Methodenartikel

Het konijn-Model van versnelde atherosclerose: een methodologische perspectief van de schade van de ballon Iliac slagader

12.1K weergaven

⸱

DOI:

10.3791/55295

⸱

3 oktober 2017

 ,  ,  ,  , 
1Cardiology, Department of Medicine, University of Fribourg

* These authors contributed equally

In dit artikel

Samenvatting

Dierlijke modellen van atherosclerose zijn essentieel om te begrijpen van het mechanisme en te onderzoeken van nieuwere benaderingen om te voorkomen dat de ontwikkeling van plaque of breuk, een belangrijke doodsoorzaak in de geïndustrialiseerde wereld. Dit protocol maakt gebruik van een combinatie van ballon letsel en cholesterol rijk dieet voor het opwekken van atherosclerotische plaques in konijn iliac slagader.

Samenvatting

Acuut coronair syndroom als gevolg van coronaire occlusie na atherosclerotische plaque ontwikkeling en breuk is de belangrijkste doodsoorzaak in de geïndustrialiseerde wereld. Nieuw-Zeeland Wit (NZW) konijnen zijn gebruikte als een dierlijk model voor de studie van atherosclerose. Zij ontwikkelen spontane laesies wanneer gevoed met atherogene dieet; Dit vereist echter een lange tijd van 4-8 maanden. Om verder te verbeteren en versnellen atherogenese, is een combinatie van atherogene dieet en mechanische endothelial letsel vaak werkzaam. De voorgestelde procedure voor inducerende atherosclerotische plaques bij konijnen gebruikt een katheter met ballon te verstoren het endotheel in de linker iliac slagader van NZW konijnen gevoed met atherogene dieet. Dergelijke mechanische schade veroorzaakt door de katheter met ballon induceert een keten van ontstekingsreacties initiëren neointimal lipide accumulatie in een tijd-afhankelijke manier. Atherosclerotische plaque na ballon letsel Toon neointimal verdikking met uitgebreide lipide infiltratie, de inhoud van de cel van de hoge glad spierweefsel en aanwezigheid van macrofaag afgeleide schuim cellen. Deze techniek is eenvoudig, reproduceerbare en produceert plaquette van gecontroleerde lengte binnen de iliacale slagader. De hele procedure wordt voltooid binnen 20-30 min. De procedure is veilig met lage sterfte en biedt ook hoge succes bij het verkrijgen van aanzienlijke intima laesies. De procedure van de ballon van de katheter geïnduceerde arteriële letsel leidt tot atherosclerose binnen twee weken. Dit model kan worden gebruikt voor het onderzoek naar de ziekte pathologie, diagnostische beeldvorming en evalueren van nieuwe therapeutische strategieën.

Inleiding

Breuk van kwetsbare atherosclerotische plaques is een van de belangrijkste doodsoorzaken in de geïndustrialiseerde landen1. Hoewel onderzoek de afgelopen decennia heeft ontvouwd verschillende moleculaire en cellulaire mechanismen betrokken bij de progressie van de plaque, bleef inspanningen zijn nog nodig, niet alleen voor het ontrafelen van het complex mechanisme van progressie van de ziekte, maar ook voor het testen van nieuwe therapeutische benaderingen. Verschillende dierlijke modellen hebben voorgesteld te bestuderen van de atherosclerose. Genetische manipulatie, cholesterol voeding of mechanische endotheel letsel zijn de standaard strategieën gedeeld door meest diermodellen van atherosclerose, waaronder muizen, konijnen of minipigs. Onder deze zijn NZW konijnen gevoelig voor cholesterol dieet terwijl normale ratten en muizen niet aanzienlijk dieetcholesterol2,3,4 absorberen doen. Konijnen ontwikkelen spontaan aorta laesies rijk in macrofagen met sommige vezelig component wanneer gevoed met cholesterol rijk dieet5,6. De lange voorbereidende tijd van 4-8 maanden voor het opwekken van atherosclerotische plaquesby voeding cholesterol dieet alleen6,7 is echter een belangrijk nadeel voor de meeste van de experimentele instellingen. In achtervolging voor inducerende laesies in relatief korte tijd, is een combinatie van hoge cholesterol dieet en ballon letsel ontwikkeld door Baumgarter en Studer8. Het algemene doel van deze techniek is voor het opwekken van atherosclerotische plaques bestaat uit schuim cellen (vergelijkbaar met vette streep bij de mens) in hypercholesterolemic konijnen binnen 2 weken. De huidige techniek wordt de procedure beschreven van arteriële muur schade op basis van de Baumgarter methode met behulp van een katheter van de ballon gevorderd in de iliacale slagader van NZW hypercholesterolemic konijnen.

