Een abonnement op JoVE is vereist om deze inhoud te bekijken. Log in of start vandaag met uw gratis proefperiode.

Onderzoeksartikel

Differentiële analyse van nutriënteninhoud en metabolisme van Camellia oleifera in verschillende groeiperiodes

159 weergaven

⸱

DOI:

10.3791/69560

⸱

17 maart 2026

 ,  ,  ,  ,  , 
1College of Resources and Environmental Engineering, West Anhui University, 2Anhui Provincial Engineering Laboratory for Conservation and Sustainable Utilization of Traditional Chinese Medicine Resources, West Anhui University, 3Anhui Key Laboratory of Biomimetic Sensing and Detection Technology, West Anhui University, 4College of Forestry and Landscape Architecture, Anhui Agricultural University, 5College of Life Sciences, Anhui Agricultural University, 6Traditional Chinese Medicine Institute of Anhui Dabie Mountain, West Anhui University

In dit artikel

Samenvatting

Dit artikel presenteert een protocol om het eerste rapport te geven over de voedingsstoffen en gerelateerde metabole routes van C. oleifera-bladeren in drie groei- en ontwikkelingsstadia, en om een basis te bieden voor het begrijpen van het moleculaire mechanisme van bladveroudering.

Samenvatting

Om de variaties in voedingsstof, genexpressie geassocieerd met stikstofmetabolisme, en zetmeel- en sucrosemetabolisme bij C. oleifera in verschillende groeiperiodes aan te geven, werden bladeren van het C . oleifera 'Dabieshan 1'-cultivar verzameld in de juveniele (2-jarige C. oleifera), vroege vruchtfase ( 6-jarige C. oleifera) en piek-fruitfase (10-jarige C. oleifera) en piekvruchtfase (10-jarige C. oleifera)), die werden geselecteerd als experimentele materialen. Bepaling van het nutriëntengehalte en analyse van transcriptoomsequencing werden uitgevoerd op bladmonsters in de vroege bloeifase, waarbij systematisch de inhoud van voedingsstoffen en gerelateerde metabole routes van C. oleifera tijdens verschillende groeiperiodes werden bestudeerd. De resultaten maakten verschil tussen 9 homologe genen gerelateerd aan stikstofmetabolisme en respectievelijk 24 gerelateerd aan zetmeel- en sucrosemetabolisme, nadat de C . oleifera-bladeren die tijdens zowel de juveniele als de piekvruchtfase werden verzameld, waren vergeleken in de KEGG-database. Met toenemende boomleeftijd veranderingen in het stikstofmetabolisme en de zetmeel- en sucrosemetabole routes in C. oleifera-bladeren. C. oleifera zou zowel het fenylalanine-ammoniak-lyasepad als de sucrosebiosynthese versterken. Deze leidden uiteindelijk tot verhoogde niveaus van oplosbare eiwitten en oplosbare suikers in bladeren van C. oleifera . Deze studie biedt nieuwe inzichten in de mechanismen van veranderingen in stikstofmetabolisme, zetmeel- en sucrosemetabolisme, en nutriënteninhoud tijdens de transformatie van C. oleifera van vegetatieve groei naar voortplantingsgroei. Het biedt theoretische referenties om de vruchtperiode te begrijpen en het toepassen van bladmeststoffen voor planten om bloei en vruchtvorming te bevorderen.

