Methodenartikel

Murine appendectomie model van chronische colitis geassocieerde colorectale kanker door precieze lokalisatie van caecal patch

DOI:

10.3791/59921

24 augustus 2019

In dit artikel

Samenvatting

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Het gepresenteerde protocol beschrijft een facile chirurgische verwijdering van de appendix (caecal patch) in een muis gevolgd door de inductie van inflammatoire darmziekte-geassocieerde colorectale kanker. Dit Murine appendectomie model maakt onderzoek mogelijk naar de biologische rol van de appendix in de pathogenese van menselijke gastro-intestinale aandoeningen.

Samenvatting

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

De humane appendix is recentelijk betrokken bij het spelen van belangrijke biologische rollen in de pathogenese van verschillende complexe ziekten, zoals colorectale kanker, inflammatoire darmziekte, en de ziekte van Parkinson. Om de functie van het aanhangsel te bestuderen, is een met darmziekte geassocieerd muriene appendectomie-model vastgesteld en wordt het stapsgewijze protocol hier beschreven. Dit rapport introduceert een facile protocol voor het verwijderen van ileocaecale patch in muizen, gevolgd door de chemische inductie van chronische colitis-geassocieerde colorectale kanker met behulp van een combinatie van dextran sulfaat natrium (DSS) en azoxymethaan (AOM). IgA-specifieke cellen en IgA-concentratie werden significant verlaagd bij het verwijderen van de ileocaecale-pleister bij mannelijke C57BL/6-muizen in vergelijking met die in de Sham-groep. Gelijktijdige toediening van 2% DSS en AOM resulteerde in bijna 80% overleving van muizen in zowel Sham-als appendectomie groepen zonder significant lichaamsgewicht verlies. Histologische resultaten bevestigden Colon ontsteking en verschillende gradaties van adenocarcinoom. Dit model kan worden gebruikt voor de studie van de functionele rol van de Appendix bij het handhaven van gut microbiota homeostase en pathogenese van gut colitis en maligniteiten, evenals voor de potentiële ontwikkeling van drug targeting therapieën.

Inleiding

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

De klinische appendectomie is een standaard chirurgische ingreep waarbij het aanhangsel wordt verwijderd, voornamelijk als gevolg van een ontsteking (bijv. appendicitis)1,2,3. De biologische functie van het wormvormig humane aanhangsel blijft echter controversieel4,5,6. De appendix wordt beschouwd als een overblijfsel van de blindedarm die uitstekt uit de blindedarm in de dikke darmen. Tot voor kort hebben evolutionaire, immunologische, morfologische en microbiologische studies gesuggereerd dat de appendix verschillende functies kan bezitten. Deze rollen omvatten de productie van bloed (bijv. Iga en IgG), een verscheidenheid aan B-cellen en T-cellen die kritisch zijn voor adaptieve immuunresponsen binnen de met de darm geassocieerde lymfoïde weefsels (galts), en de aanvulling van de dikke darm met commensale microbiotas 6 , 7 , 8 , 9 , 10 , 11 , 12.

Klinisch epidemiologisch onderzoek bij patiënten met een voorafgaande appendectomie of acute blindedarmontsteking heeft ook zijn potentiële rol in de pathogenese van menselijke ziekten onthuld, zoals ontstekingsdarmziekte (IBD), colorectale kanker en niet-gastro-intestinale aandoeningen (bijv. de ziekte van Parkinson en hart-en vaatziekten)13,14,15,16,17,18. Bijvoorbeeld, een grote Aziatische populatie cohortstudie met 75.979 appendectomie patiënten toonde onlangs een significante associatie tussen appendectomie en latere ontwikkeling van colorectale kanker, een van de meest voorkomende maligniteiten met een hoge incidentie en sterfte14,19. Dienovereenkomstig zal het vaststellen van een geschikt dier appendectomie-model dat lijkt op een mens nuttig zijn om de biologische functies en moleculaire mechanismen van het aanhangsel bij de pathogenese van de ziekte te onderzoeken.

