Een abonnement op JoVE is vereist om deze inhoud te bekijken. Log in of start vandaag met uw gratis proefperiode.

Methodenartikel

Verankering van gedraaide testis: een rattenmodel van ischemie-reperfusieschade van de testis

656 weergaven

⸱

DOI:

10.3791/67181

⸱

14 november 2025

 ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Physiology, Ladoke Akintola University of Technology, 2Department of Anaesthesia, Afe Babalola University, 3Department of Pharmacology, Bowen University, 4Reproductive Biology and Toxicology Research Laboratory, Oasis of Grace Hospital

In dit artikel

Samenvatting

Dit artikel beschrijft een stapsgewijze procedure voor het maken van een model van testiculaire ischemie/reperfusie voor de productie van een reproduceerbaar model van testiculaire torsie in de studie van de pathologische mechanismen van ischemie-reperfusieschade in de testis.

Samenvatting

Ischemie-reperfusie (IR) letsels worden in verband gebracht met verschillende pathologieën, waaronder testiculaire verwonding. Eerdere diermodellen van testiculaire IR, waarbij de zaadstreng wordt gedraaid om ischemie te bereiken, zijn beladen met veel technische problemen die resulteren in het onvermogen om het model consistent te reproduceren. Daarom presenteren we een eenvoudige methode voor het induceren van testiculaire IR in een rattenmodel die gemakkelijk kan worden gerepliceerd.

Deze methode omvat de scheiding van het gouvernaculum van de testis, het maken van een scrotumzak, het draaien van de testis 720° met de klok mee aan de onderpool en de verankering van de testis aan de basis van het scrotum. Dit model vernauwt effectief de testiculaire bloedvaten en induceert testiculaire ischemie. Na 1 uur ischemie wordt de verankeringssteek verwijderd en de testis losgedraaid. Het snoer en de bijbehorende vaten worden geïnspecteerd om de doorgankelijkheid te garanderen. Na IR wordt de testis verzameld en doorgesneden voor histopathologische evaluatie.

Testiculaire histologie werd onderzocht op focale hemorragische laesies, vasculaire congestie, vergrote interstitiële ruimte en infiltratie van ontstekingscellen. Verder werden markers van oxidatieve stress (malondialdehyde, gereduceerd glutathion, catalase en superoxide dismutase), ontsteking (MPO, TNF-α, IL-1β) en apoptose (caspase 3-expressie) getest. Deze methode biedt een eenvoudiger en gemakkelijk reproduceerbaar model om de pathofysiologie van testiculaire IR-beschadiging te bestuderen. Meer nog, dit model opent een venster voor het verkennen van potentiële therapeutische middelen bij de behandeling van testiculaire IR-schade.

Inleiding

Torsie van de testis (TT) is een acute urologische noodsituatie waarbij de zaadstreng, samen met de bijbehorende bloedvaten, draait, wat resulteert in ischemie van de testis. Het wordt gekenmerkt door hevige buikpijn, misselijkheid en braken1. De ischemie leidt, indien niet opgelost door tijdige detorsie, tot necrose en verlies van de betreffende testis2. Tijdige chirurgische ingreep door het losdraaien en herstellen van de bloedtoevoer naar de testis resulteert echter in ischemie-reperfusieschade (IRI), wat resulteert in histologische en biochemische verstoring van de testis en zijn functies 3,4.

Diermodellen van TT zijn uitgebreid gebruikt om de mechanismen van IRI te onderzoeken, die steevast het gevolg zijn van pogingen om te voorkomen dat TT zich ontwikkelt tot necrose 5,6. Er zijn twee modellen TT, zaadstrengklemming en navelstrengdraaiing. Beide worden uitgevoerd onder steriele omstandigheden en voldoende anesthesie. Veel voorkomende anesthetica die worden gebruikt, zijn ketamine alleen of in combinatie met xylazine7. Andere veelgebruikte anesthetica zijn urethaan en thiopental natrium, meestal intraperitoneaal toegediend7. Desalniettemin hebben beide modellen hun beperkingen.

