Een abonnement op JoVE is vereist om deze inhoud te bekijken. Log in of start vandaag met uw gratis proefperiode.

Methodenartikel

Inductie van mesenchymale-epitheliale Transities sarcoomcellen

8.5K weergaven

⸱

DOI:

10.3791/55520

⸱

7 april 2017

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Medicine, Duke University, 2Department of Bioengineering, Rice University, 3Department of Molecular Genetics and Microbiology, Duke University, 4Solid Tumor Program and the Duke Prostate Center, Duke University Medical Center, 5Duke University Medical Center

In dit artikel

Erratum-melding

Important: There has been an erratum issued for this article. View Erratum Notice

Samenvatting

We presenteren hier een celkweek werkwijze voor het induceren mesenchymale-epitheliale overgangen (MET) sarcoom cellen op basis van gecombineerde ectopische expressie van microRNA-200 familieleden en grainyhead-achtig 2 (GRHL2). Deze methode is geschikt voor een beter begrip van de biologische gevolgen van de fenotypische plasticiteit in de agressiviteit van kanker en behandelingen.

Samenvatting

Fenotypische plasticiteit verwijst naar een fenomeen waarin cellen transiënt trekken van een lijn krijgen. Tijdens carcinoom progressie, fenotypische plasticiteit drijft invasie, verspreiding en metastase. Inderdaad, terwijl de meeste van de studies van fenotypische plasticiteit in het kader van epitheliale carcinomen afkomstig zijn, blijkt sarcomen, die mesenchymale oorsprong zijn, ook fenotypische plasticiteit vertonen, met een subset van sarcomen een verschijnsel dat lijkt mesenchymal- ondergaan epitheliale transitie (MET). Hier hebben we een werkwijze omvattende de miR-200-familie en grainyhead als 2 (GRHL2) deze MET-achtige fenomeen waargenomen sarcoom patiënten samples.We achtereenvolgens tot expressie GRHL2 en miR-200 familie die cel transductie en transfectie nabootsen respectievelijk , beter inzicht in de moleculaire onderbouwing van deze fenotypische overgangen in sarcoma cellen. Sarcoma cellen die miR-200s en GRHL2 aangetoond verbeterde epitheliale characteristics in cel morfologie en verandering van epitheliale en mesenchymale biomarkers. Toekomstige studies met behulp van deze methoden kunnen worden gebruikt om beter inzicht in de fenotypische gevolgen van de MET-achtige processen op sarcoma cellen, zoals migratie, invasie, metastatische neiging, en therapie weerstand.

Inleiding

Fenotypische plasticiteit heeft betrekking op een reversibele overgang tussen cellulaire fenotypes en wordt gewoonlijk verdeeld in twee types, epitheliale naar mesenchymale (EMT) overgangen en mesenchymale tot epitheliale overgangen (MET). Deze fenotypische plasticiteit speelt een belangrijke rol in de normale processen van meercellige organismen, zoals de ontwikkeling en wondgenezing 1; echter kan deze zelfde paden en genexpressie programma ook leiden tot ziekten zoals fibrose (samengevat in 2, 3, 4) en carcinoom metastase (samengevat in referenties 5, 6, 7, 8). Tijdens metastase, bijvoorbeeld EMT verstoort celpolariteit, cel-cel interacties en bevordert invasie 9, 10. Samen EMT bijdragens om een ​​fenotypische staat die kankercel verspreiding vergemakkelijkt. Bovendien, EMT leidt ook tot een aantal andere fenotypische veranderingen die een agressieve fenotype trekken, inclusief deregulering van kankercel metabolisme 6, ontwikkeling van geneesmiddelresistentie 11, 12, verhoogde tumor-initiatie vermogen 13, 14 en gastheer immuunontwijking 15.

Fenotypische plasticiteit is goed onderzocht in carcinoom progressie; Maar ook sarcomen fenotypische plasticiteit vertonen. Interessant, lijkt het alsof een aantal van dezelfde drijfveren van fenotypische plasticiteit in carcinomen ook bijdragen aan sarcoom plasticiteit en agressiviteit. Zo zijn circulerende tumorcellen (CTCs) vanaf sarcoom patiënten aangetoond dat EpCAM, een celoppervlakte-eiwit dat gewoonlijk wordt gevonden op epitheelcellen 16 expressie brengen. Additioneel werd 250 wekedelensarcoom monsters geclassificeerd als epitheel-achtige of mesenchymale-achtige basis van genexpressie. Patiënten in de epitheliale-achtige biomarker handtekening had een betere prognose dan patiënten met de mesenchymale-achtige biomarker handtekening 17. Dit is consistent met vele carcinomen, waarbij patiënten met meer epitheel-achtige carcinomen hebben betere resultaten in vergelijking met patiënten met meer mesenchymale-achtige tumoren 18.