Samen met een rijke dieet cholesterol, zal schade die voortvloeit uit de ballon geïnduceerde ambtshalve endothelialization leiden tot atherosclerose. Ballon letsel versnelt de vorming van atherosclerotische laesies, en produceert plaque van uniforme grootte en distributie. Intima verdikking verhogingen over een periode van tijd en intima cel infiltratie begint binnen enkele dagen na letsel. Vettige strepen met aanzienlijke macrofagen beginnen te verschijnen na 7-10 dagen van de ballon schade en worden vertegenwoordigd als Type II laesie volgens de classificatie door American Heart Association. Ballon letsel in konijn wordt vaak uitgevoerd in de aorta te bestuderen van de samenstelling van de plaque. De neointimal endotheel geeft uiting aan hoge niveaus van intercellulaire adhesie molecuul. De plaques worden geassocieerd met mediale dissectie en adventitial wijzigingen. Atherosclerotische laesies zijn samengesteld uit lipiden, delende zachte spiercellen (SMCs), collageenvezels en inflammatoire cellen die onder de geregenereerde endotheel accumuleren en zijn meestal type II in de natuur. De topologische verdeling van konijn plaques was vergelijkbaar met dat gemeld in menselijke aortas 9,10 In principe, de aorta is groter in omvang in vergelijking met iliac slagaders en plaque in grotere lengte zou produceren. Echter is het grote voordeel van het gebruik van de iliacale slagader als de site van atherosclerose bij konijnen zijn toegankelijkheid, zijn gelijkenis gespierde inhoud menselijke coronaire11, uniforme laesie ontwikkeling12, hoge weefsel factor activiteit13 en consistente vaartuig dimensie vergelijkbaar met menselijke kransslagader, waardoor de evaluatie van commercieel vervaardigde apparaten aan Morfometrische en angiographic eindpunten. Invasieve en niet-invasieve methoden zijn onderzocht voor het analyseren van de plaques in konijn iliac slagaders in het levende dier. Eerdere rapporten beschrijven het gebruik van magnetische resonantie imaging (MRI) met behulp van een systeem van 2,35-tesla heer 14 bovendien, intravasculaire echografie (IVUS) of optische coherentie tomografie (OCT) katheters naar behoren kunnen worden toegepast op de afbeelding atherosclerotische plaques in konijn iliac slagaders. De iliacale slagader is toegankelijk voor echografie beeldvorming bij het gebruik van een hoge resolutie echografie en de aorta kan ook worden verkend met deze techniek.

In het afgelopen decennium, heeft dit konijn model ballon schade bijgedragen aan de mechanismen van plaque progressie15en plaque regressie16verder te begrijpen. Bovendien, het model is gebruikt voor het bestuderen van de invloed van nieuwe therapeutische middelen zoals statines, standaard antiplatelet agenten, antioxidant agenten17,18 en drug-eluerende stents zoals everolimus of zotarolimus-eluerende stent19,20 op neointimal verdikking. Dit model is ook gebruikt om te onderzoeken intravasculaire beeldvorming van nabij-infrarood fluorescentie imaging katheter21.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Protocol

dit experimenteel protocol is goedgekeurd door de kantonnale Veterinair Bureau, Fribourg en de Zwitserse federale Veterinary Office, Zwitserland (FR 2015/58).

