De biologie van intermusculair vetweefsel (IMAT) is grotendeels onontgonnen vanwege de beperkte toegankelijkheid van menselijk weefsel. Hier presenteren we een gedetailleerd protocol voor kernisolatie en bibliotheekvoorbereiding van bevroren menselijke IMAT voor sequencing van enkelvoudige kernen RNA om de cellulaire samenstelling van dit unieke vetdepot te identificeren.
Een abonnement op JoVE is vereist om deze inhoud te bekijken. Log in of start vandaag met uw gratis proefperiode.
Methodenartikel
Isolatie van kernen uit menselijk intermusculair vetweefsel en stroomafwaartse RNA-sequencing met één kern
In dit artikel
Samenvatting
Samenvatting
Intermusculair vetweefsel (IMAT) is een relatief onderbelicht vetdepot dat zich tussen spiervezels bevindt. Het IMAT-gehalte neemt toe met de leeftijd en BMI en wordt in verband gebracht met metabole en spierdegeneratieve ziekten; er is echter een groot gebrek aan inzicht in de biologische eigenschappen van IMAT en de wisselwerking met de omringende spiervezels. In de afgelopen jaren heeft single-cell en nuclei RNA-sequencing ons voorzien van celtype-specifieke atlassen van verschillende menselijke weefsels. De cellulaire samenstelling van humaan IMAT blijft echter grotendeels onontgonnen vanwege de inherente uitdagingen van de toegankelijkheid ervan door biopsieverzameling bij mensen. Naast de beperkte hoeveelheid verzameld weefsel, is de verwerking van humaan IMAT gecompliceerd vanwege de nabijheid van skeletspierweefsel en fascia. De met lipiden beladen aard van de adipocyten maakt het onverenigbaar met isolatie van één cel. Daarom is RNA-sequencing met één kern optimaal voor het verkrijgen van hoogdimensionale transcriptomics met een resolutie van één cel en biedt het de mogelijkheid om de biologie van dit depot bloot te leggen, inclusief de exacte cellulaire samenstelling van IMAT. Hier presenteren we een gedetailleerd protocol voor de isolatie van kernen en bibliotheekvoorbereiding van bevroren menselijke IMAT voor sequencing van enkelvoudige kernen. Dit protocol maakt het mogelijk om duizenden kernen te profileren met behulp van een op druppels gebaseerde benadering, waardoor het mogelijk is om zeldzame en laagfrequente celtypen te detecteren.
Inleiding
Intermusculair vetweefsel (IMAT) is een ectopisch vetdepot dat zich tussen en rond spiervezels bevindt1. Zoals in detail beschreven in een recente recensie van Goodpaster et al., kan IMAT worden gedetecteerd met behulp van computertomografie met hoge resolutie (CT) en magnetische resonantiebeeldvorming (MRI) (Figuur 1A,B) en wordt het gevonden rond en in spiervezels door het hele lichaam1. De hoeveelheid IMAT varieert sterk van persoon tot persoon en wordt beïnvloed door BMI, leeftijd, geslacht, ras en sedentairgedrag 2,3,4. Bovendien wordt IMAT-afzetting vaak gezien bij pathologische aandoeningen die verband houden met spierdegeneratie5, en talrijke onderzoeken hebben een verhoogde IMAT-massa gedocumenteerd bij personen met obesitas, diabetes type 2, metabool syndroom en insulineresistentie 6,7,8,9. Desalniettemin beginnen de cellulaire en biologische eigenschappen van IMAT nog maar net te worden ontrafeld. De beperkte toegankelijkheid en de variatie in IMAT-locaties en -inhoud door het hele lichaam hebben de verzameling van monsters uit dit unieke vetdepot2 op de proef gesteld. Bovendien worden monsters bij afname gemakkelijk 'besmet' met skeletspieren (SM), waardoor de scheiding tussen de biologische bijdrage van de verschillende weefsels moeilijk te ontcijferen is (Figuur 1C). Daartoe dient single nuclei RNA-sequencing (snRNA-seq), die de afgelopen tien jaar veel aandacht heeft gekregen, als een ideale methodologie om de scheiding van IMAT- en SM-afgeleide genexpressiepatronen met single-cell resolutie mogelijk te maken. Bovendien is de isolatie van kernen bijzonder nuttig voor vetweefsel vanwege de grote met lipiden beladen adipocyten, die onmogelijk kunnen worden gedissocieerd tot eencellige suspensie zonder de integriteit van de cellen in gevaar te brengen. Ten slotte heeft deze technologie het potentieel om nieuwe markers van IMAT-specifieke adipocyten te ontdekken en de samenstelling en aanwezigheid van verschillende voorlopercelpopulaties bloot te leggen, en om de variatie van de celsamenstelling in pathologische en normale omstandigheden te bestuderen.
