Een abonnement op JoVE is vereist om deze inhoud te bekijken. Log in of start vandaag met uw gratis proefperiode.

Methodenartikel

Reproduceerbare motortekort na aorta-occlusie in een ratmodel van wervelkolom-ischemie

6.7K weergaven

⸱

DOI:

10.3791/55814

⸱

22 juli 2017

In dit artikel

Samenvatting

Deze studie demonstreert de techniek om een ​​minimaal invasieve en gemakkelijk reproduceerbaar model van ruggegraat-ischemie bij ratten te maken. Verschillende graden van motortekort van achterste ledematen kunnen worden geproduceerd door de aorta-occlusietijd te regelen.

Samenvatting

Ruggenmerg ischemie is een fatale complicatie na thoracabdominale aorta aneurysma operatie. Onderzoekers kunnen de strategieën voor het voorkomen en behandelen van deze complicatie onderzoeken met behulp van experimentele modellen van ruggenmerg ischemie. Het hier beschreven model demonstreert wisselende graden van paraplegie die betrekking hebben op de lengte van de okklusie na thoracale aorta-occlusie in een rattenwervel-ischemie-model.

Een 2-Fr. Ballonvormige katheter werd door de femorale slagader naar de aflopende thoracale aorta gevorderd totdat de katheterpunt in de linker subclaviale slagader in verdovende mannelijke Sprague-Dawley ratten werd geplaatst. Wervelkalk ischemie werd geïnduceerd door de katheterballon op te blazen. Na een bepaalde periode van occlusie (9, 10 of 11 minuten) werd de ballon ontlucht. Neurologische beoordeling werd uitgevoerd op 24 uur na de operatie met behulp van de motorstekortindex en het ruggenmerg werd geoogst voor histopathologisch onderzoek. Ratten die 9 minuten aorta-occlusie hebben ondergaan, vertoonden milde en omkeerbare motorische aandoening in het achterste ledemaat. Ratten onderworpen aan 10 minuten aorta-occlusie, gepresenteerd met matige maar reversibele motorische aandoening. Ratten onderworpen aan 11 minuten aorta-occlusie bleken compleet en aanhoudend Verlamming. De motorneuronen in de ruggenmertsecties werden meer bewaard bij ratten onderworpen aan een kortere duur van aorta-occlusie.

Onderzoekers kunnen een reproduceerbaar achterlipmotor tekort bereiken door thoracale aorta-occlusie met dit ruggenmerg-ischemie-model.

Inleiding

Paraplegie is een fatale complicatie van thoracoabdominale aorta aneurysma operatie. Het komt door het letsel van het ruggenmerg-ischemie-reperfusie dat optreedt tijdens het kruisklampen en ontgrendelen van de aorta. 1 Verschillende strategieën, waaronder systemische hypothermie en cerebrospinale drainage, zijn ingevoerd om het ruggenmerg te beschermen, 2 , 3 , 4, maar veel patiënten blijven door het letsel aangetast.

Verscheidene dierlijke ruggengraat ischemie modellen zijn geïntroduceerd om haar pathogenese te onderzoeken en beschermende strategieën te ontwikkelen tegen het letsel. In het huidige onderzoek schetsen we een ratmodel van het ruggenmerg ischemie op basis van de methode van Taira en Marsala. 5 Het ruggengraatcirculatiesysteem bij ratten is zeer vergelijkbaar met het ruggenmerg- en collaterale systeem bij mensen, hoewel er een aantal verschillen zijn in de grootte enplaats. 6 , 7 Dus, een rat is een anatomisch geschikt dier om te gebruiken voor een experimenteel model dat de pathogenese, complicaties en behandeling van ruggenmerg ischemie onderzoekt. Bovendien produceert dit ruggenmerg-ischemie-model betrouwbare aorta-occlusie met minimale interventie door gebruik te maken van een intravasculaire ballon-occlusie van de thoracale aorta.

In deze studie hebben we aangetoond dat dit ratmodel van ruggenmerg-ischemie reproduceerbare motorische tekorten in de achterste ledematen veroorzaakt die variëren naar gelang van de aorta-occlusietijd.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Protocol

Dit protocol is goedgekeurd door het Institutionele Diervoeder- en Gebruikskomitee van het Seoul National University Bundang Hospital. Dierenzorg en experimenten werden uitgevoerd volgens de Verenigde Naties National Institutes of Health Guide voor de zorg en het gebruik van laboratoriumdieren.