Terwijl sommige sarcomen geven biomerkers en genexpressie paden in overeenstemming met BMO blijven de moleculaire onderbouwing van deze fenotypische plasticiteit slecht begrepen. Om de mechanismen en bestuurders van BMO in sarcoma bestuderen we een model ontwikkeld van BMO inductie met behulp van twee epitheliale-specifieke factoren, de microRNA (MIR) -200 familie en grainyhead-achtige 2 (GRHL2). De miR-200S zijn een familie van kleine niet-coderende RNAs die genexpressie reguleren door te binden aan de 3' UTR van messenger RNA en verhinderen translatie in eiwit. Het miR-200 familie bestaat uit twee subgroepen - een met miR-141 en miR-200a en de andere met inbegrip van miR-200b, miR-200c en miR-429. Familieleden miR-200 verrijkt in epitheliale weefsels, en het verlies van miR-200s is geassocieerd met metastase in carcinomen 19. De familie miR-200 ook omlaag gereguleerd in zacht weefsel sarcomen in vergelijking met normaal weefsel 20. Net als bij de miR-200S, GRHL2 is een belangrijke regulator die belangrijk is voor epitheliale ontwikkeling 21. De GRHL2 transcriptiefactor fungeert op twee manieren epitheliale genen, zoals E-cadherine upregulate: 1) in epitheelcellen, GRHL2 direct onderdrukt de EMT hoofdregelaar, ZEB1 22; en 2) GRHL2 direct activeert transcriptie van genen epitheliale 23. Onze eerdere onderzoekingen hebben aangetoond dat de gecombineerde expressie van miR-200s en GRHL2 in sarcoomcelleninduceert een MET-fenotype 24. Hier presenteren we een gedetailleerd protocol voor een in vitro model van MET inductie in sarcoomcellen via ectopische expressie van miR-200s en GRHL2 creëren.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Protocol

1. Bereiding van reagentia

  1. Bereid DMEM gedurende celkweek door toevoeging van 50 ml foetaal runderserum (FBS) en 5 ml penicilline-streptomycine (5000 U / ml) en 500 ml DMEM. Dit medium kan voor maximaal zes maanden worden bewaard bij 4 ° C.
  2. Resuspendeer gevriesdroogde primers in nuclease-vrij water tot een eindconcentratie van 10 uM. WINKEL hersuspendeerd primers bij -20 ° C.
  3. Bereid radioimmunoprecipitatietest (RIPA) buffer (150 mM NaCl, 0,5% natriumdeoxycholaat, 0,1% SDS, 50 mM Tris, pH 8,0). Aanvullen met proteaseremmer cocktail voor het gebruik en bewaar buffer op ijs tijdens het gebruik. Bewaren bij 4 ° C.
  4. Bereid 10 mg / ml polybreen (hexadimethrinebromide) in water en spuitfilter te steriliseren met behulp van een 0,45 um filter polyethersulfon. Oplossing kan voor maximaal zes maanden worden bewaard bij 4 ° C.
  5. Maak een 1 mg / ml werkoplossing uit nitro blue tetrazolium chloride door oplossen van 10 mg in 10 ml PBS. Bewaren bij 4 ° C.

2. Lentiviral Transductie van GRHL2

Dag 1

  1. Plaat 3 x 10 5 HEK293T-cellen per putje van een 6-well plaat in 2 ml DMEM aangevuld. Kwantificeren cellen met behulp van een geautomatiseerde celteller. 60% confluent na overnacht kweken bij 37 ° C met 5% CO2 - cellen moeten 40 zijn.

Dag 2

  1. Verdun 2 ug lege vector (pCMV-UBC-EGFP) of 2 ug pCMV-GRHL2-UBC-EGFP 24, 25 in 200 ul serumvrij medium met 1,8 ug pΔ8.9 en 0,2 ug pCMV-VSV G helper plasmiden. In een afzonderlijke buis, verdunde 4 pi van een lipide-gebaseerde transfectie reagens in 200 ul serumvrij medium per transfectie (8 pl in 400 pl van twee monsters). Voeg 200 ul van transfectiereagens mengsel aan elk plasmide-oplossing en incubeer gedurende 20 minuten bij kamertemperatuur geroerd.
  2. Tijdens de incubatie, wassen HEK293T-cellen door het verwijderen van het medium door afzuigen in vacuo en spoelen cellen met 1 ml PBS. Vervang de PBS met 800 pl van serum-vrije media. Na 20 minuten, voeg 200 ul transfectiereagens: plasmide mengsel van stap 2.2 druppelsgewijs aan elk putje en incubeer cellen gedurende 2 uur bij 37 ° C in 5% CO2.
  3. Verwijder voorzichtig transfectie medium door afzuigen in vacuo en vervangen door 2 ml DMEM aangevuld. Terugkeer van de cellen naar de incubator voor overnachting cultuur.
    LET OP: HEK293T cellen zijn losjes aanhanger. Medium vervangen dient voorzichtig te gebeuren om het verwijderen van cellen beperken van de bodem van de schaal of kolf.