Figuur 1: Afbeeldingen van IMAT. Representatief magnetische resonantie (MRI) beeld van IMAT van (A) een magere vrouw van middelbare leeftijd en (B) een man van middelbare leeftijd met obesitas. Rood: onderhuids vetweefsel, geel: intermusculair vetweefsel, groen: skeletspier, blauw: bot. Afbeelding met dank aan Heather Cornnell, AdventHealth Translational Research Institute. (C) Vers weefselmonster met IMAT (omcirkeld door een zwarte stippellijn). Afbeelding met dank aan Meghan Hopf, AdventHealth Translational Research Institute en Bryan Bergman, Universiteit van Colorado. Dit cijfer is aangepast met toestemming van Goodpaster et al.1. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.
Er zijn een aantal studies gepubliceerd uit de vee-industrie die de marmering van vlees (IMAT in het bijzonder) bij varkens, kippen en runderen onderzoeken met behulp van single-cell (sc) en snRNA-seq10. Deze studies hebben verschillende subpopulaties van adipocyten en markers van potentiële voorlopercellen van IMAT 11,12,13 geïdentificeerd; het is echter niet bekend of deze cellulaire samenstellingen zich vertalen naar menselijke IMAT. Voor zover wij weten, heeft slechts één studie gekeken naar de cellulaire heterogeniteit van menselijke spieren met vetinfiltratie, verkregen van mannelijke patiënten met heupartrose, met behulp van snRNA-seq14. De onderzoekers rapporteerden een kleine adipocytenpopulatie en verschillende fibro-adipogene voorloper (FAP) subpopulaties binnen de grote populatie van myonuclei14. Onze studie is de eerste die een methode heeft ontwikkeld om IMAT, handmatig ontleed uit menselijke spieren, direct te ondervragen voor cellulaire samenstelling met behulp van snRNA-seq.
Belangrijk is dat protocollen voor snRNA-seq moeten worden aangepast aan het specifieke bestudeerde weefsel, aangezien de hoeveelheid beschikbaar weefsel en de fysische eigenschappen van het specifieke weefsel de optimale verwerkingsstappen zullen dicteren. De weefselopbrengst voor IMAT is doorgaans klein, vaak niet hoger dan 50 mg, zelfs bij het uitvoeren van echogeleide biopsieën. Daarom is een goede verwerking van dit schaarse weefsel essentieel. Wij zijn van mening dat dit protocol zal dienen als een waardevolle bron voor onderzoekers die menselijke IMAT bestuderen.
Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.
Protocol
Het monster dat voor dit protocol werd gebruikt, maakte deel uit van de Study of Muscle, Mobility, and Aging (SOMMA)15, die werd goedgekeurd door de Institutional Review Board van de Western IRB-Copernicus Group (WCG) en werd uitgevoerd in overeenstemming met de Verklaring van Helsinki. Deelnemers gaven schriftelijke geïnformeerde toestemming voor hun deelname aan het onderzoek.
OPMERKING: Dit protocol is aangepast van een eerder protocol met behulp van 100 mg menselijk abdominaal onderhuids vetweefsel op een op nanowells gebaseerd platform16. Het huidige protocol is geoptimaliseerd voor 50 mg menselijke IMAT en bibliotheekvoorbereiding met behulp van een op druppels gebaseerd platform. Verdere optimalisatie van dit protocol voor kernisolaties uit niet-menselijke IMAT of andere vetdepots kan nodig zijn.
1. Bereiding van buffers en reagentia (tabel 1 en tabel 2)
OPMERKING: Bereid buffers vers op de dag van het experiment en gebruik ze niet opnieuw.
- Koel een centrifuge voor op 4 °C.
- Bereid de homogenisatiebuffer en het kernisolatiemedium voor.
- Verpak twee emmers ijs en koel 2 x 15 ml conische buizen voor.
- Meng alle reagentia voor de homogenisatiebuffer (HB) in een conische buis van 15 ml in de volgorde vermeld in tabel 1. Blijf op het ijs. Mengen door vortexen.
- Meng alle reagentia voor nuclei isolation medium (NIM) in een conische buis van 15 ml in de geordende lijst in tabel 2. Blijf op het ijs. Mengen door vortexen.