Veel zoogdieren bezitten een aanhangsel of aanhangsel-achtige orgel, met inbegrip van primaten, lagomorfen (bijvoorbeeld konijnen), sommige knaagdieren, en marsupien20. Voor kleine en veelgebruikte proefdieren bezit het konijn de vermiforme Appendix morfologisch gelijkend op de menselijke21,22, maar Galt in het konijn is extreem groot in vergelijking met die bij mensen, aangezien de meerderheid van lymfoïde weefsels zijn ook te vinden in Peyer's patches gelegen in zowel kleine als grote darmen21. Daarnaast vertoont het konijn een verschillende lymfoïde Folliculaire structuur, T-celverdeling en immunoglobulindichtheid van de mens, wat het bestuderen van hun aanhangsels ongepast maakt21.

Muizen zijn het meest gebruikte diermodel om menselijke pathofysiologie te bestuderen en de verschillende bestaande en nieuwe therapuetics te testen23,24,25. De enkele witte grote lymfoïde cluster aan de Apex van het caecum in muizen, bekend als de ileocaecale patch, wordt verondersteld functies uit te voeren die vergelijkbaar zijn met de humane Appendix26,27,28. Toch is het praktisch moeilijk om de ileocaecale-pleister van caecum in muizen te scheiden. Tot nu toe hebben de gemeenschappelijke chirurgische procedures voor het induceren van blindedarmontsteking in een muismodel een relatief grote incisie (bijv. 1 – 2 cm) door de buikwand om toegang te krijgen tot het gehele caecum (aanvullende tabel 1)29, 30,31,32,33,34,35,36.

Hierin, voor het genereren van een appendectomie model geassocieerd met gastro-intestinale ziekten, dit verslag presenteert een faciele chirurgische protocol voor ileocaecale patch verwijdering in muizen. Dit wordt gevolgd door de gecombineerde toediening van de genotoxische agent AOM en pro-inflammatoire agent DSS voor de inductie van colitis-geassocieerde colorectale kanker vergelijkbaar met die gezien bij de mens. Er is aangetoond dat IBD een risicofactor is van darmkanker37,38. De combinatie van AOM/DSS-geïnduceerde chronische colitis-geassocieerde colorectale kanker is goed vastgesteld, en lezers kunnen verwijzen naar neufert et al., en thaker et al. voor gedetailleerde procedures39,40. Dit reproduceerbare en snelle Murine appendectomie model kan worden gebruikt voor de studie van aanhangsel-gemoduleerde darmontsteking en Colon microbiota, vooral in de ontwikkeling en progressie van IBD en colorectale kanker.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Protocol

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Alle dier procedures werden goedgekeurd door het institutioneel Dierenzorg-en gebruiks Comité van de Universiteit van Xi'an Jiaotong (nr. XJTULAC2019-1023).