Dag 3

  1. Refresh media getransfecteerde HEK293T-cellen en de plaat 3 x 10 5 RD-cellen per putje van een 6-well plaat in 2 ml DMEM aangevuld. Kweekcellen 's nachts. RD-cellen zijn een in de handel verkrijgbare humane rhabdomyosarcoom cellijn.

dag 4

  1. Verzamelen viraal materiaal uit HEK293T-cellen. Pipetteer de DMEM medium van HEK293T-cellen en plaats in een nieuwe 15 ml conische. Plaats voorzichtig met nieuwe DMEM media en plaats HEK293T cellen terug in de incubator voor de volgende dag.
  2. Voeg 2 pi van 10 mg / ml polybreen per ml virale media in twee nieuwe 50 ml conische buizen (een voor de lege vector transfectie en andere voor het GRHL2 transfectie). Spuitfilter virale media door verwijdering van de plunjer van een 3 ml spuit en bevestig een 0,45 urn filter om polyethersulfon de punt.
    1. Voeg de virale media verzameld in stap 2.6 in de cilinder van de injectiespuit, en duik media in de nieuwe 50 ml conische buisjes met polybreen. Verwijder media uit RD-cellen door vacuümaspiratie toevoegen gefiltreerd virale media RD-cellen.

dag 5

  1. Herhaal Dag 4. HEK293T cellen kunnen worden weggegooid na de virale media is verzameld.

dag 7

  1. RD wassen cellen met 1 ml PBS en voeg 200 ul van 0,05% trypsine per putje. Incubeer bij 37 ° C gedurende 5 min, voeg 2 ml aangevulde media en verplaatsen celsuspensie om een ​​nieuwe 15 ml conische. Centrifugeer cellen bij 250 xg gedurende 5 minuten bij kamertemperatuur en zuig media. Resuspendeer in 1 ml DMEM (aangevuld met 5% FBS en 1% penicilline-streptomycine).
    LET OP: Het gebruik van een hoger percentage van FBS kan verstopping tijdens flowcytometrie veroorzaken
    1. Filter cellen voor flowcytometrie. Gebruik een pipet om de RD 1 ml celsuspensie toepassing door een 30 urn filter in flowcytometrie buizen en pijpen plaats op ijs.
    2. Sorteren EGFP + cellen 26 in 1,5 ml microcentrifuge buisjes die 0,5 ml DMEM aangevuld met 10% FBS en 1% penicilline-streptomycine en plaats op ijs. Plaat EGFP + gesorteerde cellen in totaal van 1 ml DMEM aangevuld in een enkel putje van een 12 putjesplaat en plaats in de incubator gedurende kweek.
      Noot: De opbrengst van EGFP + cellen van stromingscytometrie daarna transductie gewoonlijk laag (50.000-100.000 cellen). Cellen moeten worden gekweekt gedurende 10-14 dagen alvorens tot stap 3.

3. Reverse Transfectie van miR-200s

  1. Bereid 50 uM voorraden miR-200 bootst behulp nuclease-vrij H2O Aliquot bestanden en bewaar bij -20 ° C om herhaalde vries / ontdooi cycli te voorkomen.
  2. Voeg 3 ul van elk 50 uM miR-200 mimic (miR-200a, miR-200b en miR-200c) aan 300 ui serumvrije media of 9 pl 50 pM negatieve controle miRNA 300 ul serumvrij medium.
  3. Voeg 6 ul van siRNA-specifieke transfectiereagens tot 600 gl serumvrij medium en verdeel 300 pi van dit mengsel in twee buizen, één voor elk van de twee miR mengsels uit stap 3.2. Combineer de 300 pi van elk miR mengsel van stap 3.2 met een mengsel van 300 gl transfectiereagens. Incubeer gedurende 20 minuten bij kamertemperatuur temperature.
  4. Gedurende incubatie Bereid een celsuspensie van 600.000 EGFP + RD-cellen die LW of GRHL2 die in paragraaf 2 in 2,4 ml (250 cellen / pl) serum-vrij medium per behandeling.
  5. In een plaat met 24 putjes, 100 ul per putje van miR-200 mix of negatieve controle mengsel uit stap 3.3 in zes putjes en voeg 400 ul van elke celsuspensie in drie putjes van elke miR mix.
  6. Incubeer cellen bij 37 ° C in 5% CO2 gedurende de nacht en materiaaltype volledig DMEM gesupplementeerd de volgende dag. Verzamel cellen 2 dagen later te analyseren met de geschikte buffer (zie hieronder). Time-lapse imaging van RD sarcoma cellen die BMO is beschikbaar als aanvullend materiaal. Afbeelding elk putje om de 2 uur met een 10x objectief met behulp van een geautomatiseerd levende cellen imager 27.

