Name: 인간의 사후 뇌 조직에서 핵의 연결을 격리 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2008-10-01T00:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 58 s
Description: 학습하세요 인간 사후 뇌 조직에서 신경 세포 핵을 분리하는 방법을. 밀도 구배 원심분리와 유세포 분류술을 사용하여 순수한 신경 핵을 얻고 염색질 상호작용 연구에 활용할 수 있습니다.

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저자는 매사 추세츠 의과 대학의 대학에서 유동세포계측법 핵심 시설에서 박사 리차드 Konz 직원에서 제공하는 조언 및 기술 지원을 주셔서 감사합니다. 당뇨병 내분비학 연구 센터 부여 DK032520 지원의 핵심 자원도 사용되었습니다. 이 작품은 정신 건강의 국립 연구소 (NIMH), 약물 남용의 국립 연구소 (니다) 및 아동 보건 인간 발달의 국립 연구소에서 기금에 의해 지원됩니다.

핵 추출 <ol><li> douncer 5 ML의 용해 버퍼 1 냉동 사후 뇌 조직 250 MG를 넣어 얼음에 놓으십시오. 정렬 외과 이후 만 5 핵을 받게하기 위해, 우리는 일반적으로 샘플 당 조직 1000 MG를 사용합니다. </li><li> 조직은 해동되면, 동안 얼음에서 1 분 조직을 다운스. </li><li> 균질 조직을 가지고 15 ML 맑은 초원 심 분리기 튜브에 넣습니다. 얼음에 튜브를 넣어. </li><li> , 피펫과 자당 솔루션이 9 ML을 가지고 명확한 초원 심 분리기 튜브의 하단에있는 피펫을 놓고, 자당 솔루션 2 위에 균질 조직 솔루션 농도 기울기를 만들 자당 솔루션 2 릴리스. </li><li> 초원 심 분리기 내에서 회전하는 동안 그들이 모두 균형 수 있는지 확인하기 위해 초원 심 분리기 튜브의 무게를. 상단 레이어에 용해 완충액 1 추가하여 중량 어떤 조정합니다. </li><li> 튜브가 아무리 발버둥치고 후 회전자의 버킷으로 그들을 놓으십시오. </li><li> SW28 회전자에 모든 양동이를 놓고 조심스럽게 초원 심 분리기에 날개를 놓으십시오. </li><li> 4 2.5 시간 107163.6 RCF에서 샘플을 초원 심 분리기 ° C. </li><li> 원심 분리가 완료되면 튜브의 하단에있는 핵을 포함하는 펠렛을 방해하지 않도록주의하면서, 진공의 사용과 함께, 농도 기울기에서 발견된 파편의 계층과 함께 뜨는을 제거합니다. </li><li> 각각의 펠렛에 1X PBS 500 μL를 추가하고 20 분 동안 얼음에 앉아 보자. 이것은 펠릿가 쉽게 나중에 기계적 스트레스의 양을 핵 경험을 lessens하는, 그리고 아래로 pipetting하여 해산 수 있도록 자체에 약간 용해 수 있습니다. </li><li> 핵 20 분 동안 얼음에 incubated 후, 기계적으로 완전히 1XPBS 이내에 핵을 해산하기 위해 아래 피펫합니다. </li><li> 초원 심 분리기 튜브의 핵 함유 솔루션을 제거하고 하나 둘 ML의 microcentrifuge 관 두개의 튜브의 내용을 결합하여. 다시 얼음 샘플을 넣으십시오. </li></ol> 외과에 대한 Immunostaining <ol><li> 이 시점에서, 기본 및 보조 항체로 구성된 immunostaining 혼합을하고, 믹스를 차단. 각 예제, NeuN 항체, 0.5 % BSA와 10 % 정상 염소 1XPBS에 세럼, 그리고 알렉사 플루어 488 1 μL를 포함 차단 믹스, 100 μL의 1.2 μL를 포함 1XPBS 300 μL을 결합. 컨트롤 샘플, 기본 NeuN 항체를 제외하고, 대신, 더 많은 1XPBS를 추가합니다. </li><li> 소용돌이 어둠 속에서 실온에서 5 분 immunostaining 혼합물과 부화. </li><li> 얼룩 혼합물은 잠복기지만, 샘플 컨트롤을합니다. 