Name: Procedure voor Lung Techniek (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-03-08T12:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 50 s
Description: Leer functioneel longweefsel genereren met decellularisatie en een biomimetische bioreactor. Deze methode ondersteult gaswisseling in vivo en behoudt gedifferentieerde fenotypen voor regeneratieve geneeskunde.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

Wij danken Maegan B. Colehour voor hulp bij bioreactor ontwikkeling. Deze studies werden gefinancierd door Yale University Department of Anesthesie en door het NIH subsidie ​​HL 098220 (tot LEN). THP werd ondersteund door NIH T32 GM007171.

1. Bioreactor Montage Gedetailleerde cijfer (s) van de bioreactor ontwerp en de assemblage voor zowel decellularisatie en cultuur worden gegeven in de figuren 1 en 2, respectievelijk. Alle componenten dient vooraf te worden gesteriliseerd assemblage van de bioreactor. De volgende specifieke punten worden genoteerd: AANSLUITINGEN: <ol><li> De arteriële canule bestaat uit een luer-lock montage is aangesloten op een Y-splitter door een korte segment van de buis. De luer-lock connector is bevestigd aan de perfusieslang, en het segment van de Y, die niet wordt gehecht aan de longslagader aangesloten is op een een-weg klep. De een-weg klep is zodanig georiënteerd dat vloeistof kan worden opgesteld in de slang (in de tegenovergestelde richting als perfusie), maar tijdens orgaanperfusie alle medium stroomt in de longen. </li><li> De tracheale canule bestaat eveneens uit een luer-lock connector gekoppeld aan een Y-splitter met buizen. De luer-lock verbinding maakt met een ademhaling lus tussen de luchtpijp reservoir en de belangrijkste kamer. Het segment van de Y-connector die niet wordt gehecht aan de luchtpijp is ook verbonden met een een-weg klep. De one-way klep is gericht op dezelfde manier als de arteriële canule. </li></ol> FUNCTIES: <ol start="3"><li> De one-way kleppen in de arteriële en tracheale canules worden gebruikt om luchtbellen duidelijk in de slang doordat omkering van stroming in de slang en dus toelaat luchtbellen worden verwijderd. </li><li> De "ademende loop" omvat twee een-weg kleppen, geplaatst zodanig dat medium volgt een ander pad in en uit de longen. Een meer gedetailleerde beschrijving van deze functie is voorzien in een voorafgaande bekendmaking van ons laboratorium 2. </li><li> Vasculaire perfusie wordt verstrekt met behulp van een roller pomp. Medium is doorbloed in de longslagader via de bijgevoegde canule, stroomt door de longen vaatstelsel en de longen ader direct in de grote bioreactor, waar medium is opgesteld voor perfusie. </li></ol> 2. Organ Harvest <ol><li> Euthanaseren volwassenen (3-6 maanden oud) Fischer 344 ratten door natriumpentobarbital overdosis, volgens de richtlijnen opgesteld door de American Veterinary Medical Association (60 mg / kg IP) in te stellen. Let op: de pentobarbital oplossing bevat heparine bij 100 eenheden / ml voor antistolling. </li><li> Spray of veeg de borst en buik met 70% ethanol. </li><li> Open de borstholte, waardoor de hart en longen, en zorg ervoor dat geen schade aan de longen. Maak voorzichtig een klein venster door het diafragma in de borstholte, waardoor de longen terug te trekken, en daarna horizontaal uit te breiden deze incisie aan de bases van de longen bloot te leggen. Maak twee incisies verticaal door de ribben, en duw de borst kooi om het hart en de longen bloot te leggen. </li><li> Bereid een zwaartekracht perfusie-systeem, dat wil zeggen met behulp van een spuit met zuiger verwijderd, een 3-weg kraan, en ~ 20cm van de buis met een 1.5inch, 21-gauge naald. Handhaving van de spuit op ~ 20 cm boven het dier met behulp van een ring staan. Zorg ervoor dat alle lucht is verwijderd van de perfusie slang. </li><li> Snijd de rechterboezem om bloed afvoer, waardoor deze terug te keren naar de longen. Het snijden van de linker atrium om gemakkelijke drainage van bloed en perfusievloeistof toestaan ​​van de longen kan ook nuttig zijn, maar is niet noodzakelijk. </li><li> Steek de naald in de basis van de rechter ventrikel en open de kraan naar de longen perfuseren met een oplossing van heparine en natrium nitroprusside (50U/ml en 1ug/ml, respectievelijk) in PBS. Controleer of de longslagader vult met perfusie vloeistof, en dat bloed is opruimen van de longen. Indien nodig, bijvullen van de perfusie spuit met extra vocht. Meestal slechts ~ 10 ml nodig is. </li><li> Ga door perfusie totdat de longen vrij zijn van bloed, dan stoppen perfusie. </li><li> Ontleden de luchtpijp vrij, tot in de nek zo ver mogelijk. Zorg ervoor dat de luchtpijp is gescheiden van de slokdarm. Ontleden alle resterende verbindingen naar het hart, longen en luchtpijp, en verwijderen en bloc. </li><li> Met behulp van een scalpel of een scherpe schaar, sneed de apex van het hart, het blootstellen van de rechter en linker ventrikel. </li><li> Canule de pulmonale stam via de rechter ventrikel, en hechtdraad op zijn plaats. Verwijder eventuele overtollige linker ventrikel weefsel. </li><li> Canule de luchtpijp en de hechting op zijn plaats. Zorg ervoor dat zowel de tracheale en pulmonale arteriële canules zijn geplaatst dat er geen torsie op de luchtpijp, longen of grote vaten (figuur 1). </li><li> Zorg ervoor dat er geen luchtbellen in de arteriële canule, omdat luchtbelletjes gevangen in het systeem kan een constante stroom van te voorkomen door het orgel. In sommige gevallen, een luchtbel kan volledig stoppen vocht flow.To dit te bereiken, zet u de hart / long blok in een pot met PBS. Gebruik een spuit met naald om een ​​kleine hoeveelheid PBS te injecteren in het hart canule om het even welke bellen te verdrijven. </li><li> Spoelen van de luchtwegen met PBS 4-5 keer, om zo veel lucht te verwijderen als mogelijk uit de longen. </li><li> Na lavage staps compleet zijn, opblazen van de longen met PBS met natrium-nitroprusside (SNP) in 1ug/ml. Zet een stop op het tracheale canule, dus de oplossing achterblijft in de longen. Laat de longen te incuberen tot maximaal 30 minuten, als het dezelfde oplossing stroomt door de bloedvaten via de