$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
De experimenten werden uitgevoerd volgens de Gids voor de Zorg en het Gebruik van Laboratoriumdieren van de National Institutes of Health (NIH Publicatie Nr. 8023, herzien 1978). Het protocol werd goedgekeurd door de Ethische Commissie van de Yantai Universiteit (Goedkeuring nr. YTDX20240526). Gevaarlijke stoffen werden afgevoerd volgens institutionele protocollen voor chemisch afval. Figuur 1 illustreert een schematisch diagram van het experimentele ontwerp. De reagentia en de gebruikte apparatuur worden vermeld in de Materiaaltabel.
1. Dierlijke details
Mannelijke CD-1 muizen van 22-25 g werden gehuisvest in een kamer met een licht/donkercyclus van 12/12 uur. De dieren waren vrij om eten en water te krijgen.
2. Voorbereiding van het ICH-muismodel
Het muismodel van ICH werd vastgesteld volgens een eerder rapport11. Kort werden muizen verdoofd met xylazine (10 mg/kg) en ketamine (90 mg/kg), waarna ze in een stereotaxisch kader werden geplaatst. Er werd een klein maalgat geboord bij de rechter coronale hechting (2,2 mm lateraal van de middenlijn, 0,2 mm achter de bregma). Een microspuit werd in de rechterhersenhelft ingebracht op een diepte van 3,5 mm vanaf het schedeloppervlak. Met behulp van een micro-infusiepomp werd bacteriële collagenase (0,075 U in 0,5 μL fosfaatgebufferde zoutoplossing [PBS]) infuseerd met een snelheid van 0,15 μL/min. De naald werd na 5 minuten voorzichtig teruggetrokken. Muizen in de schijngroep ontvingen een gelijkwaardig volume PBS in plaats van collagenase. Het maalgat werd afgesloten met botwas en de hoofdhuidincisie werd gehecht. De lichaamstemperatuur van dieren bleef op 37°C tot het ontwaken gehandhaafd.
3. Experimenteel ontwerp
Mannelijke CD-1 muizen werden willekeurig toegewezen aan drie groepen: sham, model en lansoprazol. Het ICH-model werd vastgesteld zoals hierboven beschreven. Dertig minuten na de inductie van ICH kregen muizen in de lansoprazolgroep lansoprazol in een dosis van 30 mg/kg (de dosis lansoprazol was geselecteerd volgens een eerder rapport12), toegediend eenmaal daags gedurende drie opeenvolgende dagen. Muizen in de schijn- en modelgroepen kregen intraperitoneale injecties van PBS. Drie dagen na ICH werd de kortdurende neurologische functie beoordeeld met behulp van de Garcia-test, voorpootplaatstest en rotarod-test. Op dag 29 na de inductie van ICH werden de nieuwe objectherkennings- en waterdoolhoftests uitgevoerd om de langetermijnfunctie van de neurologische functie te evalueren.
4. Garcia-test
Twee onderzoekers, blind voor de groep, voerden de Garcia-test uit volgens een eerder gerapporteerd protocol13. De neurologische functie werd beoordeeld met een scoresysteem van 0 tot 21. De evaluatie bestaat uit zeven subtests, elk gescoord van 0 tot 3 (0 = slechtste, 3 = beste).
5. Plaatsingstest voor de voorpoot
Na de Garcia-test werd de test voor het plaatsen van de voorpooten uitgevoerd volgens een eerder beschreven methode14. De muizen werden in verticale positie gehouden, parallel aan het tafelblad, waardoor hun vibrissae over het oppervlak kon glijden. De plaatsing van de voorpoten werd waargenomen tijdens 10 opeenvolgende proeven. Het percentage van de plaatsing van de linker voorpoot werd berekend als: Plaatsing van de linker voorledemaat / (Plaatsing van linker voorledemaat + plaatsing van rechter voorledemaat) × 100%.
