$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Het dieronderzoeksprotocol werd goedgekeurd door het Institutioneel Comité voor Dierenzorg en Gebruik van de Chongqing Medische Universiteit (IACUC-CQMU-2025-10073).
Bereiding van sesquiterpeenlacton-verrijkte fractie (SLEL)
Gedroogde medicinale materialen van Eupatorium lindleyanum DC. werden verpulverd en twee keer onderworpen aan refluxextractie met 70% (v/v) ethanol onder verminderde druk. Elke extractie werd uitgevoerd met een oplosmiddel-materiaalverhouding van 10:1 (v/w) gedurende 2 uur. De gecombineerde extracten werden gefilterd, geconcentreerd onder verminderde druk bij ≤60 °C, en vervolgens vacuüm gevriesdroogd om het ruwe ethanolextractpoeder te verkrijgen.
Het gedroogde extract werd volledig opgelost in gedestilleerd water (eindconcentratie: 100 mg/mL) en sequentieel onderworpen aan polyamidharschromatografie, gevolgd door D101 macroporeuze adsorptieharschromatografie om sesquiterpenelactonen te verrijken. Nadat het adsorptieevenwicht was bereikt, werd de D101-hars gewassen met gedestilleerd water om polaire onzuiverheden te verwijderen en vervolgens geëlueerd met watervrij ethanol. Na ethanolelusie werd de verzamelde fractie onder verminderde druk geconcentreerd en onderworpen aan vriesdrogen om de SLEL-fractie te produceren, die tot gebruik bij −20 °C werd opgeslagen.
De scheiding werd bereikt op een UPLC-platform met een binair mobiel fasesysteem van acetonitril en 0,1% (v/v) mierenzuur in water. Het gradiëntprogramma bestond uit een initiële isocratische pauze van 25 minuten bij een laag organisch gehalte, een korte lineaire opbouw naar 70% acetonitril, een fase met een hoge organische stap bij 90% acetonitril, en een laatste evenwichtsstap die terugkeerde naar de startomstandigheden. Het systeem werd bediend op 0,25 mL·min⁻1 met een kolomtemperatuur van 35 °C en een injectievolume van 0,1 μL (Aanvullende Figuur S1).
Dieren
In totaal werden 36 mannelijke Sprague–Dawley-ratten (200 ± 20 g) en 36 mannelijke BALB/c-muizen (20 ± 2 g) gebruikt in deze studie. De dieren werden gehuisvest onder gestandaardiseerde omstandigheden (22 ± 2 °C, 55 ± 5% luchtvochtigheid, 12 uur licht/donker cyclus) met vrije toegang tot voedsel en water. De dieren werden 7 dagen geacklimatiseerd voorafgaand aan de experimenten en dagelijks gecontroleerd op algemene gezondheid. Alle procedures werden uitgevoerd om het lijden van dieren te minimaliseren, en er werd verdoving toegediend voorafgaand aan bloedafname en weefseloogst.
Xyleen-geïnduceerd ooroedeem bij muizen
Het model van muizenooroedeem werd vastgesteld zoals eerder beschreven9. Na acclimatisatie werden muizen willekeurig ingedeeld in zes groepen (n = 6 per groep): controlegroep (CG), model (MG), dexamethason (DEX, 10 mg/kg) en SLEL lage dosis (75 mg/kg), middelmatige dosis (150 mg/kg) en hoge dosis (300 mg/kg) groepen. Alle behandelingen werden eenmaal per dag toegediend via orale gavage gedurende 7 opeenvolgende dagen (einddosering: 10 mL/kg). 1,5 uur na de laatste toediening werd ontsteking opgewekt door 30 μL xyleen gelijkmatig aan te brengen op beide oppervlakken van het rechteroor, behalve in de controlegroep. Dertig minuten later werden muizen verdoofd, werden bloedmonsters genomen en werden 8 mm ronde oorstoten genomen uit identieke anatomische posities van beide oren.