Opmerking: mannelijke NZW konijnen met een gewicht van 2,8 tot 3.2 kg werden gebruikt. De dieren werden gehuisvest onder conventionele voorwaarden (12 h licht en donker cyclus, bedoelde ad libitum water en voedsel). Voorafgaand aan de ballon denudatie, werden dieren acclimated voor 1 week waarin zij werden gevoed met normale chow dieet. Na 1 week voor acclimatisatie, konijnen waren overgestapt naar atherogene dieet bestaande uit hoog vet (8,6%), en verzadigde vetzuren met 205 mg/kg (1%) cholesterol dieet gedurende de hele studie. Ballon letsel in de linker iliac slagader 1 week na dieet inleiding werd uitgevoerd en dieren werden opgeofferd na 2 weken of 4 weken ballon letsel.

1. preoperatieve Procedures

  1. Alle chirurgische instrumenten voor gebruik met een glazen kraal sterilisator of ander geschikt instrument steriliseren.
  2. Voorbereiden en controleren van de ballon katheter vergadering.
    1. Toevoegen een 1 mL luer lock spuit gevuld met normale zout aan de luer-lock deel van de katheter met ballon. Zorgvuldig controleren voor afwezigheid van ingesloten lucht. Controleer de lekken en zorgen voor juiste ballon inflatie door te drukken op de plunjer van de injectiespuit.
  3. Wegen van het konijn en inschakelen van de thermopad tot 37 ° C.
  4. Een oplossing van buprenorfine gebruiken bij een concentratie van 0,3 mg / ml. een dosis van 0,01 mg/kg subcutaan injecteren.
  5. Verdoving het konijn met 5% Isofluraan en 5 L/min O 2 in een inductie kamer gedurende 10-15 minuten
  6. Plaats de narcose konijn op de verwarming pad op de chirurgische platform gehouden. Plaats de patch en de clips aan het controleren van de temperatuur, ademhaling en elektrocardiogram.
    7. De snuit van het konijn hechten
  7. aan een gezichtsmasker dat is aangesloten op een machine geschikt anesthesie. Het handhaven van de anesthesie met Isofluraan (4,0% met 2.5 L/min O 2). Bevestigen van de juiste afstomping (aangegeven door het ontbreken van de spierspanning en verlies van gag en veervormige reflexen).
  8. De oogheelkundige zalf toepassen aan beide ogen om te voorkomen dat het hoornvlies drogen. Het konijn draperen met een steriele chirurgische blad met alleen de onderste extremiteit blootgesteld.