6. Rotarod-test
Na de plaatsingstest van de voorpoot werden de muizen 3 minuten op een roterende stok op 5 toeren per minuut geplaatst voor training. De stang werd versneld van 5 toeren naar 30 toeren in 4 minuten. De duur die elke muis op de staaf bleef werd gemeten over een periode van 5 minuten, en de ontsnappingslatentie werd15 minuten geregistreerd.
7. Darmpermeabiliteit en hersenoedeem-assay
Na de rotarod-test werden uit elke groep zes muizen willekeurig geselecteerd. Volgens de vorige methode16 werd FITC-dextran intragastrisch toegediend in een dosis van 300 mg/kg. Drie uur later werden de muizen verdoofd met isoflurane en werd bloed verzameld uit de retro-orbitale veneuze plexus, gecentrifugeerd bij 4 °C en 11.000 × g gedurende 5 minuten. Het FITC-dextran-gehalte werd getest met een fluorescentieplaatmeter bij 485 nm excitatie en 528 nm emissiegolflengten. De dieren werden vervolgens onthoofd en de rechterhersenhelft werd verzameld en gewogen om het natte gewicht te bepalen. Het weefsel werd 24 uur gedroogd bij 100 °C om het droge gewicht te bepalen. Het watergehalte in de hersenen (%) werd berekend als: [(Nat gewicht − Droog gewicht) / Nat gewicht] × 100%.
8. Bloed-hersenbarrière (BBB) permeabiliteitsevaluatie
Na de rotarod-test werden uit elke groep zes muizen willekeurig geselecteerd om de BBB-permeabiliteit te evalueren. Een 2% Evans blue-oplossing werd intraperitoneaal toegediend met 4 mL/kg. Drie uur later werden de muizen verdoofd met isoflurane en werd transcardiale perfusie uitgevoerd met PBS. De rechterhersenhelft werd gehomogeniseerd in 50% trichloorazijnzuur in een verhouding van 3:1 (hersenweefsel: trichloorazijnzuur). Het homogenaat werd 20 minuten gecentrifugeerd op 15.000 × g en 4 °C. Vervolgens werd 500 μL van het supernatant gemengd met 500 μL van 70% ethanol en 's nachts geïncubeerd bij 4 °C in het donker. De concentratie van Evans blue werd gemeten bij 610 nm en gekwantificeerd met behulp van een standaardcurve. De gegevens worden gepresenteerd als μg Evans blue per mg hersenweefsel.
9. Histopathologisch onderzoek van de darm en hersenen
Na de rotarod-test werden uit elke groep drie muizen willekeurig geselecteerd. De muizen werden verdoofd met isoflurane. Het jejunum, ileum en de hersenen werden verzameld en vastgesteld in 10% formaldehyde. Weefsels werden gesneden op 5 μm dikte en er werd hematoxyline-eosine (HE) kleuring uitgevoerd. Histopathologisch onderzoek van de darm en hersenen werd uitgevoerd met een microscoop door twee onderzoekers die blind waren voor de groepsopdrachten. Het aantal microglia rondom het hematoom werd in representatieve secties geteld. Celtellingen werden uitgevoerd in vijf willekeurige gezichtsvelden verspreid over drie secties per dier.
10. Meting van LPS en IL-1β
Na de rotarod-test werden uit elke groep zes muizen willekeurig geselecteerd. De muizen werden verdoofd met isofluraan en er werd bloed verzameld. Bloedmonsters werden 10 minuten gecentrifugeerd op 5.000 × g en 4 °C, en er werd serum verzameld. De rechterhersenhelft werd geoogst en hersenhomogenaten werden bereid in een verhouding van 1:3 (hersengewicht in gram tot PBS-volume in milliliter). De homogenaten werden gecentrifugeerd op 12.000 × g en 4 °C gedurende 10 minuten. De eiwitconcentraties in het supernatant werden bepaald met behulp van een BCA-kit. De niveaus van LPS en IL-1β in zowel serum als hersenhomogenaat werden gemeten met ELISA-kits, volgens de instructies van de fabrikant.
