Methodenartikel

Gecombineerde toepassing van Technetium-99m zwavelcolloïde en blauwe kleurstof voor detectie van sentinellymfeklieren bij vroege borstkanker

433 weergaven

⸱

DOI:

10.3791/69027

⸱

19 december 2025

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Nuclear Medicine, The First Affiliated Hospital, Zhejiang University School of Medicine, 2Department of Breast Surgery, The First Affiliated Hospital, Zhejiang University School of Medicine

In dit artikel

Samenvatting

Dit artikel beschrijft in detail het protocol van sentinel lymfeklier (SLN) mapping met gecombineerde toepassing van technetium-99m zwavelcolloïde (99mTc-SC) en methyleenblauw, inclusief de bereiding van 99mTc-SC, medicijninjectie, beeldverwerving en reconstructie, methyleenblauwe mapping en intraoperatieve lokalisatie van SLN's.

Samenvatting

Sentinel lymfeklierbiopsie (SLNB) is de standaardprocedure voor axillaire lymfeklierstadiëring bij borstkankerpatiënten, en de toepassing ervan heeft onnodige axillaire lymfeklierdissectie (ALND) bij vroege borstkanker in de afgelopen decennia voorkomen. Nauwkeurige localisatie van sentinellymfeklieren (SLN's) helpt het slagingspercentage van SLNB te verbeteren. De dual-tracer techniek (radiocolloïde plus blauwe kleurstof) voor SLN-mapping verbetert de identificatiesnelheid aanzienlijk ten opzichte van single tracer methoden. De meest gebruikte radiocolloïde is 99mTc-SC, en methyleenblauw wordt veel gebruikt in visuele mapping. Eerdere studies hebben echter aangetoond dat de identificatiesnelheid van SLN-beeldvorming aanzienlijk varieert, wat nauw samenhangt met het voorbereidingsproces en de ervaring van de operator. Standaardisatie van het SLN-mappingprotocol is cruciaal om de identificatiesnelheid te maximaliseren en vals-negatieve resultaten te minimaliseren. Dit artikel biedt een gedetailleerd proces waarbij 99mTc - SC gecombineerd wordt met methyleenblauw voor SLN-mapping bij vroegstadium borstkanker, inclusief procedures voor de bereiding van 99mTc-SC, injectie, SLN-beeldverwerving, methyleenblauwe mapping en intraoperatieve lokalisatie.

Inleiding

Bij vroege borstkanker presenteert slechts een minderheid van de gevallen zich met uitzaaiingen van de axillaire lymfeklier. Voor deze patiënten biedt axillaire lymfeklierdissectie (ALND) geen extra overlevingsvoordelen en kan het leiden tot ernstige complicaties zoals lymfoedeem 1,2 in de bovenste ledemaat. De sentinel lymfeklier (SLN) wordt gedefinieerd als de "eerste-station" lymfeklier die lymfedrainage ontvangt van de borsttumor3. Als de SLN geen metastase vertoont, is de kans op metastase in de lymfeklieren stroomafwaartsextreem laag. Volgens de richtlijnen van 2021 getiteld Management of the Axilla in Early-Stage Breast Cancer: Ontario Health (Cancer Care Ontario) en ASCO Richtlijn1, kunnen patiënten met negatieve resultaten van de sentinel lympheklierbiopsie (SLNB) gespaard blijven van ALND, terwijl mensen met 1-2 metastatische SLN's ALND onder specifieke omstandigheden kunnen vermijden. Uit onderzoek is gebleken dat SLNB ongeveer 70% van de patiënten in een vroeg stadium borstkanker spaart van onnodig ALND 5,6,7. Daarom speelt SLN-detectie een cruciale rol bij het bepalen van de noodzaak van ALND, wat de kwaliteitvan leven na operatieve operaties aanzienlijk verbetert.