2. Chirurgische Protocol

  1. verwijderen van de haren uit het ventrale gebied net onder de gewrichten van de knie met behulp van dierlijke tondeuses.
  2. Het gebied met een geschikt ontsmettingsmiddel te reinigen van de huid en verwijdert losse haren swab.
  3. Zoek de saphenous slagader en maak een kleine huid incisie van ongeveer 1.5 cm in lengte met behulp van een scalpel.
  4. Een klein gedeelte van saphenous slagader met een klein gebogen Tang bloot zonder beschadiging van de femorale ader en de femorale zenuw.
  5. Plaatst u twee losse ligatuur lussen (5-0 zijde) onder de slagader saphenous en binden één lus van de ligatuur DISTAAL eind van de slagader. Plaats een microvasculaire klem boven de ligatuur om te stoppen met de doorbloeding van de iliacale slagader.
  6. Topisch toepassing één druppel van papaverine verwijden de slagader en ter voorkoming van vasospasm.
  7. Verheffen van de saphenous slagader met behulp van de gebonden ligatuur en maak een incisie van de kleine arteriotomy met behulp van een 24 gauge naald.
  8. Verheffen van de kleppen van de incisie met fijne pincet en langzaam het invoegen van een ader pick of een leidende naald in het lumen van de slagader.
  9. Wordt een 2 Franse Fogarty arteriële embolectomie katheter invoegen door de saphenous slagader. Verwijderen van de ader pick en microvasculaire klemmen.
  10. Verder van de katheter tot het zesde teken (20-25 cm) overeenkomt met een positie ongeveer 2-5 cm boven de iliacale bifurcatie.
  11. Opblazen van de ballon met normale zout 0,1 mL met een spuit van 1 mL of bij een nominale druk van 6 atm met behulp van een gereglementeerde handmatige inflator zoals beschreven in 16 , 22.
  12. Houd de ballon catheter met een tang en sleep terug door 6 cm via de iliacale arterytoward het punt van inbrengen, terwijl het draaien van de katheter.
  13. Laat leeglopen van de ballon door het terugtrekken van de plunjer van de injectiespuit.
  14. Herhaal stap 2.10 tot en met 2.13 driemaal om ervoor te zorgen volledige endothelial denudatie.
  15. Verwijderen van de katheter en onmiddellijk binden de ligatuur lus net boven de arteriotomy site om te stoppen met bloeden.
  16. Toepassing geschikt antiseptische all langs de rand van de wond en wisser weg de bloedstolsels. Sluit de insnijding van de huid met een 5-0 hechtdraad en desinfecteren van de chirurgie site met Povidon-jodium oplossing.
  17. Herhaal stap 2.1 tot en met 2.16 op de contralaterale iliac met behulp van een nieuwe katheter.
  18. De oogheelkundige zalf uit ogen swab.

3. Post-operatieve zorg

  1. beheren sulfadoxine 40 mg/kg en trimethoprim 8 mg/kg of een andere geschikte antibioticum onmiddellijk na de chirurgische ingreep.
  2. Tijdens de anesthesie-herstelperiode, het konijn te houden over een pad van de warmte in een schone gesteriliseerde met autoclaaf kooi geplaatst.
  3. De controle patch en clips verwijderen.
  4. Na herstel, de konijnen te keren naar hun huis kooien. Injecteren subcutaan buprenorfine 0.05 - 0.1 mg/kg post - operatief elke 6-12 h voor 48 h. doorgaan atherogene dieet voor een andere twee weken of vier weken.

4. Weefsel opruiming en analyse van de samenstelling van de Plaque

  1. anesthetize na twee weken (voor vroege dunne plaque) of drie weken van ballon letsel, het konijn met behulp van Isofluraan op een gelijkaardige manier, zoals hierboven beschreven.
  2. Opent de borstholte en de konijnen euthanaseren door intracardial exsanguination.
  3. Isoleren de iliacale slagaders, zoals beschreven in 23.
    1. Kort, de buik open en bloot het retroperitoneum. Traceren van de aorta naar de iliacale bifurcatie en bind het boven de bifurcatie. Verwijder voorzichtig de omliggende weefsels bloot te isoleren van beide iliac slagaders.
  4. Ontleden uit beide iliac slagaders en dompel ze in een ijskoud fosfaatgebufferde zoutoplossing. Verwijder de stolsels met behulp van een pincet. Elke iliac slagader opsplitsen in 4-6 segmenten te karakteriseren van de dikte van de plaquette in de slagader.
  5. Onmiddellijk insluiten de arteriële segmenten in een mal met optimale snijden temperatuur samengestelde, module-freeze met behulp van vloeibare stikstof en houd het op-70 ° C. bereiden 5 µm dik secties met een cryostaat zoals beschreven in 24.
  6. Uitvoeren histologie, immunofluorescentie of immunohistochemische kleuring voor morphometry, plaque lipide en cellulaire inhoud zoals beschreven in 10 , 25.
    Opmerking: Kort, spoel de arteriële secties met fosfaat gebufferde zoutoplossing (PBS) en permeabilize met behulp van 0,2% Triton. Spoel de secties met PBS en blokkeren niet specifieke sites met 2% bovien serumalbumine voor 30 min. Incubate de secties gedurende 1 uur bij 37 ° C met anti α-SM actine (1:200) of RAM11 antilichaam (1:200). Spoel de secties met PBS en incubeer hen met passende secundair antilichaam gedurende 30 minuten bij 37 ° C. wassen opnieuw met PBS en Hoechst toevoegen (5 µg/mL) voor 10 min te detecteren kernen.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Resultaten