혼자 핵을 포함, 샘플을 정렬 외과 들어, &quot;흠없는 컨트롤이&quot;필요라는, 두 번째 샘플, 부정적인 컨트롤을 기본 항체 NeuN도 필요없이 이차 항체 알렉사 플루어 488로 핵을 포함하는. </li><li> 부정적인 제어를위한 1XPBS의 980 UL을 포함하는 다른 두 ML 튜브에 흠없는 컨트롤에 대한 1XPBS, 다른 20 μL를 포함하는 2 ML의 microcentrifuge 관에 솔루션을 포함하고있는 핵의 나누어지는 20 μL. 의 볼륨 핵 함유 1XPBS 1 ML까지 다시 샘플을 올립니다. 모든 샘플은 얼음에 다시 배치됩니다. </li><li> immunostaining 혼합물은 잠복기 완료 했으니, 해당 샘플에 401 μL의 내용을 추가합니다. 부정적인 예제는 보조 항체 알렉사 플루어 488를 포함하는 혼합물을 받게됩니다 동안 핵의 샘플은, NeuN과 알렉사 플루어 488 모두를 포함하는 혼합물을 받게됩니다. </li><li> 45 분 동안 어둠 속에서 회전하는 차가운 방으로 샘플을 가져가라. </li><li> 샘플 45 분 동안 어둠 속에서 incubated 후, 얼음에 넣고 외과 시설에 그들을 데리고. 외과 시설에 전송하는 동안, 샘플은 얼음과 어둠에 보관해야합니다. </li></ol> 외과 <ol><li> 외과의 시설에서, 40 음 필터를 통해 샘플을 필터링합니다. 감기에 보관하면서 다음, 정렬 전에 예비 데이터를 얻기 위해서, 몇 분 동안 악기를 통해 그들을 실행합니다. </li><li> 이 시점에서, 그것은 정렬에 필요한 적절한 성문을 설정할 필요가 있습니다. 몇 가지 다른 종류의 게이트는 샘플하는 데 사용됩니다. 첫 번째 게이트는 샘플 내에서 발견된 다른 핵의 크기의 아이디어를 제공하고, 실제 핵의 파편 separatation 수 있습니다. 두 번째 게이트는 우리가 개별적으로 핵을 정렬할 수 있습니다. 폐기 모든 집합체는이 시점에서 무시됩니다. 마지막으로, 세 번째 게이트는 우리의 차 항체에있는 fluorochrome의 일치, 특정 형광 파장으로 설정됩니다. 이 게이트를 게재하면 우리 정렬할 수 있으며 따라서 별도의 NeuN의 +, NeuN부터의 연결을 핵 - 핵. </li><li> 모든 게이트가 선택되면 핵은 1XPBS으로 정렬할 수 있습니다. </li><li> 일단전체 예제를 통해 간, 악기를 통해 정렬 샘플의 나누어지는을 실행하여 일종의 순도를 확인하십시오. 샘플의 형광이 펼쳐 아니지만, 오히려 하나의 사분면에 포함된 있는지 확인합니다. 90 % 이상 순수 아르 샘플을 선택하는 것이 좋습니다. </li></ol> 외과 후 <ol><li> 일단 샘플이 시작할 수 있습니다 핵 처리 정렬되었습니다. 정렬 샘플 10 ML을 가지고 그것에 자당 솔루션 2, 1M CaCl 2 50 UL과 1m MG (에이스) 2 30 UL 2 ML를 추가합니다. 거듭 말씀 드리지만, 항상 핵이 수정되지 않은 있기 때문에 얼음에 샘플을 보관해야합니다. </li><li> 정렬 샘플 미만 10 ML가있다면, 1XPBS을 추가로 10 ML에 볼륨을 높이거나 적절하게 추가 자료를 조정합니다. </li><li> 15 분 샘플에게 얼음에 몇 시간과 장소를 반전. </li><li> 샘플은 15 분 동안 얼음에 incubated 후, 4에서 15 분 동안 1,786 RCF에서 스윙 버켓 로터에서 그들을 원심 분리기 ° C. </li><li> 튜브의 하단에있는 흰색 펠렛 방해하지 않고, 진공의 사용으로 뜨는 폐기하십시오. </li><li> 당신이 진행 실험에 필요한 어떤 솔루션을 200 μl의 펠렛을 디졸브, 그리고 위아래로 피펫합니다. </li><li> 작은 튜브에 솔루션을 전송하여 추가로 사용할 때까지 -80 ° C 냉장고에 넣습니다. </li></ol>

