Methodenartikel

Analyse van Chromosoom Segregatie, Histon Acetylatie, En Spindel Morfologie In Paard Oocyten

DOI:

10.3791/55242

⸱

11 mei 2017

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Health, Animal Science and Food Safety, University of Milan, 2IRCCS. Istituto Ortopedico Galeazzi, 3PRC, CNRS, IFCE, Université de Tours, INRA, 4PAO, INRA, 5Clinique des Animaux de Compagnie et des Équidés, Université de Liège, 6University of Agricultural Sciences and Veterinary Medicine, Cluj-Napoca, Romania

In dit artikel

Samenvatting

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Dit manuscript beschrijft een experimentele aanpak om paardocyten morfologisch en biochemisch te karakteriseren. Specifiek illustreert het onderhavige werk hoe u onrijpe en volwassen paardocyten verzamelt door middel van ultrageluidgeleide ovumopname (OPU) en hoe u chromosoom-segregatie, spindemorfologie, globale histonacetylering en mRNA-expressie kunt onderzoeken.

Samenvatting

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Het gebied van geassisteerde voortplanting is ontwikkeld om onvruchtbaarheid bij vrouwen, gezelschapsdieren en bedreigde soorten te behandelen. In het paard zorgt geassisteerde voortplanting ook voor de productie van embryo's van hoge performers zonder hun sportcarrière te onderbreken en draagt ​​bij aan een toename van het aantal veulen van merries van hoge genetische waarde. Het huidige manuscript beschrijft de procedures die worden gebruikt voor het verzamelen van onvolwassen en rijpe oocyten uit paard eierstokken met behulp van ovum pick-up (OPU). Deze oocyten werden vervolgens gebruikt om de incidentie van aneuploïdie te onderzoeken door een protocol dat eerder is ontwikkeld in muizen aan te passen. Specifiek werden de chromosomen en de centromeren van metafase II (MII) oocyten fluorescent gelabeld en geteld op sequentiële brandpuntsplannen na confocale lasermicroscoopscanning. Deze analyse onthulde een hogere incidentie in de aneuploïditempo wanneer onvolwassen oocyten uit de follikels werden verzameld en in vitro gerijpte vergeleken metIn vivo. Immunostaining voor tubuline en de geacyleerde vorm van histon vier bij specifieke lysine residuen bleek ook verschillen in de morfologie van de meiotische spindel en in het globale patroon van histon acetylering. Tenslotte werd de expressie van mRNA's die coderen voor histon-deacetylasen (HDAC's) en acetyltransferases (HAT's) onderzocht door reverse transcriptie en kwantitatieve-PCR (q-PCR). Geen verschillen in de relatieve expressie van transcripten werden waargenomen tussen in vitro en in vivo rijpe oocyten. In overeenstemming met een algemene stilzetting van de transcriptieactiviteit tijdens oocytmaturatie, kan de analyse van het totale transcriptiemengsel alleen mRNA stabiliteit of afbraak onthullen. Daarom wijzen deze bevindingen erop dat andere vertaal- en post-translationele regelingen zouden kunnen worden beïnvloed.

In het algemeen beschrijft de onderhavige studie een experimentele aanpak om de paardococyt morfologisch en biochemisch te karakteriseren, een ceHet type dat uitermate uitdagend is om te studeren, is vanwege de lage beschikbaarheid van het monster. Het kan echter onze kennis uitbreiden over de voortplantingsbiologie en onvruchtbaarheid bij monovulatoire soorten.

Inleiding

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Een groot aantal geassisteerde voortplantingstechnieken is ontwikkeld om onvruchtbaarheid bij vrouwen, gezelschapsdieren en bedreigde diersoorten te behandelen. Een van de meest voorkomende procedures in klinische instellingen is het ophalen van metafase II (MII) -stage-oocyten uit de ovariumfollikels door middel van ultrageluidgeleide transvaginale aspiratie, Ovumopname (OPU) 1 . Deze oocyten worden vervolgens in vitro (IVF) bevrucht, waarbij de resulterende embryo's in een ontvanger van de ontvanger geïmplanteerd worden. De MII-fase (rijpe) oocyten worden opgehaald na de toediening van exogene gonadotropinen. Deze behandeling is echter bij sommige patiënten geassocieerd met de ontwikkeling van ovarium hyperstimulatie syndroom (OHSS) 2 .