- Bereid 10% Triton-X voor door 100 μL Triton X-100 toe te voegen aan 900 μL nucleasevrij water. Vortex om een goede menging te garanderen. Bewaren op kamertemperatuur (RT).
| Reagens | Inhoud (μL) | Eindconcentratie (mM) | |
| 1x | 2x | ||
| 1 M MgCl2 | 10 | 20 | 5 |
| 1 m Tris Buffer, pH 8,0 | 20 | 40 | 10 |
| 2 M KCl | 25 | 50 | 25 |
| 1,5 m sucrose (-4°C) | 334 | 668 | 250 |
| 1mM DTT | 2 | 4 | 0,001 (~1 μM) |
| 100x proteaseremmer | 20 | 40 | 1x |
| Superasin 20 E/μL | 40 | 80 | 0,4 E/μL |
| Nuclease-vrij water | 1549 | 3098 | - |
| Totaal volume | 2000 | 4000 | - |
Tabel 1: Homogenisatiebuffer (HB). Blijf op het ijs. Mengen door vortexen.
| Reagens | Inhoud (μL) | Eindconcentratie (mM) | |
| 1x | 2x | ||
| EDTA | 0.4 | 0.8 | 0.1 |
| Ribolock RNAse-remmer (40U/μL) | 40 | 80 | 0,8 E/μL |
| 1% BSA-PBS (-/-) | 1959.6 | 3919.2 | - |
| Totaal volume | 2000 | 4000 | - |
Tabel 2: Nuclei isolatiemedium (NIM). Blijf op het ijs. Mengen door vortexen.
2. Verpulvering van bevroren weefsel ( Figuur 2A)
- Stel het werkstation in voor homogenisatie.
- Vul de bus met vloeibare stikstof (LN2).
LET OP: draag bij het werken met LN2 altijd een veiligheidsbril en cryohandschoenen. - Verkrijg 2x vijzels, 1x stamper, 1x microschepspatel, 1x glazen dounce en 1x roestvrijstalen stamper voor de automatische douncer.
- Stel de automatische douncer in.
- Vul een beker met ijs en koel het glas dounce voor.
- Vul de bus met vloeibare stikstof (LN2).
- Vul de 2 vijzels (met daarin de stamper en spatel) met LN2 om de instrumenten af te koelen. Laat de LN2 verdampen en herhaal.
- Terwijl de instrumenten afkoelen, voegt u 1 ml HB toe aan het glas.
- Vul beide mortels nog een laatste keer met LN2 en giet het 50 mg IMAT-monster in een van de mortels.
- Verpulver de IMAT met behulp van de stamper door hem voorzichtig op het stukje tissue te drukken om hem in kleine stukjes te breken. Zorg ervoor dat alle stukken verpulverd zijn.
- De LN2 zal langzaam verdampen tijdens het verpulveren van het weefsel. Wanneer het weefsel goed is verpulverd en er nog 1/4 - 1/2 van een mortel LN2 over is, kantelt u de mortel naar de lip van de mortel om het verpulverde weefsel bij de lip te verzamelen. Laat de LN2 volledig verdampen.
- Onmiddellijk nadat de laatste LN2 is verdampt, schept u het verpulverde weefsel in de glazen dounce met 1 ml HB.
3. Homogenisatie van verpulverd weefsel
- Homogeniseer het verpulverde weefsel met behulp van de automatische douncer. Breng de glazen dounce op en neer langs de roestvrijstalen stamper voor 10 slagen in voorwaartse richting, gevolgd door 10 slagen in omgekeerde richting.
- Zorg ervoor dat de oplossing na homogenisatie troebel is en geen zichtbare stukjes weefsel bevat. Een lichtroze kleur wordt vaak verwacht vanwege vervuiling met spierweefsel.
- Breng het homogenaat over in een voorgekoelde buis van 1,7 ml met lage binding op ijs.
- Gebruik 400 μL HB om de dounce te spoelen om ervoor te zorgen dat al het materiaal is overgebracht en voeg het toe aan de buis.
OPMERKING: Er kunnen twee monsters tegelijk worden verwerkt. Om dit te doen, verdubbelt u de hoeveelheid HB en NIM. Verpulver en homogeniseer één weefselmonster en verpulver en homogeniseer onmiddellijk daarna het tweede weefselmonster om de isolatie- en opruimstappen parallel te kunnen uitvoeren.