Inleiding

Tijdens het juveniele stadium heeft C. oleifera doorgaans een onverdeelde hoofdstam en ondergaat voornamelijk vegetatieve groei, zonder het vermogen tot voortplantingsprocessen zoals bloei van bloemknopen1. Bij het enten van zaailingen van C. oleifera is het gebruikelijk om lentescheuten die het volwassen stadium binnengaan als scions te gebruiken, omdat ze de bloei kunnen induceren 2,3,4. Tijdens de vroege plantfase kan C. oleifera in zijn juveniele stadium echter moeite hebben om bloemknoppen te vormen en een differentiatie van bloemknopen ondergaan door krachtige vegetatiegroei, omdat omgevingsomstandigheden de vorming van bloemknopen kunnen beperken. Desalniettemin ontwikkelt C. oleifera, naarmate hij door zijn juveniele stadium vordert naar zijn primaire vruchtperiode en uiteindelijk zijn vruchtvruchtpunt bereikt, geleidelijk het vermogen om normale bloemknopvorming en bloei te ondergaan. C. oleifera heeft het kenmerk van een complexe vorm, gelijktijdige vruchten en bloemen5. In de beginvruchtfase kan C. oleifera enkele bloemen produceren, maar wanneer hij de piekvruchtfase bereikt, produceert hij een grotere hoeveelheid bloemen. In de piekvruchtfase van C. oleifera wordt voortplantingsgroei dominant, gepaard met een verhoogde vraag naar licht, temperatuur, water en voedingsstoffen. Het is duidelijk dat houtige fruitbomen, zoals C. oleifera, een lange vegetatieve groeiperiode hebben vóór bloei, waardoor de mogelijkheid beperkt wordt om de teeltcyclus te verkorten en vroeg hoge productiviteitte bereiken 6.

Stikstof is superbelangrijk voor hoe planten groeien en zich ontwikkelen. Verschillende plantensoorten hebben verschillende hoeveelheden stikstof, en zelfs binnen dezelfde soort bestaan er aanzienlijke verschillen in stikstofgehalte bij verschillende groeiperioden. Naarmate planten overgaan naar de voortplantingsfase, hoopt stikstof zich geleidelijk op in organen zoals bloemen, vruchten en zaden7. Stikstof is essentieel voor enzymen, eiwitten, specifieke hormonen, nucleïnezuren en andere essentiële stoffen, en coördineert zo de metabole activiteiten8. Het proces van differentiatie van bloemknoppen vormt een belangrijk keerpunt, waarbij planten van hun vegetatieve fase naar de voortplantingsfase worden overgegaan, en omvat een ingewikkeld ontwikkelingsproces. De ophoping van voedingsstoffen vormt een fundamentele basis voor de differentiatie van plantenknoppen9. De huidige consensus is dat succesvolle differentiatie van bloemknoppen afhangt van koolhydraataccumulatie10. Gedurende de differentiatie van fruitboomknoppen beïnvloeden schommelingen in oplosbare suikerinhoud direct of indirect het proces10. Onderzoeken hebben een nauwe correlatie aangetoond tussen koolhydraatniveaus in Prunus salicina-bladeren en de differentiatie van bloemknopen, aangezien het oplosbare suikergehalte hoger is in de fysiologische bloeiknopdifferentiatiefase dan in de morfologische differentiatie van bloemknopen, want P. salicina onderging een snelle uitputting van koolhydraten tijdens de bloeiknopdifferentiatie11. Toch zijn er meldingen die aangeven dat er geen significante fluctuatie in oplosbaar zetmeelgehalte wordt waargenomen bij Ficus carica tijdens bloemknopdifferentiatie12. Groenblijvende planten verzamelen zetmeel in de eierstok tijdens de lenteperiode van bloeiknopdifferentiatie, terwijl bladvallende planten zetmeel opslaan tijdens de knopdormancyperiode13. Op basis van bovenstaande informatie kunnen we concluderen dat er verschillen zijn in de trajecten van veranderingen in koolhydraatgehalte tussen verschillende soorten tijdens de differentiatie van bloemknopen. Ying et al.14 analyseerden de patronen van expressie van belangrijke enzymgenen die betrokken zijn bij basale meteorologische processen, zoals stikstofmetabolisme, en het metabolisme van sucrose en zetmeel, in twee verschillende stadia van florale knopdifferentiatie bij Vernicia fordii. Deze analyse werd gecombineerd met de dynamische veranderingen in fysiologische en biochemische indicatoren van de bloemknoppen van de tungboom, wat een gedetailleerde verklaring bood van de ophoping, het gebruik, het transport en de verspreiding van nutriënten tijdens de differentiatie van de bloemknoppenvan de tungboom 8,14. Onderzoek van Lai Chengchun et al. toonde aan dat het verwijderen van twee bladeren de tot expressie gebrachte genen sucrosefosfaatsynthase (SPS), neutrale invertase (NI), celwandinvertase (CWI) en α-amylase (AMY) kan moduleren, waardoor de saccharosesynthese en de daaropvolgende ophoping van zetmeel wordt bevorderd, en zo het essentiële voedingskader biedt dat nodig is voor vruchtrijping, scheutgroei en bloei13,15.