<ol><li>Siegmund, K. D., Connor, C. M., Campan, M., Long, T. I., Weisenberger, D. J., Biniszkiewicz, D., Jaenisch, R., Laird, P. W., Akbarian, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((DNA+methylation+in+the+human+cerebral+cortex+is+dynamically+regulated+throughout+the+life+span+and+involves+differentiated+neurons%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+ONE%22%5BJournal%5D)">DNA methylation in the human cerebral cortex is dynamically regulated throughout the life span and involves differentiated neurons.</a> PLoS ONE. 2, 895-895 (2007).</li>
<li>Jiang, Y., Matevossian, A., Huang, H. S., Straubhaar, J., Akbarian, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+of+neuronal+chromatin+from+brain+tissue%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Isolation of neuronal chromatin from brain tissue.</a> BMC Neurosci. 9, 42-42 (2008).</li>
<li>Spalding, K. L., Bhardwaj, R. D., Buchholz, B. A., Druid, H., Frisen, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Retrospective+birth+dating+of+cells+in+humans%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Retrospective birth dating of cells in humans.</a> Cell. 122, 133-143 (2005).</li>
<li>Acevedo, L. G., Iniguez, A. L., Holster, H. L., Zhang, X., Green, R., Farnham, P. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genome-scale+ChIP-chip+analysis+using+10%2C000+human+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Biotechniques%22%5BJournal%5D)">Genome-scale ChIP-chip analysis using 10,000 human cells.</a> Biotechniques. 43, 791-797 (2007).</li>
</ol>

여기에 제시 프로토콜이 더 일반적으로 epigenetic의 연결을 염색질의 변화와에 초점을 맞춘 연구에 특히 유용해야 정상적인 개발과 노화, 또는 신경 또는 정신 질환 중의 연결을 핵의 분자 표현형에. 잠재적인 노화의 과정에서 신경 세포 - 투 - glia의 배급에있는 교대 또는 질병에 의한 포함한 뇌 조직의 세포 이질이 우려 일아르 때 방법은 특히 장점입니다. 예를 들어, 염색질의 immunoprecipitation 기술과 함께 현재 정렬 프로토콜을 결합하여, 우리는 최근에 neurotrophic 요인 (BDNF) 유전자 프로 모터를 파생 두뇌에 신경 세포 특정 히스톤 methylation 패턴을 설명하고, 추가의 연결을 유전자 2. 유사한 방법을 회고 출산 데이트 3 성인 대뇌 피질의 뉴런를 수집하기 위해 이전에 사용했다. 정렬 기술은 또한 마우스 뇌 2 고용 때문에의 핵의 안정성의 냉동 당시 해동 조직을, 우리가 여기에서 제시한 접근 방식이 인류의 다양한 적용됩니다 것을 기대하고 ...