Hoewel directe afklemming van de testiculaire slagader met microvasculaire clips 8,9 is gebruikt als middel om ischemie te induceren gedurende een bepaalde tijd (meestal 1 uur) vóór inductie van reperfusie door verwijdering van de klemmen, bootst de methode het klinische uiterlijk van torsie van de testis10 niet nauwkeurig na. Verder, hoewel chirurgische verdraaiing van de zaadstreng om ischemie te bereiken11,12 meer representatief is voor de klinische presentatie, is het beladen met veel technische problemen die niet zijn aangepakt door de korte beschrijvingen die worden aangetroffen in de sectie methoden van artikelen over het onderwerp.

Een duidelijk technisch probleem dat vaak werd aangetroffen, was het terugbrengen en verankeren van de testis aan de bodem van het scrotum om te voorkomen dat het losraakt tijdens de periode van ischemie. Terwijl sommige onderzoekers de verankering van de testis aan de scrotumwand niet vermelden13,14, schrijven anderen voor om de testis aan de scrotumwand te verankeren door de tunica albuginea eraan te hechten 15,16,17. De beschrijvingen van het proces van verankering van de testis aan de scrotumwand zijn over het algemeen zeer kort en niet-expliciet 7,18. Pogingen om de procedures te dupliceren die in de hoofdstukken over methoden van de vorige artikelen zijn beschreven, stuitten dus op ernstige praktische moeilijkheden, zoals beschadiging van de testis door het perforeren van de tunica albuginea en het niet mogelijk zijn om de testis terug te brengen naar het scrotum zonder onnodige druk uit te oefenen. Bovendien is in de praktijk de terugkeer van de testis naar de scrotumzak na het induceren van torsie een grote uitdaging geweest in onze pogingen om experimentele TT chirurgisch te induceren. Dergelijke technische problemen hebben dus geleid tot het onvermogen om het model consequent te reproduceren bij verschillende onderzoekers.

De in deze studie beschreven procedure voor het maken van een model van TT bij ratten identificeert dus de technische problemen die zich in eerdere modellen voordeden en biedt hiervoor oplossingen. Dit model biedt een eenvoudige techniek die gemakkelijk reproduceerbaar is en de menselijke ervaring nabootst. Het model is daarom een betrouwbaar en reproduceerbaar startpunt in de studie van de pathologische mechanismen die voortvloeien uit IRI.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Protocol

De studie werd goedgekeurd door de Ethische Toetsingscommissie van de Faculteit der Medische Basiswetenschappen, Ladoke Akintola University of Technology, Ogbomoso, Oyo State, Nigeria (ERCFBMSLAUTECH:033/05/2024). Voor dit onderzoek werden twintig mannelijke albino Wistar-ratten in de leeftijd van 10-12 weken en met een gewicht van 180 ± 10 g gebruikt. Ze werden gedurende 2 weken geacclimatiseerd en vervolgens willekeurig toegewezen aan de schijnoperatiegroep (SO) of de torsie/detorsiegroep (T/D) (n = 10 ratten per groep). De SO-ratten ondergingen een soortgelijke operatie, net als de T/D-ratten, maar de teelballen waren niet gedraaid of verankerd om T/D te induceren.

1. Preoperatieve voorbereiding en anesthesie

  1. Stel de dieren (SO- en T/D-groepen) bloot aan een nacht van 12 uur vasten voor de operatie.
  2. Verdoof op de dag van de operatie de dieren (SO- en T/D-groepen) met een combinatie van ketamine 50 mg/kg en xylazine 10 mg/kg intraperitoneaal, en bevestig de geschiktheid en diepte van de anesthesie door het gebrek aan respons van de dieren op de druk van de voetzolen en lichte stimulatie van de snorharen te observeren.
  3. Scheer het linker scrotum-, perineum- en liesgebied van de dieren (SO- en T/D-groepen) en maak ze vervolgens schoon met spiritus en povidon-antiseptische oplossing.