Verschillende studies hebben ultrageluidsgeleide lymfeklierbiopsie onderzocht om nodale metastase bij borstkankerpatiënten te bepalen, maar deze methode levert een hoog vals-negatief percentage (FNR) op van 6,4%-40,8%4. Bovendien brengt de aanwezigheid van een ervaren echoscopist tijdens de operatie aanzienlijke uitdagingen met zich mee voor een brede klinische implementatie. Er zijn diverse tracers beschikbaar voor SLN-mapping bij borstkanker 8,9,10, radiocolloïde en/of blauwe kleurstoffen, fluoresceïne, indocyanine green (ICG) en mitoxantronhydrochloride injectie. Tausch et al. rapporteerden een identificatiepercentage (IR) van 82% met alleen blauwe kleurstof, 85% met alleen radiocolloïde, en 94% wanneer dubbele tracers (radiocolloïde plus blauwe kleurstof) werden gebruikt11. Een meta-analyse van 13 studies toonde vergelijkbare IR aan voor radiocolloïd (96%) en blauwe kleurstof (96%), terwijl de combinatie 97% behaalde. Gecombineerde toediening van tracer verlaagt significant vals-negatieve percentages (FNR), waarbij radiocolloïde-only benaderingen FNR's van 16%-20,3% vertonen tegenover 5,2%-10,8% voor duale tracer 13,14,15,16,17. Fluoresceïne is niet inferieur aan 99mTc-SC en is kosteneffectiever. Echter, de slechte weefselpenetratie beperkt de toepassing bij het detecteren van diepere SLN's18. ICG toont een diagnostische effectiviteit vergelijkbaar met 99 miljoenTc-SC, waardoor het bijzonder geschikt is voor instellingen zonder nucleaire medische middelen19,20. Desalniettemin is de werkzaamheid laag bij patiënten met een BMI > 30 of centraal gelegen tumorenvan 21. Sommige studies hebben bevestigd dat de diagnostische prestaties van mitoxantronhydrochloride-injectie vergelijkbaar zijn met 99mTc-SC voor SLN-mapping 8,10. Het beperkte aantal studies vereist echter verdere klinische validatie.

Hoewel er de afgelopen decennia veel beeldvormende middelen beschikbaar zijn voor het detecteren van SLN's, bevelen de richtlijnen nog steeds de combinatie van radiocolloïde en blauwe kleurstof aan voor SLN-lokalisatie bij borstkanker, vanwege de hoge diagnostische effectiviteit, de aanzienlijke wetenschappelijke medische ondersteuning en minimale ernstige bijwerkingen 1,20,22. Alternatieve middelen zijn fluoresceïne of ICG zonder ondersteuning van een afdeling nucleaire geneeskunde. 99mTc-SC is het meest gebruikte radiocolloïd. In vergelijking met andere blauwe kleurstoffen wordt methyleenblauw vaker gebruikt in de meeste centrain Azië, omdat het vergelijkbare SLN-lokalisatieeffectiviteit vertoont als isosulfanblauw of patentblauw, maar kosteneffectiever is.

Gerapporteerde IR van SLN met alleen radiocolloïde of blauwe kleurstof verschillen significant (van 69,8% tot 90,8%) tussen studies en zijn sterk afhankelijk van procedurele protocollen en ervaring van de operator 9,12,13,24. Daarom zijn gestandaardiseerde operationele procedures cruciaal om consistente IR-procedures te waarborgen. Er zijn momenteel verschillende protocollen beschikbaar, wat de standaardisatie-inspanningen bemoeilijkt. Ten eerste is er de verwarmingstijd tijdens de voorbereiding van 99mTc-SC. Studies hebben aangetoond dat een verminderde verhitting van 3 minuten de synthese-efficiëntie van 99mTc-SC25 kan verbeteren. 99mTc-SC, bereid door een verminderde 3 minuten verwarming, had een vergelijkbare radiochemische zuiverheid (RCP) als de standaard 5 minuten verwarming (beide >92%) bij 0 uur en 6 uur26. Bovendien had 99mTc-SC van 3 minuten verwarming een grotere lymfeklierretentie na 24 uuren 27 minuten. Daarom beschouwen we het 3-minuten verwarmingsprotocol als superieur. Ten tweede worden periareolaire en peritumorale injecties aanbevolen voor toediening van 99mTc-SC. Studies tonen aan dat de periareolaire injectie een hogere IR had voor axillaire SLN vergeleken met de peritumorale injectie (99,3% versus 91,1%, P < .001)28. De periareolaire techniek is technisch eenvoudiger en vertoont bijzondere voordelen voor niet-palpabele tumoren of laesies in het bovenste buitenkwadrant, voornamelijk door het voorkomen van het "doorschijn"-fenomeen29. Daarnaast dekt periareolaire injectie op natuurlijke wijze lymfedrainage uit alle borstkwadranten, wat mogelijk het gemiste detectiepercentage van SLN's vermindert en bijzonder gunstig blijkt bij multifocale tumoren30,31. Daarom beschouwen we de periareolaire injectie als voordeliger.