1. muizen appendectomie

  1. Huis 8 – 10 weken oude C57BL/6 mannelijke muizen in een gecertificeerde specifieke-pathogeen vrije (SPF) omgeving voor 1 week voorafgaand aan de operatie.
  2. Bereid de volgende steriele chirurgische instrumenten voor: één paar micro-schaar, één paar micro-Tang, twee maten (4-0 en 8-0) van gesteriliseerde niet-absorbabele hechtingen, een elektrische coagulatie pen met naald houder, 75% medische alcohol, scrub op basis van jodium ( bijvoorbeeld, entojodium), en een pakket van steriele wattenstaafjes.
  3. Vul een injectiespuit van 10 mL met voorverwarmde 0,9% fysiologische zoutoplossing voor de abdominale spoeling en hydratatie tijdens de operatie.
  4. Anesthetiseer een niet-gefaalde muis intraperitoneaal (i.p.) met 1% natriumpentobarbital in een dosis van 100 mg/kg. Controleer op de diepte van de anesthesie door het gebrek aan reactie op pedaal reflexen.
    Opmerking: een enkelvoudige verdovings dosis wordt toegediend om een volledig kalmerend effect in de muis te garanderen. Onder de omstandigheid van korte procedures kan 50 mg/kg natrium pentobarbital i.p. voldoende zijn.
  5. Scheer het buikhaar voorzichtig met een elektrisch scheerapparaat.
  6. Leg de muis op het verwarmingspaneel om hypothermie te voorkomen.
  7. Bevestig de muis op een platform in rugligging door vier stroken medische plakband over de ledematen te plaatsen om de postale beweging tijdens de operatie te voorkomen.
  8. Raak de hele buik zachtjes aan om het gevoel van een hobbel te vinden.
    Opmerking: in de meeste gevallen geeft het gevoel van een hobbel altijd de exacte positie van het caecum aan. Om mogelijke schade aan de rest van de darm te voorkomen, is deze pre-lokaliseren van het caecum voorafgaand aan de buik incisie belangrijk.
  9. Bedek met een steriele draperen en Desinfecteer het geschoren gebied van de buik door het aanbrengen van alternerende chirurgische Scrubs van jodium gebaseerde oplossing en 75% alcohol. Herhaal het proces 2x.
  10. Maak een longitudinale incisie variërend van 0,5 – 1,0 cm bij de middenlijn van de buik.
  11. Volgens de vooraf bepaalde locatie van het caecum, bereik het caecum en voorzichtig exteriorize (~ 1 cm) om de ileocaecale patch te identificeren. Gebruik een steriele, voorverwarmde zoutoplossing van fysiologische pH om de darm te hydrateren.
    Opmerking: de ileocaecale patch van een muis maakt deel uit van het caecum en wordt gekenmerkt door de aanwezigheid van witte eivormige follikels op het oppervlak.
  12. Om mogelijke complicaties van de postoperatieve bloeding en infectie te voorkomen, ligeren de mesenterische bloedvaten van het caecum met behulp van de 8-0 hecht. Hydrateer het caecum met steriele zoutoplossing.
  13. Markeer de resectie regio met behulp van de 4-0 hechtmiddel met een open lus in de buurt van de Apex van het caecum aan de proximale Colon.
    Opmerking: het markeren van het caecum met een open lus voorkomt ook lekkage van caecale inhoud van de snede.
  14. Knip de ileocaecale patch af onder de gemarkeerde resectie met behulp van micro-schaar en veeg het resterende caecale gehalte uit met medische wattenstaafjes. Desinfecteer vervolgens de stronk van caecum met scrub op basis van jodium.
  15. Sluit de stomp met de actieve hechting met behulp van de 8-0 hecht.
  16. Verwijder voorzichtig de 4-0 schroefdraad lus die eerder werd gebruikt voor het markeren van de resectie bij de stronk van het caecum.
  17. Steriliseer de gehecht positie met scrub op basis van jodium. Opnieuw hydrateren de operatieplaats met zoutoplossing.
  18. Sluit de spieren-laag met de actieve hechting met behulp van 8-0 hechtdraad.
  19. Sluit de huidlagen met onderbroken hechtingen met 4-0 hechtdraad.
  20. Desinfecteer de chirurgische snede 2x met scrub op basis van jodium en verwijder vervolgens jodium met 75% medische alcohol.
  21. Draai de muis voorzichtig terug, subcutaan (s.c.) Injecteer 0,1 mg/kg lichaamsgewicht van buprenorfine en 0,4 mL fysiologische zoutoplossing en laat de muis rusten op de warmte pad tot het bewustzijn terugkeert.
  22. Plaats de muis terug in de steriele kooi en bewaak nauwgezet de tekenen van pijn gedurende 3 dagen na de operatie om herstel te garanderen.
    Opmerking: na de operatieve toepassing van 0,05 mg/kg buprenorfine kan nodig zijn voor pijnverlichting van de individuele muis. Laat muizen 7 dagen na de operatie herstellen voor verdere inductie van colitis-geassocieerde colorectale kanker.

2. inductie van chronische colitis-geassocieerde colorectale kanker met AOM en DSS

Opmerking: Voer deze procedure uit 7 dagen na appendectomie.

