Voorbereiding van primaire Acute lymfatische leukemie cellen in verschillende celcyclus fasen door centrifugaal Elutriation

Samenvatting

Dit protocol beschrijft het gebruik van centrifugaal elutriation te scheiden van primaire acute lymfatische leukemie cellen in verschillende celcyclus fasen.

Samenvatting

De mogelijkheid om te synchroniseren van cellen heeft bevorderen van ons begrip van de celcyclus verordening centraal gestaan. Gemeenschappelijk gebruikte technieken omvatten serum ontbering; chemische stoffen die cellen te in verschillende celcyclus fasen arresteren; of het gebruik van de mitotische shake-off die gebruik maakt van de naleving van hun verminderde. Echter, al deze nadelen hebben. Serum honger werkt bijvoorbeeld goed voor normale cellen, maar minder goed voor tumorcellen met gecompromitteerde celcyclus controlepunten oncogen activering of tumor suppressor verlies. Ook kunnen chemisch behandeld cel populaties haven drug-geïnduceerde schade en stressgerelateerde wijzigingen weergeven. Een techniek die deze problemen omzeilt is tegenstroom centrifugaal elutriation (CCE), waar cellen worden onderworpen aan twee tegengestelde krachten, middelpuntvliedende kracht en vloeiende snelheid, wat in de scheiding van cellen op basis van grootte en bevolkingsdichtheid resulteert. Aangezien cellen bevorderen door de cyclus meestal vergroten, kan CCE worden gebruikt om te scheiden van cellen in verschillende celcyclus fasen. Hier toepassen wij deze techniek op primaire acute lymfatische leukemie cellen. Onder optimale omstandigheden, kunnen een in wezen puur bevolking van cellen in de G1-fase en een hoogverrijkt bevolking van cellen in G2/M fasen worden verkregen in uitstekende rendement. Deze cel populaties zijn bij uitstek geschikt voor studeren celcyclus-afhankelijke mechanismen voor actie van antikanker geneesmiddelen en voor andere toepassingen. We ook laten zien hoe wijzigingen in de standaard procedure kan leiden tot suboptimaal prestaties en bespreken van de beperkingen van de techniek. De voorgestelde gedetailleerde methodologie moet vergemakkelijken toepassing en verkenning van de techniek naar andere soorten cellen.

Inleiding

Gekweekte cellen groeien meestal asynchroon en afzonderlijke cellen zijn aanwezig in de verschillende fasen van de celcyclus. Sommige organismen vertonen natuurlijk synchrone cel cycli of kunnen worden gesynchroniseerd met behulp van specifieke fysiologische prikkels. Bijvoorbeeld, verdelen kernen binnen giant plasmodia van de slime schimmel Physarum polycephalum in een zeer synchrone mode¹, en de cellen van de groene algen die desmodesmus quadricauda kan worden gesynchroniseerd door afwisselend licht en donker perioden². Hoewel dergelijke organismen unieke experimentele kenmerken bieden, model zij onvoldoende de complexiteit van zoogdiercellen. De mogelijkheid om te synchroniseren kunstmatig zoogdiercellen populaties is centraal in het bevorderen van ons begrip van de celcyclus verordening en de moleculaire basis van de controlepunten van de celcyclus. Veel gebruikte methoden zijn serum ontbering, chemische blokkeren en vrijgeven, of exploitatie van de fysieke kenmerken^3,4. Terugtrekking van het serum worden vaak cellen invoeren van onbeweeglijkheid en de nieuwe toevoeging van serum promoot celcyclus reentry in de G1-fase⁵. Chemische inhibitoren zijn agenten zoals overtollige thymidine hydroxyurea die blokkeren van cellen op de grens van de G1/S of microtubulus-remmers die meestal het arresteren van cellen in de M fase^3,4. Benaderingen die misbruik maken van fysieke kenmerken omvatten mitotische shake-off die kan worden gebruikt om te verrijken voor mitotische cellen omdat ze minder aanhangend dan interfase cellen⁶. Al deze technieken wel mogelijke nadelen. Bijvoorbeeld, onderhouden niet alle celtypes levensvatbaarheid in de afwezigheid van serum of de aanwezigheid van chemische inhibitoren, en de opbrengst van cellen nadat mitotische shake-af beperkt zonder voorafgaande synchronisatie met mitotische remmers is.