longslagader, met vasodilatatie toe te staan. </li><li> Sluit de hart / longen naar een bioreactor cap met behulp van de luer-lock verbinding gekoppeld aan het Y-vormige canules, beschreven in "Bioreactor Assembly" hierboven. (Figuur 1). </li></ol> 3. Orgel decellularisatie <ol><li> Sluit de dop (met longen bevestigd) aan decellularisatie apparaat (figuur 1). De longslagader canule moet aansluiten op de perfusie lijn, en de tracheale canule moet zweven vrij. Zorg ervoor dat alle lijnen zijn duidelijk van de lucht. Zoals hierboven beschreven, kunnen een bron van slechte decellularisatie lucht in de leidingen worden door te voorkomen dat stroming van decllularization vloeistof. Lucht in het systeem kan ook blijven bestaan ​​in cultuur de tijd, als het kan een negatief effect hebben op overleving van de cel drie hebben. </li><li> Blaas de long met PBS / SNP tot de longen vol zijn, maar niet opgeblazen. Onmiddellijk cap de tracheale canule, zodat de longen blijft opgeblazen. </li><li> Perfuseren long met PBS / SNP gedurende minstens 15 min bij ~ 15 mm Hg (20 cm H 2 O druk). Na 15min of langer, verwijder de stop uit de tracheale canule, zodat de longen te laten leeglopen. </li><li> Ga door perfusie met PBS / SNP voor 30min. Indien nodig, bij te vullen PBS / SNP zorgen perfusiedruk in stand wordt gehouden op 10-15 mmHg. </li><li> Begin perfusie met decellularisatie oplossing (8mm CHAPS, 1 M NaCl, 25mm EDTA in 1X PBS). Zorg ervoor dat alle lijnen zijn duidelijk van de lucht. Een vacuüm systeem kan nuttig zijn om zuiging te geven. </li></ol> Perfuseren met decellularisatie oplossing tot 500 ml van de oplossing is doorbloed door de long. Optimale druk is &lt;15 mmHg (~ 20 cm H 2 O). Dit typisch vereist 2,5 uur. Debieten zijn meestal erg traag (0.2-0.5ml/minute) in eerste instantie, en snel tijdens het tweede uur te verhogen tot ongeveer 1ml/minute of hoger. Van tijd tot tijd, gebruikte decellularisatie vocht te verwijderen uit bioreactor, zodat voldoende vocht blijft de ondersteuning van de longen en tracheale canule. 4. Orgel spoelen en sterilisatie <ol><li> Overdracht long en bioreactor naar een weefselkweek kap. Begin spoelen met steriel PBS door het verwijderen van de 500ml potje dat de decellularisatie vloeistof bevatte en te vervangen met een steriel potje met maximaal 1 liter steriele PBS. Gebruik een stofzuiger om ervoor te zorgen lijnen zijn duidelijk van de lucht. </li><li> Perfuseren PBS door het vaatstelsel bij 10-15 mmHg, op dezelfde wijze als bij decellularisatie. Periodiek, verwijderen afval PBS van de bioreactor en vervangen en / of vul het PBS pot met verse, steriele PBS. Het is raadzaam om gebruik steriele techniek. </li><li> Ga verder spoelen tot ten minste 2,5 L van steriele PBS hebben doorbloed de long. </li><li> Overdracht long aan een nieuwe, steriele bioreactor systeem met verse PBS. Zorg ervoor dat zowel de gehele perfusie loop en de hele luchtweg lijnen zijn gevuld met vloeistof. Alle volgende stappen zullen gebruik maken van een pulserende pomp naar de longen perfuseren op 5ml/min. </li><li> Steriliseer het schavot, hetzij via 's nachts perfusie met PBS + 10% + 10% FBS pen-strep oplossing of voor 3 uur met 0,1% perazijnzuur in PBS. Dit laatste vereist het spoelen van de long met 3 veranderingen van 250ml PBS gedurende een aantal uren om de resterende zuur te verwijderen. Voor elke spoeling moet de longen worden geventileerd en perfusie om ervoor te zorgen dat alle onderdelen van het weefsel goed gespoeld zijn. </li><li> Overdracht van de long naar een 37 ° C incubator en perfuseren met PBS dat 10% FBS en 10% penicilline / streptomycine voor ~ 1 uur of totdat de temperatuur wordt in evenwicht gebracht, ter voorbereiding van benzonase behandeling. </li><li> Behandel long met benzonase te overblijfsel DNA te verwijderen: <ol><li> Verwarm de benzonase buffer (zie tabel van de reagentia), tot 37 ° C. </li><li> Voor elke long, vul een 10 ml spuit met benzonase buffer alleen en een 10 ml spuit met 90U/ml benzonase in buffer. </li><li> Stop perfusie van de long. </li><li> Blaas de luchtweg met benzonase buffer. </li><li> Laat de longen te laten leeglopen (voor ~ 1 minuut). Dan, opblazen van de longen met de benzonase oplossing. Tijdens de inflatie met benzonase buffer &amp; benzonase, probeer dan te voorkomen dat het injecteren van een lucht in de longen. </li><li> Laat de longen om zonder perfusie of ventilatie te zitten bij 37 ° C gedurende 1 uur na het oppompen met benzonase. </li></ol></li><li> Hervatten perfusie met de PBS + 10% FBS, 10% penicilline / streptomycine dat al in de bioreactor, en ga 's nachts. De volgende dag, kan de long ofwel worden bewaard bij 4 ° C (maximaal 3 maanden) of vervaardigd voor cel zaaien. </li><li> Ter voorbereiding op het schavot voor cellulaire repopulatie, vervang dan de PBS / FBS / benzonase oplossing met ~ 250 ml van het kweekmedium. Perfuseren voor ten minste een uur voor de cellen worden geïntroduceerd, eennd vervangen met vers kweekmedium direct voor het zaaien cellen. </li></ol> 5. Recellularization De keuze van de cel bron voor orgel inzaaiing is overgelaten aan individuele onderzoekers. Veel mobiele bronnen kunnen worden gebruikt, met inbegrip van de handel verkrijgbare populaties, vers geïsoleerde neonatale of foetale long cellen, embryonale stamcellen, of in de handel verkrijgbaar cel bronnen. Specifieke isolatie protocollen voor deze celpopulaties elders 4,5,6 te vinden. Hier hebben we instructies geven over hoe om zaad zowel endotheel-en epitheelcellen populaties. Endotheel zaaien: <ol><li> Bereid een suspensie van de gewenste endotheliale cellen bevolking, in het juiste kweekmedium. Filter celsuspensie door middel van een zeef 40um cel naar cel klonten te verwijderen. Een typische endotheel zaaien in ons laboratorium zou gebruik maken van ongeveer 30 miljoen ratten long microvasculaire endotheelcellen in 60 ml van de cultuur medium. </li><li> Doseer celsuspensie in een klein reservoir tijdelijk opgenomen in de perfusie lus van de bioreactor (figuur 2). Zorg ervoor dat de slang uit dit reservoir en de hele perfusie lus is vrij van luchtbellen. </li><li> Infundeer cellen