2. Inductie van ischemie van de testis

  1. Mobilisatie van de testis
    1. Oefen voorzichtig neerwaartse druk uit op de buik om de linker testis (van zowel de SO- als de T/D-groep) in het scrotum te duwen.
    2. Pak de linker testis stevig vast (van zowel de SO- als de T/D-groep) en maak een hoge incisie in het scrotum, ~1,5 cm lang, om de onderliggende testis in de tunica vaginalis (TV) bloot te leggen.
    3. Zoek de onderste pool van de testis (van zowel de SO- als de T/D-groep), met name de cauda epididymis, en maak een inkeping in de bovenliggende tv met een kleine ontleedschaar.
    4. Plaats de schaar onder de tv en maak deze iets breder om de twee randen van de tv te laten zien, en pak vervolgens de randen aan weerszijden vast met een gebogen tang van de muggenslagader. Dit geldt zowel voor de SO- als voor de T/D-groep.
      OPMERKING: Deze stap is erg belangrijk omdat het een weefselvlak tot stand brengt dat het mogelijk maakt om de testis gemakkelijk terug te brengen naar het scrotum na inductie van torsie.
    5. Verleng de incisie (van zowel de SO- als de T/D-groep) in de tv proximaal met ~0,5 cm.
    6. Oefen lichte druk uit op de onderbuik om de testis te exterioriën (van zowel de SO- als de T/D-groep).
    7. Voor alleen de T/D-groep, mobiliseer de testis en identificeer de gubernaculum testis, snijd deze vervolgens af om de testis los te maken van de bodem van het scrotum.
      OPMERKING: Deze stap is belangrijk omdat de testis hierdoor kan worden gedraaid. Het gubernaculum wordt geïdentificeerd als het ligament dat zich uitstrekt van het caudale uiteinde van de testis tot het lieskanaal en eindigt in een knobbelachtige uitzetting 19,20.
    8. Pak de testis (van de T/D-dieren) vast aan de onderste pool (waar de cauda epididymis zich bevindt) en draai deze 720° met de klok mee en noteer de tijd (markeer het begin van ischemie).
  2. Verankering van de ischemische testis
    1. Maak een scrotumzakje door de gedraaide testis (van de T/D-dieren) op zijn plaats te houden en een lange snijschaar langs het weefselvlak onder de tv naar beneden in het scrotum te duwen om een zakje te vormen.
    2. Voor alleen de T/D-dieren brengt u de verankeringssteek in door de schaar op zijn plaats te houden en een verankeringssteek in te brengen met behulp van chromische 2-0 hechtdraad vanaf de buitenkant van het laagste punt van de eerder gemaakte scrotumzak. Steek de hechting in het bindweefsel op de onderste pool van de testis en breng deze terug naar beneden in het zakje en erbuiten naast het eerste punt van binnenkomst.
    3. Veranker de testis aan de basis van het scrotum door de getorseerde testis (van de T/D-dieren) in het scrotum te trekken en voorzichtig neerwaartse tractie uit te oefenen op de twee uiteinden van de hechtdraad, en bind vervolgens de twee uiteinden van de hechtdraad stevig vast op de scrotumhuid.
    4. Sluit de incisie in het scrotum (van de SO- en T/D-dieren) met een doorlopende hechting met een taskoord met chroom 2-0.
      OPMERKING: Dit wordt aanbevolen voor gemakkelijke verwijdering wanneer reperfusie moet worden uitgevoerd.

3. Biochemisch en histopathologisch onderzoek

OPMERKING: Zorg ervoor dat de onderzoekers die de biochemische tests en histopathologische onderzoeken uitvoeren, blind zijn voor het onderzoeksprotocol.