시약 : <table><tr><th colspan="3" align="left"> 1. 용해 완충액 </th></tr><tr><td> 0.32M </td><td> 자당 </td><td> 5.47 g </td></tr><tr><td> 5 MM </td><td> CaCl 2 </td><td> 250 μl </td></tr><tr><td> 3 MM </td><td> MG (아세테이트) 2 </td><td> 150 μl </td></tr><tr><td> 0.1 MM </td><td> EDTA (에틸렌 다이아 민 테트라 초산) </td><td> 10 μl </td></tr><tr><td> 10mM </td><td> 트리스 - HCL, pH8 </td><td> 500 μl </td></tr><tr><td> 1 ㎜ </td><td> DTT </td><td> 17 μl </td></tr><tr><td> 0.1 % </td><td> 트리톤 X - 100 </td><td> 50 μl </td></tr><tr><td colspan="3" align="center" style="padding:8px 0 16px 0"> Autoclaved 물로 50 ML에 볼륨을 조정 </td></tr></table><table><tr><th colspan="3" align="left"> 2. 자당 솔루션 </th></tr><tr><td> 1.8 M </td><td> 자당 </td><td> 30.78 g </td></tr><tr><td> 3 MM </td><td> MG (아세테이트) 2 </td><td> 150 μl </td></tr><tr><td> 1 ㎜ </td><td> DTT </td><td> 17 μl </td></tr><tr><td> 10 MM </td><td> 트리스 - HCL, pH8 </td><td> 500 μl </td></tr><tr><td colspan="3" align="center" style="padding:8px 0 16px 0"> Autoclaved 물로 50 ML에 볼륨을 조정 </td></tr></table><table><tr><th colspan="3" align="left"> 3. 버퍼 다운스 </th></tr><tr><td> 10 MM </td><td> 트리스 </td><td> 0.242 g </td></tr><tr><td> 4 MM </td><td> MgCl 2 </td><td> 0.163 g </td></tr><tr><td> 1 ㎜ </td><td> CaCl 2 </td><td> 0.03 g </td></tr><tr><td colspan="3" align="center" style="padding:8px 0 16px 0"> Autoclaved 물 200 ML로 산도 7.5과 볼륨을 조정 </td></tr></table>

인간의 사후 뇌 조직에서 핵의 연결을 격리

Neuronal Nuclei Isolation from Human Postmortem Brain Tissue

인간 두뇌의 뉴런은 태아 발달 동안 주로 postmitotic되며, 따라서 전체 수명에 걸쳐 그들의 핵을 유지합니다. 그러나, 약간은 개발과 노화 과정 동안의 연결 염색질과 핵 조직의 변화 또는 만성 neuropsychiatric 질병에 대해 잘 알려져 있습니다. 그러나, 대부분의 염색질과 DNA 기반 assays (물고기 이외의) 부족 단세포 해상도를 날짜합니다. 뉴런의 일반적으로 다양한 subpopulations가 glia 및 기타 비의 연결을 세포의 다른 종류의 혼합된 있기 때문에이를 위해, 뇌 조직의 상당한 이질 세포는 상당한 한계를 포즈. 한 가지 가능한 솔루션은 셀 타입의 특정 문화를 성장하는 것이지만, 신경을 포함하여 대부분의 CNS의 세포는, 몇 주 동안, 최고의, 지속 전직 생체내이며, 따라서 잠재적으로 전체 수명에 걸쳐 운영 epigenetic 메커니즘에 대한 불완전한 모델을 제공하는 . 여기, 우리는 냉동 (고정 절대) 인간의 사후 두뇌에서 핵을 추출하고 정화하는 프로토콜을 제공합니다. 방법은 안티 NeuN 항체와 ultracentrifugation 및 immunotagging 다음 hypotonic 용해 버퍼에서 핵의 추출을 포함합니다. 라벨의 연결 핵은 다음 형광 활성화 정렬을 사용하여 별도로 수집하고 있습니다. 이 방법은 인류의 다양한에서 뇌 영역에 적용 및 사이트 및 수정 - 특정 안티 - 히스톤 항체 및 DNA의 methylation과 다른 assays를위한과 염색질의 immunoprecipitation 연구에 적합해야합니다.

뇌 조직의 세포 이질은 대부분의 assays 단일 셀 해상도 부족하기 때문에 염색질의 epigenetic 자국의 연구에 대한 중요한 제한 포즈. 뉴런은 일반적으로 glia 및 기타 비의 연결을 세포와 혼합된 있습니다. 우리는 인간의 두뇌에서 핵의 연결을 추출하고 수집하는 프로토콜을 제공합니다.

인간 뇌의 뉴런은 주로 태아 발달 단계 동안 분열 후 상태(postmitotic)가 되며, 이에 따라 전 생애에 걸쳐 핵을 유지합니다. 하지만, ...