4. Isolatie en opruiming van kernen ( Figuur 2B)
- Voeg 14 μL Triton-X (10%) toe aan het homogenaat voor een concentratie van 0,1%.
- Houd de tube 10-15 minuten op ijs en in het donker terwijl je elke 3 minuten wervelt.
- Bevochtig vooraf een celzeef van 100 μm en een celzeef van 40 μm (per monster) met 100 μl RT DPBS voor elk in een conische buis van 50 ml.
- Filtreer het homogenaat door de 100 μm celzeef.
- Spoel de tube van 1,7 ml met 400 μl HB en filtreer door de celzeef van 100 μm.
- Filtreer vervolgens de oplossing door de celzeef van 40 μm.
- Breng een gelijke hoeveelheid oplossing over in twee voorgekoelde 1,7 ml low-binding buisjes die overeenkomen met ~900 μL in elk buisje.
- Centrifugeer de buisjes gedurende 10 minuten bij 2700 x g bij 4 °C. Na het centrifugeren moet er een kleine korrel zichtbaar zijn.
- Verwijder de bovenste lipidenlaag en de resterende supernatant en gooi deze weg, zodat er een oplossing van ~50 μL uit de eerste buis overblijft.
- Herhaal dit voor de tweede buis.
- Resuspendeer de pellet grondig in de eerste buis door voorzichtig 20x op en neer te pipetteren en over te brengen naar een nieuwe 1,7 ml low-bind buis. Vermijd het creëren van bubbels.
- Herhaal deze procedure voor de tweede buis en breng de geresuspendeerde oplossing over in dezelfde buis.
- Voeg 500 μL NIM toe en meng met pipetteren.
- Centrifugeer de buis met een balans bij 1000 x g gedurende 10 minuten bij 4 °C.
- Verwijder het supernatant, laat ~50 μL over en pipetteer voorzichtig op en neer totdat de pellet opnieuw is gesuspendeerd. Breng eventueel de geresuspendeerde pellet over in een nieuwe schone buis als er wat lipideresten aan de zijkant van de buis achterblijven.
- Voeg 200 μL NIM toe en meng door te pipetteren.
5. Kleuring en telling van kernen (Figuur 2C en Figuur 3)
OPMERKING : Om het tellen te vergemakkelijken, stelt u een protocol voor het tellen van kernen in op een geautomatiseerde cellenteller, aangezien het aanpassen van het heldere veld en de DAPI-kanalen de telling sterk kan beïnvloeden. Pas de kanalen zo aan dat alleen kernen en geen puin worden opgevangen. Zorg ervoor dat het helderveldkanaal alleen 'objecten' markeert die ook een DAPI-vlek hebben.
- Voeg 1 druppel van de levende celkleuringsoplossing toe en laat deze 15 minuten in het donker op ijs staan.
- Filtreer de oplossing door een celzeef van 30 μm.
- Meng de kernoplossing door te pipetteren en voeg 10 μl van de oplossing toe aan een objectglaasje van de cellentelkamer.
- Tel kernen met behulp van een geautomatiseerde cellenteller.
OPMERKING: De optimale concentratie is 1000 kern/μl, wat overeenkomt met 1,0 x 106/ml.- Zorg ervoor dat er geen klompjes kernen aanwezig zijn, omdat dit de chip kan verstoppen voor het genereren van druppeltjes met één kern (Afbeelding 3).
- Als de kernconcentratie niet hoog genoeg is, centrifugeer de oplossing dan gedurende 10 minuten bij 4 °C bij 1000 x g om een pellet te verkrijgen, verwijder de supernatant en resuspendeer in een kleiner volume.
- Als de hoeveelheid vuil in de oplossing hoog is, resuspendeer de kernoplossing dan in een groter volume NIM (d.w.z. 1 ml) en filtreer opnieuw door een celzeef van 30 μm. Centrifugeer vervolgens gedurende 10 minuten bij 4 °C bij 1000 x g en resuspendeer in voldoende volume in verhouding tot de concentratie van de kernen.
- Nadat u de kernconcentratie hebt verkregen, gaat u direct verder met de eerste stap in de voorbereiding van de bibliotheek.
Figuur 3: Kleuring van geïsoleerde kernen. Afbeelding van de celteller van kernen gekleurd met NucBlue/DAPI (linkerafbeelding) en het bijbehorende helderveldbeeld (rechterafbeelding). De aanwezigheid van kleine hoeveelheden puin is duidelijk te zien in het heldere veldbeeld. De geautomatiseerde cellenteller die hier wordt gebruikt, heeft geen optie om schaalbalken op te nemen. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.