Profiteer van het intrinsieke vermogen van volgroeide, onvolwassen oocyten (GV-stadium) om meiosis spontaan te hervatten zodra ze zijn geïsoleerd uit hun follikels, het is mogelijk om volwassen oocyten te verkrijgen zonder adminisGonadotropine 3 . Deze procedure heet oocyt in vitro rijping (IVM) en vertegenwoordigt een minder geneesmiddelgeoriënteerde, goedkopere en meer patiëntvriendelijke aanpak van geassisteerde voortplantingstechnologie. Echter, het succes van embryo-ontwikkeling met in vitro- veroude oocyten is in het algemeen lager dan bij in vivo gerijpte oocyten 4 , 5 . Een mogelijke verklaring is dat in vitro rijpende oocyten meer getroffen worden door fouten bij chromosomsegregatie, en de resulterende aneuploïdie vermindert de normale embryonale ontwikkeling 6 .

Het begrijpen van de moleculaire basis van chromosomale mis-segregatie tijdens IVM zou uiteindelijk het volledige potentieel van deze techniek onthullen. In deze ader gebruikte de experimentele aanpak de morfologische en biochemische kenmerken van in vitro- veroude oocyten, in vergelijking met in vivo maturEd oocyten wordt hier beschreven 7 , 8 . Specifiek worden de procedures voor de OPU van onvolwassen en rijpe oocyten en de IVM van onrijpe oocyten geïllustreerd met behulp van volwassen en natuurlijk fietsende paarden als een experimenteel model. Daarna worden immunofluorescentie en beeldanalyse gebruikt om chromosomsegmentatie, spindelmorfologie en het globale patroon van histonacetylering op deze gameten te onderzoeken. Tenslotte wordt een protocol van omgekeerde transcriptie en kwantitatieve PCR beschreven voor de analyse van mRNA expressie.

In vergelijking met knaagdierdiermodellen, laten paarden geen genetische manipulatie toe, zijn ze minder makkelijk te manipuleren en duur onderhoud nodig. Dit model krijgt echter grote belangstelling voor de studie van oocytematuratie 9 , 10 door de gelijkenis met menselijke eierstokkenfysiologie 11 , 12 </ Sup>. Bovendien heeft de ontwikkeling van betrouwbare protocollen van IVM-IVF in het paard een aanzienlijk economisch belang, aangezien het het aantal veulen van merries van hoge genetische waarde zou kunnen verhogen.

Een van de beperkingen van het uitvoeren van experimenten op oocyten, vooral bij monovulatoire soorten, is de beperkte beschikbaarheid van het monster. Deze limiet is hier overwonnen door een aanpak, die eerder in muizen is ontwikkeld, aan te passen aan paardocyten 13 , 14 om chromosoomtelling te verrichten die het monsterverlies minimaliseert (zie de bespreking voor een vergelijking met andere beschikbare technieken). Bovendien is een triple-fluorescentie kleuring protocol geoptimaliseerd om meerdere analyses op hetzelfde monster te voeren en q-PCR analyses werden alleen uitgevoerd op pools van 2 oocyten.

Over het geheel genomen beschrijft de onderhavige studie een experimentele aanpak gericht op morfologisch en biochemisch chaRacterize het paard oocyt, een celtype dat uitermate uitdagend is om te studeren door de lage beschikbaarheid van het monster. Het kan echter onze kennis van de voortplantingsbiologie en onvruchtbaarheid van monovulatoire soorten uitbreiden.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Protocol

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Alle procedures werden goedgekeurd door het Comité Animal Care and Use CEEA Val de Loire nummer 19 en werden uitgevoerd volgens de richtlijnen voor de zorg en het gebruik van laboratoriumdieren.