  1. Laat de dieren aan het einde van de experimentele periode 's nachts 12 uur vasten en euthanaseer ze (50 mg/kg ketamine en 10 mg/kg xylazine i.p.).
  2. Verwijder en scheid de linker teelballen van de aanhangende structuren.
  3. Homogeniseer vijf van de 10 testiculaire weefsels van elke groep in homogenisatiebuffer (0,25 M sucrose, 0,5 mM EDTA, 5 mM histidine en PI opgelost in PBS, pH 7,4), en fixeer de resterende vijf testiculaire weefsels in Bouin's oplossing voor histologische evaluatie.
  4. Centrifugeer de homogenaten bij 10.000 × g gedurende 15 minuten bij 4 °C in een koude centrifuge om het bovenstaande voor biochemische analyses te verkrijgen.
  5. Bepaal de activiteit van xanthine-oxidase (XO) in de testikels door middel van een enzymatische colorimetrische test met behulp van standaard laboratoriumkits volgens de richtlijnen van de fabrikant.
  6. Test testiculaire malondialdehyde (MDA) inhoud door colorimetrie21.
    1. Bepaling van de lipideperoxidatieconcentratie met behulp van de thiobarbituurzuurreactieve stoffen (TBARS) die tijdens de lipideperoxidatie worden geproduceerd
      OPMERKING: Deze methode is gebaseerd op de reactie tussen 2-thiobarbituurzuur (TBA) en malondialdehyde, een eindproduct van lipideperoxidatie. Verwarming bij zure pH geeft een roze chromogenencomplex ([TBS] 2-malondialdehyde-adduct) waarvan de absorptie bij 532 nm wordt gemeten.
      1. Onteiwitrijk 200 μL van het monster met 500 μL trichloorazijnzuur (TCA) en centrifugeer bij 3.000 rpm gedurende 10 min.
      2. Voeg 1 ml 0,75% TBA toe aan 0,1 ml van het supernatant, kook 20 minuten in een waterbad op 100 °C en koel af met ijswater.
      3. Lees de absorptiecottie van het monster/de standaard bij 532 nm af met behulp van een spectrofotometer tegen de blanco. Bepaal de concentratie van TBARS die wordt gegenereerd door te extrapoleren uit de standaardcurve.
  7. Test testiculaire activiteiten van superoxide dismutase (SOD)22, catalase23 en glutathionperoxidase (GPx)24 met behulp van gevestigde protocollen zoals eerder gerapporteerd.
    1. SOD-bepaling
      1. Verdun 1 ml van het monster in 9 ml gedestilleerd water tot een verdunning van 1:10. Voeg 0,2 ml van dit verdunde monster toe aan 2,5 ml 0,05 M carbonaatbuffer (pH 10,2) voor spectrofotometerevenwicht.
      2. Begin de reactie door 0,3 ml vers bereide 0,3 mM adrenaline aan het mengsel toe te voegen en meng snel door inversie.
      3. Voeg aan de referentiecuvet 2,5 ml buffer, 0,3 ml substraat (adrenaline) en 0,2 ml water toe.
      4. Bewaak de toename van de extinctie elke 30 s gedurende 150 s bij 480 nm.
    2. Bepaling van de katalase
      1. Meng 1 ml van het bovenstaande van het zaadbalhomogenaat met 19 ml verdund water tot een verdunning van het monster in 1:29.
      2. Neem 4 ml H2O2-oplossing (800 μmol) en 5 ml fosfaatbuffer in een kolf met platte bodem van 10 ml.
      3. Meng 1 ml van het goed verdunde enzympreparaat (stap 4.6.3.1) met het reactiemengsel (stap 4.6.3.2) met een zachte wervelende beweging bij 37 °C. Zuig 1 ml van het reactiemengsel op en voeg dit toe aan 2 ml dichromaat/azijnzuurreagens met tussenpozen van 60 s.
      4. Bepaal de catalaseniveaus in het monster door de extinctie bij 653 nm te vergelijken met die van een gecertificeerde catalasestandaard.
    3. GPx-test
      1. Incubeer het reactiemengsel met het monster gedurende 3 minuten bij 37 °C, voeg 0,5 ml 10% trichloorazijnzuur (TCA) toe en centrifugeer gedurende 5 minuten bij 3.000 tpm.
      2. Voeg aan 1 ml van het supernatant 2 ml fosfaatbuffer en 1 ml 5'-5'-dithiobis-(2-dinitrobenzoëzuur (DTNB)-oplossing toe en lees de extinctie bij 412 nm af tegen een blanco.
      3. Bepaal de glutathionperoxidase-activiteit door de standaardcurve uit te zetten en de concentratie van de resterende GSH uit de curve te extrapoleren.
  8. MPO- en tumornecrosefactor-alfa (TNFα)-test
    OPMERKING: Deze test omvat de oxidatie van guaiacol tot geoxideerde guaiacol in aanwezigheid van waterstofperoxide. Guaiacol in zijn geoxideerde vorm heeft een bruine kleur, die fotometrisch wordt gemeten bij 470 nm.
    1. Gebruik standaard ELISA-kits om testiculaire myeloperoxidase (MPO)-activiteit 21,25 en tumornecrosefactor-alfa (TNF-α) niveaus te bepalen.
  9. Histopathologisch onderzoek met behulp van hematoxyline en eosine (H&E) kleuring26,27 en immunohistochemie voor caspase 3-expressie
    1. Bewaar het testiculaire weefsel in de vloeistof van Bouin; Was de tissue met tolueen, dompel onder in paraffinewas en incubeer een nacht bij 60 °C.
    2. Neem ~5 μm dikke secties, deparaffineer en rehydrateer ze, haal het antigeen op met behulp van voorverwarmde citraatbuffer en laat 30 minuten afkoelen.
    3. Reinig de objectglaasjes met laboratoriumdoekjes, markeer de sectiegebieden met een hydrofobe pen en plaats de objectglaasjes in een bevochtigde kamer.
    4. Incubeer de objectglaasjes gedurende 10 minuten na blokkade van de endogene peroxidase-activiteit met behulp van waterstofperoxide. Spoel de glaasjes één keer af met PBS, breng het eiwitblok aan en incubeer gedurende 10 minuten.
    5. Spoel de objectglaasjes 2x af met PBS, breng de bijbehorende primaire antilichamen (caspase 3) aan, incubeer de objectglaasjes gedurende 45 minuten en spoel 2x met PBS.
    6. Breng het secundaire antilichaam aan, incubeer gedurende 25 min, spoel 2x met PBS en voeg het HRP-polymeer toe. Herhaal de incubatiecyclus gedurende 25 minuten en spoel 2x met PBS.
    7. Incubeer secties gedurende 5 minuten in diaminobenzidine (DAB) substraat, spoel 2x met PBS, ga kleuring tegen met hematoxylin en spoel af met gedestilleerd water.
    8. Breng blauwoplossing aan op de secties, spoel, dehydrateer, verwijder en monteer voor kwalitatief onderzoek.
    9. Onderzoek de weefsels onder een lichtmicroscoop en maak microfoto's met een vergroting van 100x en 400x met een digitale camera die aan de microscoop is bevestigd.