  1. Bereid AOM-stamoplossing voor door 25 mg AOM te lossen in 2,5 mL 0,9% steriele zoutpan met een concentratie van 10 mg/mL.
    Opmerking: AOM is lichtgevoelig.
    1. Aliquot 2,5 mL bereide AOM-stamoplossing in glazen buisjes van 5 mL, verpakt met aluminiumfolie en bij-20 °C bewaren bij gebruik.
    2. Ontdooi één aliquot van AOM eenmaal en Verdun het tot een concentratie van 1 mg/mL met 0,9% steriele zoutoplossing (ratio 1:10).
      Let op: AOM is uiterst kankerverwekkend; Voer daarom de hele voorbereidingsprocedure uit in een rook afzuigkap.
  2. Los 4 g DSS poeder op in 200 mL geautoclaveerd water om 2% (w/v) DSS oplossing te bereiden.
    Opmerking: de concentratie van DSS kan variëren afhankelijk van de muis stam, geslacht en inductie cyclus; voor andere muizenstammen kan 3% DSS worden gebruikt.
  3. Dien de vers bereide AOM/DSS gelijktijdig toe aan de muizen. Hiertoe volgt u de onderstaande stappen.
    1. Intraperitoneaal injecteert 0,01 mL/g vers bereide AOM-werkoplossing voor elke muis en vervangt het geautoclaveerd water met 2% DSS oplossing gedurende 5 dagen ad libitum.
      Opmerking: elke kooi bevat vijf muizen; Controleer regelmatig de DSS drinkfles om er zeker van te zijn dat er geen precipitaat optreedt tijdens de behandelperiode.
    2. Gewicht en nauwlettend bewaken elke muis elke dag.
      Opmerking: tijdens de toediening worden muizen met maximaal 20% gewichtsverlies geëerd in vergelijking met het aanvankelijke gewicht of de verschijnselen van de Huddle, squint, hypothermie en slechte activiteit.
  4. Zorg voor een verse fles geautoclaveerd water op dag 6 post-AOM/DSS administratie tot dag 21 (Figuur 1B).
    Let op: dit is een complete cyclus bestaande uit 21 dagen.
  5. Herhaal stap 2.3 – 2.4 voor nog eens twee cycli en offer de muizen op dag 70.

3. beoordeling van de Colon ontsteking en tumor (70 dagen na AOM toediening)

  1. Opofferen van de muizen door co2 inademing met een vullingsgraad van 10% in de euthanasie kamer gevolgd door cervicale dislocatie.
  2. Oogst de gehele dikke darm van boven de ileo-koliek kruising met de anus.
  3. Stel de lumen zijde bloot door de dikke darm longitudinaal te openen. Snijd de hele dikke darm in 10 cm lange stukken en bevestig het Colon weefsel in 10% formaline voor 72 h voor hematoxyline en eosine (H & E) kleuring.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Resultaten

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Oprichting van een Murine appendectomie model

Dit Murine appendectomie model van chronische colitis geassocieerde colorectale kanker kan worden gegenereerd door het volgen van de sequentiële chirurgische en inductie stappen zoals geïllustreerd in Figuur 1. De meest frequente posities van caecum zijn in de linker en rechter iliacale Fossa gevolgd door de middelste lijn van de buik (Figuur 2). Het succesvolle tarief van...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Discussie

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Een Murine appendectomie model van colitis-geassocieerde colorectale kanker werd verkregen met behulp van chirurgische stappen met een hoog overlevingspercentage bij muizen. In de meeste gevallen, omdat het caecum onder de buikwand werd geplaatst (aanvullende tabel 1, aanvullende tabel 2, en Figuur 2), was het moeilijk om de locatie te prebeoordelen zonder laparotomie. In dit chirurgische protocol werd een eenvoudige stap van het aanraken van de hobbel geïntroduceerd, en de ...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Openbaarmakingen

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

De auteurs hebben niets te onthullen.

