Nontyphoidal Salmonella belangrijke oorzaken van enterische ziekte in alle vertebraten. Salmonellose bij de mens behoort tot de top bacteriële voedsel overgedragen ziekten 1. Karakterisering van de moleculaire mechanismen die de interacties van Salmonella onderbouwen met hun dierlijke gastheren wordt vooral bereikt door de studie van Salmonella enterica serotype Typhimurium (STM) in weefselkweek en diermodellen van infectie. Verkrijgen van inzicht in STM-gastheer interacties zal ons helpen begrijpen hoe Salmonella overleven en te groeien in gastheercellen. De eerste uitdaging in het bestuderen van deze interacties is om zoveel mogelijk deelnemende factoren identificeren van zowel de gastheer en pathogeen, maar deze pogingen zijn grotendeels geblokkeerd door de grote problemen van het omgaan met twee onafhankelijke complexe biologische systemen tegelijk, namelijk talrijke en Salmonella, onder fysiologische omstandigheden. Daarnaast is de grote repertOire van Salmonella en gastheer genen potentieel coderen factoren betrokken bij gastheer interacties vereisen high-throughput biologische platform om deze uitdaging aan te pakken.
Gemodificeerd gestandaardiseerde test Salmonella vereniging invasie en replicatie in macrofagen met hoge verwerkingscapaciteit fenotype werd ontwikkeld om een groot aantal genen waarschijnlijk betrokken zijn in Salmonella -host interacties onderzocht. De Gentamicine bescherming assay werd ontwikkeld in 1973 2 en voor het eerst grondig beschreven door Elsinghorst in 1994 3,4. Het is nu uitgegroeid tot een standaard tool voor het bestuderen van vele intracellulaire bacteriële pathogenen ex vivo, waaronder Salmonella 5,6. Geïnternaliseerde bacteriën voorkomen worden gedood door sommige antibiotica, zoals Gentamicine, dat eukaryote cellen 3 niet kan doordringen. Door gebruik te maken van dit verschijnsel, de gentamicine bescherming assay meet de overleving en groei van intracellulaire bacterial pathogenen. Drie gebeurtenissen tijdens de infectie, dat wil zeggen samen met eukaryote cellen, invasie en replicatie kan worden geëvalueerd voor intracellulaire bacteriële pathogenen op basis van het tijdsinterval tussen infectie Gentamicine behandeling en verdere incubatie (Figuur 1). Eukaryote cel lijnen zorgen voor een fysiologische omgeving, dat is minder complex dan relevante diermodellen voor gastheer-pathogeen interactie studies.
De Gentamicine bescherming test is een geschikt platform om STM-gastheer interacties te bestuderen, maar de standaard test in een 24-well cultuur schotel heeft een lage doorvoercapaciteit. Computationele analyse van in vivo datasets geïdentificeerd 149 Salmonella genproducten die worden voorspeld om te interageren met ongeveer 300 gastheer genproducten (ongepubliceerde gegevens). De standaard Gentamicine bescherming assay niet de capaciteit van aantal mutanten efficiënt fenotype.
In addition, kan het Gentamicin bescherming test theoretisch detecteren de invasie van zelfs een enkele bacterie. Vanwege deze inherente gevoeligheid, de ruwe gegevens zijn gevoelig voor technische variaties bij herhaald op verschillende tijdstippen. De interne controles en relatieve data presentatie na normalisatie zijn essentieel voor een zinvolle interpretatie van de resultaten. Gezien deze overwegingen werd een gemodificeerde, gestandaardiseerde Gentamicin bescherming test ontwikkeld om het testen van de capaciteit te verbeteren en verhogen de precisie.
Het volgende protocol is gedetailleerd en geïllustreerd om de gewijzigde Gentamicine bescherming assay met 96 putjes en het murine macrofaag cellijn RAW264.7 voeren. Vergeleken met het standaard protocol in 24-putjes, het gemodificeerde protocol heeft de volgende voordelen: 1) met 96 putjes kunnen tot 10 verschillende mutante stammen worden fenotype inclusief interne positieve en negatieve controles met voldoende statistische power;2) De variantie van de resultaten wordt aanzienlijk verminderd, omdat de mutante stammen worden getest in dezelfde kweekschaal en tegelijkertijd; 3) Het gebruik van meerkanaalspipetten verhoogt de doorvoersnelheid terwijl het verminderen van de vermoeidheid. Tenslotte, in vergelijking met 24-putjes werden zorgen van minder ontvangende cellen per putje in 96-putjes schaal aangepakt door protocol optimalisatie en standaardisatie.
Samengevat, de gemodificeerde, gestandaardiseerde assay in vitro fenotype Salmonella of andere bacteriële vereniging, invasie en replicatie in fagocytische cellen verhoogt de precisie en bereikt high-throughput capaciteit en het verminderen vermoeidheid.