4. Statistische analyse

  1. Voer statistische analyses uit met de software van uw keuze. Voer de Anderson-Darling-test, de D'Agostino- en Pearson-test en de Shapiro-Wilk-test uit om te testen op normaliteit.
  2. Voer een ongepaarde t-test uit om te testen op significant verschil tussen beide groepen: SO en T/D.
  3. Presenteer de gegevens als gemiddelde ± standaardfout van het gemiddelde. Stel het significantieniveau in op p < 0,05, p < 0,01 en p < 0,001 (zoals gerapporteerd in de legenda's van de figuur).

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Resultaten

XO-activiteit, MDA-niveau en activiteiten van SOD, catalase en GPx in de testis werden gebruikt als markers van oxidatieve stress. Torsie/detorsie (T/D) verhoogde duidelijk de XO-activiteit en MDA-niveaus en verminderde testiculaire activiteit van SOD, catalase en GPx bij T/D-ratten in vergelijking met de schijnoperatieratten (Figuur 1), wat de rol van oxidatieve stress bij T/D-geïnduceerd letsel weergeeft.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Discussie

Dit artikel en de bijbehorende video geven een gedetailleerde stap-voor-stap beschrijving van de chirurgische inductie van TT voor de studie van testiculaire IRI met behulp van de verankeringsbenadering. De methode is vooral nuttig omdat het de langdurige exteriorisatie van de testis als gevolg vanklemtechnieken 7 voorkomt en tegelijkertijd de klinische presentatie van TT bij mensen nauwkeuriger modelleert10,12<...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Openbaarmakingen

De auteurs hebben geen belangenconflicten te melden.

Dankbetuigingen

Hierbij zijn we dankbaar voor de hulp van de heer Ojeniran, hoofd van de audiovisuele eenheid van het College of Health Sciences, die heeft geholpen bij het filmen en monteren van de procedure.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Materialen