1. Oocyt Verzameling en In Vitro Maturatie

  1. Ovum pick-up
    1. Dagelijks beoordelen door middel van echografie de diameter van ovariale follikels in een cohort van volwassen merries. Bij de opkomst van een follikel ≥33 mm (dominante follikel) injecteer de merrie met 1.500 IE van menselijke chorionische gonadotrophine (hCG) in het bovenste gedeelte van de jugulaire ader (iv).
      1. Voordat u de injectie uitvoert, zwaait het gebied met alcohol, plaats de vaatje en plaats de duim 2-3 cm onder de injectieplaats om de ader te laten stijgen. Steek de naald bijna evenwijdig aan de nek in en haal hem op om ervoor te zorgen dat de naald in de ader zit (het bloed komt in de spuit). Op dit moment injecteer; HCG zal de m inducerenAturatie van de oocyt in de dominante follikel.
    2. 35 uur na de hCG-injectie sederen de merrie met detomidine (15 μg / kg, iv), butorfanoltartraat (10 μg / kg, iv) en butylscopolamine-broom (0,2-0,3 mg / kg, 15 ml / mer, iv).
    3. Sluit de naald aan op de ultrageluid sonde. Plaats de ultrageluid sonde vaginally en houd de ovier transrectaal in de richting van de ultrageluid sonde. Geef een operator aan om de naald te manoeuvreren en de andere om de eierstok op zijn plaats te houden, met de follikel naar de ultrasone sonde . Begin van de eierstok met de dominante follikel.
    4. Punt de vaginale wand en de muur van de dominante follikel met de naald (ultrasone probes voor OPU zijn uitgerust met een kanaal voor de naald die is verbonden met een zuigsysteem); Theneedle zal zichtbaar zijn in het echografische beeld.
    5. Aspiratie van de folliculaire vloeistof in een 50 ml conische buis verbonden met het zuigsysteem. Giet de inhoud van de conischeBuis in een grote petrischaal en zoek naar het cumulus-oocytcomplex (COC) met behulp van een stereomicroscoop.
    6. Aangezien de COC niet altijd met het folliculaire vloeistof wordt teruggehaald, spoel de follikel met Dulbecco's gemodificeerde fosfaatgebufferde zoutoplossing (DPBS) die 5 IE / ml heparineat 37 ° C bevat. Onderzoek DPBS voor COC aanwezigheid, zoals eerder beschreven voor de folliculaire vloeistof in stap 1.1.5. Spoel meerdere keren tot de COC wordt opgehaald.
    7. Zodra de COC van de dominante follikel is opgehaald, steek de follikels ≥5 en ≤25 mm op, zoals beschreven voor de dominante follikel in stappen 1.1.3-1.1.4; Follikels ≥5 en ≤25 drukken geen luteïniserend hormoon / choriogonadotropinereceptor (LHCGR) uit, en daarom zullen hun oocyten niet opgroeien als gevolg van hCG en zullen ze op GV-stadium (onvolwassen) verzameld worden. Bewaar alleen COC's met verscheidene complete lagen cumuluscellen en bruin, fijngranulair openlasm. Weggooi de anderen.
    8. Aan het einde van de OPU, inBreng de merrie met benzyl-penicilline 15.000 IE / dier om infectie te voorkomen.
    9. Houd de merrie voor minstens 2 uur in een stille, schone stal. Controleer tekenen van bewustzijn door de positie van de oren, reactie op stimuli (bijvoorbeeld geluid) te bepalen en gait voordat u de merrie naar het bedrijf van andere dieren terugstuurt.
  2. In vitro rijping
    1. Warme HEPES-gebufferde TCM199 (20 mM Hepes) aangevuld met 1,790 IE / L heparine, 0,4% runder serumalbumine (BSA), penicilline en streptomycine tot 37 ° C. Bereid dit medium vooraf voor. Filter-steriliseren en houd het bij 4 ° C gedurende maximaal 6 maanden.
    2. Bereid het IVM-medium op door NaHCO3-gebufferde TCM199 (25 mM NaHCO3) aan te vullen met 50 ng / ml epidermale groeifactor (EGF) en 20% kalfserum 7 . Gebruik NaHCO 3- buffer TCM199 binnen 3 weken na het openen van een nieuwe fles. Bereid het EGF voorop als 100x voorraden, vries het bij -20 ° C, En gebruik het binnen 6 maanden. Spoel 500 μL in de putjes van een 4-putschotel en incubeer gedurende 2 uur in bevochtigde lucht met 5% CO2 bij 38,5 ° C.
    3. Na het ophalen van de COC's van de ≥5 en ≤25 mm follikels, zet ze in een petri schotel (3,5 cm diameter) gevuld met 2 ml HEPES-TCM199. Verplaats de COC's naar verschillende delen van het gerecht om de cellulaire rommel weg te spoelen.
    4. Breng de COC's over naar het IVM-medium en incubeer gedurende 28 uur in bevochtigde lucht met 5% CO 2 bij 38,5 ° C.