in de longslagader in 3ml/min met behulp van een roller pomp. </li><li> Na de cel infusie, gaat u verder perfusie met medium recirculatie van de belangrijkste bioreactor op de gewenste snelheid. </li><li> Op dagelijkse basis, ervoor zorgen dat de perfusieslang vrij is van luchtbellen. </li><li> Medium moet worden vervangen door vers medium regelmatig, dit wordt vaak gedaan om de 3-4 dagen. </li></ol> Epitheliale zaaien: <ol><li> Bereid een celsuspensie van de gewenste epitheelcellen bevolking. In ons laboratorium, dit bestaat meestal uit ongeveer 50-100 miljoen neonatale rat pulmonale cellen. Filter de bevolking door 40um cel zeef en schorten in 15 ml van de cultuur medium in een spuit. Vul het reservoir met luchtweg 80 ml van de cultuur medium. </li><li> Plaats de bioreactor in een 37 ° C weefselkweek incubator, en sluit de spuit pomp voor ventilatie. Zorg ervoor dat alle ventilatie-lijnen zijn duidelijk van de lucht. <ol><li> Zaad van de cellen in de longen door het injecteren van 15 ml celsuspensie als een bolus in de tracheale canule. </li><li> Direct beginnen met een enkele, trage ademhaling met behulp van de injectiepomp. Deze ademhaling wordt beheerd door intrekking van 60ml van de lucht van de belangrijkste bioreactor op 3ml/minute, dus duren ongeveer 20 minuten. Zorg ervoor dat de luchtfilters op de belangrijkste bioreactor worden afgedekt onmiddellijk na het injecteren van de celsuspensie en voor het begin van de langzame ademhaling. </li></ol></li><li> Laat de longen te statisch te zitten voor ongeveer 18u, en dan langzaam vasculaire perfusie te beginnen (ongeveer 0,5 ml / min). </li></ol> 6. Orgelcultuur Hoewel de details van perfusie en ventilatie zal variëren op basis van experimenteel design, worden de volgende punten opgemerkt: <ol><li> Tijdens de endotheliale cultuur, is perfusie typisch uitgevoerd bij 1-3 ml / min met behulp van een roller pomp. Tijdens de epitheliale cultuur, is ventilatie meestal aangeboden in een continue snelheid van een adem per minuut met een spuit pomp. Intrekking van 5-10ml van lucht uit de belangrijkste bioreactor is normaal nodig is om longventilatie effect op een normale tidal volume. Als gevolg van de noodzaak om de bioreactor luchtdicht te houden tijdens ventilatie, dient ventilatie dagelijks worden gepauzeerd en de lucht in de grote kamer moet worden uitgewisseld. Alle lucht in het systeem is ruimte lucht, dat is ongeveer 21% zuurstof door gedeeltelijke druk. De 5-10ml terugtrekking van lucht uit de bioreactor (die leidt tot een 5-10ml inspiratie van vocht door de longen) is gebaseerd op de grootte van de long en hoeveel lobben worden gekweekt (lobben kan worden afgebonden voor analyse, terwijl de resterende lobben verder in de cultuur). De hoeveelheid lucht ingetrokken door de spuit pomp is gekozen om onderlinge aanpassing van de "tidal volume 'van de gekweekte long. </li><li> Medium moet ongeveer worden veranderd om de 3-4 dagen tijdens cultuur. </li><li> Tijdens de co-cultuur van zowel epitheel en endotheel, experimenten in ons laboratorium meestal eerst zaad het epitheel voor 4-8 dagen, gedurende welke tijd de kunstmatige weefsel wordt geventileerd. Het endotheel wordt vervolgens gezaaid via perfusie, waarna het weefsel is zowel doorbloed en geventileerd. </li></ol> 7. Representatieve resultaten: Decellularisatie Wanneer het protocol correct wordt uitgevoerd, moet de vers afgezogen longen te houden lucht zonder lekken. Oppompen ze met lucht, terwijl ondergedompeld in een vloeistof kunt dit controleren - er mogen geen luchtbellen geven luchtlekken. De daaropvolgende decellularisatie moet ~ 500ml decellularisatie vloeistof te stromen toestaan ​​via de longen in de loop van 2,5 - 3 uur bij 37 ° C, en PBS moet uiteindelijk in staat zijn om via de longen stromen op ongeveer 10 ml / min (in ~ 15 mm Hg van de hydrostatische druk) op het einde van de spoelen. Na behandeling met 0,1% perazijnzuur en benzonase, kunnen de longen worden opgeslagen bij 4 ° C gedurende maximaal 3 maanden, en nog steeds geschikt blijven voor recellularization. De laatste gedecellulariseerde extracellulaire matrix moet volledig vrij van cellulaire materialen, en behouden van de grove, microscopische en ultrastructurele kenmerken van inheemse long. Onvoldoende decellularisatie of spoelen kan resulteren in DNA-overblijfsel "plakken" aan de steiger, die kan worden gevisualiseerd met een standaard hematoxyline en eosine vlek (zie figuur 3 voor vergelijking). Herbevolking van de acellulaire matrix en de cultuur van het longweefsel Als cellen worden geïsoleerd uit vers 7 dagen oud neonatale rat pups, zoals beschreven in de online-supplement bij het ​​werk van Petersen en zijn collega's 4, kan men verwachten dat een cel opbrengst van 120 tot 150 miljoen cellen per nest van 10 pups (iets meer dan 10 miljoen cellen per pasgeborene). Optimale condities voor cel zaaien en vervolgens de cultuur van de long in de bioreactor moet opleveren goed verspreid cellen binnen alle vijf lobben van de long, en moet de dekking van ongeveer 70% van de extracellulaire matrix steiger (figuur 3) te geven. De gekweekte cellen bevolking zal positief zijn voor de belangrijkste luchtwegen cel markers, zoals pro-secretorische proteïne-C (SPC), Clara cel secretorische proteïne (CCSP), en aquaporine-5 (AQP), in volgorde van relatieve overvloed (figuur 4). <img src="/files/ftp_upload/2651/2651fig1.jpg" alt="Figuur 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figuur 1"> Figuur 1. Canules posities en decellularisatie bioreactor <img src="/files/ftp_upload/2651/2651fig2.jpg" alt="Figuur 2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figuur 2"> Figuur 2. Bioreactor worden gebruikt voor het zaaien en de cultuur van technisch longweefsel <img src="/files/ftp_upload/2651/2651fig3.jpg" alt="Figuur 3" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figuur 3"> Figuur 3. Histologie van inheemse, gedecellulariseerde, en opnieuw bevolkt long <img src="/files/ftp_upload/2651/2651fig4.jpg" alt="Figuur 4" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figuur 4"> Figuur 4. Immunofluorescentiekleuring voor de belangrijkste long markers