Onderzoek naar veranderingen in nutriëntengehalte, stikstofmetabolisme en zetmeel- en sucrosemetabolisme in C. oleifera in verschillende stadia werd echter zelden gerapporteerd. De meeste studies hebben zich gericht op het construeren van single-nucleotide polymorfisme (SNP)-kaarten, het ontwikkelen van SSR-markers en het analyseren van de fysiologische en moleculaire responsen van C. oleifera onder lage of hoge temperatuurcondities 16,17,18,19,20. Daarom werd in deze studie het gangbare C. oleifera-cultivar "Dabieshan 1" geselecteerd, en werden bladmonsters van lentescheuten in verschillende groeiperiodes (juveniele fase, initiële vruchtfase en piekvruchtperiode) van C. oleifera verzameld voor nutriënten- en transcriptoomsequencinganalyse. Het doel was om verschillen te identificeren in nutriëntengehalte, stikstofmetabolisme en de stofwisseling van sucrose- en zetmeelgenexpressie over de verschillende fasen gedurende de groei- en ontwikkelingsprocessen die bij C. oleifera-bladeren worden waargenomen. Het verduidelijken van de stikstofmetabolisme, de sucrose- en zetmeelmetabolismeroutes en hun relaties met verwante voedingsstoffen kan de basis leggen voor het bestuderen van het mechanisme van de differentiatie van de bloemknoppen van C. oleifera en licht werpen op de moleculaire mechanismen achter de bloei van C. oleifera.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Protocol

1. Experimentele materialen

C. oleifera 'Dabieshan 1'-bladeren werden verzameld in drie belangrijke ontwikkelingsstadia: de juveniele fase, rond de leeftijd van 2 jaar; Het onderwerp gaat over naar een vroege vruchtfase op ongeveer 6-jarige leeftijd en bereikt uiteindelijk zijn piek als het ongeveer 10 jaar oud is. Alle C. oleifera-planten in bovenstaande drie ontwikkelingsstadia zijn geplant met in potten geteelde zaailingen van dezelfde specificatie als C. oleifera 'Dabieshan 1'. De fysische en chemische eigenschappen van de bodem in het bosgebied van C. oleifera werden weergegeven in Tabel 1.

2. Overzicht van de verzamelingslocatie

Experimentele materialen werden verzameld in Heping Town, gelegen in het hart van de provincie Anhui. Shucheng County ligt binnen het centrale deel van de provincie en behoort tot het perifere gebied van de Dabie-bergen. De coördinaten zijn 31°11 ′N, 116°47 ′E, met een gemiddelde hoogte van 90 m. De bodem wordt geclassificeerd als geelbruine grond. De regio heeft een vochtig subtropisch moessonklimaat, met een gemiddelde jaartemperatuur van 15,6 °C en doorgaans ongeveer 1.100 mm neerslag per jaar, geniet van ongeveer 1.969 uur zon per jaar en kent een vorstvrije periode van 224 dagen.

3. Monsterverzameling en voorbehandeling

Monsters werden geselecteerd tijdens de pre-bloeiperiode (eind september). Voor elke ontwikkelingsfase werden de planten van C. oleifera geselecteerd met vergelijkbare, consistente en sterke groei. Van elke plant werd het derde blad van boven naar beneden verwijderd, waarbij matig lentescheuten groeiden vanuit het oosten, westen, zuiden en noorden van het buitenste deel van de C. oleifera-kroon . De monsters werden gemarkeerd met serieletters en cijfers: YAT1, YAS2 en YAT3 voor bladeren van C. oleifera in het juveniele stadium, het subject vordert respectievelijk naar een vroege vruchtfase en de piekvruchtperiode. Deze werden verzameld en opgeslagen in vloeibare stikstof. Vijf willekeurige steekproefbomen werden uit elke fase geselecteerd als één biologische replicat, en in alle stadia werden drie biologische replicaten opgezet. De geselecteerde exemplaren werden dezelfde dag teruggebracht naar het laboratorium en bewaard bij -80 °C.