2. Immunofluorescentie en beeldanalyse

  1. Chromosoom telling
    1. Na het verzamelen van de dominante follikel of aan het einde van IVM, incuberen de COC's met 100 μM monastrol gedurende 1 uur in bevochtigde lucht met 5% CO2 bij 38,5 ° C. Bereid monastrol vooraf als 100x voorraden en houd deze bij -20 ° C gedurende maximaal 1 jaar.
    2. Verwijder de cumuluscellenDoor ze te behandelen met 0,5% hyaluronidase of door zacht pipettering; Verwijder de zona pellucida door het te behandelen in 0,2% pronase. Bereid hyaluronidase voor en pronage als 10x voorraden en houd ze bij -20 ° C gedurende maximaal 1 jaar.
    3. Fix de oocyten in 4% paraformaldehyde in DPBS gedurende 15 minuten bij 38,5 ° C, gevolgd door nog 45 minuten bij 4 ° C.
      VOORZICHTIGHEID! Draag persoonlijke beschermingsmiddelen bij het hanteren van paraformaldehyde, en verwijder verontreinigde materialen volgens de richtlijnen voor de verwijdering van gevaarlijke afvalstoffen.
    4. Was de oocyten door opeenvolgend over te brengen in 3 putjes gevuld met 500 μL DPBS aangevuld met 0,1% polyvinylalcohol (PVA). Permeabiliseer in 0,3% Triton X-100 gedurende 10 minuten bij kamertemperatuur (RT).
    5. Blok niet-specifieke binding door incubatie in DPBS aangevuld met 1% runder serumalbumine (DPBS-1% BSA) en 10% normaal ezelserum gedurende tenminste 30 min bij RT. Monsters kunnen gedurende 3 tot 4 dagen in blokkerende oplossing bij 4 ° C worden gehouden.
    6. Voor primaire kleuring incuberen de oocyten in konijn anti-Aurora B fosfo-Thr232 in DPBS aangevuld met 1% BSA (verdunning 1:50) bij 4 ° C overnacht.
    7. Was de oocyten zoals beschreven in stap 2.1.4. Incubeer de oocyten in een oplossing van tetra-methylrhodamine isothiocyanaat (TRITC) geconjugeerde ezel anti-konijn IgG (1: 100 in DPBS-1% BSA) gedurende 1 uur bij RT in het donker.
    8. Was de oocyten zoals beschreven in stap 2.1.4, en plaats dan 3-4 oocyten in een druppel niet-verhardend, anti-fade montage medium aangevuld met 20 μM YOPRO1 op een glazen glijbaan. Herhaal de procedure totdat alle oocyten zijn gemonteerd (3-4 oocyten per dia).
    9. Laat de oocyten ongeveer 10 minuten in het montagemedium vestigen en bedek ze vervolgens met een deklaag. Om de oocyten te verpletteren, moet u twee stroken dubbelzijdige tape aanbrengen voordat u de deklaag op de glazen glijbaan legt.
      OPMERKING: Deze voorzorgsmaatregel zal er ook voor zorgen dat alle monsters gelijk worden samengeperst tussen de glazen sliDe en de deklaag. De glazen glijbanen kunnen bij -20 ° C worden bevroren en worden gedurende de volgende 2-3 dagen afgebeeld.
    10. Afbeelding van de monsters op een confocal laser scanningsmicroscoop met een 60X objectief met behulp van de kanalen 7 , 13 , 14 , 20 , 21 van de rode (centromere) en groene (chromosomen) kanalen. Scan de monsters die de hele metafasische plaat uitstrekken op de z-as, met stappen elke 0.35 μm. Sla de gedigitaliseerde afbeeldingen van elk enkel plan op.
    11. Tel de centromeren in seriële confocale secties met behulp van de celtellingfunctie van de NIH ImageJ-software (verkrijgbaar op: https://imagej.nih.gov/ij/plugins/cell-counter.html).
      OPMERKING: Vermijd een herhaalde telling van centromeren die verschijnen op aangrenzende secties door de centromeren te identificeren die verschijnen, blijven en verdwijnen in opeenvolgende secties met een numerieke code.
    12. Herhaal de chromosomale coLoslaten in stap 2.1.11 met een onafhankelijke operator.
      OPMERKING: Klasseer de oocyten als euploïde (32 chromosomen), hyperploïde (> 32) of hypoploïde (<32).
  2. Spindel morfologie en histon acetylering
    1. Na het verzamelen van de dominante follikel of aan het einde van de IVM, verwijder de cumuluscellen door behandeling in 0,5% hyaluronidase of door zacht pipettering, zoals beschreven in stap 2.1.2.
    2. Was de oocyten in DPBS-PVA, zoals in stap 2.1.4, en fixeer ze in 2,5% paraformaldehyde gedurende 20 minuten bij 38 ° C. Wassen grondig, zoals beschreven in stap 2.1.4, en gedurende 5 min bij 0,1 ° C in 0,1% Triton X-100 permeabiliseren.
      OPMERKING: Draag persoonlijke beschermingsmiddelen bij het hanteren van paraformaldehyde en verwijder verontreinigde materialen volgens de richtlijnen voor het verwijderen van gevaarlijke afvalstoffen.
    3. Blok niet-specifieke binding door incubatie in DPBS aangevuld met 2% boviene serumalbumine (DPBS - 2% BSA), 0,05% saponine en 10% normaal ezel serum fo2 uur bij RT.
      OPMERKING: Monsters kunnen gedurende 3 - 4 dagen in blokkerende oplossing bij 4 ° C worden gehouden.
    4. Voor primaire kleuring incuberen de oocyten in muis anti-alfa-tubuline (1: 150) en konijn anti-acH4K16 (1: 250) in DPBS-2% BSA met 0,05% saponine bij 4 ° C overnacht.
    5. Was de oocyten zoals in stap 2.1.4. Incubeer de oocyten in een oplossing van groene fluorescerende kleurstof-geconjugeerde ezel anti-muis IgG (1: 500) en TRITC-geconjugeerde ezel anti-konijnen IgG (1: 100) in DPBS-2% BSA met 0,05% saponine gedurende 1 uur bij RT in het donker.
    6. Was de oocyten zoals in stap 2.1.4, en plaats dan 3-4 oocyten in een druppel van het niet-verhardende, anti-fade montage medium aangevuld met 1 μg / mL 4 ', 6-diamidino-2-fenylindool (DAPI) Op een glazen glijbaan.
    7. Monteer de oocyten op glazen glijbanen zoals beschreven in stap 2.1.8.
    8. Beeld de monsters op een confocal laser scanningsmicroscoop met een 60x objectief met behulp van de rode (acH4K16), groene (alfa-tubuline) en blauwe (DNA) kanalen.
      OPMERKING: Houd de laserinstellingen voor de rode en blauwe zenders constant tijdens de aanschaf van alle monsters. Scan de monsters die de hele meiotische spindel en metafasische plaat uitstrekken op de z-as, met stappen van elke 0.35 μm. Bewaar de gedigitaliseerde afbeeldingen (enkele plannen en geprojecteerde 3D-afbeelding).
    9. Meet de poolpoolpoollengte en de spildiameter op de maximale breedte van het geprojecteerde beeld met behulp van de meetfunctie van de NIH ImageJ-software (https://imagej.nih.gov/ij/docs/guide/146-30 .html). Herhaal elke 3 keer en bereken het gemiddelde.
    10. Kwantificeer de relatieve fluorescentie van acH4K16 met behulp van de geïntegreerde dichtheidsfunctie van de NIH ImageJ-software (https://imagej.nih.gov/ij/docs/guide/146-30.html). Normaliseer het voor de geïntegreerde dichtheid van de DAPI-kleuring.