1. Chirurgische voorbereiding

  1. Vóór de operatie de katheters spoelen met steriele zoutoplossing om de patiënt te garanderen.
  2. Zet een verwarmingsdeken op de werktafel en bedek de tafel met een steriele drapering.
  3. Plaats Mannelijke Sprague-Dawley ratten (270-330 g) in een acryl doos met 3,0% -4,0% isofluraan in 100% zuurstof.
  4. Breng smeermiddel aan op de ogen van de rat.
  5. Plaats de rat op de werktafel in de rugpositie en houd de anesthesie onder gebruik van een gezichtsmasker met continue toediening van inhalatie isofluraan (1,0% -2,5 vol.%).
  6. Plaats een rectale sonde om de lichaamstemperatuur tussen 37,0-38,0 ° C te bewaken en te onderhouden.

2. Femoral Artery Catheterization

  1. Schud het juiste inguinsgebied met Betadine en 70% ethanol.
  2. Maak een 2 cm lange horizontale huidinsnijding met behulp van een schaar op het rechter ingewanden.
  3. Gebruik een retractor, laat het chirurgische veld bloot.
  4. Dissect de femorale slagader uit de omliggende ader en zenuw. Isoleer een 1 cm-sectie van de slagader met behulp van gebogen tang en stompe tang.
  5. Met een 4.0 zwarte zijde hechting, plaats een losse band op zowel de proximale als distale uiteinden van de slagader om de blootstelling te maximaliseren.
  6. Maak een incisie op de femorale slagader met behulp van micro-schaar.
  7. Plaats een 2-Fr. Ballonvormige katheter in de femorale slagader met behulp van micro-tang. Bevestig de katheter op het vat ongeveer 1 cm van de katheterkop met de proximale ligatuur, en bind de distale ligatuur dan aan.

3. Carotide Arterie Catheterisatie

  1. Schrob de rechter voorste nek met behulp van betadIne en 70% ethanol, en maak dan een huidinsnijding.
  2. Gebruik een retractor, laat het chirurgische veld bloot. Isoleer een 1 cm-sectie van de slagader en bind het losjes met een zijden hechting op zowel de proximale als de distale uiteinden van de slagader om de blootstelling te maximaliseren.
  3. Punctureer de halsslagader door gebruik te maken van een 24 G intraveneuze katheter en verplaats de proximale 1 cm van de katheter naar het hart.
  4. Bevestig de katheter met de proximale ligatuur en bind de distale ligatuur dan.
  5. Verbind het distale uiteinde van de katheter met de zoutopvulde microbuis en het externe reservoir met een 3-weg stopcock.

4. Tart Artery Catheterization

  1. Scrub het ventrale gebied van de staart met behulp van betadine en 70% ethanol, en maak een 2 cm snede van de huid.
  2. Dissecteer de staartartier uit de omliggende structuren en isoleer een 1 cm-sectie van de slagader met behulp van gebogen tang en stompe tang.
  3. Gebruik een 4.0 zwarte zijde hechting, plaats een losseBind aan zowel de proximale als distale uiteinden van de slagader om de blootstelling te maximaliseren.
  4. Punctureer de staartartier met behulp van een 24 G intraveneuze katheter, en verplaats de katheter naar de slagader.
  5. Bevestig de katheter aan het vat (ongeveer 1 cm van de katheterkop) met de proximale ligatuur en bind de distale ligatuur.
  6. Sluit het distale gedeelte van de katheter aan op de arteriële drukmonitor.

5. Inductie van wervelkolom ischemie

  1. Nadat de katheterisatie is voltooid, verplaats de 2 Fr. Ballonvormige katheter in de aflopende thoracale aorta zodat de punt van de katheter de linker subclavische slagader bereikt.
  2. Plaats een diepte van 10 cm vanaf de insertieplaats.
  3. Spuit 150 eenheden heparine in een concentratie van 100 eenheden / ml in de carotidkatheter.
  4. Blader de katheterballon met 0,05 ml zoutoplossing.
  5. Trek tegelijkertijd het bloed in de externe bloedhouder uit de cHartslagader om de proximale arteriële druk te regelen op 80 mmHg.
  6. Verbind het arteriële drukbewakingssysteem met het resterende lumen van de 3-voudige stopkraan en controleer de hoeveelheid bloedafvoer bij het controleren van de arteriële druk.
  7. Bevestig het succes van aorta-occlusie door een abrupte afname en continu verlies van distale arteriële druk.
  8. Na aorta-occlusie van 9, 10 of 11 minuten, ontlucht de Fogarty-katheterballon en reinig het gedreineerde bloed.