Ballon letsel van de iliacale slagader werd met succes uitgevoerd zonder complicatie (Figuur 1). De totale operationele tijd varieerden van 20 tot 30 min voor verwondingen uitgevoerd op slechts één iliac slagader en 35 tot 45 min voor verwondingen op beide slagaders. Het konijn herstelde zich binnen 1 uur na ballon letsel. Alle dieren verscheen gezond zonder significante gewichtsverlies. Geen infectie, oedeem of arteriële trombose opgetreden. Het wond gebied ...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Discussie

Het konijn iliac slagader atherosclerose model wordt veel gebruikt in onderzoek van atherosclerose. Met dit protocol ontwikkeld de konijnen snel meer ernstige en geavanceerde plaques in vergelijking tot spontane laesies ontwikkeld met alleen cholesterol dieet. Nog belangrijker is, herstellen dieren snel van de operatie.

De belangrijkste stimulans voor atherogenese is de mechanische schade veroorzaakt door de katheter ballon die verwondingen van het endotheel en de vaartuig muur

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Openbaarmakingen

De auteurs verklaren geen concurrerende financiële belangen.

Dankbetuigingen

Dit werk werd gesteund door de Zwitserse nationale Science Foundation Grant 150271.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Materialen

Lijst van materialen gebruikt in dit artikel
NaamBedrijfCatalogusnummerOpmerkingen
New Zealand White konijnenCharles River laboratories,FrankrijkCre:KBL(NZW)
Cholesterol rijk dieetSsniff spezialdiätenSsniff EF K High Fat and Cholesterol
Glaskraal sterilisator-Germinator 500VWR, Leicestershire, UK101326-488
Fogarty ballon embolectomie katheters, 2 FransEdwards Lifesciences, Zwitserland120602FAlleen voor eenmalig gebruik
Luer Lock spuitBecton, Dickinson and Company, USA309628
Thermopad Type 226Solis, Zwitserland AG397387
Buprenorfine- TemgesicReckitt Benckiser AG, Zwitserland7.68042E+12
IsofluraanPiramal Critical Care, Inc, Bethlehem, PA 180172667-46-7
Anesthesie machine-combi-vet Base Anesthesia SystemRothacher Medical GmbH, ZwitserlandCV 30-301-A
Cardell touch veterinaire vitale tekenen monitorMidmark, Ohio, USA8013-001
Oftalmische zalf-HumigelVirbac, Frankrijk
Dierdier haar knippersAesculap AG, DuitslandGT420
Ontsmettingsmiddel-Betadine oplossingMundipharmaMedicalCompany, Zwitserland14671-1203