<ol><li>American Lung Association. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=%22Lung+Disease+Data%22">Lung Disease Data</a>. , (2008).</li>
<li>Petersen, T. H., Calle, E. A., Colehour, M. B., Niklason, L. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bioreactor+for+the+Long+Term+Culture+of+Lung+Tissue%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Transplant%22%5BJournal%5D)">Bioreactor for the Long Term Culture of Lung Tissue.</a> Cell Transplant. , (2010).</li>
<li>Bilek, A. M., Dee, K. C., Gaver, D. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanisms+of+surface+tension+induced+epithelial+cell+damage+in+a+model+of+pulmonary+airway+reopening%5BTitle%5D)+AND+%22J+Appl+Physiol%22%5BJournal%5D)">Mechanisms of surface tension induced epithelial cell damage in a model of pulmonary airway reopening.</a> J Appl Physiol. 94, 770-783 (2003).</li>
<li>Petersen, T. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tissue-Engineerined+Lungs+for+in+Vivo+Implantation%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Tissue-Engineerined Lungs for in Vivo Implantation.</a> Science. 329, 538-5341 (2010).</li>
<li>Ott, H. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Regeneration+and+orthotopic+transplantation+of+a+bioartificial+lung%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Med%22%5BJournal%5D)">Regeneration and orthotopic transplantation of a bioartificial lung.</a> Nat Med. 16, 927-9233 (2010).</li>
<li>Cortiella, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Influence+of+acellular+natural+lung+matrix+on+murine+embryonic+stem+cell+differentiation+and+tissue+formation%5BTitle%5D)+AND+%22Tissue+Eng.+Part+A%22%5BJournal%5D)">Influence of acellular natural lung matrix on murine embryonic stem cell differentiation and tissue formation.</a> Tissue Eng. Part A. 16, 2565-2580 (2010).</li>
<li>Sugihara, H., Toda, S., Miyabara, S., Fujiuyama, C., Yonemitsu, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reconstruction+of+alveolus-like+structure+from+alveolar+type+II+epithelial+cells+in+three-dimensional+collagen+gel+matrix+culture%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Pathol%22%5BJournal%5D)">Reconstruction of alveolus-like structure from alveolar type II epithelial cells in three-dimensional collagen gel matrix culture.</a> Am J Pathol. 142, 783-7892 (1993).</li>
<li>Choe, M. M., Sporn, P. H., Swartz, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Extracellular+matrix+remodeling+by+dynamic+strain+in+a+three-dimensional+tissue-engineered+human+airway+wall+model%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+Respiratory+Cell+Molecular+Biology%22%5BJournal%5D)">Extracellular matrix remodeling by dynamic strain in a three-dimensional tissue-engineered human airway wall model.</a> American Journal Respiratory Cell Molecular Biology. 35, 306-306 (2006).</li>
<li>Cortiella, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tissue-enginered+lung%3A+an+in+vivo+and+in+vitro+comparison+of+polyglycolic+acid+and+pluronic+F-127+hydrogel%2Fsomatic+lung+progenitor+cell+constructs+to+support+tissue+growth%5BTitle%5D)+AND+%22Tissue+Engineering%22%5BJournal%5D)">Tissue-enginered lung: an in vivo and in vitro comparison of polyglycolic acid and pluronic F-127 hydrogel/somatic lung progenitor cell constructs to support tissue growth.</a> Tissue Engineering. 12, 1213-1213 (2006).</li>
<li>Price, A. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+a+Decellularized+Lung+Bioreactor+System+for+Bioengineering+the+Lung%3A+The+Matrix+Reloaded%5BTitle%5D)+AND+%22Tissue+Eng+Part+A%22%5BJournal%5D)">Development of a Decellularized Lung Bioreactor System for Bioengineering the Lung: The Matrix Reloaded.</a> Tissue Eng Part A. , (2010).</li>
<li>Ott, H. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Perfusion-decellularized+matrix%3A+using+nature%27s+platform+to+engineer+a+bioartificial+heart%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Med%22%5BJournal%5D)">Perfusion-decellularized matrix: using nature's platform to engineer a bioartificial heart.</a> Nat. Med. 14, 213-221 (2008).</li>
<li>Uygun, B. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Organ+reengineering+through+development+of+a+transplantable+recellularized+liver+graft+using+decellularized+liver+matrix%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Med%22%5BJournal%5D)">Organ reengineering through development of a transplantable recellularized liver graft using decellularized liver matrix.</a> Nat. Med. 16, 814-820 (2010).</li>
<li>Shannon, J. M., Mason, R. J., Jennings, S. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Functional+differentiation+of+alveolar+type+II+epithelial+cells+in+vitro%3A+effects+of+cell+shape%2C+cell-matrix+interactions+and+cell-cell+interactions%5BTitle%5D)+AND+%22Biochim.+Biophys.+Acta%22%5BJournal%5D)">Functional differentiation of alveolar type II epithelial cells in vitro: effects of cell shape, cell-matrix interactions and cell-cell interactions.</a> Biochim. Biophys. Acta. 931, 143-156 (1987).</li>
<li>Cortiella, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Influence+of+Acellular+Natural+Lung+Matrix+on+Murine+Embryonic+Stem+Cell+Differentiation+and+Tissue+Formation%5BTitle%5D)+AND+%22Tissue+Eng+Part+A%22%5BJournal%5D)">Influence of Acellular Natural Lung Matrix on Murine Embryonic Stem Cell Differentiation and Tissue Formation.</a> Tissue Eng Part A. , (2010).</li>
</ol>