3. Analyse van mRNA-expressie

  1. Nadat de COC's zijn opgehaald van de 5 tot 25 mm follikels, verzamelt u de granulosa celUspension die bleef in de Petri schotel en was het tweemaal in koude DPBS door centrifugeren bij 10.600 xg gedurende 2 minuten. Vries in vloeibare stikstof. Bewaar de monsters bij -80 ° C gedurende maximaal 6 maanden; De cellen zullen dienen voor de standaardkromme.
  2. Verwijder alle cumuluscellen zorgvuldig, zoals beschreven in stap 2.1.2, van onvolwassen (GV), in vitro gerijpte en in vivo gerijpte oocyten.
  3. Was de oocyten, zoals beschreven in 2.1.4, in DPBS-PVA, verzamel ze alleen in 1 μl volumes en leg 2 μL RNALater bovenop. Snap-freeze in vloeibare stikstof. Bewaar de monsters bij -80 ° C gedurende maximaal 6 maanden.
  4. Voeg 2 pg Luciferase RNA toe aan elk monster als een spike-in. Pool de oocyten 2 x 2 en trek het totale RNA uit met behulp van een siliciummembraanfilter-gebaseerde kit die geschikt is om RNA uit kleine monsters te herstellen.
  5. Reverse-transcribe het RNA in 10 μL met 0,25 μg willekeurige hexameren en muizen Moloney leukemie virus reverse transcriptase gedurende 1 uur bij 37 & # 176; C. Bewaar de monsters bij -20 ° C gedurende maximaal 6 maanden.
  6. Verdun het cDNA uit de granulosa cellen in RNAse-vrij water tot 50 ng / μl. Verdun deze oplossing 1:10 tijdelijk om 5 ng / μl, 0,5 ng / μl, 0,05 ng / μl en 0,005 ng / μL oplossingen te verkrijgen.
  7. Reacties in triplicaat samenstellen in een totaal volume van 20 μl per reactie, waarbij cDNA equivalent is aan 0,05 oocyten als het substraat, of 5 μL van de seriële verdunningen van granulosa cel cDNA, 10 μL SYBR groene supermix en 0,3 μM van elke specifieke primer Tabel 1 ).
  8. Doe de reactie in een thermische cyclus met een 3-stappen protocol: 95 ° C gedurende 30 s, 60 ° C gedurende 30 s en 72 ° C gedurende 20 s, herhaald 40 keer. Uiteindelijk, verwerven de smeltcurve vanaf 60 ° C en verhoog de temperatuur met 0,5 ° C elke 20 s tot 95 ° C.
  9. Bepaal de starthoeveelheid (SQ) van het specifieke mRNA in de oocytmonsters met behulp van de standaardkrommeF "> 15 berekend op basis van het granulosa celmonster. Express de data als de verhouding tussen de SQ van het gen van belang en de SQ van de huishoudende genen.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Resultaten