Dumont #7 ForcepsFST Germany11274-20
Medium en kleine microschaarMedline International Switzerland SàrlUC4337
Microvasculaire klemmenFST, Duitsland18051-28
PapaverineESCA chemicals, ZwitserlandRE 356 803
Vein PickHarvard Apparatus, Cambridge, UK72-4169Alleen voor eenmalig gebruik
SalineLaboratorium Dr. G. Bichsel AG,, Zwitserland1330055
Polysorb 5-0 hechtdraadCovidien AG, ZwitserlandUL 202Monofilament
Sulfadoxine en Trimethoprim-TrimethazolWerner Stricker AG, ZwitserlandSwissmedic Nr. 50'361
Antiseptisch- OcteniseptSchülke & Mayr AG, ZwitserlandGTIN: 4032651214068
Fosfaat gebufferde zoutoplossingRoth1058.1
Isobutanol-2-MethylbutaanSigma-Aldrich, ZwitserlandM32631-1L
Optimum Cutting Temperature compound-Tissue-TekVWR Chemicals, België25608-930
CryostatLeica, Glattbrugg, ZwitserlandLeica CM1860 UV
Glasplaat- Superfrost PlusThermo Scientific4951PLUS4
Mayer's HaematoxylineSigma-Aldrich, ZwitserlandMHS32-1L
Eosine 0,5% aq.Sigma-Aldrich, ZwitserlandHT110232-1L
Oil Red OSigma-Aldrich, ZwitserlandO0625-25G
α-smooth muscle actin antilichaamAbcam, UK.ab7817
Macrofaag Clone RAM11 antilichaamDAKO, ZwitserlandM063301
HoechstAbcam, UK.ab145596
Geiten polyklonaal secundair antilichaam (Chromeo 546)Abcam, UK.ab60316
Alexa Fluor 488/547Abcam, UK.
Glycergel montagemedium, waterigDAKO, ZwitserlandC056330
Hematoxylinen voor Movat pentachroomkleuringSigma-Aldrich, ZwitserlandH3136-25G
Ferric chloride voor Movat pentachroomkleuringSigma-Aldrich, Zwitserland157740-100G
Jodium voor Movat kleuringSigma-Aldrich, Zwitserland207772-100G
Kaliumjodide voor Movat pentachroomkleuringSigma-Aldrich, Zwitserland60400-100G-F
Alcian blauw voor Movat kleuringSigma-Aldrich, ZwitserlandA5268-10G
Sterke ammoniak voor Movat pentachroomkleuringSigma-Aldrich, Zwitserland320145-500ML
Brilliant croceïne MOO voor Movat pentachroomkleuringSigma-Aldrich, Zwitserland210757-50G
Zure fuchsine voor Movat pentachroomkleuringSigma-Aldrich, ZwitserlandF8129-50G
Natriumthiosulfaat voor Movat pentachroomkleuringSigma-Aldrich, Zwitserland72049-250G
Fosforwolfraamzuur voor Movat pentachroomkleuringSigma-Aldrich, Zwitserland79690-100G
Crocine voor Movat pentachroomkleuringSigma-Aldrich, Zwitserland17304-5G
EUKITT voor Movat pentachroomkleuringSigma-Aldrich, Zwitserland03989-100ML