Dankbetuigingen

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Dit werk wordt gedeeltelijk ondersteund door fundamentele onderzoeksfondsen voor de Centrale Universiteit (G2018KY0302), het universitair fundamenteel onderzoek van het Ontwikkelingsfonds (KT00062), de National Natural Science Foundation of China (81870380) en de Clinical Research Award van de Eerste aangesloten ziekenhuis van Xi'an Jiaotong University in China (nr. XJTU1AF-CRF-2015-029). De auteurs bedanken Dr. Chengxin Shi voor zijn technische suggesties tijdens de vroege exploratiefase van de Murine appendectomie model, evenals de patholoog Dr. XI Liu voor evaluatie van H & E kleuring resultaten van colitis en colorectale tumoren. Y.L. voerde de chirurgische demonstratie uit, deed gegevensanalyse en schreef het ontwerp van het manuscript; J.L., G.L., Z.P. en Y.M. namen deel aan de chirurgische voorbereiding, weefsel collecties en videoproductie; Hij voerde de flow cytometrie en ELISA uit; Q.W. page en H.X. op voorwaarde dat de technische ondersteuning van het genereren van een klinisch relevant Murine model; R.X.Z. ontwierp de studie, begeleidde het onderzoek en schreef en verzorgde het manuscript; J.S. heeft het manuscript bekeken.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Materialen

Lijst van materialen gebruikt in dit artikel
NaamBedrijfCatalogusnummerOpmerkingen
Azoxymethane(AOM)Sigma-Aldrich,Inc.A5486
Dextran Sulfate Sodium Salt(DSS)MP Biomedicals,Inc.160110
EntoiodineShanghai likon high technology disinfection co. LTD310102
digitale schuifmaatNingbo yuanneng trading co. LTD4859263
4-0 Zijde SuturesYuanlikang co. LTD20172650032
8-0 Prolene SuturesYuanlikang co. LTD20172650032
Elektrische coagulatiepenChuang mei medical equipment co. LTD28221777292
wegwerpspuit 1mlShengguang medical products co. LTD3262-2014
wegwerpspuit 10mlShengguang medical products co. LTD3262-2014
75% Medicinale alcoholShandong anjie high-tech desinfectietechnologie co. LTD371402AAJ008
Pentobarbital natriumzoutSigma-Aldrich,Inc.57-33-0
Fysiologische zoutoplossingShandong qidu pharmaceutical co. LTDH37020766
Absorbeerbare katoenen tamponHenan ruike medical co., LTDRK051
Chirurgische instrumenten - OogheelkundeJinzhong Shanghai co.LTDWA3050

