Methodenartikel

Gouden nanodeeltjes gemodificeerde koolstofvezel micro elektroden voor verbeterde neurochemische detectie

9.7K weergaven

⸱

DOI:

10.3791/59552

⸱

13 mei 2019

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Chemistry, American University, 2Center for Behavioral Neuroscience, American University

In dit artikel

Samenvatting

In deze studie, we wijzigen koolstofvezel micro-elektroden met gouden nanodeeltjes om de gevoeligheid van neurotransmitter detectie te verbeteren.

Samenvatting

Al meer dan 30 jaar, koolstofvezel micro elektroden (CFMEs) zijn de standaard voor neurotransmitter detectie. In het algemeen, koolstofvezels worden aanzuiging in glazen capillairen, getrokken naar een fijne taper, en vervolgens verzegeld met behulp van een epoxy te maken van elektrode materialen die worden gebruikt voor snelle scan cyclische voltammetrie testen. Het gebruik van kale CFMEs heeft echter verschillende beperkingen. Eerst en vooral, de koolstofvezel bevat voornamelijk basale vliegtuig koolstof, die een relatief lage oppervlakte en levert lagere gevoeligheden dan andere nanomaterialen. Bovendien wordt de graphitische koolstof beperkt door zijn temporele resolutie en zijn relatief lage geleiding. Ten slotte, neurotransmitters en macromoleculen zijn gekend om te overtreding op het oppervlak van koolstof elektroden waar zij vormen niet-geleidende polymeren die verdere neurotransmitter adsorptie blokkeren. Voor deze studie, we wijzigen CFMEs met gouden nanodeeltjes ter verbetering van neurochemical testen met snelle scan cyclische voltammetrie. Au3 + werd galvaniseerd of met een dipcoating van een colloïdale oplossing op het oppervlak van cfmes. Omdat goud een stabiel en relatief inert metaal is, is het een ideaal elektrode materiaal voor analytische metingen van neurotransmitters. Goud nano artikel gemodificeerd (AuNP-CFMEs) had een stabiliteit aan dopamine reactie voor meer dan 4 h. Bovendien vertonen AuNP-CFMEs een verhoogde gevoeligheid (hogere piek oxidatieve stroom van de cyclische voltammogrammen) en snellere elektron Transfer kinetiek (lagere ΔEP of piek scheiding) dan kale ongewijzigde cfmes. De ontwikkeling van AuNP-CFMEs biedt de creatie van nieuwe elektrochemische sensoren voor het opsporen van snelle veranderingen in dopamine concentratie en andere neurotransmitters bij lagere grenzen van de detectie. Dit werk heeft enorme toepassingen voor de verbetering van neurochemical metingen. Het genereren van goud nanodeeltjes gemodificeerde CFMEs zal van vitaal belang zijn voor de ontwikkeling van nieuwe elektrode sensoren om neurotransmitters in vivo te detecteren in knaagdieren en andere modellen om neurochemische effecten van drugsmisbruik te bestuderen, depressie, beroerte, ischemie, en andere gedrags-en ziektetoestanden.

Inleiding

Koolstofvezel micro elektroden (CFMEs)1 worden het best gebruikt als biosensoren voor het detecteren van de oxidatie van verschillende cruciale neurotransmitters2, met inbegrip van dopamine3, noradrenaline4, serotonine5, adenosine6, histamine7, en anderen8. De biocompatibiliteit en de grootte van koolstofvezels maken ze optimaal voor implantatie omdat er verminderde weefselbeschadiging is in vergelijking met grotere standaard elektroden. 9 cfmes bezitten nuttige elektrochemische eigenschappen en zijn in staat snelle metingen te verrichten bij gebruik in combinatie met snelle elektrochemische technieken, meestal Fast-scan cyclisch voltammetrie (fscv)10,11. Fscv is een techniek die het toegepaste potentieel snel scant en voorziet in een specifiek cyclisch voltammogram voor specifieke analyten12,13. De grote laadstroom die wordt geproduceerd door snel scannen is stabiel op koolstofvezels en kan achtergrond-worden afgetrokken om specifieke cyclische voltammogrammen te produceren.

