the discovery-to-preclinical continuum for infectious disease diagnostics.