4. RNA-extractie, reverse transcriptie en qPCR

  1. Extract RNA volgens de instructies van de fabrikant onder gebruikmaking van een standaard-RNAextractiekit 24. Geëxtraheerd RNA kan worden opgeslagen bij -80 ° C.
  2. Kwantificeren RNA-concentratie. Ontdooien en werken met RNA op ijs. RNA concentraties kwantificeren meten UV absorptie bij 260 nm met een plaatlezer spectrofotometer volgens het protocol van de fabrikant. Alle monsters verdund tot de laagste concentratie met nuclease-vrij water.
  3. Voeren reverse transcriptie van totaal RNA in complementair DNA (cDNA). Combineer liefst 100 ng totaal RNA met PCR buffer, dNTP mix (100 mM), willekeurig hexameer primers, reverse transcriptase en nuclease-vrij water in een 20 gl reactievolume 24. RT werking cycli volgens het protocol van de fabrikant. cDNA kan worden opgeslagen op lange termijn bij -20 ° C.
  4. Verdun 20 pi reacties 100 ul 80 ul nuclease-vrij H2O
  5. Meng 5 pi van een op fluorescentie gebaseerde intercalerende kleurstof 2x qPCR hoofdmengsel, 0,06 pl van elk 10 uM primer, eennd 2 pl verdunde RT-reactie per monster.
  6. Run qPCR volgens het protocol van de fabrikant voor de op fluorescentie gebaseerde master mix.
  7. Kwantificeren relatieve hoeveelheden van mRNA door delta CT methode en normaliseren GAPDH. Plot van de gemiddelde mRNA-expressie van biologische replica ± standaardafwijking voor elke behandelingsgroep.
    LET OP: Speciale voorzorgsmaatregelen moeten worden genomen bij het werken met RNA om contact met RNases, zoals het gebruik van RNasevrije kunststoffen en reagentia te voorkomen. Non-wegwerpmateriaal moeten worden behandeld voor gebruik om RNases verwijderen.

5. Immunofluorescentie kleuring

  1. Na stap 3.6, afgezogen medium door afzuigen in vacuo uit RD-cellen in 24 putjes format.
  2. Fix cellen door toevoeging van 500 pl 4% paraformaldehyde (PFA) per putje en incubeer gedurende 15 minuten bij kamertemperatuur (RT). Na het fixeren plaats cellen in met fosfaat gebufferde zoutoplossing (PBS) en bewaar bij 4 ° C gedurende de nacht indien nodig.
  3. permeabilizecellen door toevoeging van 500 pi PBS + 0,2% Triton-X100 en incubeer 30 minuten bij kamertemperatuur. Door vacuümaspiratie, verwijdert permeabilisatie buffer en was driemaal met PBS.
  4. Blok in 500 ui 5% runderserumalbumine (BSA) / PBS en incubeer cellen gedurende 30 minuten bij kamertemperatuur. Cellen kunnen een nacht eventueel worden bewaard bij 4 ° C.
  5. Bereid primaire antilichaam verdunning. Pipetteer 200 ul 5% BSA / PBS per putje in een 15 ml conische (12 wells = 2,4 ml) en voeg 1 ul van primair antilichaam per ml 5% BSA / PBS nodig. Verwijderen blokkerende buffer door afzuigen in vacuo en afzien 200 pl verdund primair antilichaam aan elk putje.
    1. Incubeer cellen in 1: 1000 verdunde primaire antilichamen in 5% BSA / PBS gedurende 1 uur bij kamertemperatuur of overnacht bij 4 ° C. Na incubatie tweemaal wassen cellen met PBS.
  6. Bereid het secundaire antilichaam verdunning in hetzelfde volume van 5% BSA / PBS zoals hierboven. Voeg de ver-rode kleurstof-geconjugeerd secundair antilichaam met behulp van een 1: 2000 verdunning. Bovendien voegen1 ug / ml Hoechst kleurstof aan de mix. Verwijder de PBS en voeg 200 ul van het mengsel aan elk putje.
    1. Incubeer bij kamertemperatuur gedurende 1 h in het donker. Was 3 maal met PBS, laat cellen in PBS en cellen tegen licht met behulp folie. De cellen kunnen worden bewaard bij 4 ° C indien noodzakelijk.
  7. Afbeeldingscellen bij 400X totale vergroting op een omgekeerde epifluorescentie microscoop met excitatie golflengte 594-650 nm.