Vanwege de optimale elektrochemie en neurobiologisch belang, dopamine is wijd bestudeerd. De Catecholamine dopamine is een essentiële chemische boodschapper die een cruciale rol in de controle van de beweging speelt, geheugen, cognitie, en emotie binnen het zenuwstelsel. Een overschot of een tekort aan dopamine kan leiden tot talrijke neurologische en psychologische interferentie; onder deze zijn de ziekte van Parkinson, schizofrenie, en verslavend gedrag. Vandaag, de ziekte van Parkinson blijft een heersende stoornis als gevolg van de degeneratie van de zenuwcellen die betrokken zijn bij dopamine synthese14. Symptomen van de ziekte van Parkinson omvatten tremor, traagheid van beweging, stijfheid, en problemen bij het handhaven van evenwicht. Aan de andere kant, stimulerende middelen zoals cocaïne15 en amfetamine16,17 bevorderen de overloop van dopamine. Drugsmisbruik vervangt uiteindelijk de regelmatige stroom van dopamine en voorwaarden de hersenen te vereisen een overschot van dopamine, die uiteindelijk leidt tot verslavend gedrag.

In de afgelopen jaren, is er een nadruk op het verbeteren van elektrode functionaliteit in neurotransmitter detectie18. De meest voorkomende methode van het verbeteren van de elektrode gevoeligheid is door coating van het vezel oppervlak. Verrassend genoeg is er beperkt onderzoek gedaan naar metaal nanodeeltjes elektro depositie op carbon-vezels19. Edele metalen-nanodeeltjes zoals goud, kunnen op het vezel oppervlak worden geelektro met andere functionele materialen20. Bijvoorbeeld, het verhogen van de elektroactieve oppervlakte voor neurotransmitter adsorptie optreden. Electrogestorte metalen nanodeeltjes vormen snel, kunnen worden gezuiverd en voldoen aan de koolstofvezel. Elektrochemie blijft significant voor zowel de afzetting van edele metalen nanodeeltjes en oppervlakte verbetering van koolstofvezels, omdat het de controle van nucleatie en groei van deze nanodeeltjes mogelijk maakt. Tot slot, de verhoogde katalytische en geleidende eigenschappen, en verbeterde massatransport behoren tot de andere voordelen van het gebruik van metalen nanodeeltjes voor elektro analyse.

De geavanceerde laboratorium sequentie cursus van de Amerikaanse Universiteit (experimentele biologische chemie I en II CHEM 471/671-472/672) is een combinatie van analytische, fysische en biochemie laboratoria. Het eerste semester is een overzicht van laboratoriumtechnieken. Het tweede semester is een student-gedreven en geleid onderzoeksproject21. Voor deze projecten hebben de studenten eerder gekeken naar het mechanisme van biomolecule, proteïne, peptide en aminozuur-gefaciliteerde synthese van goud nanodeeltjes22,23. Meer recent werk is gericht op de vorming van goud nano artikel (AuNP) productie op elektrode oppervlakken en de evaluatie van tantes effecten op het vermogen van CFMEs om neurotransmitters te detecteren. In het huidige werk heeft het laboratorium deze techniek toegepast om aan te tonen dat de gevoeligheid van CFMEs bij het opsporen van de dopamine-oxidatie wordt versterkt door de elektroafzetting van AuNP op het vezel oppervlak. Elke kale-CFME wordt gekenmerkt door wisselende scan-rate, stabiliteit en dopamine-concentratie bij het opsporen van dopamine-oxidatieve stromingen te meten van dopamine oxidatie op het oppervlak van de CFME. Au3 + werd vervolgens electroreduced naar au0 en gelijktijdig galvaniseren op het vezel oppervlak als nanodeeltjes, gevolgd door een reeks van karakterisering experimenten. Na een directe vergelijking, de AuNP-CFMEs bleken te bezitten van een hogere gevoeligheid van dopamine detectie. De uniforme coating van Tanp op het vezel oppervlak via elektro afzetting maakt een hoger elektroactief oppervlak; Dus, verhoging van de adsorptie van dopamine op het gemodificeerde elektrode oppervlak. Dit leidde tot hogere dopamine oxidatieve stromen. De potentiële scheiding van de dopamine oxidatie-en reductie pieken (∆ Ep) van AUNP-cfmes was ook kleiner, wat suggereert dat het een snellere elektron Transfer kinetiek zou zijn. Toekomstige werken van deze studie omvat de in vivo testen van zowel de kale-als de AuNP-CFMEs voor de opsporing van dopamine.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Protocol