4. Bepaling van de fysiologische index

Het oplosbare suikergehalte werd bepaald met de anthrone colorimetrische methode21. Het organische koolstofgehalte werd bepaald door de kaliumdichromaatoxidatie - ferrozuursulfaattitratiemethode22. Het oplosbare eiwitgehalte werd verkregen met de Coomassie brilliant blue methode23. De totale stikstofconcentratie werd gekwantificeerd met de Kjeldahl-methode22.

5. Isolatie van volledig RNA werd uitgevoerd, gevolgd door de bouw van een complementaire DNA (cDNA) bibliotheek en daaropvolgende sequencing

Totaal RNA werd op verschillende stadia uit C. oleifera-bladeren geëxtraheerd met behulp van de plant-RNA-extractiekit. De totale RNA-concentratie werd bepaald met een full-spectrum ultraviolet-zichtbare spectrofotometer. De integriteit en helderheid van RNA werden bepaald door een biologische analyzer. Na het construeren en valideren van de cDNA-bibliotheek werd transcriptomische sequencing uitgevoerd met behulp van een sequence-by-sequencing high-throughput sequencingplatform. De sequencingprocedure leverde individuele reads op, elk met 100 baseparenvan 24, 25 en 26. De resultaten van de uitlijning van sequentieprocessen werden statistisch geanalyseerd met behulp van de RSEM-software27. Differentiële expressiegenen (DEGs) in verschillende ontwikkelingsstadia van C. oleifera werden geïdentificeerd met behulp van de DESeq differentiële analysesoftware28,29.

6. De novo assembly en UniGene-annotatie

SeqPrep http://github.com/jstjohn/SeqPrep) en Sickle (http://github.com/najoshi/sickle) werden gebruikt om de ruwe data te filteren, waaronder het verwijderen van laagwaardige sequenties en besmette adapters. Vervolgens werden de schone reads verkregen van elk monster samengesteld met Trinity software30,31. Alle verzamelde transcripties werden onderworpen aan BLASTX-uitlijning tegen de Swiss-Prot, clusters van orthologe groepen voor eukaryote volledige genomen, en KEGG-databases in opeenvolgende volgorde. Een typische Cut-off E-waarde (E-waarde <10−5) werd ingesteld om hun functie-annotaties op te halen. De KEGG werd toegepast om gerelateerde metabole routes te analyseren32.

7. Functionele annotatie van genen en differentieel expressieve genenanalyse

Gen- en isoformabundanties werden statistisch geanalyseerd met behulp van de RSEM-software27. Er werd een cut-off (P < 0,05, FDR < 0,01, |log2FC|>1) ingesteld om differentieel expressieve genen (DEGs) te identificeren. Het verwachte aantal fragmenten per kb transcript per miljoen in kaart gebrachte fragmenten (FPKM) is momenteel de meest gebruikte methode om genexpressieniveaus te schatten:28. De FPKM-waarden van alle genen uit de drie verschillende groei- en ontwikkelingsstadia (YAT1, YAS2 en YAT3) werden berekend. Hiërarchische clusteringanalyse werd uitgevoerd om de differentiële genexpressieniveaus te onderzoeken. Ondertussen werd de KEGG-route voorbereid om DEG's te identificeren die significant verrijkt zijn in metabole routes bij Bonferroni-gecorrigeerd P ≤ 0,05 vergeleken met het gehele transcriptoom met behulp van KOBAS29.

8. Analytische methoden

De gegevens werden gepresenteerd met Excel om gemiddelde waarden en standaarddeviaties te berekenen. Variantieanalyse (ANOVA) werd gebruikt voor statistische analyse door SPSS-software, en Duncans multiple range test werd gebruikt om significante verschillen in nutriëntengehalte tussen de drie fasen te beoordelen. Vervolgens werden significante verschillen tussen groepen bepaald met behulp van post-hoc meervoudige vergelijkingen met de Least Significant Difference (LSD)-methode. Grafieken en grafieken werden gegenereerd met Origin-software om experimentele en analytische bevindingen te visualiseren. Er werd geen statistische significantie aangeduid met 'ns' (P > 0,05). Statistisch significante verschillen werden respectievelijk aangeduid met '*' (P < 0,05), '**' (P < 0,01), '***' (P < 0,001) en '****' (P < 0,0001).