Referenties

  1. Mozaffarian, D., et al. Heart disease and stroke statistics--2015 update: a report from the American Heart Association. Circulation. 131, e29-e322 (2015).
  2. Boone, L. R., Brooks, P. A., Niesen, M. I., Ness, G. C. Mechanism of resistance to dietary cholesterol. J Lipids. 2011, 101242(2011).
  3. Kapourchali, F. R., et al. Animal models of atherosclerosis. World J Clin Cases. 2, 126-132 (2014).
  4. Carter, C. P., Howles, P. N., Hui, D. Y. Genetic variation in cholesterol absorption efficiency among inbred strains of mice. J Nutr. 127, 1344-1348 (1997).
  5. Kolodgie, F. D., et al. Hypercholesterolemia in the rabbit induced by feeding graded amounts of low-level cholesterol. Methodological considerations regarding individual variability in response to dietary cholesterol and development of lesion type. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 16, 1454-1464 (1996).
  6. Singh, V., Tiwari, R. L., Dikshit, M., Barthwal, M. K. Models to study atherosclerosis: a mechanistic insight. Curr Vasc Pharmacol. 7, 75-109 (2009).
  7. Dornas, W. C., Oliveira, T. T., Augusto, L. E., Nagem, T. J. Experimental atherosclerosis in rabbits. Arq Bras Cardiol. 95, 272-278 (2010).
  8. Baumgartner, H. R., Studer, A. [Effects of vascular catheterization in normo- and hypercholesteremic rabbits]. Pathol Microbiol (Basel). 29, 393-405 (1966).
  9. Tanaka, H., et al. Sustained activation of vascular cells and leukocytes in the rabbit aorta after balloon injury. Circulation. 88, 1788-1803 (1993).
  10. Phinikaridou, A., Hallock, K. J., Qiao, Y., Hamilton, J. A. A robust rabbit model of human atherosclerosis and atherothrombosis. J Lipid Res. 50, 787-797 (2009).
  11. Nakazawa, G., et al. Drug-eluting stent safety: findings from preclinical studies. Expert Rev Cardiovasc Ther. 6, 1379-1391 (2008).
  12. Aikawa, M., et al. Lipid lowering by diet reduces matrix metalloproteinase activity and increases collagen content of rabbit atheroma: a potential mechanism of lesion stabilization. Circulation. 97, 2433-2444 (1998).
  13. Jeanpierre, E., et al. Dietary lipid lowering modifies plaque phenotype in rabbit atheroma after angioplasty: a potential role of tissue factor. Circulation. 108, 1740-1745 (2003).
  14. Durand, E., et al. Magnetic resonance imaging of ruptured plaques in the rabbit with ultrasmall superparamagnetic particles of iron oxide. J Vasc Res. 44, 119-128 (2007).
  15. Stadius, M. L., et al. Time course and cellular characteristics of the iliac artery response to acute balloon injury. An angiographic, morphometric, and immunocytochemical analysis in the cholesterol-fed New Zealand white rabbit. Arterioscler Thromb. 12, 1267-1273 (1992).
  16. Khanna, V., et al. Cholesterol diet withdrawal leads to an initial plaque instability and subsequent regression of accelerated iliac artery atherosclerosis in rabbits. PLoS One. 8, e77037(2013).
  17. Zou, J., et al. Effect of resveratrol on intimal hyperplasia after endothelial denudation in an experimental rabbit model. Life Sci. 68, 153-163 (2000).
  18. Li, M., Zhang, Y., Ren, H., Zhang, Y., Zhu, X. Effect of clopidogrel on the inflammatory progression of early atherosclerosis in rabbits model. Atherosclerosis. 194, 348-356 (2007).
  19. Nakazawa, G., et al. Evaluation of polymer-based comparator drug-eluting stents using a rabbit model of iliac artery atherosclerosis. Circ Cardiovasc Interv. 4, 38-46 (2011).
  20. Van Dyck, C. J., et al. Resolute and Xience V polymer-based drug-eluting stents compared in an atherosclerotic rabbit double injury model. Catheter Cardiovasc Interv. 81, E259-E268 (2013).
  21. Abran, M., et al. Validating a bimodal intravascular ultrasound (IVUS) and near-infrared fluorescence (NIRF) catheter for atherosclerotic plaque detection in rabbits. Biomed Opt Express. 6, 3989-3999 (2015).