6. Parameters voor voorbereiding en rangschikking van de bibliotheek
- Raadpleeg een grondig protocol voor de voorbereiding van de bibliotheek met behulp van de op druppels gebaseerde benadering met één kern die beschikbaar is op de webpagina van de provider17.
- Streef naar een gericht herstel van kernen van 10.000. Voor monsters met een hoog gehalte aan puin of fragiele kernen zou echter een lager aantal teruggevonden kernen worden verwacht.
- Bewaar de monsters bij 4°C tot 72 uur na stap 2.3. in het voorbereidingsprotocol van de bibliotheek om de verwerking van meer monsters parallel te combineren. Doe dit door op twee opeenvolgende dagen twee monsters te verwerken tot stap 2.3 en op de derde dag de 4 monsters samen te verwerken uit stap 3 en verder in het voorbereidingsprotocol van de bibliotheek.
- Sequencingparameters: Sequentie op een sequencingplatform gericht op 50.000 gepaarde lezingen per kern.
OPMERKING: De gegevens die in dit protocol worden gepresenteerd, zijn gesequenced op het NovaSeq 6000-platform, met als doel 50.000 gepaarde uitlezingen per kern.
Figuur 2: Protocolwerkstroom. Schematische weergave van de workflow in (A) stappen 2 en 3, (B) stap 4 en (C) stap 5 van het protocol. De figuur is gemaakt met BioRender.com. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.
7. Gegevensverwerking en -analyse
OPMERKING : In dit protocol worden enkele van de aanbevolen software en R-pakketten die worden gebruikt om de resulterende sequentiegegevens te verwerken, kort geïntroduceerd, waarbij de nadruk ligt op de stappen na de eerste voorbewerking (tabel 3). Deze studie biedt algemene kwaliteitscontrolestatistieken (QC) en een voorbeeld van uniforme variëteitbenadering en projectie (UMAP) in figuur 4. Een diepgaande beschrijving van de bioinformatica-analyse valt echter buiten het bestek van dit protocol. Daarom kunnen lezers verwijzen naar de recente review over best practices voor single-cell analyse door Heumos et al.18.
- Voorbewerking van sequentiegegevens
- Wijs de afgelezen enkelvoudige kernen toe aan het menselijke referentiegenoom GRCh38.
- Neem intron-metingen op in de telling.
- Voer QC uit en filtreer de gegevens met behulp van het Seurat R-pakket 19.
- Bereken een celcomplexiteitsscore door het log(10)-aantal gedetecteerde genen te delen door het log(10)-aantal gedetecteerde metingen.
- Zet de belangrijkste QC-metrieken uit met behulp van een histogram of vioolplot, inclusief het aantal gedetecteerde genen per kern, het mitochondriale leespercentage en de celcomplexiteitsscore.
- Filter kernen uit met minder dan 200 of meer dan 10.000 genen per kern, meer dan 10% mitochondriale metingen en een complexiteitsscore van minder dan 0,8.
- Normaliseer gegevens en voer dimensionaliteitsreductie uit.
- Gebruik de SCTransform-functie van Seurat om de gegevens te normaliseren met behulp van 2000 variabele functies.
- Clustergegevens met behulp van de volgende functies uit het Seurat R-pakket: RunPCA, FindNeighbors, FindClusters en RunUMAP.
- Plot een UMAP om de clustering van de gegevens te visualiseren.
- Filter voorspelde doubletten uit met behulp van het DoubletFinder R-pakket 20 en cluster de gegevens opnieuw.
- Annoteer clusters met behulp van bekende genmarkers van de celtypen die naar verwachting in het weefsel aanwezig zullen zijn (gesuperviseerde benadering) of op basis van de top 5 differentieel tot expressie gebrachte genen tussen de clusters (niet-gesuperviseerde benadering).
- Gebruik decontX21om de mate van omringende RNA-contaminatie te bepalen en om de genexpressiematrix voor omringend RNA aan te passen.
- Neem de ruwe genenmatrix op als achtergrond.
- Bewaar het Seurat-object voor toekomstige verkenning van de gegevens.
OPMERKING: De code voor QC- en clusteringanalyse is beschikbaar in aanvullend bestand 1.
| Software/R-pakketten die worden gebruikt in de gegevensworkflow | Alternatieve software/pakketten | Stap van de verwerking |
| CelRanger | STARsolo, kallisto | Bijsnijden, uitlijnen, in kaart brengen |
| Seurat | SingleCellExperiment, Cellranger | QC, analyse en gegevensverkenning |
| DoubletFinder | scds, scdblFinder, Schrobben | Doublet detectie |
| DecontX | SoupX, CellBender | Aanpassing van omringend RNA |
Tabel 3: Software/tools voor gegevensworkflow.
Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.
Resultaten
Deze workflow is ontworpen om de verwerking van ingevroren menselijke IMAT-monsters te begeleiden om genexpressieprofielen te verkrijgen met een resolutie van één kern, waardoor identificatie van celtypen mogelijk wordt. Hier wordt een representatieve IMAT-steekproef van een deelnemer aan de SOMMA-studie gepresenteerd.
De eerste stap van elke analyse van snRNA-seq-gegevens is het evalueren van de kwaliteit van de gegevens om kernen van slechte kwaliteit te identificeren, die mogelijk uit de da...
Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.
Discussie
Er zijn verschillende inherente uitdagingen aan het werken met IMAT. Naast de beperkte toegankelijkheid is de opbrengst van monstermateriaal vaak zeer schaars en is "besmetting" van skeletspieren bijna onmogelijk te vermijden. Om het monster van de beste kwaliteit te verkrijgen, moet men bij het inbrengen van de biopsienaald de spierfascia binnendringen (om ervoor te zorgen dat er geen onderhuids vetweefsel wordt verzameld) en zoveel mogelijk spierweefsel verwijderen door het monster onmiddellijk na afname onder een micr...
Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.
Openbaarmakingen
De auteurs hebben niets te onthullen.
Dankbetuigingen
De auteurs willen Bryan Bergman, PhD aan de Universiteit van Colorado, bedanken voor het verstrekken van het beeld van de IMAT-biopsie in figuur 1C van de MoTrIMAT-studie (R01AG077956). We zijn dankbaar voor de Study of Muscle, Mobility and Aging die de IMAT-steekproef heeft verstrekt waarvan de gegevens worden weergegeven in de sectie representatieve resultaten. Het National Institute on Aging (NIA) financierde de Study of Muscle, Mobility and Aging (SOMMA; R01AG059416) en de aanvullende studies SOMMA AT (R01AG066474) en SOMMA Knee Artrose (R01AG070647). De ondersteuning van de studie-infrastructuur werd gedeeltelijk gefinancierd door NIA Claude D. Pepper Older American Independence Centers aan de Universiteit van Pittsburgh (P30AG024827) en Wake Forest University (P30AG021332) en de Clinical and Translational Science Institutes, gefinancierd door het National Center for Advancing Translational Science, aan de Wake Forest University (UL1 0TR001420).
Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.
Materialen
| Naam | Bedrijf | Catalogusnummer | Opmerkingen |
|---|---|---|---|
| 0.2 µm corning syringe filters | Millipore Sigma | CLS431229 | |
| 1.7 mL DNA LoBind tubes | Eppendorf | 22431021 | low-bind tubes |
| 10% Tween 20 | Bio-Rad | 1662404 | |
| 100x protease inhibitor | Thermo Fisher Scientific | 78437 | |
| 10X Magnetic Separator | 10X Genomics | 230003 | |
| 10X Vortex Adapter | 10X Genomics | 330002 | |
| 15 mL canonical tubes | Sarstedt | 6,25,54,502 | |
| 2100 Bioanalyzer | Agilent | G2939BA | |
| 50 mL conical tubes | Sarstedt | 6,25,47,254 | |
| CellRanger | Genomics | N/A | |
| Chromium iX accesory kit | 10X Genomics | PN1000323 | |
| Chromium iX Controller | 10X Genomics | PN1000326 | |
| Chromium Next GEM Chip G Single Cell Kit | 10X Genomics | PN1000127 | |
| Chromium Next GEM Single Cell 3' Gel Bead Kit v3.1 | 10X Genomics | PN1000129 | |
| Chromium Next GEM Single Cell GEM Kit v3.1 | 10X Genomics | PN1000130 | |
| Countess 3 Automated Cell Counter | Thermo Fisher Scientific | AMQAX2000 | Automated cell counter |
| Countess cell counting chamber slides | Thermo Fisher Scientific | C10228 | |
| DoubletFinder | R | N/A | |
| DPBS (no calcium, no magnesium) | Thermo Fisher Scientific | 14190144 | |
| DTT | Thermo Fisher Scientific | R0861 | |
| Dual Index Kit TT Set A, 96 rxns | 10X Genomics | PN1000215 | |
