Name: Een methode voor ovariële follikel Encapsulation en cultuur in een proteolytisch Afbreekbare 3 dimensionale systeem (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-03-15T13:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 37 s
Description: Leer een methode voor het inkapselen van ovariale follikels in een 3D fibrine-alginaatnetwerk voor in-vitrocultuur. Deze techniek ondersteunt de groei en rijping van oöcyten bij muizen.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Dit werk werd gefinancierd door NIH (U54HD41857 en PL1EB008542, een P30 Biomaterials Core binnen de Oncofertility Consortium Roadmap subsidie).

1. Follikel Isolatie Experimenten op dieren werden uitgevoerd in overeenstemming met de richtlijnen en voorschriften uiteengezet door de National Institutes of Health Guide voor de Zorg en gebruik van proefdieren en de gevestigde institutionele Animal Gebruik en onderhoud protocol aan de Northwestern University. Voor optimale resultaten, worden alle dissecties uitgevoerd in L15 media voor de pH-regeling bij een omgevingstemperatuur niveau van CO 2, op 37 ° C verhit podia voor de temperatuurregeling, en op een schone bank om bacteriële besmetting te minimaliseren. De dissectie media (DM) is bereid met L15 media aangevuld met 50 IU / ml penicilline en 50 ul / ml streptomycine en 1% FBS. Het onderhoud media (MM) is bereid met αMEM media aangevuld met 50 IU / ml penicilline en 50 ul / ml streptomycine en 1% FBS. <ol><li> Overdracht vers ontleed eierstokken van 16 dagen oude muis in een nieuwe 35 mm petrischaal met 1-2 ml MM met 0,1% en 0,1% Collagenase DNase. Incubeer gedurende 15 minuten in een incubator bij 37 ° C en 5% CO 2. </li><li> Na de incubatie, voert een aantal wasstappen in DM aan collagenase te verwijderen, en vervolgens over te dragen aan een 35 mm petrischaal met verse DM. Isoleer follikels van de eierstokken door zachtjes te tikken (of snijden) follikels uit de buurt van de hele eierstok met behulp van twee 28 5 / 8 gauge naalden aan wegwerpspuiten. Verwijder zoveel stroma mogelijk zonder beschadiging van de integriteit van de follikel. Ontleden van 20-40 secundaire follikels per ovarium (130-150mm). Deze follikels hebben meestal 2-3 lagen van somatische cellen. </li><li> Voeg 1 mL MM naar de centrale putje van een 60 mm IVF (in vitro fertilisatie) Petrischaal, en 3 mL MM naar de buitenste ring. Transfer intact follikels met een pipet om de buitenste ring van de IVF-schotel kort spoelen, en vervolgens selectief over te brengen in de centrale goed (zie 1.4). Bewaar deze IVF gerecht in de incubator. </li><li> Nadat alle follikels worden verzameld, is de selectie stap uitgevoerd onder een dissectiemicroscoop met een 5-8x vergroting. Gezonde follikels hebben de volgende morfologische kenmerken: <ul><li> 2-3 somatische cellagen </li><li> 130 tot 150 mm </li><li> Geen scheiding tussen eicel en somatische cellen </li><li> Intact en ronde eicellen Breng de gezonde follikels in het centrum van de IVF gerechten voor inkapseling. </li></ul></li></ol> 2. Follikel Encapsulation, Methode 1 - "The Drop Methode" <ol><li> Voeg 1 mL van 50 IU / ml trombine in TBS met 40 mM CaCl 2 in het midden goed van de IVF-schotel. Ontdooien en bewaren fibrinogeen voorraad (50 mg / ml in TBS) op ijs. Breng de fibrinogeen op kamertemperatuur vlak voor gebruik. </li><li> Bereid de fibrinogeen / alginaat-oplossing door het mengen 1x PBS, 0,5% alginaat in PBS-oplossing en 50 mg / ml fibrinogeen oplossing bij een 02:01:01 verhouding in een 1.7 ml steriel microcentrifugebuis. Voorkomen dat er luchtbellen in de oplossing. Voorzichtig vortex en spin-down. De oplossing lijkt licht bewolkt en moet onmiddellijk vóór gebruik worden bereid. </li><li> Plaats twee druppels van fibrinogeen / alginaat-oplossing in de buitenste ring van een IVF-gerecht: een 90 ul druppel voor inkapseling en een 10 ul druppel voor het wassen. Voor het verlagen van verdamping, zet u de verwarming podium op het ontleden microscoop. Overdracht 10-15 follikels in de 10 pi druppel met een minimale hoeveelheid van de cultuur media (&lt;5 pi) met behulp van een 200 micrometer micropipet tip, en snel mengen. Overdracht van al de follikels