In dit artikel hebben we een dual-tracer protocol toegepast met preoperatieve 99mTc-SC (periareolaire injectie) gecombineerd met intraoperatief methyleenblauw (periareolaire injectie). 99mTc-SC werd voorbereid met een verkort verwarmingsprotocol van 3 minuten.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Protocol

Deze studie werd goedgekeurd door het Clinical Research Approval Committee van het First Affiliated Hospital, Zhejiang University School of Medicine [2025B] IIT Ethics Approval No.0125. Schriftelijke geïnformeerde toestemming werd van alle proefpersonen verkregen. Het hele syntheseproces moet plaatsvinden in een dampkap. Het loodglazen paneel van de kap biedt bescherming tegen straling, terwijl het ontwerp van de negatieve druk de verspreiding van radioactieve aerosolen of vluchtige stoffen voorkomt, waardoor inademing door personeel wordt voorkomen. Gooi flesjes, spuiten en naalden weg in een 99mTc radioactief afvalcontainer volgens de relevante regelgeving. Andere materialen moeten als regulier medisch afval worden behandeld. Handhaaf stralingsbescherming en patiëntprivacy gedurende het hele proces.

1. Patiëntselectie

OPMERKING: Volgens de richtlijnen van 2021 getiteld Management of the Axilla in Early-Stage Breast Cancer: Ontario Health (Cancer Care Ontario) en ASCO Guidelines worden patiënten in een vroeg stadium borstkanker die SLN-lokalisatie nodig hebben door de chirurg1 geïdentificeerd. SLN-mapping van 99mTc-SC werd 3-18 uur voor de operatie uitgevoerd.

  1. Stel de volgende inclusiecriteria vast: (1) Vroegstadium borstkanker met negatief negatief klieren van klinische axillaire lymfeklieren (ALN's) (cN0). cN0 wordt gedefinieerd als negatieve resultaten bij klinisch onderzoek en beeldvorming, of ALN was pathologisch negatief door een ultrasoon geleide naaldbiopsie. (2) Negatieve ALN na neoadjuvante therapie bij cN0-patiënten. (3) ALN-metastase bevestigd door biopsie bij cN1-patiënten, en klinisch negatief na neoadjuvante therapie.
  2. Stel de volgende exclusiecriteria vast: (1) Inflammatoire borstkanker. (2) Patiënten met uitgezaaide ALN bevestigd door biopsie zonder neoadjuvante therapie. (3) Patiënten met positieve ALN-metastase en nog steeds positief na neoadjuvante therapie.

2. Voorbereiding van 99mTc-SC

  1. Voorbereidingen die nodig zijn voorafgaand aan de etikettering van 99mTc-SC
    1. Bestel de kit van het prodrug vooraf bestaande uit drie flesjes: Flesje A met 2,0 mL 0,15 mol/L zoutzuur (HCl); Flesje B met 2,0 mL van een bufferoplossing bestaande uit 49,2 mg natriumdiwaterstoffosfaat (NaH2PO4) en 15,8 mg natriumhydroxide (NaOH); Flesje C, een gelyofilieerd product dat een wit, wateroplosbaar poeder bevat dat bestaat uit 2,0 mg natriumthiosulfaat (Na2S2O3), 2,3 mg edetaatdinatrium (Na2EDTA) en 18,1 mg gelatine. Bewaar de kit in een koelkast van 4 °C.
    2. Ontdooien van de kit: Verwijder hem 1 uur voor de bereiding van het medicijn om kamertemperatuur te bereiken.
    3. Technetium-99m bestellen op de dag van beeldvorming: Zorg ervoor dat de technetium-99m-injectie binnen 24 uur uit een Mo-Tc-generator wordt geëlueerd en vrij is van oxiderende middelen.
    4. Bereiding van het waterbad: Vul het water met voldoende water en verwarm het tot 100 °C, waarbij het kokend blijft.
      OPMERKING: Het bestelde natriumpertechnetaat [99mTc] vereist voldoende activiteit om syntheseverlies te compenseren, en een activiteit van 185 MBq per patiënt wordt aanbevolen voor het bestellen, met een totaalvolume van 0,5-1 mL. Bij de voorbereiding voor meerdere patiënten moet de totale dosering van 99 mTc worden verhoogd in overeenstemming met het aantal patiënten, met een totaal volume van maximaal 1 mL en een radioactieve concentratie van maximaal 18,5 GBq/mL.
  2. Labelproces
    1. Bereid de 99mTc-SC-injectie voor onder stralingsbeschermingsomstandigheden, meestal in een dampkap. Onder aseptische omstandigheden injecteer je natriumpertechnetaat [99mTc] in buisje C. Schud grondig om het gelyofilieerde poeder op te lossen en laat het 5 minuten staan.
      OPMERKING: Voer alle handelingen uit onder aseptische omstandigheden en desinfecteer vóór elke verwijdering van de oplossing. Als ontsmettingswattenstaafjes besmet zijn met radionucliden, gooi ze dan weg als radioactief afval. Zorg ervoor dat er lucht strikt wordt uitgestoten bij het injecteren van 99mTc in de flesjes van de kit. Houd de negatieve druk in de flesjes tot de laatste stap van het terugtrekken van de oplossing.
    2. Haal 1,5 ml oplossing uit buisje A en injecteer dit in het reactiebuisje. Meng goed en laat het nog eens 5 minuten staan om mengsel D te krijgen.
    3. Kokend waterbad: Plaats het flesje met mengsel D in het waterbad en verwarm het 3 minuten (Figuur 1A).
      OPMERKING: De verwarmingstijd mag niet langer zijn dan 3 minuten, omdat langdurige verhitting het percentage deeltjes < 0,2 μm 99mTc-SC25, 26, 27 aanzienlijk kan verminderen. Gebruik een tang om de flesjes na het koken te hanteren om brandwonden te voorkomen.
    4. Maak mengsel klaar. E: Verwijder het flesje met mengsel D en laat het 2-5 minuten afkoelen. Haal vervolgens 1,5 ml oplossing uit buisje B en injecteer dit in het flesje met mengsel D. Meng grondig om mengsel E te verkrijgen. Gebruik een spuit van 5 ml om het hele mengsel E te trekken.
    5. Filtratie: Bevestig een speciaal filter aan de spuit. Plaats de naald terug en steek hem in een vacuümfles. Filter het mengsel E langzaam zonder druk uit te oefenen om de 99mTc-SC oplossing te verkrijgen (Figuur 1B).
  3. Voorbereiding van de laatste injectie:
    1. Gebruik een 2 mL spuit om de 99mTc-SC oplossing te trekken. Zorg ervoor dat elke patiënt 37-55,5 MBq ontvangt in een totaal volume van 0,4-1,0 mL, bij voorkeur dicht bij 0,1 mL per site om injectie-ongemak te minimaliseren. Na het trekken van de oplossing vervang je de naald door een naald van 4,5 gauge (26 G) voor toediening.
      OPMERKING: Een totale geïnjecteerde dosis van 37 MBq wordt over het algemeen als voldoende geacht32.