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

De oorspronkelijke bevindingen van deze experimenten werden eerder beschreven in de diepte en worden hierin beschreven als een voorbeeld van resultaten die kunnen worden verkregen met behulp van de beschreven protocollen.

Rijpingspercentage

Van de 32 COC's die door OPU werden verkregen van dominante follikels, waren 28 (88%) in de MII-fase. Veertien van de 58 COC&#...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Discussie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Hoewel IVM al meer dan 20 jaar 16 is uitgevoerd in paarden, weten we nog niet of de oocyt de oorsprong kan zijn van embryonale aneuploïdie, zoals voor mensen is voorgesteld 17 . De reden is waarschijnlijk dat de bereiding van oocytspreidingen voor chromosoomtelling resulteert in aanzienlijk monsterverlies. Met dit in het achterhoofd werd een onderzoek uitgevoerd naar de methoden die gebruikt werden om fouten bij chromosoom-segregatie te onderzoeken om te zoeken naar de mee...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Openbaarmakingen

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

De auteurs hebben niets te onthullen.

Dankbetuigingen

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

De auteurs willen Fabrice Vincent bedanken voor de ondersteuning met laserscanning confocal microscopy (LSCM) , en Philippe Barrière en Thierry Blard voor het uitvoeren van dagelijkse ultrasone ovarium scan en hCG injectie. Dit werk werd gedeeltelijk ondersteund door het project "Ex-Ovo Omnia", "Regione Sardegna en Regione Lombardia" (subsidie ​​nr. 26096200 naar AML); De "L'Oreal Italia per le Donne e la Scienza 2012" gemeenschap (Contract 2012 tot FF), FP7-PEOPLE-2011- CIG, Research Executive Agency (REA) "Pro-Ovum" (Toekenning nr. 303640 tot VL); En door de Postdoctorale School van Landbouw en Veterinaire Geneeskunde, mede gefinancierd door het Europees Sociaal Fonds, Sectorieel Operationeel Programma voor Personeelsontwikkeling 2007-2013 (Contractnummer POSDRU / 89 / 1.5 / S / 62371 tot IM). De in vivo oocyt collectie werd gefinancierd door de Institut Français du Cheval et de l'Equitation.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Materialen