  22. Kanamasa, K., et al. Recombinant tissue plasminogen activator prevents intimal hyperplasia after balloon angioplasty in hypercholesterolemic rabbits. Jpn Circ J. 60, 889-894 (1996).
  23. Pai, M., et al. Inhibition of in-stent restenosis in rabbit iliac arteries with photodynamic therapy. Eur J Vasc Endovasc Surg. 30, 573-581 (2005).
  24. Fischer, A. H., Jacobson, K. A., Rose, J., Zeller, R. Cryosectioning tissues. CSH Protoc. 2008, (2008).
  25. Chaytor, A. T., Bakker, L. M., Edwards, D. H., Griffith, T. M. Connexin-mimetic peptides dissociate electrotonic EDHF-type signalling via myoendothelial and smooth muscle gap junctions in the rabbit iliac artery. Br J Pharmacol. 144, 108-114 (2005).
  26. Zhang, W., Trebak, M. Vascular balloon injury and intraluminal administration in rat carotid artery. J Vis Exp. (94), (2014).
  27. Maillard, L., et al. Effect of percutaneous adenovirus-mediated Gax gene delivery to the arterial wall in double-injured atheromatous stented rabbit iliac arteries. Gene Ther. 7, 1353-1361 (2000).
  28. Sharif, F., et al. Gene-eluting stents: adenovirus-mediated delivery of eNOS to the blood vessel wall accelerates re-endothelialization and inhibits restenosis. Mol Ther. 16, 1674-1680 (2008).
  29. Lee, J. M., et al. Development of a rabbit model for a preclinical comparison of coronary stent types in-vivo. Korean Circ J. 43, 713-722 (2013).
  30. Tulis, D. A. Rat carotid artery balloon injury model. Methods Mol Med. 139, 1-30 (2007).
  31. Asada, Y., et al. Effects of inflation pressure of balloon catheter on vascular injuries and subsequent development of intimal hyperplasia in rabbit aorta. Atherosclerosis. 121, 45-53 (1996).
  32. Dornas, W. C., Oliveira, T. T., Augusto, L. E., Nagem, T. J. Experimental atherosclerosis in rabbits. Arq Bras Cardiol. 95, 272-278 (2010).
  33. Waksman, R., et al. PhotoPoint photodynamic therapy promotes stabilization of atherosclerotic plaques and inhibits plaque progression. J Am Coll Cardiol. 52, 1024-1032 (2008).
  34. Fernandez-Parra, R., et al. Pharmacokinetic Study of Paclitaxel Concentration after Drug-Eluting Balloon Angioplasty in the Iliac Artery of Healthy and Atherosclerotic Rabbit Models. J Vasc Interv Radiol. 26, 1380-1387 (2015).
  35. Dussault, S., Dhahri, W., Desjarlais, M., Mathieu, R., Rivard, A. Elsibucol inhibits atherosclerosis following arterial injury: multifunctional effects on cholesterol levels, oxidative stress and inflammation. Atherosclerosis. 237, 194-199 (2014).
  36. Manderson, J. A., Mosse, P. R., Safstrom, J. A., Young, S. B., Campbell, G. R. Balloon catheter injury to rabbit carotid artery. I. Changes in smooth muscle phenotype. Arteriosclerosis. 9, 289-298 (1989).
  37. Miyake, T., et al. Prevention of neointimal formation after angioplasty using nuclear factor-kappaB decoy oligodeoxynucleotide-coated balloon catheter in rabbit model. Circ Cardiovasc Interv. 7, 787-796 (2014).
  38. Fulcher, J., Patel, S., Nicholls, S. J., Bao, S., Celermajer, D. Optical coherence tomography for serial in vivo imaging of aortic plaque in the rabbit: a preliminary experience. Open Heart. 2, e000314(2015).
  39. Abela, O. G., et al. Plaque Rupture and Thrombosis: the Value of the Atherosclerotic Rabbit Model in Defining the Mechanism. Curr Atheroscler Rep. 18, 29(2016).
  40. Yamashita, A., Asada, Y. A rabbit model of thrombosis on atherosclerotic lesions. J Biomed Biotechnol. 2011, 424929(2011).

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Herprints en machtigingen

Toestemming aanvragen om de tekst of afbeeldingen van dit JoVE-artikel te hergebruiken

Toestemming aanvragen

Trefwoorden

Konijnmodel voor atherosclerosevoeding met atherogeen dieettechniek voor endotheeldisruptieplaquevormingsanalysebeoordeling van neointimale verdikkingmeting van lipidinfiltratiekleuring van gladde spiercellendetectie van macrofaagschuimcellenmorfometrische kwantificeringsmethoden

Gerelateerde artikelen