6. Western Blotting

  1. Was de cellen tweemaal met 3,6 ijskoude PBS. Op ijs, cellen lyseren met 50 pl 1x RIPA buffer aangevuld met 1 x proteaseremmercocktail.
  2. Rots lysaten bij 4 ° C gedurende 15 min, verzamel lysaten in 1,5 ml buisjes en centrifugeer bij hoge snelheid (20.000 x g) gedurende 5 minuten om monsters te verduidelijken. Cellysaten worden opgeslagen op lange termijn bij -80 ° C indien nodig.
  3. Kwantificeren totaal eiwit onder toepassing van een Bradford-bepaling en aliquot een gelijke hoeveelheid eiwit in nieuwe 1,5 ml microcentrifugebuizen. Bring monsters gelijk volume met RIPA buffer en 3 x Laemmli beladingsbuffer aangevuld met 2-mercaptoethanol.
  4. Incubeer monsters in 1 x Laemmli monster beladingsbuffer gedurende 5 minuten bij 95 ° C en werking SDS-PAGE onder toepassing van een 4-12% Tris-glycine gel bij 200V gedurende 45 minuten. De hoeveelheid eiwit geladen varieert afhankelijk van de cellijn. In sommige gevallen is 50-100 ug totaal eiwit nodig E-cadherine in mesenchymale cellijnen te detecteren.
  5. Transporterende eiwitten op een nitrocellulosemembraan gedurende 2 uur bij 50 V in 1 x Tris-glycine-overdrachtsbuffer.
  6. Blok membraan gedurende 1 uur bij kamertemperatuur of overnacht bij 4 ° C in een BSA-gebaseerde blokkerende buffer.
  7. Verdunde primaire antilichamen 1: 1000 concentratie in 5 ml blokkeerbuffer en voeg verdunning tot het membraan, en geïncubeerd onder rustig schommelen gedurende 1 uur bij kamertemperatuur of overnacht bij 4 ° C. Was het membraan 3 maal in PBS met 0,05% Tween-20.
  8. Incubeer membranen gedurende 1 uur bij kamertemperatuur met infrarood fluorescerend gekoppeld SECUNDAIRy antilichaam bij 1: 20.000 verdunning in blokkeringsbuffer zoals hierboven.
  9. Was membraan tweemaal in PBS met 0,05% Tween-20 en vervolgens eenmaal in PBS.
  10. Afbeelding membraan met behulp van standaard infrarood fluorescentiedetectie.

7. Anchorage-onafhankelijke groei Assays

LET OP: Voor een gedetailleerde zachte agar assay protocol, zie 28.

  1. Warme steriele 2x DMEM-medium tot 42 ° C in heet waterbad. Gedurende deze tijd, warmte pre-geautoclaveerde 1% agarose in de magnetron gedurende 3 min. Magnetron voor nog eens 30 s in een tijd als nodig is of tot het volledig gesmolten. Agarose verplaatsen naar een 42 ° C waterbad.
  2. Plaats een 50 ml conische buis in een beker met 42 ° C water in een steriele kap en meng 1% agarose en 2 x DMEM media in een 1: 1 verhouding goed voor 1,5 mL mengsel per putje in een 6-wells plaat. bereiden altijd extra DMEM / agarose om rekening te houden pipetteren fouten en om luchtbellen te vermijden.
  3. mengsel toe te voegen aan dezijkanten van de goot, zodat er geen belletjes en laat gedurende 30 minuten bij kamertemperatuur.
  4. Terwijl de onderste laag stollen bereiden elke groep van zeldzame cellen in stap 3 getransfecteerd door opzuigen media en eenmaal gewassen met 1 ml PBS. Aspireren PBS en voeg 0,2 ml 0,05% trypsine en incubeer bij 37 ° C gedurende 5 minuten.
  5. Neutraliseren trypsine in 0,8 ml medium en fijnstampen cellen om een ​​eencellige suspensie. Transfer celsuspensie aan een 15 ml conische buis.
  6. Aantal cellen en bereken volume celsuspensie vereist 10.000 cellen per putje.
  7. Verwarm 0,6% agarose in de magnetron gedurende 3 min gevolgd door 30 seconden in tot volledig gesmolten. Bewegen agarose tot 42 ° C waterbad.
  8. Plaats een 50 ml conische buis in een beker met 42 ° C water in een steriele kap. Meng 0,6% agarose en verdunde celsuspensie in een 1: 1 verhouding tot 1,5 ml per putje mengsel bereid in een 6-wells plaat. bereiden altijd extra celsuspensie / agarose mix om rekening te houden pipetteerfout enom luchtbellen te vermijden.
    LET OP: Het is belangrijk om te werken bij 42 ° C hier. Als de temperatuur te laag is zal het mengsel stollen plating en temperaturen boven 42 ° C wordt de levensvatbaarheid van cellen beïnvloeden.
  9. Meng goed door tritureren cellen meerdere malen toevoegen celmengsel aan de putjes, zodat er geen bellen vormen, en laat stollen gedurende 20 minuten bij kamertemperatuur.
  10. Voeg 2 ml gesupplementeerd medium aan elk putje en platen bewegen incubator.
    1. Verander media een keer per week voor 3-4 weken of tot meercellige kolonies vormen. Wees voorzichtig om te voorkomen dat het aanraken van de agar bij het verwijderen van de media door middel van vacuüm aspiratie. Of gebruik een P1000 om de bovenste laag van vloeibare media te verwijderen.
    2. Vlek zachte agar platen door toevoegen van 200 pl nitroblauwtetrazolium-oplossing (1 mg / ml in PBS) en een nacht incuberen van de plaat bij 37 ° C. Vervang media de volgende dag met PBS voor de beeldvorming.
    3. Afbeelding putten 40x totale vergroting op een omgekeerde microscoop.
    4. Analyse uitvoeren op ImageJ voor kolonie gebied en het nummer. Plot betekenen kolonie aantal biologische herhalingen ± standaarddeviatie.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Resultaten