1. constructie van koolstofvezel micro elektroden

  1. Bereiding van koolstofvezels
    1. Voor het maken van koolstofvezel micro elektroden, eerst scheiden de koolstofvezels (koolstofvezel, 7 mm in diameter) één voor één met behulp van handen, handschoenen, en spatel.
    2. Trek of haal één vezel uit het gedraaide garen.
    3. Aspireren van een geïsoleerde koolstofvezel in een glazen capillaire (single-vat borosilicaat capillair glas zonder micro filament, 1,2 mm buitendiameter, 0,68 mm binnendiameter).
    4. Maak een elektrodehouder voor de elektroden door een stuk karton te snijden dat ongeveer 10 cm lang is, met een breedte van 25 cm.
  2. Trek de elektroden met behulp van een verticale capillaire puller.
  3. Open de schuifdeur van de verticale capillaire puller.
  4. Draai de metalen houder stang los en verwijder deze door de boorkop tegen de klok in te draaien met voldoende ruimte om het glas capillair in te voegen.
  5. Plaats het Glazen capillair in de elektrodehouder. Til het glas capillair met de hand handmatig naar de bovenkant van het verticale capillair.
  6. Draai de glazen capillaire met de wijzers van de klok mee rechtsom zonder de glazen capillairen te breken of te verbrijzelen.
  7. Stel de verwarming 1, kachel 2, en magneet instellingen aan de fabrikant voorgesteld niveaus te trekken glazen capillairen naar een fijne taper voor elektrode materialen.
  8. Druk op de rode startknop om de spiraalvormige spoel te verwarmen om de elektroden te trekken via druk, zwaartekracht en verwarming.
  9. Laat de spiraal spoel afkoelen van zijn rode hete staat. Snijd de koolstofvezel met een schaar die de twee getrokken elektroden van boven naar beneden verbindt. Gebruik de boor-Chuck methode om het glas capillair uit de verticale capillaire trekker te verwijderen door de linksom richting te draaien.

2. voorbereiding van koolstofvezel-micro elektroden

  1. Snijd onder een stereoscoop of Microscoop de koolstofvezel uit het oppervlak van het Glazen capillair met een chirurgische schaar of een scherp scheermesje tot ongeveer 100 – 150 μm lang.
  2. Bereid een oplossing van epoxy door 10 g epoxy te mengen met 0,2 mL verharder in een 25 mL injectieflacon met een wattenstaafje.
  3. Dompel slechts de punt van elke elektrode in de epoxy-en verharder oplossing voor ongeveer 15 s.
  4. Dompel de bovengenoemde top van de koolstofvezel-micro-elektrode in aceton voor ongeveer 3 sec. om overtollige epoxy uit het vat van de koolstofvezel-micro-elektrode weg te spoelen.

3. elektro depositie

  1. Plaats de werkende elektrode (koolstofvezel micro-elektrode) in de oplossing van 0,5 mM HAuCl4 naast de referentie-elektrode, zilver-zilverchloride (Ag/AgCl) met behulp van de micro manipulator.
  2. Verbind de werkende elektrode en de referentie-elektrode met de potentiostaat en het hoofdpodium.
  3. Open de UNC HDCV-software. Wijzig de instellingen op de software om de golfvorm toe te passen. Voer de volgende golfvorm in de computerinstellingen in: scan van 0,2 V naar − 1,0 V in 0,1 M KCl oplossing met 0,5 mM HAuCl4 met een scansnelheid van 50 mV/s gedurende 10 cycli. Druk op de groene pijl om de golfvorm toe te passen. Druk vervolgens op de startknop om de opname van de metingen te starten.

4. scannen van elektronenmicroscopie

Opmerking: afbeelding kale en goud nanodeeltjes gemodificeerde koolstofvezel micro elektroden met behulp van scanning elektronenmicroscopie instrument (SEM). Laad het monster op zwarte geleidende tape en volg de instructies van de fabrikant.