| Dynabeads MyOne SILANE | 10X Genomics | PN2000048 | |
| Falcon 100 µm Cell strainer | Corning Life Science | 352360 | |
| Falcon 40 µm Cell strainer | Corning Life Science | 352340 | |
| Glycerin (glycerol), 50% (v/v) Aqueous Solution | Ricca Chemical Company | 3290-32 | |
| KCL | Thermo Fisher Scientific | AM9640G | |
| Library Construction Kit v3.1 | 10X Genomics | PN1000196 | |
| MACS SmartStrainers (30µm) | Miltenyi Biotec | 130-098-458 | |
| Mastercycler Nexus Gradient Thermal cycler | Eppendorf | 6331000017 | |
| MgCl2 | Ambion | AM9530G | |
| Mortar and pestel | Health care logistics | 14075 | |
| NucBlue Live Ready Probes Reagent | Thermo Fisher Scientific | R37605 | |
| Nuclease Free Water (not DEPC treated) | Thermo Fisher Scientific | AM9930 | |
| Probumin Bovine Serum Albumin Fatty Acid Free, Powder | Sigma-Aldrich | 820024 | |
| Qiagen Buffer EB | Qiagen | 19086 | |
| Ribolock RNAse inhibitor | Thermo Fisher Scientific | EO0382 | |
| Seurat | R | N/A | |
| Sucrose | Sigma-Aldrich | S0389 | |
| SUPERasin 20 U/µL | Thermo Fisher Scientific | AM2695 | |
| ThermoMixer C | Eppendorf | 5382000015 | |
| Tissue homogenizer | Glass-Col | 099C K54 | |
| Tris buffer pH 8.0 | Thermo Fisher Scientific | AM9855G | |
| Triton X-100 | Thermo Fisher Scientific | AC327372500 | |
| UltraPure 0.5M EDTA pH 8.0 | Gibco | 15575020 |
Referenties
- Goodpaster, B. H., Bergman, B. C., Brennan, A. M., Sparks, L. M. Intermuscular adipose tissue in metabolic disease. Nat Rev Endocrinol. 19 (5), 285-298 (2023).
- Sparks, L. M., Goodpaster, B. H., Bergman, B. C. The metabolic significance of intermuscular adipose tissue: Is IMAT a friend or a foe to metabolic health. Diabetes. 70 (11), 2457-2467 (2021).
- Gallagher, D., et al. Adipose tissue in muscle: A novel depot similar in size to visceral adipose tissue. Am J Clin Nutr. 81 (4), 903-910 (2005).
- Manini, T. M., et al. Reduced physical activity increases intermuscular adipose tissue in healthy young adults. Am J Clin Nutr. 85 (2), 377-384 (2007).
- Addison, O., Marcus, R. L., LaStayo, P. C., Ryan, A. S. Intermuscular fat: A review of the consequences and causes. Int J Endocrinol. 2014, 309570(2014).
- Goodpaster, B. H., et al. Obesity, regional body fat distribution, and the metabolic syndrome in older men and women. Arch Intern Med. 165 (7), 777-783 (2005).
- Goodpaster, B. H., Thaete, F. L., Kelley, D. E. Thigh adipose tissue distribution is associated with insulin resistance in obesity and in type 2 diabetes mellitus. Am J Clin Nutr. 71 (4), 885-892 (2000).
- Goodpaster, B. H., et al. Association between regional adipose tissue distribution and both type 2 diabetes and impaired glucose tolerance in elderly men. Diabetes Care. 26 (2), 372-379 (2003).
- Sachs, S., et al. Intermuscular adipose tissue directly modulates skeletal muscle insulin sensitivity in humans. Am J Physiol Endocrinol Metab. 316 (5), E866-E879 (2019).
- Ford, H., Liu, Q., Fu, X., Strieder-Barboza, C. White adipose tissue heterogeneity in the single-cell era: From mice and humans to cattle. Biology (Basel). 12 (10), 1289(2023).
- Wang, L., et al. Single-nucleus and bulk RNA sequencing reveal cellular and transcriptional mechanisms underlying lipid dynamics in high marbled pork. NPJ Sci Food. 7 (1), 23(2023).
- Li, J., et al. Identification of diverse cell populations in skeletal muscles and biomarkers for intramuscular fat of chicken by single-cell RNA sequencing. BMC Genomics. 21 (1), 752(2020).
- Lyu, P., Qi, Y., Tu, Z. J., Jiang, H. Single-cell RNA sequencing reveals heterogeneity of cultured bovine satellite cells. Front Genet. 12, 742077(2021).