LEN houdt voorraad in Humacyte, een regeneratieve geneeskunde bedrijf. Humacyte niet financieren deze studies, en had geen invloed op het ontwerp, de interpretatie, of rapportage van een van de experimenten of methoden beschreven. De auteurs (LEN, THP, EAC) en de universiteit van Yale hebben een patentaanvraag ingediend die verband houden met tissue engineering van de longen.

De meest kritische aspecten van het systeem hier gepresenteerde onder meer het onderhoud van de steriliteit en de nauwgezette controle van de druk toegepast op de vasculaire bed gedurende het gehele proces van voorbereiding en zaaien het schavot en het kweken van de opnieuw bevolkt long. Steriliteit is het best onderhouden door autoclaveren alle materialen voorafgaand aan het gebruik, alsmede door de montage van de long in een gesloten systeem kort na Explantatie en het vermijden van verdere schending van deze barrière. Nadat de gedecellulariseerde matrix is ​​grondig gespoeld en overgebracht naar een steriele bioreactor voor cultuur, moeten de siliconen dop en andere afdichtingen en aansluitingen niet worden verstoord of verwijderd. Om de druk in bedwang, flow gedreven door de zwaartekracht heeft de voorkeur indien mogelijk. Wanneer een pomp nodig is voor recirculatie van vocht, te beginnen na het spoelen met PBS en verder tijdens de cultuur, raden wij u direct meten van de druk net voordat de vloeistof de longslagader met een druk transducer komt. De omvang van de uitgeoefende druk mag niet meer dan 15 mm Hg. Recellularized longen kunnen worden gekweekt voor verschillende perioden, meestal variërend van 4 dagen tot maximaal 3 weken. Vasculaire perfusie is meestal bereikt bij 1-3 ml / min tijdens de endotheliale cultuur, terwijl ventilatie wordt meestal toegepast met een snelheid van 1 adem / min tijdens de epitheliale cultuur. Tijdens een gecombineerde cultuur periodes, gelijktijdige ventilatie en perfusie geschikt is. Ventilatie kan worden uitgevoerd met een vloeibaar medium of lucht. In de loop van de afgelopen decennia hebben verschillende groepen gedaan belangrijke tissue engineering werk toont de haalbaarheid van differentiatie long epitheel in vitro en van repliceren verschillende aspecten van de long microanatomy 7,8,9, 10. Echter, tot voor kort had 4,5 geen van deze pogingen om het longweefsel ingenieur resulteerde in een implanteerbare orgaan dat in staat was om scheiding tussen het bloed en luchtwegen compartimenten te onderhouden en dat kan deelnemen aan de gasuitwisseling. Daarom, hoewel de beschreven methoden zijn slechts een eerste stap in de richting van de lange-termijn doel van het genereren van functionele longweefsel, dit werk is een bemoedigende stap in de richting van de mogelijkheid van een verhoging van het bedrag van het longweefsel beschikbaar zijn voor transplantatie. Bovendien, dit werk dieper werk van Ott et al.. Uygun en en collega&#39;s 11,12, het aantonen van de werkzaamheid van een gedecellulariseerde extracellulaire matrix als een steiger voor tissue engineering complexe drie-dimensionale structuren en het ondersteunen van de groei en overleving van de verschillende typen cellen . Dit werk is ook belangrijk voor haar bijdrage aan het instrumentarium van de luchtwegen cel-en moleculair biologen. Door het verstrekken van een unieke, driedimensionale omgeving die ook kunnen zorgen voor de nodige mechanische stimuli, en dat is het niet met de daarmee gepaard gaande gevaar van de snelle de-differentiatie, dat men zou kunnen tegenkomen bij het ​​kweken van knaagdieren epitheel in het laboratorium met meer traditionele methoden 13, wetenschappers kunnen gebruiken ons systeem om nieuwe inzicht te krijgen in cel-cel en cel-matrix interacties die een rol spelen in cel differentiatie en functie. Deze kennis kan in het bijzonder sterk als het gebruikt als hefboom om het lot van verschillende stamcelpopulaties gids, zoals Cortiella&#39;s groep heeft aangetoond in de eerste studies 14.

<table border="1"><tbody><tr><th> Naam van het serum </th><th> Vennootschap </th><th> Catalogus nummer </th><th> Commentaar (optioneel) </th></tr><tr><td> Euthanasie </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> Heparine </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> H4784 </td><td></td></tr><tr><td> Natrium nitroprusside </td><td> Fluka </td><td> 71778 </td><td></td></tr><tr><td> Euthasol euthanasie oplossing </td><td> Virbac AH </td><td> 710101 </td><td> 390 mg / ml pentobarbital natrium stockoplossing moet naar behoren worden verdund voor IP administratie </td></tr><tr><td colspan="4"></td></tr><tr><td> Decell Solution </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> CHAPS </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> C3023 </td><td></td></tr><tr><td> NaCl </td><td> Amerikaanse Bioanalytical </td><td> AB01915 </td><td></td></tr><tr><td> EDTA </td><td> Sigma </td><td> E5134 </td><td></td></tr><tr><td> NaOH </td><td> JT Baker </td><td> 3722-01 </td><td></td></tr><tr><td> 1X PBS </td><td> Gibco </td><td> 14190 </td><td></td></tr><tr><td colspan="4"></td></tr><tr><td> Bioreactor Componenten </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> 480 ml pot </td><td> Cole Parmer </td><td> EW-3460560 </td><td></td></tr><tr><td> Siliconen stop, maat 14 </td><td> Cole Parmer </td><td> EW-06298-26 </td><td></td></tr><tr><td> Y-connectors </td><td> Cole Parmer </td><td> ED-30614-08 </td><td> Gebruikt voor arteriële en tracheale canules </td></tr><tr><td> Silicone </td><td> Masterflex </td><td> 96420-14; 16 </td><td> L / S 14, 16 </td></tr><tr><td> Druk Transducers </td><td> Edwards Lifesciences </td><td> PX-212 </td><td></td></tr><tr><td> Terugslagklep </td><td> Cole Parmer </td><td> EW-98553-20 </td><td> Eenrichtingsklep </td></tr><tr><td> 4-weg kranen </td><td> Edwards Lifesciences </td><td> 594WSC </td><td></td></tr><tr><td> Spuitfilter </td><td> Cole Parmer </td><td> 2915-08 </td><td> PTFE, 0.2μm </td></tr><tr><td colspan="4"></td></tr><tr><td> Decell en spoelen apparati (toevoegingen aan bioreactor) </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> 500 en 1000 ml glazen flessen </td><td> Corning </td><td> 1395-500;-1L </td><td> Gebruikt voor decell en spoelen door de zwaartekracht </td></tr><tr><td colspan="4"></td></tr><tr><td> Benzonase Behandeling </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> Penicilline / streptomycine </td><td> Gibco </td><td> 15140122 </td><td></td></tr><tr><td> FBS </td><td> Hyclone </td><td> SH30071.03 </td><td></td></tr><tr><td> Tris-HCl </td><td> Amerikaanse Bioanalytical </td><td> AB14043 </td><td> 1M, pH 8,0 </td></tr><tr><td> MgCl 2 </td><td> JT Baker </td><td> 2444-01 </td><td></td></tr><tr><td> BSA </td><td> Sigma </td><td> A9647 </td><td></td></tr><tr><td> Benzonase Nuclease </td><td> Sigma </td><td> E1014 </td><td> Endonuclease gebruikt om overblijfsel DNA te verwijderen uit de matrix </td></tr></tbody></table>