3. Kwaliteitscontrole van 99mTc-SC

OPMERKING: Een kleine aliquot van het radiofarmaceutische middel wordt in een spuit geaspireerd voor kwaliteitscontrole vóór gebruik.

  1. Fysisch-chemische eigenschappen
    1. Bevestig dat de voorbereide injectatie een gelatine-gestabiliseerde, steriele en pyrogeenvrije colloïdale suspensie is die geschikt is voor intraveneuze toediening. Volgens de vereisten van de United States Pharmacopeia (USP)33, zorg ervoor dat de pH ligt tussen 4,5 en 7,5.
      OPMERKING: De pH-waarde van 99mTc-SC die in deze studie werd gesynthetiseerd, was ~6,0.
  2. Radiochemische zuiverheid (RCP)
    1. Voer de bepaling van de radiochemische zuiverheid (RCP) uit van 0 uur en 6 uur monsters uit zowel de 3 minuten als de 5 minuten verwarmingsprotocollen in overeenstemming met de eisen van USP33.
      1. Haal 0,1 mL 99mTc-SC injectie van 3 minuten verwarming en 5 minuten verwarming op 0 uur en 6 uur na voorbereiding terug, en verdun het vervolgens op passende wijze (ongeveer 1:10).
      2. Plaats de verdunde injecties met een 10 μL capillairbuis op een chromatografisch papieren strook (25 mm × 300 mm), op een punt ongeveer 20 mm van één uiteinde, en laat dan drogen.
      3. Met 85% methanol als mobiele fase, ontwikkel je het chromatogram met de opstijgende chromatografietechniek over een geschikte periode en droog het op.
      4. Bepaal de radioactieve verdeling op het chromatogram door te scannen met een radioactieve scanner. Bereken de RCP met de formule: RCP = 100% - (% vrij pertechnetaat).
        OPMERKING: Een RCP-waarde van meer dan 92% werd als acceptabel beschouwd (Figuur 2). Als de RCP minder dan 92% is of een andere kwaliteitscontroleparameter niet voldoet aan de normen, moet de injectie onvoorwaardelijk worden voorbereid en onderworpen aan herkwalificatietests totdat aan alle specificaties is voldaan.