Lijst van materialen gebruikt in dit artikel
NaamBedrijfCatalogusnummerOpmerkingen
ultrasound probeAlokaUST-5820-7,5
human chorionic gonadotrophincentravetCHO0041.500 unit/dier IV
detomidinecentravetMED0109 - 15 µg/kg IV
butylscopolamine bromurecentravetEST0010,2 mg/kg IV
stereomicroscopeNIKONSMZ-2B
butorphanolcentravetDOL00310µg/kg IV
benzyl-penicillincentravetDEP203 IM15.000 UI/dier
TCM199Sigma-AldrichM3769 10X1Lpoeder voor hepes-gebufferd TCM199
Hepes sodium saltSigma-AldrichH3784-100G
bovine serum albuminSigma-AldrichA8806
heparin Sigma-AldrichH3149-10KU
NaHCO3-buffered TCM199Sigma-AldrichM2154-500MLvloeistof voor IVM-medium
epidermal growth factorSigma-AldrichE4127
newborn calf serumSigma-AldrichN4762-500ML
4-well dishesNUNCLON144444
incubatorHeraeusBB6060
monastrolSigma-AldrichM8515
hyaluronidaseSigma-AldrichH3506
pronaseSigma-AldrichP5147
paraformaldehydeSigma-AldrichP6148
polyvinyl alcoholSigma-Aldrich341584
triton-X 100Sigma-AldrichT8787
normal donkey serumSigma-AldrichD9663
rabbit anti-Aurora B phospho-Thr232BioLegend636102
TRITC-conjugated donkey anti-rabbit IgGVector Laboratories711-025-152
Vecta-ShieldVector LaboratoriesH-1000
YOPRO1Thermofisher ScientificY3603
confocal laser scanning microscopeLSM 780Zeiss
confocal laser scanning microscopeLSM 700Zeiss
ImageJ softwarersb.info. nih.gov/ij/download.htmlgratis bron
mouse anti-alpha-tubulinSigma-AldrichT8203
rabbit anti-acH4K16Upstate Biotechnology07-329
AlexaFluor 488-coniugated donkey anti-mouse IgGLife TechnologiesA21202
4’,6-diamidino-2-phenylindoleSigma-AldrichD8417DAPI
centrifugeEppendorf5417R
RNALaterInvitrogenAM7020
Luciferase RNAPromegaL4561
PicoPure RNA Isolation KitApplied Biosystems12204-01
random hexamersThermofisher ScientificN8080127
mouse Moloney leukaemia virus reverse transcriptaseThermofisher Scientific28025013
SYBR green supermixBioRad1708880
specific primersSigma-Aldrichspecifieke primers werden ontworpen met behulp van Primer3Plus-software (gratis bron)
thermal-cyclerBioRadMyiQ
mouse monoclonal anti-CENPAAbcamab13939
mouse monoclonal anti-Aurora BAbcamab3609