Met uitzondering van vroege embryonale cel cycli, waar cellen geleidelijk in grootte afnemen als ze^{7 verdelen}, de meeste cellen bevorderen door de cyclus ondergaan groeifases en groter worden. Deze eigenschap wordt benut in de techniek van tegenstroom centrifugaal elutriation (CCE), die kan worden gebruikt voor het scheiden van cellen die verschillen in grootte en vandaar in celcyclus fase^8,9. Tijdens het CCE, cellen zijn onder invloed van twee tegengestelde krachten: middelpuntvliedende kracht, die drijft de cellen uit de buurt van de rotatie-as, en vloeiende snelheid (tegenstroom), die drijft de cellen naar de as van draaiing (Figuur 1). Cellen in de elutriation zaal bereiken een evenwicht positie waar deze krachten gelijk zijn. De belangrijkste factoren dicteren de positie van het evenwicht zijn cel diameter en dichtheid. Als de stroom tarief bufferoplossing wordt verhoogd en de tegenstroom slepen force opweegt tegen de middelpuntvliedende kracht, een nieuw evenwicht is gebracht, veroorzaakt een verandering in de positie van de cellen in de kamer. Alle cellen worden verschoven naar de uitgang van de kamer, wat resulteert in kleinere wegloopt eerst, terwijl de grotere cellen binnen de kamer blijven, totdat het tegenstroom tarief is voldoende verhoogd ter bevordering van hun uitgang. De cellen ontsnappen aan de elutriation kamer met opeenvolgende verhogingen in tegenstroom tarief op specifieke breuken kunnen worden verzameld en elk deel bevat cellen maten opeenvolgend te verhogen. In plaats van het uitvoeren van elutriation met een incrementele toename tegenstroom tarief, zal sequentiële afname van de middelpuntvliedende kracht door het verlagen van de snelheid van centrifugeren bereiken hetzelfde resultaat. Het proces van elutriation vereist optimalisatie afhankelijk van het celtype, elutriation buffer werkzaam en de specifieke apparatuur wordt gebruikt. De snelheid van sedimentatie van cellen onder deze omstandigheden is het best omschreven door de wet van Stokes: SV = [d²(ρ_p- ρ_m) / 18η] .ω²r, waar SV = snelheid sedimentatie; d = diameter van het deeltje; Ρ_p = dichtheid van de deeltjes; Ρ_m = dichtheid van de buffer; Η = viscositeit van de buffer; Ω = hoeksnelheid van de rotor; en r = radiale positie van de particle. Dus, SV is evenredig met de diameter van de cel en dichtheid, en aangezien diameter is verheven tot de tweede macht, het levert belangrijker dan dichtheid die over het algemeen door middel van de celcyclus constant.

Een belangrijk voordeel van CCE is dat cellen niet aan de barre omstandigheden van chemische behandeling of nutritionele ontbering onderworpen zijn en in uitstekende rendement in wezen onverstoorbaar kunnen worden hersteld. Een vereiste is dat de cellen in kwestie ondergaan een aanzienlijke toename van de diameter, van ten minste 30%, als ze de celcyclus doorkruisen. Het grootste nadeel is de kostprijs van de gespecialiseerde centrifuge, rotor en accessoires. Toch heeft de mogelijkheid om voor te bereiden van cellen die zijn verrijkt met specifieke celcyclus fasen door CCE sterk vergemakkelijkt celcyclus onderzoek in organismen uit gist zoogdiercellen^9,10. Recente vooruitgang, zijn bovendien toepassingen uitbreiden naar de scheiding van de cellen van gezonde versus kanker weefsel, de scheiding van verschillende celtypes in heterogene mengsels, en tot de productie van specifieke celtypes voor immunotherapie⁹.