procedure voor lung techniek

Procedure for Lung Engineering

Longweefsel, met inbegrip van longkanker en chronische longaandoeningen zoals chronische obstructieve longziekte, cumulatief goed zijn voor ongeveer 280.000 sterfgevallen per jaar; chronische obstructieve longziekte is momenteel de vierde belangrijkste doodsoorzaak in de Verenigde Staten 1. Bijdragen aan deze sterfte is het feit dat de longen het algemeen niet repareren of regenereren buiten de microscopische, cellulair niveau. Daarom wordt longweefsel dat is beschadigd door degeneratie of infectie, of longweefsel dat operatief wordt gereseceerd niet functioneel vervangen in vivo. Om te onderzoeken of het longweefsel kunnen worden gegenereerd in vitro, hebben we behandeld longen van volwassen ratten met behulp van een procedure die cellulaire componenten verwijdert het produceren van een acellulair long extracellulaire matrix schavot. Deze steiger behoudt de hiërarchische structuren van de vertakkende luchtwegen en bloedvaten, evenals een grotendeels intact basale membraan, die collageen IV, laminine en fibronectine omvat. De steiger is gemonteerd in een bioreactor ontworpen om kritieke aspecten van de long-fysiologie, zoals negatieve druk ventilatie en pulserende vasculaire perfusie na te bootsen. Door het kweken van longepitheel en vasculaire endotheel in de bioreactor gemonteerde steiger, we zijn in staat om longweefsel dat is fenotypisch vergelijkbaar met inheemse longweefsel en dat in staat is om deel te nemen in ruil voor gas korte tijdsintervallen (45 tot 120 minuten) te genereren. Deze resultaten zijn bemoedigend, en suggereren dat herbevolking van long-matrix is ​​een levensvatbare strategie voor long regeneratie. Deze mogelijkheid biedt een kans om niet alleen te werken in de richting van het aanbod van longweefsel voor transplantatie, maar ook voor de ademhalingswegen cel-en moleculaire biologie in vitro onderzoek naar langere perioden en in een meer nauwkeurige micro-omgeving dan tot voorheen mogelijk was.

We hebben een gedecellulariseerde long extracellulaire matrix en nieuwe biomimetische bioreactor die kunnen worden gebruikt om functionele longweefsel te genereren. Door zaaien cellen in de matrix en het kweken in de bioreactor, genereren wij weefsel dat effectieve gasuitwisseling laat zien wanneer transplanted in vivo voor een korte periode van tijd.

Procedure voor Lung Techniek

Longweefselziekten, waaronder longkanker en chronische longziekten zoals chronische obstructieve longziekte, zijn cumulatief verantwoordelijk voor ongeveer 280.000 sterfgevallen ...