6. Post-chirurgische zorg en neurologische beoordeling

  1. Terwijl de arteriële druk door de staartslagader wordt gecontroleerd, verwijder de katheters van de femorale en halsslagaders en sluit de wonden met zijden hechten.
  2. Nadat u heeft bevestigd dat de arteriële druk wordt hersteld naar het normale bereik, verwijder u de katheter van de staartartier en sluit u de wond.
  3. Na herstel van de verdoving, ga de rat terug naar zijn kooi.
  4. Beoordelen hiNa een operatie met behulp van de motorstekortindex ( tabel 1 ). De motorstekortindex wordt gedefinieerd als de som van de ambulatietelling en de plaatsing / stepping reflex score. Een motorstekortindex van 6 duidt op het maximale tekort.

7. Histopathologische evaluatie

  1. Na de neurologische beoordeling anesthetiseren ratten met masker-afgeleverd isofluraan, offer ze door transcardiale perfusie met 100 ml gehardiniseerde zoutoplossing onder verdoving, en extract het ruggenmerg. 8
  2. Breng de snoer secties van het niveau van de lumbale wervels 3-5 in paraffine in.
  3. Vlek dwarsdoorsneden met hematoxyline en eosine (H & E).
  4. Let op de motor neuron letsel onder een microscoop. 9

8. Statistische analyse

  1. Voer statistische analyse uit met behulp van Statistisch pakket voor de Social Sciences versie 20. De motor defIcit index van de drie groepen werd vergeleken met de Kruskal-Wallis test, gevolgd door een Mann-Whitney U- test. Een P- waarde <0,05 werd beschouwd als statistisch significant.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Resultaten

Tijdens een periode van ruggengraat ischemie werd aorta-occlusie uitgevoerd gedurende 9 minuten (n = 3), 10 minuten (n = 3) of 11 minuten (n = 3). De tekortindex van de motor in ratten wordt weergegeven in tabel 2. Ratten die 9 minuten aorta-occlusie hebben ondergaan, lieten een milde en omkeerbare motorstoornissen zien in het achterste ledemaat. Ratten onderworpen aan 10 minuten aorta-occlusie, met een matig motortekort, maar niet volledige verlamming. Ratten die 11 minuten van de occlusietijd hebben ondergaan, vertoon...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Discussie

In de huidige studie hebben we een ratmodel van het ruggenmerg-ischemie op basis van methode 5 van Taira en Marsala aangetoond die variabele graden van motortekort in het achterste led veroorzaakt afhankelijk van de aorta-occlusietijd.

De lengte van aorta-occlusie kan de mate van motortekort beïnvloeden. Als de aorta-occlusietijd langer is, wordt het motortekort ernstiger. Zo kunnen onderzoekers een bepaalde mate van motortekort bereiken door de aorta-occlusietijd in ...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Openbaarmakingen

De auteurs hebben geen concurrerende financiële belangen. Dit werk werd ondersteund door toekenning 2012R1A1A3014010 van de National Research Foundation van de Koreaanse regering.

Dankbetuigingen

De auteurs hebben geen erkenningen.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Materialen

```html
Lijst van materialen gebruikt in dit artikel
NaamBedrijfCatalogusnummerOpmerkingen
Fogarty Arterial Embolectomy catheterEdward Life Sciences120602Feen ballon-getipte katheter ingebracht in de arteria femoralis
BD Insyte-N Autoguard Shielded IV catheter BD 38141124-gauge intraveneuze katheter
50 mL spuitKOREA VACCINE KOVAX-SPUIT 50mLGezichtsmasker
1 mL spuitKOREA VACCINEKOVAX-SPUIT 1ml
Recal sondeHARVARD APPARATUS50-7221FRectorale sonde voor temperatuurmonitoring
Micro dissectiesveer schaarJeung do bio & Plant co.LTD.JD-S-10Micro-schaar
SCISSOR (SHARP-SHARP)Jeung do bio & Plant co.LTD.S-51-12-SSchaar
RetractorJeung do bio & Plant co.LTD.JD-S-74ARetractor
Micro pincet Jeung do bio & Plant co.LTD.JD-S-29Micro-pincet
MOSQUITO PINCET (Gebogen)Jeung do bio & Plant co.LTD.S-44-CPKGebogen pincet
DRESSING PINCET Jeung do bio & Plant co.LTD.S-37-16SGedempte pincet
4/0 zwart zijden Woori MedicalS4314.0 zwart zijden hechtdraad
3-WAY STOCKSeonwon MedcalD-98-013-weg stopkraan
PatiëntmonitorPHILIPSMP20De arteriële drukmonitoring apparaat. 
VerwarmingsdekenZelfproductieVerwarmingsdeken
Microtube en extern reservoirZelfproductieMicrotube en extern reservoir
HeparineJW PharmaceuticalHeparine
0,9% NS 1000mlJW PharmaceuticalNormale zoutoplossing
IsofluraanHana MedIsofluraan
```