4. Patiëntvoorbereiding en toediening van 99 miljoenTc-SC

  1. Bevestig de patiëntidentiteit, medisch dossiernummer, diagnose en preoperatieve locatie van de borsttumor (meestal gemarkeerd door de chirurg).
  2. Informeer de patiënt over de mapping procedure van de sentinel lymfeklier (SLN), inclusief mogelijke injectiepijn, injectieplaatsen en beeldvormingstijdlijn.
  3. Meet de radioactieve dosis van 99mTc-SC vóór injectie aan elke patiënt (Figuur 3A) om een redelijke dosis te garanderen, zodat uitstekende beeldvorming wordt bereikt en zo min mogelijk stralingsschade aan de patiënt wordt bereikt. Zorg ervoor dat elke patiënt een totale geïnjecteerde dosis van 37 MBq ontvangt in een totaal volume van 0,4 mL32. Desinfecteer de huid met jodineerde wattenstaafjes en dien vervolgens 99mTc-SC toe via subcutane injectie in het periareolaire gebied (3, 6, 9 en 12 uur posities) van de aangedane borst (Figuur 3B).
  4. Druk 5 minuten op de injectieplaats met een steriel wattenstaafje. Na de hemostase instrueert u de patiënt een zachte borstmassage uit te voeren om de lymfedrainage te verbeteren en in het wachtgebied te wachten op de volgende beeldvorming32.
    OPMERKING: Gebruik tijdens de injectie van 99mTc-SC loden schilden om de stralingsblootstelling te verminderen.

5. Beeldverwerving en reconstructie

  1. Voor beeldverwerving32 start je beeldvorming ~30 minuten na de injectie (meestal tussen 20 en 40 minuten) met SPECT/CT.
    1. Vraag de patiënt om een liggende en laterale decubitus (geïnjecteerde zijde naast de detector) positie aan te nemen, met geabducteerde armen en handen dicht bij het hoofd.
    2. Gebruik de volgende vlakke beeldparameters: H-modus, laag-energie hoogresolutie (LEHR) collimator, 140 keV fotopiek met ±10% venster, 256 × 256 matrix, ZOOM 1.0, 300K tellingen, gezichtsveld van het supraclavikulaster tot het diafragma.
    3. Voer onmiddellijk Tomo-fusiebeeldvorming uit als SLN's op vlakke beeldvorming worden weergegeven. Zo niet, voer dan vertraagde beeldvorming uit 1 uur na injectie met de volgende Tomo fusiebeeldvormingsparameters: LEHR-collimator, 140 keV fotopiek, ±10% venster, 128 × 128 matrix, ZOOM 1.0, 60 projecties (6° intervallen, 16 s/frame). CT-parameters: 120 kV, 150 mA, 2,5 mm sneeddikte.
  2. Voor beeldreconstructie verwerk je afbeeldingen op een werkstation om vlakke en gefuseerde SPECT/CT-datasets te genereren. Lokaliseer SLN's op fused beelden en meet de lengte-as dimensies van knooppunten.
  3. Als SLN's niet worden weergegeven op 99mTc-SC beeldvorming, sluit eerst correcteerbare factoren32 uit.
    1. Bevestig opnieuw met het verpleegkundig personeel dat de injectie subcutaan is toegediend in het periareolaire gebied in plaats van diep in het klierweefsel (indien fout, injecteer dan opnieuw 99mTc-SC).
    2. Controleer op lokale compressie op de injectieplaats, die de lymfedrainage kan belemmeren. Als aanwezig is, laat de compressie onmiddellijk los en geef patiënten de instructie om de borst voorzichtig te masseren om de lymfestroom te bevorderen.
    3. Bij sommige patiënten met trage lymfedrainage verleng je de beeldvormingstijd tot 2 uur, en als het negatief is, voer je 2 uur voor de operatie een extra preoperatieve beeldvorming uit, binnen 24 uur nade injectie. Als SLN na deze stappen nog steeds negatief is, gebruik dan methyleenblauw36.

6. Intraoperatieve methyleenblauwe mapping en SLN-identificatie

  1. Op de dag van de operatie (binnen 24 uur na radiofarmaceutische toediening): injecteer 1 mL methyleenblauw in het subcutane weefsel op de periareolaire positie20,29 uur om 3,6,9,12.
  2. Na 10-15 minuten traceer blauw gekleurde lymfekanalen om SLN's te lokaliseren.
  3. Bevestig SLN's met een Gamma Detection System (positief signaal: de heetste node en alle andere hot nodes met meer dan 10% van de counts van de hottest node).
  4. Exciseer SLN's voor bevriesanalyse en zorg ervoor dat de uiteindelijke chirurgische behandeling wordt geleid door de pathologische resultaten van de SLN.
    OPMERKING: Als de dual-tracer-methode SLN's niet kan lokaliseren, kan een derde tracer, zoals ICG, worden geprobeerd. In de meeste gevallen kan de oorzaak van beeldvormingsfalen echter factoren zijn zoals lymfekliermetastase, lymfeobstructie of verstoring van lymfedrainage door eerdere operatie14,37. Daarom kunnen aanvullende SLN-traceringsmethoden nog steeds falen. Daarom raden de huidige richtlijnen in de meeste gevallen aan om door te gaan met een ALND20,38; de uiteindelijke verantwoordelijkheid voor deze chirurgische beslissing ligt bij de opererende chirurg.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Resultaten