Het algemene doel van deze procedure is om in kweek longweefsel te genereren dat morfologisch en fysiologisch vergelijkbaar is met inheems longweefsel. Dit wordt bereikt door eerst het hart en de longen van een volwassen rat te oogsten. De volgende stap is het canuleren van de arteria pulmonalis en de trachea, en het aansluiten van de gecanuleerde longen op een bioreactor voor decellularisatie.Na de decellularisatie en het spoelen wordt de long overgebracht naar een steriele kweekbioreactor en klaargemaakt voor het zaaien. De laatste stap van de procedure is het zaaien van het gewenste compartiment van de long met een voorbereide celpopulatie. Uiteindelijk kunnen resultaten worden behaald die aantonen dat de gedecellulariseerde extracellulaire matrix efficiënt is herbevolkt met cellen die regionaal specifieke longmarkers tot expressie brengen, zichtbaar via immunofluorescentiemicroscopie.Het belangrijkste voordeel van deze techniek ten opzichte van bestaande methoden voor het in vitro kweken van longcellen is dat de cellen gedifferentieerde fenotypes gedurende een langere periode behouden, waardoor ze gedurende enkele weken kunnen worden bestudeerd in een driedimensionaal biologisch afgeleid substraat. Voor de decellularisatie worden de longen via de vasculaire canule verbonden met de dop van de bioreactor, en wordt de dop verbonden met het decellularisatieapparaat. De glazen fles boven de longen wordt op zijn plaats gehouden door een ringstatief en een bevestigingsklem.Op dit punt kan het cellulaire materiaal worden verwijderd om een scaffold van de extracellulaire matrix te produceren, die vervolgens opnieuw kan worden bevolkt met cellulair materiaal. De assemblage van de bioreactor voor het zaaien en kweken van technisch vervaardigd longweefsel wordt in dit diagram getoond. De luer-lockkoppeling van de tracheacannule is verbonden met een ademhalingsloop tussen het tracheareservoir en de hoofdkamer.De ademhalingsloop bevat twee eenwegkleppen. Deze zijn zodanig geplaatst dat het medium een verschillend pad volgt bij het binnengaan en verlaten van de long. Een klein reservoir is tijdelijk in de perfusielijn geïntegreerd voor het zaaien van endotheelcellen.Een pulserende pomp wordt gebruikt om cellen van het reservoir naar het vasculaire compartiment van de long te transporteren. De vasculaire perfusie wordt verzorgd door een slangpomp. Medium wordt via de bevestigde canule in de longslagader geparfundeerd, stroomt door de longvasculatuur en via de longader direct terug in de hoofdbioreactor, waar het medium wordt opgezogen voor perfusie.Het longepitheel wordt door injectie in de ademhalingslus geplaatst. De hoofdkamer die de long bevat en het trachea-reservoir worden gebruikt voor langdurige longkweek. Wanneer de longen zijn uitgenomen en de arterie en trachea correct zijn gecannuleerd, moeten de vers uitgenomen longen lucht kunnen vasthouden zonder te lekken.Dit kan worden geverifieerd door ze met lucht op te blazen terwijl ze zijn ondergedompeld in vloeistof. Er mogen geen bellen verschijnen die duiden op luchtlekken. Om het protocol te starten, worden de longen opgeblazen met PBS dat natriumnitroprusside bevat totdat de longen vol zijn maar niet overvuld; sluit direct daarna de tracheale canule af zodat de longen opgeblazen blijven.Perfuseer vervolgens de longen met PBS en SNP gedurende ten minste 15 minuten bij 15 millimeter kwik. Verwijder daarna de stop uit de tracheale canule om de longen te laten leeglopen. Zet de perfusie met PBS en SNP indien nodig voort gedurende 15 tot 30 minuten.Vul de PBS en SNP bij om ervoor te zorgen dat de perfusiedruk gehandhaafd blijft op 10 tot 15 millimeter kwik. Om de procedure voor langdurige decellularisatie te starten, wordt de dop van de bioreactor verbonden met het decellularisatieapparaat. Vervolgens worden de longen aan de dop verbonden.Met gebruik van de lure-lockverbindingen die zijn gekoppeld aan de Y-vormige canule, dient de longslagadercanule te worden aangesloten op de perfusielijn en moet de trachea-canule vrij kunnen bewegen. Om volledige decellularisatie van het weefsel te waarborgen, is het cruciaal om lucht uit het systeem te houden. De eenrichtingskleppen in de arteriële en tracheale canule helpen luchtbellen in de slang te verwijderen door een omkeerstroming in de slang mogelijk te maken.Verwijder daarom eventuele luchtbellen met een spuit en zorg ervoor dat alle lijnen luchtvrij zijn. Start de perfusie met de decellularisatie-oplossing. Perfuseer met de decellularisatie-oplossing.Totdat er 500 milliliters oplossing door de longen is geperfundeerd, is de optimale druk lager dan 15 millimeters kwik. Dit zal doorgaans 2,5 uur in beslag nemen. De stroomsnelheden zijn aanvankelijk meestal zeer laag en worden tijdens het tweede uur snel verhoogd tot ongeveer een milliliter per minuut of meer.Verwijder tijdens de perfusie periodiek het gebruikte decellularisatievloeistof uit de bioreactor, waarbij wordt gewaarborgd dat er voldoende vloeistof overblijft om de long- en tracheacanule te ondersteunen. Wanneer de perfusie met de decellularisatievloeistof is voltooid, worden de longen en de bioreactor overgebracht naar een weefselkweekkast. Om het spoelen van het orgaan te beginnen, wordt de pot van 500 milliliter met de decellularisatievloeistof verwijderd en vervangen door een steriele pot met maximaal één liter steriele PBS.Gebruik vacuümzuiging of een spuit om er zeker van te zijn dat de lijnen luchtvrij zijn en perfuseer PBS door de vasculatuur bij 10 tot 15 millimeters kwik op dezelfde wijze. Net als bij de decellularisatie dient men met steriele technieken periodiek versleten PBS uit de bioreactor te verwijderen en de PBS-pot te vervangen of bij te vullen. Ga door met spoelen met verse, steriele PBS totdat er ten minste 2,5 liters steriele PBS door de longen is geperfuseerd.Dit duurt doorgaans twee dagen vanaf het begin van het decellularisatieproces, tot het spoelen is voltooid. Verplaats de longen naar een nieuw steriel bioreactorsysteem met vers PBS plus 10% FBS plus 10% Pen strep; zorg ervoor dat zowel de gehele perfusielus als alle luchtweglijnen met vloeistof zijn gevuld. Vanaf dit punt wordt een pulserende pomp gebruikt om de longen te perfunderen met een snelheid van 5 mm per minuut.Steriliseer het longextracellulaire matrix-steunstructuur door een nachtelijke perfusie met PBS dat 10% FBS en 10% penicilline-streptomycine bevat. Na voltooiing van deze stap worden de longen gedurende één uur, of totdat de temperatuur is geëquilibreerd, overgebracht naar een incubator van 37 °C. Ter voorbereiding op de behandeling met Ben Nase is de volgende stap het behandelen van de longen met Ben Nase.Om resterend DNA uit elke long te verwijderen, vult u eerst één spuit van 10 milliliter enkel met voorverwarmde Ben Nase-buffer en één spuit van 10 milliliter met 90 units per milliliter Ben Nase, verdund in Ben Nase-buffer. Stop de perfusie van de longen.Blaas vervolgens de luchtweg op met Ben Nase-buffer, terwijl u voorkomt dat er lucht in de long wordt geïnjecteerd. Laat de long gedurende één minuut leeglopen. Blaas de long vervolgens op met de Ben Nase-oplossing.Zorg er opnieuw voor dat er geen lucht in de longen terechtkomt na het opblazen met Ben Nase. Laat de longen gedurende één uur bij 37 °C rusten zonder perfusie of ventilatie. Hervat na dit uur de perfusie met de PBS plus 10%FBS 10%penicilline streptomycine die reeds in de bioreactor aanwezig is, en zet de perfusie voort tot de volgende dag.Na het spoelen en steriliseren kan het lange extracellulaire matrix-steunmateriaal worden voorbereid voor cellulaire herbevolking. Vervang de P-B-S-F-B-S benzo a-oplossing met 250 milliliters kweekmedium en perfuseer gedurende ten minste één uur voordat de cellen worden geïntroduceerd; vervang dit door vers kweekmedium direct voorafgaand aan het uitzaaien van de cellen.Veel celbronnen kunnen worden benut voor organoïden. Hier zal het zaaien met een epitheliale celpopulatie worden gedemonstreerd. Bereid eerst een spuit voor met 15 milliliter van een celsuspensie van de gewenste epitheliale celpopulatie.Vul vervolgens het luchtwegreservoir met 80 milliliters kweekmedium en zorg ervoor dat alle ventilatielijnen vrij zijn van lucht. Plaats de bioreactor daarna in een weefselkweekincubator op 37 degrees Celsius en sluit de spuitpomp voor ventilatie aan. Zaai de cellen in de longen door de 15 milliliter celсусpensie in één snelle bolus in de tracheale canule te injecteren.Zorg ervoor dat de luchtfilters op de hoofdbioreactor zijn afgedicht. Begin vervolgens onmiddellijk met één enkele langzame inademing met behulp van de spuitenpomp om 60 milliliters lucht uit de hoofdbioreactor te onttrekken met een snelheid van drie milliliters per minuut. Dit zal ongeveer 20 minuten duren.Laat de longen daarna gedurende ongeveer 18 uur statisch rusten. Begin met een langzame vasculaire perfusie van ongeveer 0,5 milliliters per minuut. Tijdens de organcultuur wordt de perfusie doorgaans uitgevoerd met één tot drie milliliters per minuut.Bij het gebruik van een rollerpomp tijdens epitheliale culturen wordt ventilatie doorgaans geleverd met een continue snelheid van één ademhaling per minuut en een teugvolume van 5 tot 10 milliliters. Bij het gebruik van een spuitenpomp wordt lucht cyclisch uit de bioreactor getrokken en erin geïnjecteerd om ademhaling te simuleren door af te wisselen tussen negatieve druk en atmosferische druk in de hoofdkamer. Vanwege de noodzaak om de bioreactor tijdens de ventilatie luchtdicht te houden, moet de ventilatie dagelijks worden onderbroken en moet de lucht in de hoofdkamer worden ververst.Bovendien moet het medium ongeveer elke drie tot vier dagen worden ververst. Tijdens de kweek moet telkens ongeveer de helft van het totale volume worden vervangen door het kweken van longepitheel en vasculair endotheel. Met de in de bioreactor gemonteerde steiger zijn wij in staat om longweefsel te genereren dat gedurende korte tijdsintervallen kan deelnemen aan gasuitwisseling.Een standaard hematoxyline- en eosinekleuring van een natuurlijke ratlong wordt hier getoond ter vergelijking met een H&amp;E-kleuring van een gedecellulariseerde ratlong. De uiteindelijke gedecellulariseerde extracellulaire matrix moet volledig vrij zijn van cellulair materiaal en de macroscopische, microscopische en ultrastructurele kenmerken van de natuurlijke long behouden. De H&amp;E-kleuring maakt de visualisatie mogelijk van elk restant DNA dat aan het steunsel kleeft als gevolg van onvoldoende decellularisatie of spoeling, wat optimale condities voor celzaaien en de daaropvolgende kweek van de long vereist.En de bioreactor moet zorgen voor een goede distributie van cellen in alle vijf de lobben van de long en moet een bedekking van ongeveer 70% van het extracellulaire matrix-steunweefsel bieden. Deze afbeeldingen vergelijken de natuurlijke long met de repopulatie-long na kleuring door immunofluorescentie. Voor belangrijke longmarkers is de gekweekte celpopulatie positief voor Clara-cel secretorisch proteïne pro secretorisch proteïne C en Aquaporine vijf.De markers van belang zijn in alle panelen in het rood weergegeven en de met DAPI gekleurde kernen zijn in het blauw. Zodra men deze procedure beheerst, kan het proces van decellularisatie tot recellularisatie in vier tot vijf dagen worden voltooid indien dit correct wordt uitgevoerd.