  1. Het apparaat inschakelen
    1. Draai de toets om te starten en los te laten.
    2. Open de InTouchScope-software door erop te dubbelklikken.
    3. Laat de toets los. Het moet op zijn eentje op het I -symbool landen.
    4. Wacht tot de EVAC-knop stopt met knipperen.
    5. Zodra de EVAC-knop stopt met knipperen, drukt u op de VENT-knop.
    6. Wacht tot de VENT-knop stopt met knipperen.
    7. Zorg ervoor dat de werkafstand (WD) 20 mm – 30 mm bedraagt.
    8. Bereid het monster (s) tijdens het wachten.
  2. Scannen
    1. Wanneer de VENT-knop stopt met knipperen, laadt u de monsters in het apparaat.
    2. Zorg ervoor dat het gebogen deel van de monsterhouder naar het instrument wordt gericht bij het laden van monster (s).
    3. Druk op de EVAC-knop zodra de steekproef (en) is geladen.
    4. Stel de werkafstand in op 10 mm.
    5. Zodra de EVAC-knop stopt met knipperen, zet u de computer aan.
    6. Klik op de in touch Scope-software, die zich op het bureaublad bevindt. Er zijn twee in touch Scope-software, klik op de ene zonder de groene en gele cirkel.
    7. Zodra de software wordt geopend, klikt u op OBSERVEREN (rechtsboven in het scherm), om de balk aan te zetten. Zorg ervoor dat de EVAC-knop is gestopt met knipperen voordat u op OBSERVEREN klikt.
    8. Begin met het analyseren van de sample (s).
    9. Zorg ervoor dat de instellingen voor spanning, werkafstand (WD) en sonde stroom (PC) acceptabel zijn.
    10. Zoom uit (~ 50X) voor een hogere instelling en zoom in voor een lagere instelling.
    11. Stel de werkafstand in op 10 mm.
    12. Voordat u een foto van monster (s) neemt, moet u ervoor zorgen dat de afbeelding wordt opgeslagen in de gewenste doelmap.
    13. Om de gewenste map te kiezen, klik op de instellingen (linksboven in het scherm).
    14. Exporteer de foto's van de computer via een Flash Drive.
  3. Uitschakelen
    1. Klik op OBSERVEREN om de straal uit te schakelen.
    2. Druk op de VENT-knop en wacht tot deze stopt met knipperen.
    3. Stel de werkafstand weer in op 20 mm – 30 mm terwijl u wacht tot de VENT-knop stopt met knipperen.
    4. Zodra de VENT-knop stopt met knipperen, ontlaadt u het monster (s) van het apparaat.
    5. Druk op de EVAC-knop en wacht tot deze stopt met knipperen.
    6. Zodra de EVAC-knop stopt met knipperen, verlaat u de software en sluit u de computer af.
    7. Draai de toets naar het O -symbool om het apparaat volledig uit te schakelen.

5. snelle scan cyclische voltammetrie testen

  1. Sluit de koolstofvezel-micro-elektrode aan op potentiostaat en Head stage samen met de Ag/AgCl referentie-elektrode.
  2. Gebruik de micromanipulator om de koolstofvezel-micro-elektrode in de stroomcel te verlagen door de X-, Y-en Z-meet knoppen handmatig aan te passen.
  3. Bereid bufferoplossing in DI water (131,5 mM NaCl, 3,25 mM KCl, 1,2 mM CaCl2, 1,25 mm Nah2po4, 1,2 mm MgCl2, en 2,0 mm na2dus4 met de pH aangepast aan 7,4).
  4. Vul de stroomcel met de buffer fosfaatgebufferde zoutoplossing (PBS) (pH = 7,4).
  5. Injecteer met een gevulde 60 mL buffer spuit de PBS-buffer in de stroomcel van ongeveer 1 mL/min.
  6. Plaats de elektrode in de stroomcel en pas de golfvorm toe door op de groene knop te drukken. Observeer de oscilloscoop en knip de elektrode af of pas de versterking aan om overbelasting te voorkomen. Laat ongeveer 10 minuten equilibratie toe tussen elke elektrode uitvoering.
  7. Stel de standaard golfvorm in op de dopamine golfvorm. Scannen van – 0,4 V tot 1,3 V bij 10 Hz en 400 V/s.
  8. Bereid stockoplossing van 10 mM dopamine, serotonine, noradrenaline, en anderen in perchlorinezuur. Verdun neurotransmitters tot de uiteindelijke concentratie van 1 μM in buffer door pipetteren 1 μM van de dopamine-voorraadoplossing in 10 mL PBS-buffer met behulp van een pipet.
  9. Druk op de opnameknop om de metingen te starten. Na 10 s, injecteren 0,2 mL van 1 μM dopamine in de stroomcel of een andere concentratie van neurotransmitter. Pas de concentratie, scansnelheid, golfvorm (Houd potentiaal of schakel potentiaal) dienovereenkomstig aan. Stel de totale uitvoeringstijd in voor 30 sec.
  10. Analyseer de uitvoering met behulp van de HDCV-analyse software. Wijzig de parameters indien nodig.
  11. Nadat het experiment voltooid is, reinig de stroomcel door het injecteren van 3 mL water en vervolgens lucht in de buffer en injectie poorten van de stroomcel driemaal elk.
  12. Schakel de golfvorm en het instrument uit.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Resultaten