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Resultaten

Vergelijking van het stikstofhoudende stofgehalte in bladeren van C. oleifera in verschillende groeiperiodes

Stikstof was van groot belang bij het bevorderen van de groei en ontwikkeling van planten en had een diepgaande invloed op hun voortplantingsprocessen. Daarom is het begrijpen van het totale stikstofgehalte in planten van groot belang voor onderzoeksinspanningen. Het totale stikstofgehalte in ...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Discussie

Oplosbare suikers dienen als essentiële energiebronnen en structurele componenten in planten, en voeden diverse fysiologische activiteiten en biosynthetische processen10. Veranderingen in oplosbare suikerinhoud beïnvloeden direct of indirect het proces van het omzetten van vegetatieve knoppen in bloemknoppen in fruitbomen10. Uit onderzoek blijkt dat de noodzaak van overvloedige oplosbare suikers was voor de differentiatie van fruitboombloem...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Dankbetuigingen

Dit werk werd ondersteund door de Anhui Provincial Natural Science Foundation for Young Scholars (2008085QC135), het Postdoctoral Research Workstation Research Project van Wanxi College (WXBSH2020003), het Postdoctoraal Wetenschappelijk Onderzoeksprogramma van de provincie Anhui (2024A767), het Anhui Sci-Tech Faculteit Ondernemingssecundmentprogramma (2024jsqygz79), en het Anhui Province Forestry Research and Innovation Project, Document nr. 4 [2024].

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Materialen

Lijst van materialen gebruikt in dit artikel
NaamBedrijfCatalogusnummerOpmerkingen
Bioanalyzer 2100Agilent Technologies, Inc. (USA)—Wordt gebruikt om RNA-integriteit en duidelijkheid te evalueren
DESeq softwareBroncode3.2Wordt gebruikt voor differentiële expressieanalyse
EASYspin Plus kit (Totale RNA-isolatie)Aidlab Biotechnology Co., Ltd. (China)RN 28 (Aidlab)Wordt gebruikt voor totale RNA-extractie uit C. oleifera-bladeren
HiSeq 2000-sequencingplatformIllumina (China)—Wordt gebruikt voor transcriptome-sequencing, leeslengte 100 bp
Kjeldahl-methode/Kjeltec 2300Foss Tecator(Zweden)—Voor totale stikstofconcentratie(Bao 2007)
Methode voor oplosbare eiwitbepalingGeconcentreerd zwavelzuur6104-58-1(aladdin)Methode ontwikkeld door Chen Jianxun (Chen et al. 2015)
Methode voor oplosbare suikerbepalingAntron90-44-8 (Macklin)Zhang Zhilang’s methode (Zhang et al. 2003)
Kaliumdichromaatoxidatie - ijzersulfaattitratiemethodeKaliumdichromaat Ferrous SulfaatNA (aladdin) 7782-63-0(aladdin)Voor organische koolstofbepaling (Bao 2007)
RSEM-softwareBroncode1.2.3Wordt gebruikt voor statistische analyse van sequentie-uitlijning
Thermo Scientific NanoDrop 2000C-spectrofotometer ABI(USA)—Wordt gebruikt om RNA-concentratie te bepalen