We hebben met succes 99mTc-SC gesynthetiseerd met RCP > 92%, de curve van RCP is weergegeven in Figuur 2. We hebben hoogwaardige SLN-mapping van 99mTc-SC verkregen om SLN's te detecteren bij patiënten met borstkanker in een vroeg stadium (Figuur 4). Methyleenblauw mapping was nuttig voor de snelle lokalisatie van SLN's tijdens de werking (Figuur 5). De SLN's werden uiteindelijk...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Discussie

In deze studie behaalde het gecombineerde gebruik van preoperatief 99mTc-SC en intraoperatief methyleenblauw een identificatiepercentage van 99,8% van SLN, terwijl radiocolloïde alleen een vergelijkbaar hoge graad van 99,1% liet zien. Zo kunnen chirurgen een bijna optimale SLN-detectiegraad bereiken met alleen radiocolloïd. In gevallen waarin radiocolloïdmapping faalde, hielp methyleenblauw echter bij de SLN-detectie, wat overeenkomt met eerdere SLN-mappingstudies

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Openbaarmakingen

De auteurs hebben geen belangenconflicten om te melden.

Dankbetuigingen

Dit werk werd gefinancierd door de Zhejiang Natural Science Foundation (subsidie nr. LTGY23H180014); Zhejiang Programma Medische en Gezondheidswetenschappen en Technologie (subsidie nr. 2023KY694).

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Materialen

Lijst van materialen gebruikt in dit artikel
NaamBedrijfCatalogusnummerOpmerkingen
0,9% zoutoplossingChina Otsuka Pharmaceutical Co.,Ltd.24a75B3Verdunningsoplossing
Acrodisc spuitfilterPALLPN46120,2 μm Supor membraan
chromatografiepapierCytiva09927854Voor radiochemische zuiverheidsanalyse
ZuigkapQingdao Qingdun Medical Technology Co., Ltd.20150710Stralingbescherming bij drugsynthese
Glasspotting capillairSinopharm Chemical Reagent Co.,LtD20250510Staal de injectie voor radiochemische zuiverheidsanalyse
Lodende beschermingSuzhou Hengkang Medical Devices Co.,Ltd5mm PbStralingbescherming bij injectie
Medische wegwerp steriele rubberen handschoenenSri Trang Gloves (Thailand) Public Company Limited F840Beschermt handen tegen besmetting.
MethanolHuzhou Shuanglin Chemical Technology Co.,LtD20251021Voor radiochemische zuiverheidsanalyse
MethyleenblauwJumpcan Pharmaceutical Co.,Ltd.240812Intraoperatief metyleenblauw mapping en SLN identificatie
MiniGita radioactieve TLC dunne laagscannerSepate Technology Co., LtDTLC voor radiochemische zuiverheid
 naaldJiangsu Kangbao Medical Equipment Co., Ltd.202407224,5-gauge (26 G)
Neoprobe Gamma Detectie Systeem (GDS)Mammotome2331609Intraoperatieve Sentinel lymfeklieren detectie 
PH testpapierSinopharm Chemical Regent  Co.,LtD72002361bereik: 1-14
SPECT/CTGE Health CareDiscovery NM/CT 670Beeldverwerving
 spuitZhejiang Longde Pharmaceutical Co., Ltd. 202404004, 2024120141 mL, 5 mL
technetium-99mBeijing Atom High-Tech Co.,Ltd.241020-111 Het moet binnen 24 uur worden elueerd uit een Mo-Tc generator en moet vrij zijn van oxidatiemiddelen.
Flesje ABeijing Shihong Pharmaceutical Co., Ltd.2410202,0 mL van 0,15 mol/L zoutzuur (HCl)
Flesje BBeijing Shihong Pharmaceutical Co., Ltd.2410202,0 mL van een bufferoplossing samengesteld uit 49,2 mg natriumdiwaterstoffosfaat (NaH2PO4) en 15,8 mg natriumhydroxide (NaOH).
Flesje CBeijing Shihong Pharmaceutical Co., Ltd.241020gevriesdroogd product dat een witte, in water oplosbare poeder bevat, samengesteld uit 2,0 mg natriumthiosulfaat (Na2S2O3), 2,3 mg dinatriumedetinezuur (Na2EDTA) en 18,1 mg gelatine
Xeleris werkstationGE Health CareBeeldverwerkingssoftwareVerwerk beelden om planaire en gefuseerde SPECT/CT datasets te genereren, Localiseer SLNs 