Schema voor BMO inductie in sarcoma cellen

Een algemene tijdschema voor de inductie van MET-achtige veranderingen in sarcoma cellen wordt getoond in figuur 1. Het protocol begint met transducerende GRHL2 (figuur 1A), gevolgd door transfectie van de familie miR-200 (Figuur 1B). GRHL2 of miR-200 familieleden waren niet in staat om de impact van de verschijning van RD-cellen wanneer...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Discussie

Sarcomen zijn zeldzaam, maar zeer agressieve kanker van een mesenchymale lijn. Ondanks hun mesenchymale lijn, een subset van sarcomen blijkt een fenotypische overgang naar een epitheel-achtige toestand ondergaan. Dit MET-achtige schakelaar prognostische impact, zoals patiënten met epitheel-achtige tumoren zijn minder agressief 24. Ondanks hun klinische relevantie, zijn er weinig studies over de moleculaire mechanismen die deze fenotypische overgangen in sarcomen.

Om M...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Openbaarmakingen

De auteurs hebben niets te onthullen.

Dankbetuigingen

JAS erkent steun van het Duke Cancer Institute, The Duke University Genitourinary Oncology Laboratory, en de Duke University Afdeling Orthopedie. HL werd gesteund door de National Science Foundation (NSF) Centrum voor Theoretische Biological Physics (NSF PHY-1.427.654) en NSF DMS-1.361.411, en als een CPRIT (Cancer Prevention and Research Institute of Texas) Scholar in Cancer Research van de staat Texas aan de Rice University. KEW werd ondersteund door NIH F32 CA192630 MKJ en HL geprofiteerd van nuttige besprekingen met Mary C. Farach-Carson, JN Onuchic, Samir M. Hanash, Kenneth J. Pienta en Donald S. Coffey.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Materialen