Referenties

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Leung, T. T., et al. Bowel obstruction following appendectomy: what is the true incidence. of Surgery. 250 (1), 51-53 (2009).
  2. Salminen, P., et al. Antibiotic Therapy vs. Appendectomy for Treatment of Uncomplicated Acute Appendicitis: The APPAC Randomized Clinical Trial. The Journal of the American Medical Association. 313 (23), 2340-2348 (2015).
  3. Mayo Clinic. Appendicitis. , at https://www.mayoclinic.org/diseases-conditions/appendicitis/diagnosis-treatment/drc-20369549 (2019).
  4. On the Appendix Vermiformis and the Evolution Hypothesis. Nature. 8, 509(1873).
  5. Zahid, A. The vermiform appendix: not a useless organ. Journal of College of Physicians and Surgeons Pakistan. 14 (4), 256-258 (2004).
  6. Kooij, I. A., Sahami, S., Meijer, S. L., Buskens, C. J., Te Velde,, A, A. The immunology of the vermiform appendix: a review of the literature. Clinical and Experimental Immunology. 186 (1), 1-9 (2016).
  7. Sarkar, A., Saha, A., Roy, S., Pathak, S., Mandal, S. A glimpse towards the vestigiality and fate of human vermiform appendix-a histomorphometric study. Journal of Clinical and Diagnostic Research. 9 (2), 11(2015).
  8. Fujihashi, K., et al. Human Appendix B-Cells Naturally Express Receptors for and Respond to. Interleukin-6 with Selective Iga1 and Iga2 Synthesis. Journal of Clinical Investigations. 88 (1), 248-252 (1991).
  9. Im, G. Y., et al. The appendix may protect against Clostridium difficile recurrence. Clinical Gastroenterology and Hepatology. 9 (12), 1072-1077 (2011).
  10. Gebbers, J. O., Laissue, J. A. Bacterial translocation in the normal human appendix parallels the development of the local immune system. Annal of the New York Academy of Sciences. , 337-343 (2004).
  11. Randal Bollinger,, Barbas, R., S, A., Bush, E. L., Lin, S. S., Parker, W. Biofilms in the large bowel suggest an apparent function of the human vermiform appendix. Journal of Theoretical Biology. 249 (4), 826-831 (2007).
  12. Smith, H., Parker, W., Kotzé, H., Laurin, S., M, Morphological evolution of the mammalian cecum and cecal appendix: Évolution morphologique de l'appendice du caecum des mammifères. Comptes Rendus Palevol. 16, (2017).
  13. Girard-Madoux, M. J. H., et al. The immunological functions of the Appendix: An example of redundancy. in Immunology. 36, 31-44 (2018).
  14. Wu, S. C., et al. Association between appendectomy and subsequent colorectal cancer development: an Asian population study. PLoS ONE. 10 (2), e0118411(2015).
  15. Florin, T. H., Pandeya, N., Radford-Smith, G. L. Epidemiology of appendicectomy in primary sclerosing cholangitis and ulcerative colitis: its influence on the clinical behaviour of these diseases. Gut. 53 (7), 973-979 (2004).
  16. Arnbjornsson, E. Acute appendicitis as a sign of a colorectal carcinoma. Journal of Surgical Oncology. 20 (1), 17-20 (1982).
  17. Killinger, B. A., et al. The vermiform appendix impacts the risk of developing Parkinson's disease. Science Translatioanl Medicine. 10 (465), (2018).
  18. Chen, C. H., et al. Appendectomy increased the risk of ischemic heart disease. Journal of Surgical Research. 199 (2), 435-440 (2015).
  19. Bray, F., et al. Global cancer statistics 2018: GLOBOCAN estimates of incidence and mortality worldwide for 36 cancers in 185 countries. CA: A Cancer Journal for Clinicians. 68 (6), 394-424 (2018).
  20. Smith, H. F., Parker, W., Kotze, S. H., Laurin, M. Multiple independent appearances of the cecal appendix in mammalian evolution and an investigation of related ecological and anatomical factors. Comptes Rendus Palevol. 12 (6), 339-354 (2013).
  21. Dasso, J. F., Obiakor, H., Bach, H., Anderson, A. O., Mage, R. G. A morphological and immunohistological study of the human and rabbit appendix for comparison with the avian bursa. Developmental and Comparative Immunology. 24 (8), 797-814 (2000).
  22. Smith, H. F., et al. Comparative anatomy and phylogenetic distribution of the mammalian cecal appendix. Journal of Evolutionary Biology. 22 (10), 1984-1999 (2009).
  23. Vandamme, T. F. Rodent models for human diseases. European Journal of Pharmacology. 759, 84-89 (2015).
  24. Prabhakar, S. Translational research challenges: finding the right animal models. Journal of Investigative Medicine. 60 (8), 1141-1146 (2012).
  25. Hosur, V., Low, B. E., Avery, C., Shultz, L. D., Wiles, M. V. Development of Humanized Mice in the Age of Genome Editing. Journal of Cellular Biochemistry. 118 (10), 3043-3048 (2017).