인간 뇌의 신경세포 특이적 유전자 발현을 조절하는 염색질 DNA 상호작용을 연구하기 위해서는, 먼저 순수한 신경세포 핵 집단을 확보해야 합니다. 사후 인간 뇌 조직을 균질화하고 밀도 구배 원심분리를 이용하여 전체 핵을 분리합니다. 그 다음, 유세포 분석 분리법을 통해 신경세포 특이적 항체로 표지된 핵을 분리하고, 최종적으로 초원심분리를 통해 농축합니다.안녕하세요, 저는 매사추세츠 대학교 의과대학 정신과 Sharon McBarian 박사 연구실의 Anish Matan입니다. 오늘은 사후 인간 뇌 조직에서 신경세포 핵을 분리하는 절차를 보여드리겠습니다. 그럼 시작하겠습니다.분리할 각 핵 샘플에 대해, 1,000 mg의 냉동 사후 뇌 조직에서 시작하십시오. 이 양으로 형광 활성 세포 분리(fluorescence activated sorting) 후 약 500만 개의 뉴런 핵을 얻을 수 있습니다. 핵 추출을 시작하려면 250 mg의 뇌 조직을 5 mL의 용해 버퍼(lysis buffer)가 들어 있는 다운 다우너(down downer)에 넣고 얼음에 두십시오.조직이 해동되면 얼음 위에서 1분 동안 균질화합니다. 균질화 후, 균질화된 조직을 15 mL 투명 초원심분리 튜브로 옮기고 튜브를 얼음에 둡니다. 남은 조직에 대해 이 균질화 과정을 반복합니다.다음으로, 균질화된 조직 용액이 설탕 용액 위에 놓이도록 농도 구배를 설정하기 위해 9 mL의 설탕 용액을 초원심분리관 바닥에 조심스럽게 피펫팅합니다. 이제 초원심분리 과정 중에 균형이 유지되도록 초원심분리관의 무게를 댑니다. 상층에 용해 버퍼(lysis buffer)를 추가하여 무게를 조정하십시오. 튜브의 무게를 측정한 후, SW 28 로터를 사용하여 초원심분리기에 넣고 4°C에서 107,163.6 RCF로 2.5시간 동안 초원심분리합니다.원심분리가 완료되면, 농도 구배 층에서 발견되는 부유물 층과 상층액을 흡입하여 제거합니다. 튜브 바닥에 핵이 포함된 펠렛이 흐트러지지 않도록 주의하십시오. 다음으로, 각 펠렛에 1X PBS 500 µL를 첨가하고 얼음 위에서 20분 동안 방치합니다.20분 후, 피펫팅을 통해 펠렛을 다시 현탁합니다. 얼음 위에서 배양하면 펠렛이 어느 정도 자연스럽게 녹아 핵의 재현탁이 쉬워지며, 결과적으로 핵이 받는 스트레스를 줄일 수 있습니다. 그 다음, 재현탁된 핵을 2 mL 원심분리 튜브로 옮깁니다.두 개의 초원심분리 튜브에 담긴 핵산 용액을 각각의 마이크로 원심분리 튜브에 합친 후, 샘플을 다시 얼음에 둡니다. 이제 핵산 추출이 완료되었으므로, FACS-sorting을 통해 신경세포 핵을 분리하기 위한 면역 염색 단계로 넘어가겠습니다. 핵을 포함하는 샘플을 1X PBS 300 µL에 신경세포 특이적 항체인 NeuN 1.2 µL를 섞어 만든 면역 염색 혼합물, 그리고 블로킹 믹스와 함께 배양할 것입니다. 먼저 1X PBS 300 µL에 신경세포 특이적 항체인 NeuN 1.2 µL를 추가합니다. 그 다음 0.5% BSA와 10% normal goat serum이 포함된 1X PBS 블로킹 믹스 100 µL를 추가합니다.마지막으로 LOR 4 88이라는 2차 항체 1 µL를 추가합니다. 또한 이 면역 염색 혼합물을 사용한 음성 대조군 샘플용 면역 염색 시료를 준비하십시오. 이때 1차 항체를 제외하고 1XPBS 1.2 µL로 대체합니다.이제 면역염색 혼합물을 볼텍싱하고, 염색 혼합물이 반응하는 동안 실온의 암소에서 5분 동안 배양합니다. 음성 대조군 샘플을 위해 대조군 핵 샘플을 준비합니다. 980 µL의 1X PBS가 들어 있는 2 mL 튜브에 resus span 핵 용액 20 µL를 분주합니다. 또한 핵 용액과 PBS만 포함된 비염색 대조군도 준비합니다.이제 20 µL의 핵을 다른 튜브로 옮기고 1X PBS를 사용하여 전체 부피를 다시 1 mL로 맞춥니다. 그런 다음 모든 샘플을 다시 얼음에 놓습니다. 이제 면역 염색 혼합물 준비가 완료되었습니다.혼합액 401 µL를 해당 샘플에 첨가하여 배양합니다. 핵 샘플에는 새로운 항체와 LOR 4 88이 모두 포함된 혼합액을 첨가하였습니다. 음성 대조군 샘플에는 2차 항체인 LOR 4 88만 포함된 혼합액을 첨가하였으며, 무염색 대조군 샘플에는 면역 염색 시약을 첨가하지 않았습니다.다음으로, 샘플을 콜드론(coldron)으로 옮겨 암소에서 45분 동안 회전시킵니다. 45분간의 배양 과정이 완료되었으므로, 이제 샘플을 매사추세츠 대학교 의과대학의 유세포 분석 코어 시설(flow cytometry core facility)로 옮겨 형광 활성 세포 분리(fluorescence activated sorting)를 수행하겠습니다. 