Referenties

  1. Cao, Z. H., Shu, Q. L., Dong, C. Y., Zhang, X. Variation in physiological and chemical characteristics at developmental stage in different disease-resistant varieties of Camellia oleifera. Pak J Bot. 46 (1), 207-212 (2014).
  2. Hu, J. J., et al. Comparison of dynamic changes in endogenous hormone level, water content, and water-soluble sugars in Camellia oleifera of different ages. Pak J Bot. 49 (1), 25-32 (2017).
  3. Hu, J. J., et al. Morphological, physiological and biochemical responses of Camellia oleifera to low-temperature stress. Pak J Bot. 48 (3), 899-905 (2016).
  4. Zhuang, R. L. Chinese Camellia oleifera. , China Forestry Press. Beijing. (2008).
  5. Li, Z. R., et al. Mechanics vibration model of fruit tree analysis and generalized coordinate system establishment for Camellia oleifera branches. For Mach Woodw Equip. 53 (2), 70-74 (2025).
  6. Wu, W., et al. Study on the chemical components of shoots and leaves of Camellia oleifera from different elevations. Pak J Bot. 47 (3), 1111-1114 (2015).
  7. Tan, B. Z., Close, D. C., Quin, P. R., Swarts, N. D. Nitrogen use efficiency, allocation, and remobilization in apple trees: uptake is optimized with pre-harvest N supply. Front Plant Sci. 12, 657070(2021).
  8. Luo, J., et al. Net fluxes of ammonium and nitrate in association with H⁺ fluxes in fine roots of Populus popularis. Planta. 237, 919-931 (2013).
  9. Zhang, Y. H., Liu, B. H., Kong, F. J., Chen, L. Y. Nutrient-mediated modulation of flowering time. Front Plant Sci. 14, 1101611(2023).
  10. Zhang, W. N., Li, J. J., Zhang, W. L., Njie, A., Pan, X. J. The changes in C/N, carbohydrate, and amino acid content in leaves during female flower bud differentiation of Juglans sigillata. Acta Physiol Plant. 44, 1-12 (2022).
  11. Lee, H. B., Jeong, S. J., Lim, N. H., An, S. K., Kim, K. S. Correlation between carbohydrate contents in the leaves and inflorescence initiation in Phalaenopsis. Sci Hortic. 265, 265109270(2020).
  12. Wan, X., et al. Auxin and carbohydrate control flower bud development in Anthurium andraeanum during early stage of sexual reproduction. BMC Plant Biol. 24 (1), 159(2024).
  13. Mesejo, C., Martínez-Fuentes, A., Reig, C., Agustí, M. The flower to fruit transition in Citrus is partially sustained by autonomous carbohydrate synthesis in the ovary. Plant Sci. 285, 224-229 (2019).
  14. Sun, Y., Liu, R., Luo, M., Li, J. A. Molecular response of Tunglfy gene to exogenous hormones in flower buds differentiation period. J Cent South Univ For Technol. 34 (4), 25-29 (2014).
  15. Lai, C. C., et al. Effect of shoot pinching on growth, sucrose and starch metabolism in 'Kyoho' grape. J Trop Subtrop Bot. 30 (5), 623-635 (2022).
  16. Cao, R. L., et al. Identification of NAC gene in Camellia oleifera and analysis of its response to drought stress. Acta Agric Univ Jiangxi. 43 (6), 1357-1370 (2021).
  17. Lin, P., Wang, K. L., Yao, X. H., Ren, H. D. Development of DNA molecular ID in Camellia oleifera germplasm based on transcriptome-wide SNPs. Sci Agric Sin. 56 (2), 217-235 (2023).
  18. Song, J. M., Li, X. Y., Zhang, S. H., Lai, H. Development and evaluation of SSR markers based on transcriptome sequencing of Camellia in Hainan Province. Mol Plant Breed. 20 (20), 6791-6801 (2022).
  19. Tang, R. Y., Sun, M. H., Wu, L. L., Li, J. A., Wang, N., Xiong, L. Alleviating effect of different exogenous substances on floral organs of Camellia oleifera under low temperature stress. Plant Physiol. 59 (1), 219-230 (2023).
  20. Guo, H. Y., Tan, X. J., Tian, F., Zhong, Q. P. The relationship between floral initiation and spring-shoot growth in Camellia oleifera. For Res. 35 (3), 123-130 (2022).
  21. Zhang, Z. L., Qu, W. J. Plant Physiology Laboratory Manual. , Higher Education Press. Beijing. (2003).