Voor Figuur 1, we tonen een schematische waar FSCV testen wordt gebruikt voor het meten van de concentratie van neurotransmitters in vitro. Figuur 1 toont de toegepaste dopamine golfvorm. De driehoek golfvorm scant van-0,4 V tot 1,3 V bij 400 V/s. In het tweede deel van de figuur links, het toont de oxidatie van dopamine aan dopamine-Ortho-Chinon (DOQ), een twee elektron overdracht proces vindt plaats van het oppervlak van de ana...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Discussie

In deze studie, we demonstreren een nieuwe methode voor het construeren van goud-nanodeeltjes gemodificeerde koolstofvezel micro elektroden voor de opsporing van neurotransmitters zoals dopamine met behulp van snelle scan cyclische voltammetrie. De methode is een efficiënte, groene en relatief goedkope benadering voor het verbeteren van de gevoeligheid van biomolecule detectie. De dikte van goud afgezet op het oppervlak van de koolstofvezel kan worden gecontroleerd door de tijd van elektro depositie en de concentratie va...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Openbaarmakingen

De auteurs hebben niets te onthullen.

Dankbetuigingen

We willen graag de American University bedanken, de faculteits Onderzoeksondersteuning subsidie, NASA DC ruimte subsidie, en NSF-MRI # 1625977.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Materialen

Lijst van materialen gebruikt in dit artikel
NaamBedrijfCatalogusnummerOpmerkingen
Dopamine hydrochlorideSigma AldrichH8502-5G
Phosphate Buffered SalineSigma AldrichP5493-1L
Pine WaveNeuro PotentiostatPine InstrumentsNEC-WN-BASICDeze bestelling komt in bulk met alle andere accessoires zoals headstages, adapters, snoeren en andere elektronica
Pine Flow Cell and MicromanipulatorPine InstrumentsNEC-FLOW-1Dit is ook weer een bulkbestelling inclusief de micromanipulator, flow cell, knoppen, buizen, connectoren, enz.
Glass-CapillaryA-M Systems602500
T-650 Carbon FiberGoodfellowC 005711
Epon 828 EpoxyMiller-StephensonEPON 828 TDS
DiethelynetriamineSigma AldrichD93856-5ML
Gold (III) chlorideSigma Aldrich254169Komt als HAuCl4 of AuCl3
pH meterFisherS90528
Farraday CageAMETEK TMC81-334-03
Syringe PumpNEW ERA PUMPNE-1000
Eppendorf Pipettes and TipsEppendorf2231000222Dit is ook een bulkbestelling met meerdere pipetten en tips
10 -1,000 mL bekersVWR10536-390
Carbon fiberGoodfellowC 005711
SEMJEOLJSM-IT100