Lijst van materialen gebruikt in dit artikel
NaamBedrijfCatalogusnummerOpmerkingen
Countess geautomatiseerde tellerLife technologiesAMQAX1000
Countess celtellingkamer slidesInvitrogenC10283
SimpliAmp Thermal CyclerThermo FisherA24811
Odyssey FcLI-COR Inc
ViiA7 Real Time PCR SystemThermo Fisher4453536
PCR microplaatCorning321-29-051
KAPA SYBR Fast Universal qPCR KitKAPA BiosystemsKK4602
Starting Block (PBS) Blocking BufferThermo Fisher37538BSA-gebaseerde blocking buffer
Agarose General Purpose LEGenesee Scientific20-102
10x Tris/Glycine/SDS BufferBio-Rad Laboratories Inc161-0732Loopbuffer
10x Tris/Glycine BufferBio-Rad Laboratories Inc161-0734Transferbuffer
RIPA BufferSigma Life SciencesSLBG8489
Amersham Protran 0.45 μm nitrocelluloseGE Healthcare Lifesciences10600012
Quick-RNA MiniPrep KitGenesee Scientific11-358
Laemmli Sample Buffer (4X)Bio-Rad Laboratories Inc1610747
Mini Trans-Blot CellBio-Rad Laboratories Inc1703930
Mini-Protean Tetra CellBio-Rad Laboratories Inc1658005EDU
DPBSLife technologies14190-144
0.05% Trypsin-EDTALife technologies11995-065
DMEMLife technologies11995-065
Lipofectamine RNAi MaxThermo Fisher13778150
Lipofectamine 2000 RagentsThermo Fisher11668019
Penicillin StreptomycinLife technologies15140-122
miRVana miRNA mimic negatieve controle #1Thermo Fisher4464058neg miRNA
hsa-miR-200 mirVana miRNA mimicThermo Fisher4464066miR200A
has-miR-200 mirVana miRNA mimicThermo Fisher4404066miR200B
has-miR-200 mirVana miRNA mimicThermo Fisher4404066miR200C
Opti-MEMLife technologies11088-021serumvrij medium
anti-Ecadherin antilichaamBD Bioscience610182
anti-beta actinSanta Cruz Biotechnologysc-69879
anti-EpCamAb SerotecMCA18706
anti-ZO1Invitrogen402200
IRDye 800WLI-COR Inc925-32210
IRDye 680LI-COR Inc926-32223
anti-muis AlexaFluor 647Thermo FisherA211241
anti-konijn AlexaFluor 647Thermo Fisherab150075
Halt Protease en Phosphatesse InhibitorThermo Fisher1861281
Precision Plus Protein Dual ColorBio-Rad Laboratories Inc161-0374
Partec CellTricsSysmex04-004-232630 μm filter voor flow
GAPDH-FIDTAGCCACATCGCTCAGACAC
GAPDH-RIDTGCCCAATACGACCAAATCC
Ecadherin-FIDTTGGAGGAATTCTTGCTTTGC
Ecadherin-RIDTCGCTCTCCTCCGAAGAAAC
ZEB1-FIDTGCATACAGAACCCAACTTGAACGTC
ZEB1-RIDTCGATTACACCCAGACTGC
NOTCH-FIDTGGCAATCCGAGGACTATGAG
NOTCH-RIDTCTCAGAACGCACTCGTTGAT
nitro blue tetrazoliumSigmaN5514
hexadimethrine bromideSigmaH9268polybrene
3 mL spuitBD Bioscience309657
Steriele spuitfilterVWR28145-505
5mL polypropyleen ronde bodembuis352063flow cytometry buizen
High-Capacity cDNA Reverse Transcriptie KitThermo Fisher4368814reverse transcriptie kit
4% paraformaldyhydeSanta Cruz Biotechnologysc-281612
Triton-X100Sigma93443
runde serum albumineSigmaA7906