- Fitzgerald, G., et al. MME+ fibro-adipogenic progenitors are the dominant adipogenic population during fatty infiltration in human skeletal muscle. Commun Biol. 6 (1), 111(2023).
- Cummings, S. R., et al. The study of muscle, mobility and aging (SOMMA): A unique cohort study about the cellular biology of aging and age-related loss of mobility. J Gerontol A Biol Sci Med Sci. 78 (11), 2083-2093 (2023).
- Whytock, K. L., et al. Isolation of nuclei from frozen human subcutaneous adipose tissue for full-length single-nuclei transcriptional profiling. STAR Protoc. 4 (1), 102054(2023).
- 10x Genomics. Chromium Single Cell 3' Reagent Kits User Guide (v3.1 Chemistry Dual Index), Document Number CG000315 RevE. , Available from: https://cdn.10xgenomics.com/image/upload/v1668017706/support-documents/CG000315_ChromiumNextGEMSingleCell3-_GeneExpression_v3.1_DualIndex__RevE.pdf (2022).
- Heumos, L., et al. Best practices for single-cell analysis across modalities. Nat Rev Genet. 24 (1), 550-572 (2023).
- Hao, Y., et al. Dictionary learning for integrative, multimodal and scalable single-cell analysis. Nat Biotechnol. 42 (2), 293-304 (2023).
- McGinnis, C. S., Murrow, L. M., Gartner, Z. J. DoubletFinder: Doublet detection in single-cell RNA sequencing data using artificial nearest neighbors. Cell Syst. 8 (4), 329-337 (2019).
- Yang, S., et al. Decontamination of ambient RNA in single-cell RNA-seq with DecontX. Genome Biol. 21 (2), 57(2020).
- Common considerations for quality control filters for single cell RNA-seq data. 10X Genomics. , Available from: https://www.10xgenomics.com/analysis-guides/common-considerations-for-quality-control-filters-for-single-cell-rna-seq-data (2022).
- Luecken, M. D., Theis, F. J. Current best practices in single-cell RNA-seq analysis: a tutorial. Mol Syst Biol. 15 (6), e8746(2019).
- Emont, M. P., et al. A single-cell atlas of human and mouse white adipose tissue. Nature. 603 (7903), 926-933 (2022).
- Hildreth, A. D., et al. Single-cell sequencing of human white adipose tissue identifies new cell states in health and obesity. Nat Immunol. 22 (5), 639-653 (2021).
- Whytock, K. L., et al. Single cell full-length transcriptome of human subcutaneous adipose tissue reveals unique and heterogeneous cell populations. iScience. 25 (8), 104772(2022).
- Probst, V., et al. Benchmarking full-length transcript single cell mRNA sequencing protocols. BMC Genomics. 23 (1), 860(2022).
- CG000148 Rev A Technical Note - Resolving cell types as a function of read depth and cell number. Technical note. 10X Genomics. , Available from: https://assets.ctfassets.net/an68im79xiti/6gDArDPBTOg4IIkYEO2Sis/803be2286bb a5ca67f353e6baf68d276/CG000148_10x_Technical _Note_Resolving_Cell_Types_as_Function_of_ Read_Depth_Cell_Number_RevA.pdf (2018).
- Gupta, A., et al. Characterization of transcript enrichment and detection bias in single-nucleus RNA-seq for mapping of distinct human adipocyte lineages. Genome Res. 32 (2), 242-257 (2022).
- Bakken, T. E., et al. Single-nucleus and single-cell transcriptomes compared in matched cortical cell types. PLoS One. 13 (12), e0209648(2018).
- Wu, H., Kirita, Y., Donnelly, E. L., Humphreys, B. D. Advantages of single-nucleus over single-cell RNA sequencing of adult kidney: Rare cell types and novel cell states revealed in fibrosis. J Am Soc Nephrol. 30 (1), 23-32 (2019).
- Kim, N., Kang, H., Jo, A., Yoo, S. -A., Lee, H. -O. Perspectives on single-nucleus RNA sequencing in different cell types and tissues. J Pathol Transl Med. 57 (1), 52-59 (2023).
- Avila Cobos, F., Alquicira-Hernandez, J., Powell, J. E., Mestdagh, P., De Preter, K. Benchmarking of cell type deconvolution pipelines for transcriptomics data. Nat Commun. 11 (1), 5650(2020).
Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.
Herprints en machtigingen