Referenties

  1. Greenberg, R. K., et al. Contemporary analysis of descending thoracic and thoracoabdominal aneurysm repair: a comparison of endovascular and open techniques. Circulation. 118 (8), 808-817 (2008).
  2. Okita, Y. Fighting spinal cord complication during surgery for thoracoabdominal aortic disease. Gen Thorac Cardiovasc Surg. 59 (2), 79-90 (2011).
  3. Fleck, T. M., et al. Improved outcome in thoracoabdominal aortic aneurysm repair: the role of cerebrospinal fluid drainage. Neurocrit Care. 2 (1), 11-16 (2005).
  4. Kouchoukos, N. T., et al. Hypothermic bypass and circulatory arrest for operations on the descending thoracic and thoracoabdominal aorta. Ann Thorac Surg. 60 (1), 67-76 (1995).
  5. Taira, Y., Marsala, M. Effect of proximal arterial perfusion pressure on function, spinal cord blood flow, and histopathologic changes after increasing intervals of aortic occlusion in the rat. Stroke. 27 (10), 1850-1858 (1996).
  6. Tveten, L. Spinal cord vascularity. III. The spinal cord arteries in man. Acta Radiol Diagn (Stockh). 17 (3), 257-273 (1976).
  7. Woollam, D. H., Millen, J. W. The arterial supply of the spinal cord and its significance. J Neurol Neurosurg Psychiatry. 18 (2), 97-102 (1955).
  8. Kennedy, H. S., Puth, F., Van Hoy, M., Le Pichon, C. A method for removing the brain and spinal cord as one unit from adult mice and rats. Lab Anim (NY). 40 (2), 53-57 (2011).
  9. Umehara, S., Goyagi, T., Nishikawa, T., Tobe, Y., Masaki, Y. Esmolol and landiolol, selective β1 adrenoreceptor antagonists, provide neuroprotection against spinal cord ischemia and reperfusion in rats. Anesth Analg. 110 (4), 1133-1137 (2010).
  10. De Ley, G., Nshimyumuremyi, J. B., Leusen, I. Hemispheric blood flow in the rat after unilateral common carotid occlusion: evolution with time. Stroke. 16 (1), 69-73 (1985).
  11. Coyle, P., Panzenbeck, M. J. Collateral development after carotid artery occlusion in Fischer 344 rats. Stroke. 21 (2), 316-321 (1990).
  12. Levine, S. Anoxic-ischemic encephalopathy in rats. Am J Pathol. 36, 1-17 (1960).
  13. Prior, B. M., et al. Time course of changes in collateral blood flow and isolated vessel size and gene expression after femoral artery occlusion in rats. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 287 (6), H2434-H2447 (2004).
  14. Yang, H. T., Feng, Y., Allen, L. A., Protter, A., Terjung, R. L. Efficacy and specificity of bFGFincreased collateral flow in experimental peripheral arterial insufficiency. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 278 (6), H1966-H1973 (2000).
  15. Kakinohana, M., Fuchigami, T., Nakamura, S., Sasara, T., Kawabata, T., Sugahara, K. Intrathecal administration of morphine, but not small dose, induced spastic paraparesis after a noninjurious interval of aortic occlusion in rats. Anesth Analg. 96 (3), 769-775 (2003).
  16. Horiuchi, T., et al. The effects of the delta-opioid agonist SNC80 on hind-limb motor function and neuronal injury after spinal cord ischemia in rats. Anesth Analg. 99 (1), 235-240 (2004).
  17. Griepp, R. B., Griepp, E. B. Spinal cord perfusion and protection during descending thoracic and thoracoabdominal aortic surgery: the collateral network concept. Ann Thorac Surg. 83 (2), S865-S869 (2007).

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Herprints en machtigingen

Tags

Motorische Deficiëntie-IndexVerlamming van de AchterpotenThoracale AortaBallonkatheterNeurologische BeoordelingHistopathologisch OnderzoekReproduceerbaar Model