Onze groot belang is geweest in het begrip van het werkingsmechanisme van microtubulus gericht op agenten (MTA) zoals vinca-alkaloïden en taxine. Deze drugs werden verondersteld om op te treden uitsluitend in de mitose, blokkeren spindel microtubulus functie^11,12, maar recent bewijs suggereert dat zij mogen ook worden getarget op interfase microtubuli^13,14. We hebben onlangs gemeld dat primaire acute lymfatische leukemie (ALL) cellen ondergaan dood in hetzij de G1-fase of in de M fase wanneer vincristine en andere MTAs in een celcyclus-afhankelijke manier¹⁵behandeld. De mogelijkheid om te scheiden van alle cellen in verschillende celcyclus fasen door CCE was behulpzaam bij het bereiken van deze conclusie. In dit artikel, wij beschrijven de technische details en bieden praktische tips voor de toepassing van CCE aan de voorbereiding van primaire alle cellen in verschillende celcyclus fasen.

Protocol

Opmerking: dit protocol is geoptimaliseerd voor primaire B-ALL die variëren in diameter van ongeveer 8 µm (G1-fase) tot 13 µm (G2/M fasen cellen). Dus, de specifieke centrifuge snelheden en het debiet van de pomp kunnen niet toepasbaar op cellen met verschillende grootte varieert. Niettemin, passende elutriation parameters kunnen worden geschat met behulp van de vergelijking van de snelheid sedimentatie. Cellen worden gekweekt in een gedefinieerde serumvrij medium als beschreven ¹⁶ bij een optimale dichtheid van 1-3 x 10 ⁶ cellen/mL. Met uitzondering van de inzameling van breuken die wordt uitgevoerd bij 4 ° C met behulp van ijs-gekoelde buizen, alle stappen worden uitgevoerd bij kamertemperatuur en de centrifuge ingesteld bij 20 ° C met een maximum van 24 ° C.

1. voorbereiding van de Buffer van de Elutriation en materialen

1. om te verminderen samendoen van cellen, het bereiden van een buffer van de elutriation van Hank ' s evenwichtig zoutoplossing (HBSS) met fenol rood aangevuld met 2% foetale runderserum () FBS), om de cellen te beschermen tegen mechanische belasting tijdens het proces van de elutriation, en de 1,6 g/L van 2-naftol-6,8-disulfonic zuur dikaliumhexafluorozirkonaat zout (NGK), die maakt de buitenkant van de cel negatief geladen en vermindert samendoen.
   1. 1,6 g NDA toevoegen aan een conische tube van 50 mL.
   2. Onder steriele condities, 35 mL HBSS uit een 1 L-fles toevoegen aan de conische tube van 50 mL met NDA. Swirl van de buis totdat de NDA heeft opgelost.
   3. De opgeloste NDA met behulp van een 0,2 µm filter, breng kwantitatief over in een nieuwe steriele 50 mL conische buis. Voeg vervolgens de NDA aan de resterende 1 L van HBSS.
   4. Ten slotte 21 mL FBS toevoegen aan de HBSS te verkrijgen van een eindconcentratie van 2% (v/v).
      Opmerking: De buffer van de elutriation kan worden voorbereid en opgeslagen bij 4 ° C tot de vervaldatum op de HBSS of totdat er een belangrijke verandering in de pH zoals aangegeven door een geelverkleuring van de indicator kleurstof.
2. Label 50 mL conische buizen voor collectie van breuken zodat er buizen label 1 en 2 (W1 en W2), breuken 1-20 (F1 - F20) wassen, en stoppen.
   1. Chill vooraf deze buizen op ijs vóór het verzamelen van breuken.