Research

JoVE Journal

Bioengineering

Bio-engineering

Muizen pneumonectomie is een veel gebruikt model van compenserende longgroei. Deze procedure kan worden gebruikt in combinatie met lijn tracing of transgene muismodellen om de onderliggende mechanismen te verduidelijken.

Muis Pneumonectomie Model van Compenserende Lung Groei

Interne longoppervlakte (ISA) is een kritisch criterium voor de beoordeling van longmorfologie en fysiologie bij longziekten en schade-geïnduceerde alveolaire regeneratie. We beschrijven hier een gestandaardiseerde methode die de metafora voor ISA kan minimaliseren in zowel longpneumonectomy als protes implantatie muis modellen.

Een gestandaardiseerde methode voor het meten van het interne longoppervlak door middel van muizenpneumonectomy en prothese implantatie

We presenteren een high-throughput, in vitro methode voor het kwantificeren van regionale longdepositie op kwabniveau met behulp van CT-scan-afgeleide, 3D-geprinte longmodellen met afstembare luchtstroomprofielen.

Evaluatie van regionale longdepositie met patiëntspecifieke 3D-geprinte longmodellen

Dit protocol beschrijft een juveniel varkensmodel van orthotope allotransplantatie van de linkerlong, ontworpen voor gebruik met ESLP-onderzoek. De nadruk ligt op anesthesie- en chirurgische technieken, maar ook op kritieke stappen en het oplossen van problemen.

Orthotope transplantatie van de linkerlong in een juveniel varkensmodel voor ESLP

Dit artikel beschrijft een varkensmodel van negatieve drukventilatie ex situ longperfusie, inclusief inkoop, aanhechting en beheer op het op maat gemaakte platform. De nadruk wordt gelegd op anesthesie- en chirurgische technieken, evenals het oplossen van problemen.

Normothermische negatieve drukventilatie ex situ longperfusie: evaluatie van longfunctie en metabolisme

Dit protocol beschrijft een methode om reproduceerbare, kleinschalige gemanipuleerde longweefsels te genereren, door gedecellulariseerde precisiegesneden longplakken opnieuw te bevolken met alveolaire epitheliale type 2-cellen, fibroblasten en endotheelcellen.

Gemanipuleerde longweefsels bereid uit gedecellulariseerde longplakken

Het protocol beschrijft een beeldvormingsgerichte bioreactor die de selectieve verwijdering van het endogene epitheel uit de rattenluchtpijp en homogene verdeling van exogene cellen op het lumenoppervlak mogelijk maakt, gevolgd door langdurige in vitro kweek van het celweefselconstruct.

Imaging-guided bioreactor voor het genereren van bio-technisch luchtwegweefsel

Ex vivo longen zijn nuttig voor een verscheidenheid aan experimenten om fysiologische gegevens te verzamelen, terwijl de verstorende variabelen van in vivo experimenten worden uitgesloten. Commerciële opstellingen zijn vaak duur en beperkt in de soorten gegevens die ze kunnen verzamelen. We beschrijven een methode voor het bouwen van een volledig modulaire opstelling, aanpasbaar voor verschillende onderzoeksontwerpen.

Ontwerp en implementatie van een ex vivo longperfusiemodel voor ratten

Dit artikel beschrijft hoe bio-engineered muizenlongen kunnen worden gemaakt met behulp van decellularisatie- en recellularisatiemethoden. Het beschrijft ook de daaropvolgende orthotope longtransplantatie.

Transplantatie van bio-engineered long met behulp van gedecellulariseerde muizenlongen en primaire menselijke endotheelcellen

Dit protocol beschrijft een verbeterde techniek voor orthotope linkerlongtransplantatie bij ratten, gericht op het verminderen van operationele problemen en het verbeteren van overlevingskansen.

Orthotope linkerlongtransplantatie bij ratten

Dit protocol presenteert een ex-vivo longperfusiemodel bij ratten met een voorbijgaande blootstelling aan een gekalibreerde thermische stress, waarbij endogene beschermingsmechanismen worden bevorderd voor de therapeutische reconditionering van beschadigde longtransplantaten. De aanpak is schaalbaar en reproduceerbaar en ondersteunt de ontwikkeling van niet-medicamenteuze therapieën om het succes van longtransplantaties te verbeteren.

Thermische preconditionering tijdens ex-vivo longperfusie voor de revalidatie van beschadigde longtransplantaten vóór transplantatie

Leer functioneel longweefsel genereren met decellularisatie en een biomimetische bioreactor. Deze methode ondersteult gaswisseling in vivo en behoudt gedifferentieerde fenotypen voor regeneratieve geneeskunde.

Procedure voor Lung Techniek

Meer video's verkennen