Referenties

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Dellenbach, P. Transvaginal, sonographically controlled ovarian follicle puncture for egg retrieval. Lancet. 1 (8392), 1467(1984).
  2. Humaidan, P. Ovarian hyperstimulation syndrome: review and new classification criteria for reporting in clinical trials. Hum Reprod. , (2016).
  3. Pincus, G., Enzmann, E. V. The Comparative Behavior of Mammalian Eggs in Vivo and in Vitro : I. The Activation of Ovarian Eggs. J Exp Med. 62 (5), 665-675 (1935).
  4. Emery, B. R., Wilcox, A. L., Aoki, V. W., Peterson, C. M., Carrell, D. T. In vitro oocyte maturation and subsequent delayed fertilization is associated with increased embryo aneuploidy. Fertil Steril. 84 (4), 1027-1029 (2005).
  5. Nichols, S. M., Gierbolini, L., Gonzalez-Martinez, J. A., Bavister, B. D. Effects of in vitro maturation and age on oocyte quality in the rhesus macaque Macaca mulatta. Fertil Steril. 93 (5), 1591-1600 (2010).
  6. Requena, A. The impact of in-vitro maturation of oocytes on aneuploidy rate. Reprod Biomed Online. 18 (6), 777-783 (2009).
  7. Franciosi, F. In vitro maturation affects chromosome segregation, spindle morphology and acetylation of lysine 16 on histone H4 in horse oocytes. Reprod Fertil Dev. , (2015).
  8. Franciosi, F. Changes in histone H4 acetylation during in vivo versus in vitro maturation of equine oocytes. Mol Hum Reprod. 18 (5), 243-252 (2012).
  9. Choi, Y. H., Gibbons, J. R., Canesin, H. S., Hinrichs, K. Effect of medium variations (zinc supplementation during oocyte maturation, perifertilization pH, and embryo culture protein source) on equine embryo development after intracytoplasmic sperm injection. Theriogenology. , (2016).
  10. Hendriks, W. K. Maternal age and in vitro culture affect mitochondrial number and function in equine oocytes and embryos. Reprod Fertil Dev. 27 (6), 957-968 (2015).
  11. Carnevale, E. M. The mare model for follicular maturation and reproductive aging in the woman. Theriogenology. 69 (1), 23-30 (2008).
  12. Ginther, O. J. The mare: a 1000-pound guinea pig for study of the ovulatory follicular wave in women. Theriogenology. 77 (5), 818-828 (2012).
  13. Chiang, T., Duncan, F. E., Schindler, K., Schultz, R. M., Lampson, M. A. Evidence that weakened centromere cohesion is a leading cause of age-related aneuploidy in oocytes. Curr Biol. 20 (17), 1522-1528 (2010).
  14. Duncan, F. E., Chiang, T., Schultz, R. M., Lampson, M. A. Evidence that a defective spindle assembly checkpoint is not the primary cause of maternal age-associated aneuploidy in mouse eggs. Biol Reprod. 81 (4), 768-776 (2009).
  15. Larionov, A., Krause, A., Miller, W. A standard curve based method for relative real time PCR data processing. BMC Bioinformatics. 6 (62), (2005).
  16. Choi, Y. H., Hochi, S., Braun, J., Sato, K., Oguri, N. In vitro maturation of equine oocytes collected by follicle aspiration and by the slicing of ovaries. Theriogenology. 40 (5), 959-966 (1993).
  17. Hassold, T., Hunt, P. To err (meiotically) is human: the genesis of human aneuploidy. Nat Rev Genet. 2 (4), 280-291 (2001).
  18. Akiyama, T., Nagata, M., Aoki, F. Inadequate histone deacetylation during oocyte meiosis causes aneuploidy and embryo death in mice. Proc Natl Acad Sci U S A. 103 (19), 7339-7344 (2006).
  19. Homer, H. A. Mad2 prevents aneuploidy and premature proteolysis of cyclin B and securin during meiosis I in mouse oocytes. Genes Dev. 19 (2), 202-207 (2005).
  20. Rambags, B. P. Numerical chromosomal abnormalities in equine embryos produced in vivo and in vitro. Mol Reprod Dev. 72 (1), 77-87 (2005).
  21. Nabti, I., Marangos, P., Bormann, J., Kudo, N. R., Carroll, J. Dual-mode regulation of the APC/C by CDK1 and MAPK controls meiosis I progression and fidelity. J Cell Biol. 204 (6), 891-900 (2014).
  22. Shomper, M., Lappa, C., FitzHarris, G. Kinetochore microtubule establishment is defective in oocytes from aged mice. Cell Cycle. 13 (7), 1171-1179 (2014).
  23. Luzzo, K. M. High fat diet induced developmental defects in the mouse: oocyte meiotic aneuploidy and fetal growth retardation/brain defects. PLoS One. 7 (11), e49217(2012).
  24. Ma, P., Schultz, R. M. Histone deacetylase 2 (HDAC2) regulates chromosome segregation and kinetochore function via H4K16 deacetylation during oocyte maturation in mouse. PLoS Genet. 9 (3), e1003377(2013).
  25. Yang, F., Baumann, C., Viveiros, M. M., De La Fuente, R. Histone hyperacetylation during meiosis interferes with large-scale chromatin remodeling, axial chromatid condensation and sister chromatid separation in the mammalian oocyte. Int J Dev Biol. 56 (10-12), 889-899 (2012).
  26. Luciano, A. M. Oocytes isolated from dairy cows with reduced ovarian reserve have a high frequency of aneuploidy and alterations in the localization of progesterone receptor membrane component 1 and aurora kinase B. Biol Reprod. 88 (3), 58(2013).
  27. Luciano, A. M., Lodde, V., Franciosi, F., Ceciliani, F., Peluso, J. J. Progesterone receptor membrane component 1 expression and putative function in bovine oocyte maturation, fertilization, and early embryonic development. Reproduction. 140 (5), 663-672 (2010).
  28. Terzaghi, L. PGRMC1 participates in late events of bovine granulosa cells mitosis and oocyte meiosis. Cell Cycle. , 1-14 (2016).
  29. Susor, A., Jansova, D., Anger, M., Kubelka, M. Translation in the mammalian oocyte in space and time. Cell Tissue Res. 363 (1), 69-84 (2016).
  30. Chen, J. Genome-wide analysis of translation reveals a critical role for deleted in azoospermia-like (Dazl) at the oocyte-to-zygote transition. Genes Dev. 25 (7), 755-766 (2011).
  31. Ma, J., Flemr, M., Strnad, H., Svoboda, P., Schultz, R. M. Maternally recruited DCP1A and DCP2 contribute to messenger RNA degradation during oocyte maturation and genome activation in mouse. Biol Reprod. 88 (1), 11(2013).

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Herprints en machtigingen

Toestemming aanvragen om de tekst of afbeeldingen van dit JoVE-artikel te hergebruiken

Toestemming aanvragen

Trefwoorden

Oocytenrijpingconfocale microscopieimmunokleuringqPCR analyseoocytenverzamelingin vitro rijping

Gerelateerde artikelen