11. Transmissie-elektronenmicroscopie
Voor elektronenmicroscopisch onderzoek werden na de rotarodtest drie dieren uit elke groep willekeurig geselecteerd. De muizen werden verdoofd met isofluraan en ondergingen transcardiale perfusie met 2% glutaraldehyde en 2,5% paraformaldehyde in 0,1 M PBS (volgens institutioneel goedgekeurde protocollen). De hersenen, het jejunum en het ileum werden vervolgens geoogst en 's nachts in 2% glutaraldehyde geplaatst in een 0,1 M cacodylaatbuffer (pH 7,4) bij 4 °C. De monsters werden vervolgens overgebracht op 1% osmiumtetroxide gedurende 1 uur bij kamertemperatuur. Weefsels werden in ultradunne secties gesneden (50 nm). Na dehydratie werden de secties gekleurd met uranylacetaat en loodcitraat voor observatie onder een transmissie-elektronenmicroscoop. Alle secties werden op een blinde manier geëvalueerd en gefotografeerd met een transmissie-elektronenmicroscoop.
12. Nieuwe objectherkenning
29 dagen na ICH-modellering werd de nieuwe objectherkenningstest uitgevoerd om de leer- en geheugenfunctie van muizen te beoordelen. Op de eerste dag werden er geen objecten in het apparaat geplaatst (lengte: 40 cm, breedte: 40 cm, hoogte: 40 cm), waardoor de muizen 5 minuten vrij konden verkennen. Op de tweede dag werden twee identieke voorwerpen in het apparaat geplaatst, en mochten de muizen ze 5 minuten verkennen. Vierentwintig uur later werd een van de objecten vervangen door een nieuw object. De muizen verkenden de twee objecten opnieuw vijf minuten. De verkenningstijd werd geregistreerd wanneer de neus van de muis een object raakte of wanneer zijn kop op een afstand van 1 cm naar het object gericht was. De tijd die werd besteed aan het verkennen van het nieuwe object werd gemeten en berekend. Een langere verkenningstijd van het nieuwe object duidt op een beter leer- en geheugenvermogen.
13. Morris waterdoolhof
32 dagen na ICH-modellering werden leer- en geheugenfuncties beoordeeld met behulp van het Morris waterdoolhof. Het apparaat bestond uit een cirkelvormig bassin (diameter: 100 cm, hoogte: 40 cm) gevuld met water (diepte: 25 cm) en gehandhaafd op 22 °C ± 1 °C. Een ontsnappingsplatform (diameter: 9 cm) werd 1 cm onder het wateroppervlak ondergedompeld. In de navigatietest ondergingen muizen vier proeven per dag. De tijd die nodig was om het platform te vinden werd geregistreerd als de ontsnappingslatentie. Muizen die het platform binnen 60 seconden niet konden vinden, werden er voorzichtig naartoe geleid. Op de vijfde dag werd een 60-s probe-test uitgevoerd. De geheugenfunctie werd geëvalueerd door de ontsnappingslatentie, het aantal overgangen van het platform en de tijd die in het doelkwadrant werd doorgebracht, vast te leggen. De gegevens werden geanalyseerd met behulp van Video Tracking Software.
14. Statistische analyse
De gegevens werden geanalyseerd met GraphPad Prism software versie 7.0. De resultaten worden gepresenteerd als gemiddelde ± standaarddeviatie. De Shapiro-Wilk-test werd gebruikt om te beoordelen of gegevens van elke groep een normale verdeling volgden. Verschillen tussen groepen werden geanalyseerd met eenrichtings-ANOVA, gevolgd door Tukey's post hoc-test. Voor niet-parametrische vergelijkingen werd de Kruskal-Wallis-test gevolgd door Dunn's test gebruikt. Een p-waarde van <0,05 werd als statistisch significant beschouwd.