Referenties

  1. Zestos, A. G., Nguyen, M. D., Poe, B. L., Jacobs, C. B., Venton, B. J. Epoxy insulated carbon fiber and carbon nanotube fiber microelectrodes. Sensors and Actuators B: Chemical. 182, 652-658 (2013).
  2. Bucher, E. S., Wightman, R. M. Electrochemical analysis of neurotransmitters. Annual review of analytical chemistry. 8, 239-261 (2015).
  3. Zestos, A. G., Venton, B. J. Communication—Carbon Nanotube Fiber Microelectrodes for High Temporal Measurements of Dopamine. Journal of The Electrochemical Society. 165, G3071-G3073 (2018).
  4. Park, J., Takmakov, P., Wightman, R. M. In vivo comparison of norepinephrine and dopamine release in rat brain by simultaneous measurements with fast-scan cyclic voltammetry. Journal of neurochemistry. 119, 932-944 (2011).
  5. Abdalla, A., et al. In Vivo Ambient Serotonin Measurements at Carbon-Fiber Microelectrodes. Analytical chemistry. 89, 9703-9711 (2017).
  6. Ganesana, M., Venton, B. J. Early changes in transient adenosine during cerebral ischemia and reperfusion injury. PloS one. 13, e0196932(2018).
  7. Denno, M. E., Privman, E., Borman, R. P., Wolin, D. C., Venton, B. J. Quantification of histamine and carcinine in Drosophila melanogaster tissues. ACS chemical neuroscience. 7, 407-414 (2016).
  8. Sanford, A. L., et al. Voltammetric detection of hydrogen peroxide at carbon fiber microelectrodes. Analytical chemistry. 82, 5205-5210 (2010).
  9. Heien, M. L., Johnson, M. A., Wightman, R. M. Resolving neurotransmitters detected by fast-scan cyclic voltammetry. Analytical chemistry. 76, 5697-5704 (2004).
  10. Raju, D., et al. Polymer modified carbon fiber-microelectrodes and waveform modifications enhance neurotransmitter metabolite detection. Analytical Methods. 11, 1620-1630 (2019).
  11. Jacobs, C. B., Ivanov, I. N., Nguyen, M. D., Zestos, A. G., Venton, B. J. High temporal resolution measurements of dopamine with carbon nanotube yarn microelectrodes. Analytical chemistry. 86, 5721-5727 (2014).
  12. Zestos, A. G., Yang, C., Jacobs, C. B., Hensley, D., Venton, B. J. Carbon nanospikes grown on metal wires as microelectrode sensors for dopamine. Analyst. 140, 7283-7292 (2015).
  13. Zestos, A. G. Carbon Nanoelectrodes for the Electrochemical Detection of Neurotransmitters. International Journal of Electrochemistry. , (2018).
  14. Kim, J. H., et al. Dopamine neurons derived from embryonic stem cells function in an animal model of Parkinson's disease. Nature. 418, 50(2002).
  15. Zestos, A. G., et al. Ruboxistaurin Reduces Cocaine-Stimulated Increases in Extracellular Dopamine by Modifying Dopamine-Autoreceptor Activity. ACS Chemical Neuroscience. 10, 1960-1969 (2019).
  16. Zestos, A. G., Kennedy, R. T. Microdialysis Coupled with LC-MS/MS for In Vivo Neurochemical Monitoring. The AAPS Journal. 19, 1284-1293 (2017).
  17. Carpenter, C., et al. Direct and systemic administration of a CNS-permeant tamoxifen analog reduces amphetamine-induced dopamine release and reinforcing effects. Neuropsychopharmacology. 42, 1940(2017).
  18. Zestos, A. G., Venton, B. J. Carbon Nanotube-Based Microelectrodes for Enhanced Neurochemical Detection. ECS Transactions. 80, 1497-1509 (2017).
  19. Zachek, M. K., Hermans, A., Wightman, R. M., McCarty, G. S. Electrochemical Dopamine Detection: Comparing Gold and Carbon Fiber Microelectrodes using Background Subtracted Fast Scan Cyclic Voltammetry. J Electroanal Chem (Lausanne Switz). 614, 113-120 (2008).
  20. Li, J., Xie, H., Chen, L. A sensitive hydrazine electrochemical sensor based on electrodeposition of gold nanoparticles on choline film modified glassy carbon electrode. Sensors and Actuators B: Chemical. 153, 239-245 (2011).
  21. Hartings, M. R., Fox, D. M., Miller, A. E., Muratore, K. E. A hybrid integrated laboratory and inquiry-based research experience: replacing traditional laboratory instruction with a sustainable student-led research project. Journal of Chemical Education. 92, 1016-1023 (2015).
  22. Hart, C., et al. Protein-templated gold nanoparticle synthesis: protein organization, controlled gold sequestration, and unexpected reaction products. Dalton Transactions. 46, 16465-16473 (2017).
  23. Hartings, M. R., et al. Concurrent zero-dimensional and one-dimensional biomineralization of gold from a solution of Au3+ and bovine serum albumin. Science and technology of advanced materials. 14, 065004(2013).
  24. Xiao, N., Venton, B. J. Rapid, sensitive detection of neurotransmitters at microelectrodes modified with self-assembled SWCNT forests. Analytical chemistry. 84, 7816-7822 (2012).
  25. Zestos, A. G., Jacobs, C. B., Trikantzopoulos, E., Ross, A. E., Venton, B. J. Polyethylenimine Carbon Nanotube Fiber Electrodes for Enhanced Detection of Neurotransmitters. Analytical chemistry. 86, 8568-8575 (2014).
  26. Yang, C., et al. Carbon nanotubes grown on metal microelectrodes for the detection of dopamine. Analytical chemistry. 88, 645-652 (2015).

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Herprints en machtigingen

Toestemming aanvragen om de tekst of afbeeldingen van dit JoVE-artikel te hergebruiken

Toestemming aanvragen

Trefwoorden

Fast Scan Cyclic Voltammetryelektrodepositie van goudnanodeeltjespreparatie van koolstofvezelmicro elektrodenverbetering van dopaminegevoeligheidverbetering van elektronoverdrachtskinetiekscanning elektronenmicroscopie beeldvormingin vivo detectie van neurotransmittersontwikkeling van elektrochemische sensoren

Gerelateerde artikelen