2. Vergadering van het systeem van de Elutriation

1. Installeer eerst de strobe-vergadering in de centrifuge zodat het netsnoer wordt gevoed uit de zaal via de poort aan de linkerkant. Zorg ervoor dat de flitslamp stroboscoop aan de voorkant van de kamer zodat het wordt uitgelijnd met het kijkvenster wanneer de centrifuge wordt gesloten.
   1. De vergadering in plaats veilig door de eerste twee Phillips-head schroeven aanscherping in de twee gaten aan de bovenkant van de de beugels en vervolgens door de aanscherping van de duimschroeven onderin de beugels.
   2. Sluit het netsnoer op de flitser macht poort aan de achterkant van de centrifuge.
2. Next, instellen van de rotor recht naar beneden op de centrifuge station hub en veilig met een T-hendel hex moersleutel.
   Opmerking: Als de centrifuge is niet nodig voor de doeleinden van de niet-elutriation, de vergadering van de flitser en de rotor kunnen worden gehouden in de centrifuge tussen runs.
3. Zodra de rotor is beveiligd, plaatst u de vergadering van de quick-release met de elutriation kamer, de teller evenwicht, roteerbare zegel vergadering en een montageplaat in de rotor.
   1. Duw gelijkmatig met één hand op de kamer van de elutriation en de andere hand op de teller evenwicht totdat de bouten in de rotor worden uitgelijnd in de gaten op de montageplaat.
   2. Tot slot hecht de verankerende kabel door het plaatsen van de pin aan de ene kant van de kabel in het gat in de vergadering van de roterende zegel en het veiligstellen van de eyehole aan de andere kant van de kabel met één van de Phillips-head schroeven (vermeld in 2.1.1) op de beugel op de linkerzijde-o f de zaal.
4. Vervolgens monteren van het gebruik van een pomp met variabele snelheid-stroomsysteem en buizen aan pomp buffer in de elutriation kamer en buffer te verzamelen, zoals het stroomt uit de elutriation-zaal.
   1. Invoegen de grootte 16 input slang afkomstig van de pomp met variabele snelheid via de poort aan de bovenkant van de kamer van de centrifuge verlaten zodat het in de kamer treedt.
   2. Een montage hechten aan het vrije uiteinde van de input-buis en steek de montage in de input opening aan de zijkant van de vergadering van de roterende zegel.
   3. Invoegen de grootte 16 uitgang buizen via de poort en deze koppelen aan de verbindingsleiding aan de bovenkant van de roterende zegel vergadering.
      Opmerking: De stroomsysteem ook kan blijven gemonteerd tussen elutriation runs.
5. Ten slotte, zet de centrifuge en de specificaties die nodig zijn voor het experiment worden ingesteld.
   1. Wijziging van de rotor ID.
   2. Als de centrifuge een inbreng van de tijd vereist, voor 2 h, die meer dan voldoende om te voltooien een elutriation uitvoeren instellen.
   3. De temperatuur instellen tot 20 ° C met een max temp van 24 ° C.
   4. Stelt u de versnelling voor max en de vertraging voor langzaam.
   5. Ten slotte stelt de snelheid tot 867 x g.