Referenties

  1. Brackstone, M., et al. Management of the axilla in early-stage breast cancer: Ontario Health (Cancer Care Ontario) and ASCO guideline. J Clin Oncol. 39 (27), 3056-3082 (2021).
  2. Donker, M., et al. Radiotherapy or surgery of the axilla after a positive sentinel node in breast cancer (EORTC 10981-22023 AMAROS): a randomised, multicentre, open-label, phase 3 non-inferiority trial. Lancet Oncol. 15 (12), 1303-1310 (2014).
  3. Jansen, L., et al. Clinical relevance of sentinel lymph nodes outside the axilla in patients with breast cancer. Br J Surg. 87 (7), 920-925 (2000).
  4. Amin, M. B., et al. The eighth edition AJCC cancer staging manual: continuing to build a bridge from a population-based to a more "personalized" approach to cancer staging. CA Cancer J Clin. 67 (2), 93-99 (2017).
  5. Krag, D. N., et al. Technical outcomes of sentinel-lymph-node resection and conventional axillary-lymph-node dissection in patients with clinically node-negative breast cancer: results from the NSABP B-32 randomised phase III trial. Lancet Oncol. 8 (10), 881-888 (2007).
  6. Krag, D. N., et al. Sentinel-lymph-node resection compared with conventional axillary-lymph-node dissection in clinically node-negative patients with breast cancer: overall survival findings from the NSABP B-32 randomised phase 3 trial. Lancet Oncol. 11 (10), 927-933 (2010).
  7. Veronesi, U., et al. A randomized comparison of sentinel-node biopsy with routine axillary dissection in breast cancer. N Engl J Med. 349 (6), 546-553 (2003).
  8. Yang, B., et al. A single-center, self-controlled, phase I clinical trial of mitoxantrone hydrochloride injection for lymph tracing for sentinel lymph node identification of breast cancer. Gland Surg. 10 (3), 992-1001 (2021).
  9. Swerdlow, M., et al. Determining accurate dye combinations for sentinel lymph node detection: a systematic review. Plast Reconstr Surg Glob Open. 12 (2), e5598(2024).
  10. Jiao, D., et al. Efficacy and safety of mitoxantrone hydrochloride injection for tracing axillary sentinel nodes in breast cancer: a self-controlled clinical trial. Front Oncol. 12 (1), 914057(2022).
  11. Tausch, C., et al. Sentinel node biopsy after primary chemotherapy in breast cancer: a note of caution from results of ABCSG-14. Breast J. 17 (3), 230-238 (2011).
  12. Geng, C., Chen, X., Pan, X., Li, J. The feasibility and accuracy of sentinel lymph node biopsy in initially clinically node-negative breast cancer after neoadjuvant chemotherapy: a systematic review and meta-analysis. PLoS One. 11 (9), e0162605(2016).
  13. Nathanson, S. D., Grogan, J. K., Debruyn, D., Kapke, A., Karvelis, K. Breast cancer sentinel lymph node identification rates: the influence of radiocolloid mapping, case volume, and the place of the procedure. Ann Surg Oncol. 14 (5), 1629-1637 (2007).
  14. Boughey, J. C., et al. Sentinel lymph node surgery after neoadjuvant chemotherapy in patients with node-positive breast cancer: the ACOSOG Z1071 (Alliance) clinical trial. JAMA. 310 (14), 1455-1461 (2013).
  15. Hunt, K. K., et al. Sentinel lymph node surgery after neoadjuvant chemotherapy is accurate and reduces the need for axillary dissection in breast cancer patients. Ann Surg. 250 (4), 558-566 (2009).
  16. Berrocal, J., et al. Intraoperative injection of technetium-99m sulfur colloid for sentinel lymph node biopsy in breast cancer patients: a single institution experience. Surg Res Pract. 2017 (1), 5924802(2017).
  17. Boileau, J. F., et al. Sentinel node biopsy after neoadjuvant chemotherapy in biopsy-proven node-positive breast cancer the SN FNAC study. J Clin Oncol. 33 (3), 258-264 (2015).
  18. Valiveru, R. C., et al. Low-cost fluorescein as an alternative to radiocolloid for sentinel lymph node biopsy-a prospective validation study in early breast cancer. World J Surg. 44 (10), 3417-3422 (2020).
  19. Zhang, X., et al. Diagnostic performance of indocyanine green-guided sentinel lymph node biopsy in breast cancer: a meta-analysis. PLoS One. 11 (6), e0155597(2016).
  20. Zaveri, S., et al. Operative standards for sentinel lymph node biopsy and axillary lymphadenectomy for breast cancer: review of the American College of Surgeons Commission on Cancer Standards 5.3 and 5.4. Surgery. 174 (3), 717-721 (2023).