  26. Mizoguchi, A., Mizoguchi, E., Chiba, C., Bhan, A. K. Role of appendix in the development of inflammatory bowel disease in TCR-alpha mutant mice. Journal of Experimental Medicine. 184 (2), 707-715 (1996).
  27. Farkas, S. A., et al. Preferential migration of CD62L cells into the appendix in mice with experimental chronic colitis. European Surgical Research. 37 (2), 115-122 (2005).
  28. Morrison, P. J., et al. Differential Requirements for IL-17A and IL-22 in Cecal versus Colonic Inflammation Induced by Helicobacter hepaticus. American Journal of Pathology. 185 (12), 3290-3303 (2015).
  29. Tomiyasu, N., et al. Appendectomy suppresses intestinal inflammation in a murine model of DSS-induced colitis through modulation of mucosal immune systems. Gastroenterology. 118 (4), A863-A863 (2000).
  30. Krieglstein, C. F., et al. Role of appendix and spleen in experimental colitis. Journal of Surgical Research. 101 (2), 166-175 (2001).
  31. Cheluvappa, R., Luo, A. S., Palmer, C., Grimm, M. C. Protective pathways against colitis mediated by appendicitis and appendectomy. Clinical and Experimental Immunology. 165 (3), 393-400 (2011).
  32. Cheluvappa, R., Luo, A. S., Grimm, M. C. T helper type 17 pathway suppression by appendicitis and appendectomy protects against colitis. Clinical and Experimental Immunology. 175 (2), 316-322 (2014).
  33. Masahata, K., et al. Generation of colonic IgA-secreting cells in the caecal patch. Nature Communications. 5, (2014).
  34. Cheluvappa, R. A novel model of appendicitis and appendectomy to investigate inflammatory bowel disease pathogenesis and remediation. Biological Procedures Online. 16, (2014).
  35. Cheluvappa, R., Eri, R., Luo, A. S., Grimm, M. C. Modulation of interferon activity-associated soluble molecules by appendicitis and appendectomy limits colitis-identification of novel anti-colitic targets. Journal of Interferon and Cytokine Research. 35 (2), 108-115 (2015).
  36. Harnoy, Y., et al. Effect of appendicectomy on colonic inflammation and neoplasia in experimental ulcerative colitis. British Journal of Surgery. 103 (11), 1530-1538 (2016).
  37. Aaron, E., Walfish, R. A. C. C. Ulcerative Colitis. , at https://www.merckmanuals.com/professional/gastrointestinal-disorders/inflammatory-bowel-disease-ibd/ulcerative-colitis (2017).
  38. Laukoetter, M. G., et al. Intestinal cancer risk in Crohn's disease: a meta-analysis. Journal of Gastrointestestinal Surgery. 15 (4), 576-583 (2011).
  39. Neufert, C., Becker, C., Neurath, M. F. An inducible mouse model of colon carcinogenesis for the analysis of sporadic and inflammation-driven tumor progression. Nature Protocols. 2 (8), 1998-2004 (2007).
  40. Thaker, A. I., Shaker, A., Rao, M. S., Ciorba, M. A. Modeling colitis-associated cancer with azoxymethane (AOM) and dextran sulfate sodium (DSS). Journal of Visualized Experiments. 10 (67), (2012).
  41. Perides, G., van Acker, G. J. D., Laukkarinen, J. M., Steer, M. L. Experimental acute biliary pancreatitis induced by retrograde infusion of bile acids into the mouse pancreatic duct. Nature Protocols. 5 (2), 335-341 (2010).
  42. Schofield, W. B., Palm, N. W. Gut Microbiota: IgA Protects the Pioneers. Current Biology. 28 (18), R1117-R1119 (2018).
  43. Karthikeyan, V. S., et al. Carcinoma Cecum Presenting as Right Gluteal Abscess Through Inferior Lumbar Triangle Pathway-Report of a Rare Case. International Surgery. 99 (4), 371-373 (2014).
  44. Ruscelli, P., et al. Clinical signs of retroperitoneal abscess from colonic perforation Two case reports and literature review. Medicine (Baltimore). 97 (45), (2018).
  45. Friedman, G. D., Fireman, B. H. Appendectomy, appendicitis, and large bowel cancer). Cancer Research. 50 (23), 7549-7551 (1990).
  46. Stellingwerf, M. E., et al. The risk of colectomy and colorectal cancer after appendectomy in patients with ulcerative colitis: a systematic review and meta-analysis. Journal of Crohn's and Colitis. 13 (3), 309-318 (2018).

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Herprints en machtigingen

Toestemming aanvragen om de tekst of afbeeldingen van dit JoVE-artikel te hergebruiken

Toestemming aanvragen

Trefwoorden

Murine Appendectomy ModelCaecal Patch RemovalColitis Associated Colorectal CancerDextran Sulfate SodiumAzoxymethane InductionIgA Specific CellsGut Microbiota HomeostasisSurgical Procedure ProtocolHistological Analysis ResultsFlow ELISA Detection

Gerelateerde artikelen