3. Priming van het systeem van de Elutriation

1. eerst om te steriliseren van het elutriation systeem, plaats de buis reservoir in een 500 mL plastic fles met 5% bleekwater en de slang van de uitvoer in een lege 1 L kunststof afval fles te plaatsen.
   1. De pomp inschakelt en zet de snelheid naar 25 mL/min en toestaan dat het 5%-bleekmiddel te stromen al manier door het systeem van de elutriation totdat het wordt in de afgewerkte fles uit de output buis gepompt.
   2. De centrifuge inschakelen en laat ze komen tot de maximum snelheid (867 x g) aangemerkte release bubbels en tegendruk.
   3. Stoppen de centrifuge. Zodra de rotor heeft gestopt draaien, open het deksel en inspecteren van de kamer voor eventuele lekken.
   4. Als er geen lekken, laat de bleekwater oplossing stroom in het systeem voor ten minste 5 min.
2. Vervolgens het spoelen van het systeem met gesteriliseerde met autoclaaf water als bleekmiddel tot de vorming van precipitaten uit de buffer van de elutriation die kan leiden leiden kan tot het samendoen van de cellen, evenals schade toebrengen aan de cellen.
   1. Plaats de buis reservoir in een 1 L-fles van gesteriliseerde met autoclaaf water en laat ze door middel van ten minste 10 min. spoelen
3. Na spoelen met water, elutriation buffer te introduceren in het systeem. Gebruik een 150 mL glazen fles die een gesteriliseerde met autoclaaf is maken een reservoir voor de elutriation buffer en cellen.
   1. 100 mL elutriation buffer toevoegen aan de fles en verplaatsen de reservoir buizen aan de glazen fles zodat de buis helemaal onderaan is.
   2. Start van de centrifuge en toestaan dat de buffer te stromen via het systeem te spoelen van de water.
   3. Zodra het reservoir fles bijna leeg is en het water is volledig uit het systeem gespoeld, verplaatsen de uitvoer buizen uit de fles afval naar het reservoir zodat de buffer wordt door het systeem wordt gerecycleerd.
4. Ten slotte het kijkvenster zodanig aanpassen dat de kamer van de elutriation kan worden gezien op de huidige snelheid.
   1. Press de stroboscoop lamp power knop op de buitenkant van de centrifuge zodat de lamp ingeschakeld. Draai de elutriation kNOB ook aan de buitenkant van de centrifuge helemaal naar links.
   2. Terwijl op zoek door het kijkvenster, langzaam draai de knop naar rechts totdat de elutriation kamer in zicht en de stroboscoop komt in de tijd met de rotatie van de rotor is.
      Opmerking: Het elutriation-systeem kan worden overgelaten in deze toestand totdat de cellen worden klaargestoomd.

4. Bereiding van het monster van de cel

1. graaf cellen en aliquoot 300 tot 400 miljoen in groeimedium in verschillende 50 mL conische buizen. Spin down de cellen bij 1210 x g gedurende 3 min.
2. Aspirate uit groei media en resuspendeer de cellen in 25 mL elutriation buffer door zachtjes op en neer pipetteren.
3. Teneinde cel samendoen, pass cellen tweemaal door middel van een 25-meter naald.
   1. Met behulp van een spuit van 10 mL de cellen en opstellen dan 25 meter naald bijvoegen en doorgeven van de cellen door op de binnenkant muur van een steriele 50 mL conische buis. Herhaal dit totdat alle 25 mL zijn gepasseerd via de naald.
   2. Verkrijgen van een nieuwe naalden en spuiten en herhaal het proces hierboven eens.
      Let op: Spuit naalden in sharps containers moeten worden geplaatst.
      Opmerking: Het is cruciaal dat de cellen worden geduwd door de naald onmiddellijk vóór de invoering van hen aan het elutriation-systeem te houden het samendoen van cel tot een minimum.