  22. Bao, S. D. Soil Chemical Analysis. , China Agricultural Press. Beijing. (2007).
  23. Chen, J. X., Wang, X. F. Plant Physiology Laboratory Manual. , South China University of Technology Press. Guangzhou. (2015).
  24. Himanshu, S., et al. Identification and cross-species transferability of 112 novel unigene-derived microsatellite markers in tea (Camellia sinensis). Am J Bot. 133, e133-e138 (2011).
  25. Knight, M. R., Knight, H. Low-temperature perception leading to gene expression and cold tolerance in higher plants. New Phytol. 195 (4), 737-751 (2012).
  26. Weiser, C. Cold resistance and injury in woody plants: knowledge of hardy plant adaptations to freezing stress may help us to reduce winter damage. Science. 169 (3952), 1269-1278 (1970).
  27. Iseli, C., Jongeneel, C. V., Bucher, P. ESTScan: A program for detecting, evaluating, and reconstructing potential coding regions in EST sequences. Intell Syst Mol Biol. 99, 138-148 (1999).
  28. Sung, S., Amasino, R. M. Vernalization in Arabidopsis thaliana is mediated by the PHD finger protein VIN3. Nature. 427 (6970), 159-164 (2004).
  29. Xie, C., et al. KOBAS 2.0: A web server for annotation and identification of enriched pathways and diseases. Nucleic Acids Res. 39 (suppl_2), W316-W322 (2011).
  30. Zhang, Y., Liu, Q. L. Research progress on the molecular mechanisms of plant flower development. Chin Bull Bot. 20 (5), 589-601 (2003).
  31. Schmitz, R. J., Hong, L., Michaeles, S., Amasino, R. M. FRIGIDA-ESSENTIAL 1 interacts genetically with FRIGIDA and FRIGIDA-LIKE 1 to promote the winter-annual habit of Arabidopsis thaliana. Development. 132, 5471-5478 (2005).
  32. Kanehisa, M., Goto, S. KEGG: Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes. Nucleic Acids Res. 27 (1), 29-34 (1999).
  33. Fan, W. G., et al. Study on the changes of endogenous hormones, carbohydrate and nitrogen nutrition at the flower bud differentiation stage of Rosa roxburghii. J Fruit Sci. 20 (1), 40-43 (2003).
  34. Chen, J. Z. Southern Version of Pomology Cultivation Theories. , 4th Edition, China Agriculture Press. Beijing. (2003).
  35. Liu, Z. L., Lin, S. Q., Chen, H. B. Dynamics of protein during flower-bud formation in Eriobotrya japonica. Subtrop Plant Sci. 37 (2), 6(2008).
  36. Poorter, L., Bongers, F. Leaf traits are good predictors of plant performance across 53 rain forest species. Ecology. 87 (7), 1733-1743 (2006).
  37. Lv, Q., Chen, Y. Y., Yu, Z. D., Ma, J. L. Functional traits and stoichiometric analysis of Camellia osmantha at the early fruiting stage. Mol Plant Breed. , 1-12 (2023).
  38. Li, J. X., Huang, H. L., Zhao, Y. C., Qiao, X. Y. Status of Camellia oleifera germplasm resources and breeding directions in Guangdong. Guangdong Agric Sci. 38 (20), 34-35 (2011).
  39. Li, W. Q., Fan, X. L., Lin, C. H. Effects of nitrogen on flowering of fruit trees. Chin J Soil Sci. (06), 1203-1207 (2007).
  40. Thiele, J., Jørgensen, R. B., Hauser, T. P. Flowering does not decrease vegetative competitiveness of Lolium perenne. Basic Appl Ecol. 10 (4), 340-348 (2009).
  41. Peña, L., et al. Constitutive expression of ArabidopsisLEAFY or APETALA1 genes in citrus reduces their generation time. Nat Biotechnol. 19 (3), 263-267 (2001).
  42. Pillitteri, L. J., Lovatt, C. J., Walling, L. L. Isolation and characterization of LEAFY and APETALA1 homologues from Citrus sinensis L. Osbeck 'Washington'. J Am Soc Hortic Sci. 129 (6), 846-856 (2004).

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Herprints en machtigingen

Trefwoorden

Stikstofmetabolismezetmeelmetabolismesucrosemetabolismegenexpressietranscriptoomsequencingoplosbare eiwittenoplosbare suikers
Neem contact met ons op
Aanbevelen aan bibliotheek

Privacy

Gebruiksvoorwaarden

Beleid

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. Alle rechten voorbehouden.