Lijst van materialen gebruikt in dit artikel
NaamBedrijfCatalogusnummerOpmerkingen
1 cc spuitenNiet Van ToepassingNiet Van Toepassingvoor anesthesie
2-0 chroomdraadNiet Van ToepassingNiet Van ToepassingVoor chirurgie
Bard Parker mesgreepNiet Van ToepassingNiet Van ToepassingVoor chirurgie
Gebogen Mosquito arteriële tangNiet Van ToepassingNiet Van ToepassingVoor chirurgie
Dissectie schaarNiet Van ToepassingNiet Van ToepassingVoor chirurgie
GraphPad Prism (versie 8.0.2)
Ketamine injectieSwiss Parenterals LTD Gujarat India2321154Anesthesie
Paracetamol injectieShanxi Zhongbao Pharmaceuticals, China220637Pijnstiller
PovidonJAWA International limited Nigeria 135SAntiseptische was
Procaine penicillin poederAnhui Chengshi Pharmaceutical Co Ltd China201906Voor chirurgie
Chirurgisch mesjeNiet Van ToepassingNiet Van ToepassingVoor chirurgie
Chirurgische handschoenenZhenjiang huayang latex producten China210325
NaaischarenNiet Van ToepassingNiet Van ToepassingVoor chirurgie
Getande dissectietangNiet Van ToepassingNiet Van ToepassingVoor chirurgie
XylazinespuitBioveta Tsjechië396228AAnesthesie
LichtmicroscoopNovel Microscope, ChinaNiet van toepassingVoor histopathologische evaluatie
Digitale cameraHayear, ChinaNiet van toepassingVoor histopathologische evaluatie
TNF-α kitElabscience, USAE-EL-H0109Voor test
Thermo Fischer kit (anti-muis caspase 3 monoklonaal voor caspase 3 expressie)Thermo Fischer Scientific Inc., USANiet van toepassingVoor immunohistologie (caspase 3)