5. Binnenbrengen van cel monster het Elutriation systeem en een collectie van breuken

1. introduceren het monster van de cel in het systeem van de elutriation door het gieten van het monster van de cel in de reservoir tank heeft de resterende elutriation buffer recycling via .
   1. Laat de cellen in het systeem worden ingevoerd en het bereiken van evenwicht binnen de zaal elutriation.
      Opmerking: Dit proces duurt ongeveer 5 minuten en voortgang kan worden bijgehouden door te kijken naar de cellen als ze de zaal via het kijkvenster betreden. Nemen om ervoor te zorgen alle cellen in de zaal, een daling van de elutievloeistof, plaats op een glasplaatje en bekijken onder een microscoop. Als het monster gratis intact cellen is, dit bevestigt hun retentie in de zaal.
2. Beginnen met het verzamelen van breuken, zodra alle cellen zijn aangegaan in de vergaderzaal en er is een duidelijke grens op het breedste deel van de kamer waarin de cellen in evenwicht zijn.
   1. Begin door de uitvoer buis te verplaatsen naar de conische tube van 50 mL label W1. Verzamelen van 50 mL elutriation buffer voor deze fractie, ervoor zorgend om een oogje houden op de tank reservoir en vullen met elutriation buffer wanneer dat nodig is.
      Nota: Om ervoor te zorgen dat alle cellen in het systeem hebben ingevoerd, toestaan de reservoir tank tot bijna leeg voordat de eerste keer het bijvullen van het reservoir. Na de eerste bijvullen zal het niet nodig te wachten tot het reservoir tot bijna leeg zijn. Ook, DO NOT ooit toestaan de tank te worden leeg als dit tot bubbels en tegendruk in het systeem leiden zal.
   2. Zodra 50 mL zijn verzameld voor W1, gelijktijdig de snelheid tot 821 x g wijzigen en verplaatsen van de output buis aan de conische buis label W2 en verzamelen van 50 mL meer bij deze snelheid.
   3. Blijven wijzigen van de snelheid en het verzamelen van breuken, zoals aangegeven in tabel 1. Zorg ervoor dat er media in het reservoir tank en houd de conische buisjes op ijs te allen tijde. Tot slot, het aanpassen van het kijkvenster door langzaam verandert de knop naar rechts zoals de snelheid afneemt.
   4. Zodra alle 20 breuken verzameld zijn, de centrifuge stoppen en verzamelen van 50 mL in de conische buis label STOP.

6. Flushing van het systeem van de Elutriation

1. na de centrifuge volledig flush het systeem gestopt is doordat het reservoir buis in de 1 L-fles van gesteriliseerde met autoclaaf water en de buis van de output terug in de afval fles.
   1. Zet van het toerental van de pomp tot 50 mL/min. en laat het water om het systeem te doorlopen totdat het uitgeput.
2. Schakelen uit de pomp, de ingangs- en uitgangssignaal slang verwijderen uit de vergadering van de quick-release, en trek de pin uit de verankerende kabel.
   1. Verwijderen de quick-release-vergadering van de rotor.
      Opmerking: Afhankelijk van wat de centrifuge zal worden gebruikt voor, het elutriation-systeem kan nu worden gelaten zoals is. Anders, de hele vergadering kan worden afgebroken in de omgekeerde volgorde zoals hierboven beschreven. De elutriation kamer kan worden verwijderd uit de vergadering van de quick-release en schoongemaakt tussen runs met behulp van een ultrasoon waterbad. Hiermee verwijdert u vuil en verontreinigingen uit de kamer muur die negatief van invloed kan zijn op de latere loopt.

7. Analyse van breuken en verzameling van de G1 of G2/M zwembaden.

Opmerking: om aan te tonen de effectiviteit van elutriation, elke fractie wordt geanalyseerd voor cellen, de diameter van de cel en DNA inhoud en zwembaden zijn gemaakt van cellen in de G1 of G2/M fasen voor immunoblot analyses, zoals beschreven in Vertegenwoordiger resultaten. Dit protocol sectie beschrijft hoe bereiden hen voor experimenteel gebruik te maken van deze poelen.

1. Spin elke breuk bij 2000 x g gedurende 5 min bij 4 ° C en aspirate uit elutriation buffer.
2. Combineren breuken samen om te verkrijgen van zowel een pool van de fase G1 en G2/M fasen zwembad.
   1. Voor de G1 fase zwembad, resuspendeer breuken die werden verzameld in het snelheidsbereik van 788 x g tot 661 x g (F1 - F5) in een totaal 1 mL van fosfaat buffer zoutoplossing (PBS) en transfer naar een conische tube van 15 mL. Voor de groep van de fasen G2/M resuspendeer breuken die werden verzameld in het snelheidsbereik van 387 x g en 333 x g (F17 - F20).
   2. Spin down cellen bij 2000 x g gedurende 5 min bij 4 ° C en aspirate uit PBS.
3. Resuspendeer de cellen in 10 mL van de media van de groei en het nemen van een cel tellen.
4. Nemen een aliquoot gedeelte van elke pool te worden geanalyseerd voor DNA inhoud via propidium jodide kleuring en stromen van cytometrische analyse ¹⁵.
   Opmerking: De rest van elke groep kan worden gebruikt voor verdere experimenten.