코어 시설로 이동하는 동안 샘플은 반드시 얼음 위에 두고 암소 상태를 유지해야 합니다. 유세포 분석 코어 시설에서 샘플은 먼저 40 micron 필터로 여과한 후, 저온 상태를 유지하며 기기로 몇 분 동안 분석합니다.이는 소팅 전 예비 데이터를 얻기 위해 수행합니다. 염색하지 않은 대조군은 음성 형광의 정도를 설정하는 기준이 됩니다. 이 정보를 바탕으로 형광에 대한 장비의 민감도를 조절하십시오.염색된 대조군은 형광을 제어하는 데 사용됩니다. 이 시점에서 형광 외부로 인한 배경 노이즈를 확인하여 소팅(sorting)에 필요한 적절한 게이트를 설정합니다. 샘플을 소팅하기 위해 여러 개의 서로 다른 게이트가 사용됩니다.첫 번째 게이트에 대한 일반적인 데이터입니다. 이 팩스 분석 차트는 게이트가 조정된 후의 대표 샘플을 보여줍니다. 첫 번째 게이트는 형광과 같은 설정의 조합과 일반적인 시각적 경험을 바탕으로 데브리스(debris)와 생존 핵의 패턴을 인식합니다.x축은 상대적 크기에 해당하는 전방 산란광(forward scatter)을 나타내며, y축은 과립도와 같은 내부 복잡성을 나타내는 측방 산란광(side scatter)을 나타냅니다. 첫 번째 게이트를 통해 샘플 내에서 발견되는 서로 다른 핵들의 크기를 가늠할 수 있습니다. 이를 통해 파편(debris)과 실제 핵을 분리할 수 있으며, 여기는 두 번째 게이트의 전형적인 데이터입니다.이 팩스 차트는 응집체를 제거하면서 핵을 개별적으로 분리할 수 있게 하는 두 번째 게이트의 예를 보여줍니다. 이 게이트는 핵이 레이저를 통과하는 데 걸리는 시간의 차이를 분석합니다. 일반적으로 응집체는 통과하는 데 더 오랜 시간이 걸립니다.응집체가 포함되면 일부 형광 핵이 비형광 핵과 결합하여 순도에 영향을 줄 수 있으므로, 이 특정 파라미터는 매우 중요합니다. 마지막으로, 세 번째 게이트에서 얻은 전형적인 데이터입니다. 이 게이트는 2차 항체에서 발견되는 형광체와 일치하는 특정 형광 파장으로 설정되었습니다.이 팩스 차트에서 X축은 형광 수준을, Y축은 딥 레드 채널 검출기인 PECY 7을 나타냅니다. 이러한 닷 블롯은 단일 색상 히스토그램과 비교했을 때 더 나은 시각적 정보를 제공합니다. SCADA를 배치하면 신경세포 핵의 양성군과 비신경세포 핵의 음성군을 분류하고 분리할 수 있습니다.모든 게이트 선택이 완료되면, 핵을 하나의 XPBS로 분류합니다. 전체 샘플의 분류 과정이 끝나면, 분류된 샘플의 Eloqua를 기기로 분석하여 분류 순도를 확인하십시오. 다음은 최적의 결과 예시입니다.여기서 핵의 혼합 집단이 포함된 분리 전 샘플과 대부분의 음성 핵이 제거된 분리 후의 Eloqua를 비교하십시오. 순도 백분율은 설정된 게이트를 기준으로 샘플에 혼입된 이벤트 수를 기반으로 한다는 점에 유의하십시오. 샘플을 기기에 처음 통과시킬 때 일부 표백 현상이 발생하여 신호가 약해질 수 있으므로, 이를 고려하여 일부 조정이 필요할 수 있음을 염두에 두십시오.샘플 분류가 완료되면 핵 처리 과정을 시작합니다. 이를 위해 분류된 샘플 10 µL를 취하고 sucrose 용액 2 µL, 1 M calcium chloride 50 µL, 그리고 1 M magnesium acetate 30 µL를 첨가합니다. 분류된 샘플이 10 µL 미만인 경우, 1X PBS를 추가하여 부피를 10 µL로 맞추거나 그에 따라 첨가물의 양을 조절하십시오.다음으로, 샘플을 여러 번 뒤집어 섞은 후 15분 동안 얼음 위에 둡니다. 15분 후, 스윙 버킷 로터를 사용하여 4°C에서 1,786 RCF로 15분 동안 샘플을 원심분리합니다. 원심분리가 끝나면 튜브 바닥에 형성된 흰색 펠렛이 손상되지 않도록 주의하며 상층액을 조심스럽게 흡입하여 제거합니다.그 후 펠렛을 이전 실험에 필요한 적절한 용액 200 µL에 녹입니다. 본 실험에서는 펠렛을 녹여 이후의 칩 실험을 위한 다운닝 버퍼(downing buffer)를 준비합니다. 그런 다음 파이펫팅(pipetting)을 통해 펠렛을 재현탁합니다.이 단계에서 핵을 더 작은 튜브로 옮겨 -80°C 냉동고에 보관할 수 있습니다. 이후 분석에 사용할 때까지 보관하십시오. 지금까지 인간 사후 뇌 조직에서 신경세포 핵을 분리하는 방법을 살펴보았습니다. 이렇게 분리한 핵을 이용하여 크로마틴 면역침전법과 같은 다양한 분석을 수행할 수 있습니다.이 절차를 수행할 때, 핵이 고정되지 않은 상태이며 높은 온도에서 분해될 수 있으므로 항상 시료를 얼음 위에 보관해야 한다는 점을 기억하는 것이 중요합니다. 또한, 인간 조직은 생물 안전 2등급(biosafety level two) 이상의 안전 표준에 따라 취급해야 합니다. 이것으로 모두 끝났습니다.시청해 주셔서 감사드리며, 실험에 좋은 결과가 있기를 바랍니다.