Carrageen-geïnduceerde pooedeem bij ratten
Het rattenpootedeem werd ontwikkeld met behulp van carrageen zoals eerder beschreven10. Ratten werden willekeurig ingedeeld in zes groepen (n = 6 per groep): CG, MG, DEX (5 mg/kg) en SLEL lage dosis (50 mg/kg), middelmatige dosis (100 mg/kg) en hoge dosis (200 mg/kg) groepen. De behandelingen werden eenmaal dagelijks toegediend gedurende 7 dagen (10 mL/kg). De basisvolumes van de poot werden gemeten vóór de laatste dosering. Dertig minuten na de laatste toediening werd 0,1 mL van 1% (w/v) carrageenaanoplossing subcutaan in het plantaire oppervlak van de rechterachterpoot geïnjecteerd. De pootvolumes werden gemeten 1, 2, 3 en 4 uur na injectie met behulp van een plethysmometer. Pooedeem werd berekend als:
Pooedeem (%) = (Vt − V0) / V0 × 100%
Histologisch onderzoek
Oor- en pootweefsels werden direct na functionele beoordelingen verzameld. Weefsels werden gefixeerd in 10% neutraal gebuffreerde formaline gedurende 72 uur bij kamertemperatuur, ingebed in paraffine, gesneden (5 μm) en gekleurd met H&E volgens standaardprotocollen11.
Enzym-gekoppelde immunosorbent-assay (ELISA)
Serummonsters werden verkregen door centrifugatie bij 3.000 × g gedurende 10 minuten bij 4 °C. Niveaus van TNF-α, IL-6 en IL-1β werden gekwantificeerd met commercieel verkrijgbare ELISA-kits volgens standaardprotocollen.
Western blot-analyse
Totale eiwitextracten werden bereid uit oor- en pootweefsel met behulp van een RIPA-lysebuffer, aangevuld met protease- en fosfataseremmers. Eiwitconcentraties werden gekwantificeerd met een BCA-assay, en gelijke hoeveelheden eiwit (30 μg per monster) werden opgelost met SDS-PAGE en overgedragen op PVDF-membranen. De membranen werden 1 uur bij kamertemperatuur geblokkeerd met 5% magere melk, gevolgd door incubatie met primaire antilichamen bij 4 °C 's nachts en HRP-geconjugeerde secundaire antistoffen gedurende 1 uur bij kamertemperatuur. Immunoreactieve banden werden gedetecteerd met verbeterde chemiluminescentie en gekwantificeerd met ImageJ-software.
Kwantitatieve real-time PCR (qRT-PCR)
Totaal RNA werd geïsoleerd uit oor- en pootweefsels met behulp van het RNA-extractie-reagens dat in de Materiaaltabel is vermeld. Eén microgram totaal RNA werd reverse-getranscribeerd in cDNA met behulp van een commerciële reverse transcriptiekit volgens de instructies van de fabrikant. Kwantitatieve PCR werd uitgevoerd met behulp van SYBR Green-chemie met genspecifieke primers (Tabel 1) in een reactievolume van 10 μL onder een tweestaps-amplificatieprotocol. Gedetailleerde reverse-transcriptiecondities en PCR-cyclusparameters zijn te vinden in de Protocolsectie. Relatieve transcriptniveaus werden berekend met de 2⁻ΔΔCT-methode , waarbij Gapdh als interne referentiegen werd gebruikt.
Data- en statistische analyse
De gegevens worden uitgedrukt als gemiddelde ± SD. Statistische vergelijkingen tussen twee groepen werden uitgevoerd met een ongepaarde Student's t-test, terwijl eenrichtings-ANOVA werd toegepast op analyses met meer dan twee groepen. Statistische significantie werd gedefinieerd als p < 0,05. Significantie wordt aangegeven als # p < 0,05 en ## p < 0,01 tegenover de controlegroep (CG), en * p < 0,05 en ** p < 0,01 tegenover de modelgroep (MG).