Referenties

  1. Weber, C. E., Li, N. Y., Wai, P. Y., Kuo, P. C. Epithelial-mesenchymal transition, TGF-beta, and osteopontin in wound healing and tissue remodeling after injury. J Burn Care Res. 33 (3), 311-318 (2012).
  2. Galichon, P., Finianos, S., Hertig, A. EMT-MET in renal disease: should we curb our enthusiasm. Cancer Lett. 341 (1), 24-29 (2013).
  3. Carew, R. M., Wang, B., Kantharidis, P. The role of EMT in renal fibrosis. Cell Tissue Res. 347 (1), 103-116 (2012).
  4. Willis, B. C., Borok, Z. TGF-beta-induced EMT: mechanisms and implications for fibrotic lung disease. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 293 (3), L525-L534 (2007).
  5. Ye, X., Weinberg, R. A. Epithelial-Mesenchymal Plasticity: A Central Regulator of Cancer Progression. Trends Cell Biol. 25 (11), 675-686 (2015).
  6. Li, L., Li, W. Epithelial-mesenchymal transition in human cancer: comprehensive reprogramming of metabolism, epigenetics, and differentiation. Pharmacol Ther. 150, 33-46 (2015).
  7. Tsai, J. H., Yang, J. Epithelial-mesenchymal plasticity in carcinoma metastasis. Genes Dev. 27 (20), 2192-2206 (2013).
  8. Bitting, R. L., Schaeffer, D., Somarelli, J. A., Garcia-Blanco, M. A., Armstrong, A. J. The role of epithelial plasticity in prostate cancer dissemination and treatment resistance. Cancer Metastasis Rev. 33 (2-3), 441-468 (2014).
  9. Schaeffer, D., Somarelli, J. A., Hanna, G., Palmer, G. M., Garcia-Blanco, M. A. Cellular Migration and Invasion Uncoupled: Increased Migration Is Not an Inexorable Consequence of Epithelial-to-Mesenchymal Transition. Mol Cell Biol. 34 (18), 3486-3499 (2014).
  10. Mathow, D., et al. Zeb1 affects epithelial cell adhesion by diverting glycosphingolipid metabolism. EMBO Rep. 16 (3), 321-331 (2015).
  11. Ware, K. E., et al. A mechanism of resistance to gefitinib mediated by cellular reprogramming and the acquisition of an FGF2-FGFR1 autocrine growth loop. Oncogenesis. 2, e39(2013).
  12. Yauch, R. L., et al. Epithelial versus mesenchymal phenotype determines in vitro sensitivity and predicts clinical activity of erlotinib in lung cancer patients. Clin Cancer Res. 11 (24 Pt 1), 8686-8698 (2005).
  13. Jolly, M. K., et al. Towards elucidating the connection between epithelial-mesenchymal transitions and stemness. J R Soc Interface. 11 (101), 20140962(2014).
  14. Mani, S. A., et al. The epithelial-mesenchymal transition generates cells with properties of stem cells. Cell. 133 (4), 704-715 (2008).
  15. Chen, L., et al. Metastasis is regulated via microRNA-200/ZEB1 axis control of tumour cell PD-L1 expression and intratumoral immunosuppression. Nat Commun. 5, 5241(2014).
  16. Nicolazzo, C., Gradilone, A. Significance of circulating tumor cells in soft tissue sarcoma. Anal Cell Pathol (Amst). , 697395(2015).
  17. Somarelli, J. A., et al. Mesenchymal-epithelial transition in sarcomas is controlled by the combinatorial expression of miR-200s and GRHL2. Mol Cell Biol. , (2016).
  18. Bae, Y. K., Choi, J. E., Kang, S. H., Lee, S. J. Epithelial-Mesenchymal Transition Phenotype Is Associated with Clinicopathological Factors That Indicate Aggressive Biological Behavior and Poor Clinical Outcomes in Invasive Breast Cancer. J Breast Cancer. 18 (3), 256-263 (2015).
  19. Humphries, B., Yang, C. The microRNA-200 family: small molecules with novel roles in cancer development, progression and therapy. Oncotarget. 6 (9), 6472-6498 (2015).
  20. Renner, M., et al. MicroRNA profiling of primary high-grade soft tissue sarcomas. Genes Chromosomes Cancer. 51 (11), 982-996 (2012).
  21. Petrof, G., et al. Mutations in GRHL2 result in an autosomal-recessive ectodermal Dysplasia syndrome. Am J Hum Genet. 95 (3), 308-314 (2014).
  22. Werner, S., et al. Dual roles of the transcription factor grainyhead-like 2 (GRHL2) in breast cancer. J Biol Chem. 288 (32), 22993-23008 (2013).
  23. Werth, M., et al. The transcription factor grainyhead-like 2 regulates the molecular composition of the epithelial apical junctional complex. Development. 137 (22), 3835-3845 (2010).
  24. Somarelli, J. A., et al. Mesenchymal-Epithelial Transition in Sarcomas Is Controlled by the Combinatorial Expression of MicroRNA 200s and GRHL2. Mol Cell Biol. 36 (19), 2503-2513 (2016).
  25. Varma, S., et al. The transcription factors Grainyhead-like 2 and NK2-homeobox 1 form a regulatory loop that coordinates lung epithelial cell morphogenesis and differentiation. J Biol Chem. 287 (44), 37282-37295 (2012).
  26. Pruitt, S. C., Mielnicki, L. M., Stewart, C. C. Analysis of fluorescent protein expressing cells by flow cytometry. Methods Mol Biol. 263, 239-258 (2004).
  27. Zhao, Z., et al. A high-content morphological screen identifies novel microRNAs that regulate neuroblastoma cell differentiation. Oncotarget. 5 (9), 2499-2512 (2014).
  28. Borowicz, S., et al. The soft agar colony formation assay. J Vis Exp. (92), e51998(2014).
  29. Yang, J., et al. Integrated proteomics and genomics analysis reveals a novel mesenchymal to epithelial reverting transition in leiomyosarcoma through regulation of slug. Mol Cell Proteomics. 9 (11), 2405-2413 (2010).
  30. Alba-Castellon, L., et al. Snail1 expression is required for sarcomagenesis. Neoplasia. 16 (5), 413-421 (2014).
  31. Takaishi, M., Tarutani, M., Takeda, J., Sano, S. Mesenchymal to Epithelial Transition Induced by Reprogramming Factors Attenuates the Malignancy of Cancer Cells. PLoS One. 11 (6), e0156904(2016).

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Herprints en machtigingen

Erratum


Formal Correction: Erratum: Induction of Mesenchymal-Epithelial Transitions in Sarcoma Cells
Posted by JoVE Editors on 7/03/2018. Citeable Link.

An erratum was issued for: Induction of Mesenchymal-Epithelial Transitions in Sarcoma Cells. An author name was updated.

One of the authors' names was corrected from:

Shenghan Xu

to:

Shengnan Xu

Tags

Mesenchymaal-epitheliale transitieGRHL2-overexpressiemiR-200-familieceltransductieflowcytometrieE-cadherine-expressieepitheliale biomarkersmesenchymale biomarkerssoft agar assay
Inductie van mesenchymale-epitheliale Transities sarcoomcellen
Neem contact met ons op
Aanbevelen aan de bibliotheek

Privacy

Gebruiksvoorwaarden

Beleidsoverzicht

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. Alle rechten voorbehouden.