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Research

연구

JoVE Journal

Biology

생물학

우리는 사후에 인간의 두뇌에있는 우수한 시간적 이랑의 레이어 III에서 단일 세포 인구, 피라미드 뉴런에서 RNA를 분리하고 추출 레이저 캡처 microdissection를 사용하여 프로세스를 설명합니다. 우리는 이후 선형 (T7 기준) mRNA를 증폭하고, Affymetrix microarray 인간 X3P에 샘플을 잡종.

인간의 사후 뇌 조직에서 단세포 집단의 고품질 RNA 구하기

심장 핵​​은 밀도 침강 통해 격리 및 유동세포계측법 의해 cardiomyocyte 핵 파악하고 정렬하는 pericentriolar 소재 1 (PCM-1)에 대한 항체로 immunolabeled있다.

사후 조직에서 Cardiomyocyte 핵의 분리

이 비디오는 신선 동결 신경교종 조직에서 단핵을 분리하는 프로토콜에 대해 설명합니다. 분리된 단핵은 중추 신경 조직의 신경교종에서 관찰된 종양 간 및 종양 내 이질성에 대한 더 깊은 통찰력을 얻기 위해 snRNA(single-nuclei RNA) 염기서열 분석 및 snATAC(Single-nuclei Assay for Transposase-Accessible Chromatin) 염기서열 분석과 같은 염기서열 분석 기술의 검체로 사용할 수 있습니다.