  21. Kolbow, M., et al. The use of indocyanine green and technetium-99 for dual-tracer sentinel lymph node biopsy in breast cancer. Breast Cancer Res Treat. 213 (1), 151-159 (2025).
  22. Schmidt, M., et al. [Nuclear medicine procedure guideline for sentinel lymph node localization]. Nuklearmedizin. 63 (4), 233-246 (2024).
  23. Khadka, S., et al. Sentinel node mapping in early breast cancer: a randomized comparison of fluorescein-guided All India Institute of Medical Sciences, Anurag's technique with technetium-99m sulfur colloid plus methylene blue. Indian J Nucl Med. 37 (3), 236-244 (2022).
  24. Clarke, D., Newcombe, R. G., Mansel, R. E., Group, A. T. The learning curve in sentinel node biopsy: the ALMANAC experience. Ann Surg Oncol. 11 (3 Suppl), 211S-215S (2004).
  25. Eshima, D., et al. Technetium-99m-sulfur colloid for lymphoscintigraphy: effects of preparation parameters. J Nucl Med. 37 (9), 1575-1578 (1996).
  26. Michenfelder, M. M., Bartlett, L. J., Mahoney, D. W., Herold, T. J., Hung, J. C. Particle-size and radiochemical purity evaluations of filtered 99mTc-sulfur colloid prepared with different heating times. J Nucl Med Technol. 42 (4), 283-288 (2014).
  27. Phillips, W. T., et al. Evaluation of [(99m)Tc] liposomes as lymphoscintigraphic agents: comparison with [(99m)Tc] sulfur colloid and [(99m)Tc] human serum albumin. Nucl Med Biol. 28 (4), 435-444 (2001).
  28. Chagpar, A., et al. Validation of subareolar and periareolar injection techniques for breast sentinel lymph node biopsy. Arch Surg. 139 (6), 614-618 (2004).
  29. Malhotra, C., et al. Efficacy of periareolar versus peritumoral injection of Tc99-labelled sulphur colloid and methylene blue dye for detection of sentinel lymph node in patients with early breast cancer: a comparative study. Indian J Surg Oncol. 12 (1), 119-123 (2021).
  30. Mertz, L., et al. [Subareolar injection of 99m-Tc sulfur colloid for sentinel nodes identification in multifocal invasive breast cancer]. Bull Cancer. 86 (11), 939-945 (1999).
  31. Blanco Saiz, I., et al. [Sentinel node biopsy in patients with multifocal and multicentric breast cancer: a 5-year follow-up]. Rev Esp Med Nucl Imagen Mol. 33 (4), 199-204 (2014).
  32. Giammarile, F., et al. The EANM and SNMMI practice guideline for lymphoscintigraphy and sentinel node localization in breast cancer. Eur J Nucl Med Mol Imaging. 40 (12), 1932-1947 (2013).
  33. United States Pharmacopeia-National Formulary (USP 29-NF 24). , United States Pharmacopeial Convention. (2005).
  34. Yeung, H. W., et al. Lymphoscintigraphy and sentinel node localization in breast cancer patients: a comparison between 1-day and 2-day protocols. J Nucl Med. 42 (3), 420-423 (2001).
  35. Wang, H. Y., Tsai, C. C., Hung, G. U., Lin, W. Y. Effectiveness of delayed 2-day lymphoscintigraphy on sentinel lymph node detection in patients with breast cancer with negative early lymphoscintigraphy. Clin Nucl Med. 31 (9), 523-526 (2006).
  36. Park, K. U., et al. Sentinel lymph node biopsy in early-stage breast cancer: ASCO guideline update. J Clin Oncol. 43 (14), 1720-1741 (2025).
  37. Kohl Schwartz, A. S., et al. Does increased tumor burden of sentinel nodes in breast cancer affect detection procedure. Eur J Surg Oncol. 39 (3), 266-272 (2013).
  38. Lyman, G. H., et al. Sentinel lymph node biopsy for patients with early-stage breast cancer: American Society of Clinical Oncology clinical practice guideline update. J Clin Oncol. 35 (5), 561-564 (2017).
  39. Ratnagiri, R., et al. Performing sentinel lymph node biopsy without a hand-held gamma probe-overcoming hurdles through teamwork: an analysis of our learning curve over five years. World J Surg Oncol. 23 (1), 285(2025).

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Herprints en machtigingen

Toestemming aanvragen om de tekst of afbeeldingen van dit JoVE-artikel te hergebruiken

Toestemming aanvragen

Trefwoorden

Dualtracer techniekmapping met blauwe kleurstofsentinel lymph node biopsieaxillaire lymfekliershipstagingmethyleenblauwlokalisatie van lymfeklieren

Gerelateerde artikelen