1. De voorbereiding van dia's en vochtige kamer
- De bevochtigde kamer kan worden gemaakt van een doos, zoals een leeg tip box. Wikkel zowel de kamer en het afdekken met aluminiumfolie om de monsters te beschermen tegen licht.
- In de kamer, zet een stapel natte papieren zakdoekjes om de vochtigheid in de kamer, die het hart monsters te voorkomen dat het drogen te behouden. Stel een klein microplaat op de top van de papieren handdoek als een rek voor de dia's.
- Teken of lijnen of cirkels op het oppervlak van een objectglaasje met behulp van de immEdge pen om putten te maken voor het hart monsters met een afmeting ongeveer 5x5 mm. Laat de dia's drogen.
- Zet de dia's in de bevochtigde kamer en voeg 50ul verse 4% formaldehyde in elk putje.
2. Dissectie van embryonale hart
- Verdoven de vissen embryo in E3 ei water zeven met 0,4% tricaïne voor ongeveer 1 minuut tot de vis te stoppen beweging van het lichaam, maar hebben nog steeds normaal hartkloppen.
- Doe een concave microscoopglaasje op het podium van een dissectie microscoop. Breng de embryo's naar de uitgehold goed.
- Pas de lichte combinatie van de dissectiemicroscoop om duidelijk te openbaren het hart. Afhankelijk van persoonlijke voorkeur, kan het zowel donker veld of DIC-achtige gepolariseerd licht.
- Schoon twee insuline-injectiespuiten met 75% ethanol, dan droog.
- Stel de dissectie microscoop naar hogere vergroting en zich richten op het hart. Fysiek stelt een embryo door het invoegen van een naald in de dooier-somiet grens dicht tegen het hoofd. Plaats een andere naald dicht bij het hart streek en trek het hart snel uit. Als het hart niet volledig gescheiden van het embryo, afgesneden van de rest verbonden weefsel tussen het hart en de dooier.
- Stel de microscoop om lagere vergroting en zich richten op de gescheiden hart. Gebruik een 10μl pipetteman en stel deze in op 1μl volume. Breng de tip van de pipetteman om ofwel te trekken en raak hethart monster, zodat het geïsoleerde hart zal zijn, hetzij binnen of aan het oppervlak van de tip.
- Dompel de pipetpunt in 4% formaldehyde-oplossing op voorbereid dia's en druk de pipet zuiger naar het hart introductie in de oplossing. De spanning van het wateroppervlak helpt ook om het hart bevrijden van pipettip aan de oplossing. Zet minder dan 3 harten in elk putje.
3. Immunokleuring
- Sluit de tank af en zet het op een shaker met een zachte wiegende beweging. Bevestig het hart monster gedurende 20 minuten bij kamertemperatuur.
- Veeg het water aan de achterzijde van de dia's en zet de dia's op het podium van een dissectie microscoop voor het uitwisselen van buffer.
- Dompel de tip van een 10μl pipetteman in een leeg gebied in elk putje en houd de punt zo ver mogelijk van het hart monsters. Neem de waarschuwingen om te voorkomen dat het hart verbonden aan de tip, want harten zou kunnen bewegen met de waterstroom wanneer de oplossing wordt getrokken in de tip. Veranderingde tip lokalisatie, indien nodig.
- Gooi de oplossing op een tissue en vermijd het produceren van alle belletjes in de punt, omdat het hart monster wordt gemakkelijk verloren in de aanwezigheid van luchtbellen. Houden van het hart monsters gedeeltelijk droog voor een korte tijd kan helpen de harten aangesloten blijven op de dia's.
- Voeg 50μl PBST naar het hart monster te dekken en in de bevochtigde kamer in een langzame schommelende beweging gedurende 5 minuten incuberen. Herhaal het spoelen nog een keer. Na deze stap kan het hart monsters worden opgeslagen in de bevochtigde kamer maximaal 1 week bij 4 ° C.
- Blokkeer het hart monster met 10% schapen serum in PBST gedurende 1 uur bij kamertemperatuur.
- Incubeer het hart monster met primaire antilichamen, zoals 1:200 verdunning van β-catenine antilichaam en 1:200 verdunning van mef2 specifiek antilichaam, in 10% schapen serum / PBST gedurende 1 uur bij kamertemperatuur.
- Was het hart monster met PBST drie keer (5 min.. Elk) bij kamertemperatuur.
- Incubeer het monster met secundaireantilichamen, zoals 1:1000 verdunning van Alexa-gelabeld anti-muis en / of anti-konijn antilichamen, in PBST gedurende 0,5 uur.
- Was het hart monsters met PBST drie keer (5 min.. Elk) bij kamertemperatuur.
4. Imaging
- Verwijder PBST en voeg 10 ul montage medium aan elke well. Rock de kamer voor een aantal minuten tot de oplossing helder wordt.
- Verwijder het grootste deel van de montage-medium en alle van de putten in een dia met een microscoop afdekglas (24x50).
- Afbeelding vis hart met behulp van Zeiss Axioplan 2 microscoop uitgerust met apotome (Carl Zeiss).
5. Representatieve resultaten
Een voorbeeld van een beeld dat membraan en kernen van alle zebravis hartspiercellen onthult wordt getoond in Fig. 1. mef2c en β-catenine antilichamen werden gebruikt samen aan het hart monsters ontleed van 52 hpf zebravis embryo vlek. Terwijl mef2c antilichaam vlekken de kernen van cardiomyocyten, β-catenineantilichaam onthult de rand van elke cel 8-10. Door het aanpassen van de fase van de samengestelde microscoop, kunnen beelden van het hart monsters worden aangepast aan de dezelfde richting, waardoor de waarneming van uiterlijke en innerlijke kromming kromming in het hart 11 zal toestaan. Het totale aantal cardiomyocyten, cardiomyocyt celgrootte, en circulariteit kan dan worden gemeten.
Een ander voorbeeld dat de sarcomeer structuur van een embryonale hart laat zien is te zien in Fig. 2. We voerden immunokleuring met behulp van F59, een myosine antilichaam, in een ontleed embryonale hart. De myofibril netwerk in een hele embryonale hart kan duidelijk worden onthuld bij lagere vergroting, terwijl de gestreepte band van dik filament kan worden onthuld bij hogere vergroting (afb. 2) 6.

Figuur 1. Immunokleuring van mef2 (rood) en β-catenine (groen) om de kernen en OutL tonenines van de cardiomyocyten in een zebravis ventrikel. Schaalbalk = 10μm

Figuur 2. Immnostaining van myosine aan de dikke gloeidraad in een zebravis ventrikel show in ofwel een lage vergroting (A) of hoge vergroting (B). Schaal bar = 10μm