신선 냉동 신경교종 조직에서 핵 분리: 신경교종 종양 샘플에서 온전한 핵을 얻는 방법

이 비디오는 쥐의 해마 치상회(hippocampal dentate gyrus, DG)에서 신경교세포와 줄기세포로부터 온전한 핵을 분리하는 방법을 보여줍니다. DG 조직은 핵을 방출하기 위해 저온 균질화 완충액에서 기계적으로 해리됩니다. 조직 파편 및 기타 방출된 소기관은 폐기되고 핵은 DNA 염색 및 신경 핵 항원(NeuN)에 특이적인 형광단 접합 항체로 염색됩니다. 그런 다음 형광 활성화 핵 분류를 사용하여 비신경 세포의 NeuN 음성 핵을 분리합니다.

Hippocampal Dentate Gyrus의 비신경 세포에서 핵을 분리하는 기술

이 동영상은 다양한 신경학적 응용을 위해 다양한 세포 집단을 연구할 수 있는 FANS(Fluorescence-activated nuclei sorting)를 사용하여 갓 냉동된 인간 뇌 조직에서 핵을 분리 및 분류하는 절차를 보여줍니다.

형광 활성화 핵 분류를 사용하여 뇌 조직에서 세포 집단 분리

종양 내 이질성은 진모를 포함한 종양의 내재된 특징입니다. 우리는 단일 핵 RNA 및 ATAC 염기서열 분석 연구를 위한 신선한 동결 신경교종 조직에서 단 하나 핵을 격리하기 위하여 완충과 그라데이션 원심분리의 조합을 이용하는 간단하고 효율적인 프로토콜을 개발했습니다.

단일 핵 RNA-seq 및 ATAC-seq를 위한 신선한 냉동 뇌 종양에서 핵 절연

우리는 하류 분자 분석에 사용하기 위해 인간 성상 세포 집단을 신선하게 냉동 된 조직으로부터 풍부하게하고 분리하는 방법을 개발했습니다.

형광 활성화 핵 분류를 사용하여 신선 냉동 피질로부터 성인 인간 성상세포 집단의 분리

여기에 제시된 것은 형광 활성화 핵 (FAN) 분류를 통해 대부분의 뉴런을 배제하는 마우스 치아 이랑에서 분리 된 단일 핵을 서열화하는 방법입니다. 이 접근법은 고품질 발현 프로필을 생성하고 신경 줄기 세포와 같은 희소 한 집단을 포함하여 틈새 시장에서 대표되는 대부분의 다른 세포 유형에 대한 연구를 용이하게합니다.

해마 신경인성 틈새를 연구하기 위해 단일 핵 RNA 시퀀싱과 결합된 뉴런의 형광 활성화 핵 음성 분류

이 연구는 다운스트림 단일 핵 RNA 염기서열 분석을 위해 냉동 포유류 조직에서 고품질 핵을 분리하는 간단하고 빠르며 부분적으로 자동화된 프로토콜을 설명합니다.

단일 핵 염기서열분석을 위해 냉동 포유류 조직에서 단일 핵을 분리하기 위한 간단하고 빠르며 부분적으로 자동화된 프로토콜

single-cell/single-nuclei transcriptomics 및 multi-omics의 성공은 세포/핵의 품질에 크게 좌우됩니다. 따라서 조직에서 세포/핵을 분리하고 정제하는 것은 고도로 표준화되어야 합니다. 이 프로토콜은 다운스트림 단일 핵 다중체 분석을 위해 뇌와 골수에서 핵을 준비하는 방법을 설명합니다.

단일 핵 멀티옴 분석을 위한 고품질 뇌 및 골수 핵 준비

학습하세요 인간 사후 뇌 조직에서 신경 세포 핵을 분리하는 방법을. 밀도 구배 원심분리와 유세포 분류술을 사용하여 순수한 신경 핵을 얻고 염색질 상호작용 연구에 활용할 수 있습니다.

인간의 사후 뇌 조직에서 핵의 연결을 격리

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