Referenties

  1. Obi, A. O., Okeke, C. J., Ugwuidu, E. I. Acute testicular torsion: A critical analysis of presentation, management, and outcome in southeast Nigeria. Niger J Clin Pract. 23 (11), 1536-1541 (2020).
  2. Yang, C., Song, B., Tan, J., Liu, X., Wei, G. H. Testicular torsion in children: a 20-year retrospective study in a single institution. Sci World J. 14 (11), 362-368 (2011).
  3. Ganjiani, V., Ahmadi, N., RaayatJahromi, A. Protective effects of Stevia rebaudiana aqueous extract on experimental unilateral testicular ischaemia/reperfusion injury in rats. Andrologia. 52 (2), e13469(2020).
  4. Afolabi, O., Alabi, B., Omobowale, T., Oluranti, O., Iwalewa, O. Cysteamine mitigates torsion/detorsion-induced reperfusion injury via inhibition of apoptosis, oxidative stress and inflammatory responses in experimental rat model. Andrologia. 54 (1), e14243(2022).
  5. Taskinen, S., Taskinen, M., Rintala, R. Testicular torsion: orchiectomy or orchiopexy. J Ped Urol. 4 (3), 210-213 (2008).
  6. Cost, N. G., Bush, N. C., Barber, T. D., Huang, R., Baker, L. A. Pediatric testicular torsion: demographics of national orchiopexy versus orchiectomy rates. J Urol. 185 (6S), 2459-2463 (2011).
  7. Akhigbe, R. E., Odetayo, A. F., Akhigbe, T. M., Hamed, M. A., Ashonibare, P. J. Pathophysiology and management of testicular ischemia/reperfusion injury: Lessons from animal models. Heliyon. 10, e27760(2024).
  8. Kehinde, E. O., et al. Significance of determining the point of reperfusion failure in experimental torsion of testis. Int J Urol. 12 (1), 81-89 (2005).
  9. Dokmeci, D., et al. Protective effect of L-carnitine on testicular ischaemia-reperfusion injury in rats: Cellular biochemistry and its modulation by active agents or disease. Cell Biochem Funct. 25 (6), 611-618 (2007).
  10. Ellati, R. T., Kavoussi, P. K., Turner, T. T., Lysiak, J. J. Twist and shout: a clinical and experimental review of testicular torsion. Kor J Urol. 50 (12), 1159-1167 (2009).
  11. Ranade, A. V., et al. Effect of vitamin E administration on histopathological changes in rat testes following torsion and detorsion. Sing Med J. 52 (10), 742-746 (2011).
  12. Jafari, A., Ghasemnejad-Berenji, H., Nemati, M., Ghasemnejad-Berenji, M. Topiramate: A novel protective agent against ischemia reperfusion-induced oxidative injury after testicular torsion/detorsion. Am J Em Med. 44, 257-261 (2021).
  13. Turner, T. T. Acute experimental testicular torsion: no effect on the contralateral testis. J Androl. 6 (1), 65-72 (1985).
  14. Baker, L. A., Turner, T. T. Leydig cell function after experimental testicular torsion despite loss of spermatogenesis. J Androl. 16 (1), 12-17 (1995).
  15. Salmasi, A. H., et al. Effect of morphine on ischemia-reperfusion injury: experimental study in testicular torsion rat model. Urology. 66 (6), 1338-1342 (2005).
  16. Karakaya, E., Ateş, O., Akgür, F. M., Olguner, M. Rosuvastatin protects tissue perfusion in the experimental testicular torsion model. Int Urol Nephrol. 42 (2), 357-360 (2010).
  17. Ikebuaso, A. D., Yama, O. E., Duru, F. I., Oyebadejo, S. A. Experimental testicular torsion in a rat model: effects of treatment with Pausinystalia macroceras on testis functions. J Repro Infertil. 13 (4), 218(2012).
  18. Esmaeilsani, Z., Barati, F., Mohammadi, R., Shams-Esfandabadai, N., Karimi, I. Effects of curcumin nanoparticles on the tissue oxidative stress following testicular torsion and detorsion in rat model. Iran J Vet Surg. 14 (2), 97-104 (2019).
  19. Samy, A., et al. The potential protective and therapeutic effects of platelet-rich plasma on ischemia/reperfusion injury following experimental torsion/detorsion of testis in the Albino rat model. Life Sci. 256, 117982(2020).
  20. Schumacher, J. Testis. Equine Surgery. Auer,, Stick, J. A., Saunders, J. A. W. B. , 775-810 (2006).
  21. Desser, R. K., et al. Guinea pig heterophil and eosinophil peroxidase. Arch Biochem Biophys. 148 (2), 452-465 (1972).
  22. Hp, M. The role of superoxide anion in the autoxidation of epinephrine and a simple assay for superoxide dismutase. J Biol Chem. 247, 3170-3175 (1972).
  23. Euler, H. V., Josephson, K. Uber catalase. IS European. J Org Chem. 452, 158-181 (1972).
  24. Rotruck, J. T., et al. Selenium: biochemical role as a component of glutathione peroxidase. Science. 179 (4073), 588-590 (1973).
  25. Akhigbe, R. E., et al. Testicular toxicity in cisplatin-treated Wistar rats is mitigated by Daflon and associated with modulation of Nrf2/HO-1 and TLR4/NF-kB signaling. J Trace Elem Med Biol. 85, 127489(2024).
  26. Ricken, A. M., Hamed, M. A., Akhigbe, R. E. Histopathological evaluation of infertility: Lessons from laboratory rodents. Histol Histopathol. 39, 671-690 (2024).
  27. Ajayi, A. F., Akhigbe, R. E. In vivo exposure to codeine induces reproductive toxicity: role of HER2 and p53/Bcl-2 signaling pathway. Heliyon. 6 (11), e05589(2020).
  28. Ricken, A. M., Hamed, M. A., Akhigbe, R. E. Histopathological evaluation of infertility: Lessons from laboratory rodents. Histol Histopathol. 39, 671-690 (2024).
  29. Aldhabaan, S., Hudise, J. Y., ALqarny, M., Alarfaj, A. Catgut versus polypropylene sutures for transcolumellar incision closure in open rhinoplasty: a retrospective cohort study. Cureus. 8, e9769(2020).
  30. Afolabi, O. A., et al. Atorvastatin-mediated downregulation of VCAM-1 and XO/UA/caspase 3 signaling averts oxidative damage and apoptosis induced by ovarian ischaemia/reperfusion injury. Redox Rep. 27 (1), 212-220 (2022).
  31. Akhigbe, R. E., et al. Omega-3 fatty acid rescues ischaemia/perfusion-induced testicular and sperm damage via modulation of lactate transport and xanthine oxidase/uric acid signaling. Biomed Pharmacother. 142, 111975(2021).
  32. Wei, S. M., Yan, Z. Z., Zhou, J. Curcumin attenuate ischemia-reperfusion injury in rat testis. Fertil Steril. 91, 271-277 (2009).
  33. Ritchey, M. L., Bloom, D. A. Modified dartos pouch orchiopexy. Urology. 45 (1), 136-138 (1995).

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Herprints en machtigingen

Tags

Testiculaire ischemietorsie van hetzaadstrengtesticulaire histologiemarkers voor oxidatieve stressinflammatoire markersapoptosemarkersscrotale pouchhistopathologische evaluatie
Verankering van gedraaide testis: een rattenmodel van ischemie-reperfusieschade van de testis
Neem contact met ons op
Aanbevelen aan de bibliotheek

Privacy

Gebruiksvoorwaarden

Beleidsoverzicht

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. Alle rechten voorbehouden.