Resultaten

Primaire alle cellen (3-4 x 10⁸) waren onderworpen aan centrifugaal elutriation en verzameld in twee wassen breuken en twintig belangrijkste fracties, zoals beschreven in het protocol. Tabel 1 toont representatieve gegevens waar het totale aantal cellen in elke fractie, alsmede de overeenkomstige snelheid van de rotor worden gepresenteerd. Totale was opbrengst doorgaans meer dan 80%. Meting van de diameter van de cel in afzonderlijke fracties bevestigd dat cel diameter verhoogd...

Discussie

Wij hebben beschreven een methode voor het verkrijgen van primaire alle cellen in de verschillende fasen van de celcyclus CCE gebruiken. Onder optimale omstandigheden een in wezen puur bevolking van cellen in de G1-fase en een hoogverrijkt bevolking van cellen in G2/M fasen kunnen gemakkelijk worden verkregen in uitstekende rendement en cellen in de S-fase hoogverrijkt kunnen ook verkregen worden indien gewenst. De hier gepresenteerde resultaten werden verkregen met behulp van een primaire die alle cultuur (in het bijzon...

Materialen

Lijst van materialen gebruikt in dit artikel

Naam	Bedrijf	Catalogusnummer	Opmerkingen
Hanks' balanced salt solution	Lonza	10-508Q	1 L fles
Fetal Plus bovien serum	Atlas Biologicals	FP-0500-A	500 mL fles
2-napthol-6,8-disulfonic acid dipotassium salt	Acros Organics	212-672-4	100 g poeder
50 mL conische buizen	Denville Scientifics	C1062-P	500/doos
PES-membraan 0,22 µm filtereenheid	Millipore	SLGP033RB	250/pakket
Avanti J-26S XPI met Elut. Non-IVD - 50/60 Hz, 200/208/240V	Beckman Coulter	B14544	centrifuge compatibel met elutriation systeem
JE 5.0 elutriator rotorkit	Beckman Coulter	356900	rotorkit die de rotor, T-handgreep zeskantsleutel, de snel loskoppelingsassemblage (zonder de elutriationkamer), bevestigingskabel en de strobe-assemblage omvat
Kamer, standaard, 4-mL, "A"	Beckman Coulter	356943	standaard elutriationkamer
Masterflex L/S Easy-Load pompkop	Cole-Parmer	EW-07518-10
Masterflex L/S Variabele-snelheidsaansturing	Cole-Parmer	EW-07528-10
Masterflex BioPharm platina-gevuld siliconen pompslang, L/S 16	Cole-Parmer	EW-96420-16
25 G x 1,5 Precision Glide naald	BD	305127	steriele, eenmalige naalden
10 mL Luer-Lok spuit	BD	309604	steriele, eenmalige spuiten
Vi-Cell XR	Beckman Coulter	383556
PI/RNase-kleuringsbuffer	BD Pharmingen	550825	propidiumjodide/RNase-kleuringsbuffer
cyclin B1 (GNS1) muis monoklonaal IgG-antilichaam	Santa Cruz Biotechnology	sc-245
cyclin D1 (DCS-6) muis monoklonaal IgG-antilichaam	Santa Cruz Biotechnology	sc-20044
P-Rb (S807/811) (D20B12) XPR konijn monoklonaal antilichaam	Cell Signaling Technology	8516s
GAPDH (14C10) konijn monoklonaal antilichaam	Cell Signaling Technology	2118s
Geit anti-muis IgG (H+L)-HRP-conjugaat	BioRad	170-6516
Geit anti-konijn IgG (H+L)-HRP-conjugaat	BioRad	170-6515