in de 90 uL druppel met een minimale hoeveelheid van de oplossing (&lt;5 pi) vanaf de eerste druppel, en meng. </li><li> Tegelijkertijd aspireren een follikel en 5 pi van fibrinogeen / alginaat oplossing met behulp van een 10 il pipetpunt, en introductie in het trombine / Ca 2 +-oplossing in de IVF-schotel. Herhaal deze stap totdat alle follikels worden ingekapseld. </li><li> Cross-link van de kralen voor 5-7 minuten in het trombine / Ca 2 +-oplossing. De kralen zal donkerder worden als fibrine gels. Overdracht van de parels in een petrischaal met MM, te beginnen met de donkere kralen eerste. Incubeer de schotel 15-30 minuten InThe incubator af te spoelen de resterende trombine. </li><li> Breng de kralen in een 96 well cultuur plaat met 100 ul van de follikelgroei media, en het beeld meteen. De groei van media (GM) is bereid met αMEM media aangevuld met 10 mIU / mL van recombinant FSH, 3 mg / ml BSA, 1 mg / ml van runderen fetuin, 5 ug / ml insuline, 5 ug / ml van transferrine, en 5 ng / mL van selenium. </li></ol> 3. Follikel Encapsulation, Methode 2 - "De Parafilm Methode" <ol><li> Bereid de fibrinogeen / alginaat-oplossing door het mengen van 0,5% alginaat-oplossing en 50 mg / ml fibrinogeen oplossing bij een 1:1 verhouding in een 1.7 ml steriel microcentrifugebuis. </li><li> Pipetteer 7,5 pi druppels van het fibrinogeen / alginaat mengsel op een parafilm gecoat glas glijbaan met 3 mm afstandhouders. Overdracht een follikel in elke druppel met een minimal hoeveelheid media. </li><li> Voeg 7,5 ul van trombine / Ca 2 +-oplossing voor elke druppel. Mengen is niet nodig, omdat de gel vrijwel onmiddellijk. </li><li> Bedek de gels met de tweede parafilm gecoat glas glijden, zet de dia's ondersteboven in een 100 mm petrischaaltje, en transfer naar de incubator gedurende 5 minuten. </li><li> Overdracht van de parels in een petrischaal met MM, en dan in de cultuur en de eerder beschreven. Als de kralen aan elkaar vastkleven, wat te wijten is aan cross-linking tussen de kralen, kunnen ze voorzichtig worden gescheiden met een pincet. </li></ol> 4. Follikel Imaging en Media Change <ol><li> Om de 2 dagen, worden de gekweekte follikels beeld gebracht met behulp van een lichtmicroscoop en de follikel diameter wordt gemeten met het softwareprogramma ImageJ. </li><li> Om de 2 dagen, is de helft van de groei media (50 pi) vervangen door verse, pre-evenwicht groei media. </li></ol> 5. Follikel Herstel van de 3D-matrix en de in vitro rijping Eicel (IVM) <ol><li> Na acht dagen van de cultuur, de hydrogels lijken duidelijk te wijten aan de afbraak van de fibrine onderdeel te voltooien, en de follikels uit te breiden tot een diameter van 300-400 urn. De resterende alginaat wordt afgebroken door alginaat-lyase, een plant-afgeleide enzym dat specifiek afbreekt alginaat en heeft geen invloed op dierlijke cellen. </li><li> Verwijder de groei media van putjes die de kralen en voeg 100 ml van 10 IU / ml alginaat lyase in αMEM. Laat de plaat in de incubator voor 25-30 minuten. </li><li> Verwijder follikels uit het opgeloste parels met een stomp uiteinde tip. Overdracht eerst naar de buitenste ring van een IVF-schaaltje met DM, en dan in het midden goed, ook met DM te wassen. </li><li> Na het wassen, overdracht van de follikels naar de buitenste, en dan binnenste ring van een IVF-schaaltje met rijping media. In vitro rijping media (IVM) is samengesteld uit αMEM, 10% FCS, 1,5 IU / ml hCG, en 5 ng / mL van de epidermale groeifactor (EGF) </li><li> Over te dragen aan CO 2 incubator voor 15-16 uur. Onderzoek de follikels voor cumulus cellen expansie. Om de cumulus cellen van de eicel te verwijderen, toe te voegen hyaluronidase oplossing om uiteindelijke concentratie 0,1 mg / ml en broeden in de incubator voor 2-3 minuten. Gebruik een 75 mm micropipet tip om afschuiving van de cumulus cellen van de eicel door en neer te pipetteren meerdere malen. Bepaal rijping stadium van de eicel onder een licht of een dissectie microscoop. De mogelijke stadia, van minst tot meest volwassen, zijn: <ul><li> Gedegenereerd. De eicel is gefragmenteerd in twee of meer stukken. </li><li> Germinal vesicle (GV) fase. De eicel niet hervat meiose in reactie op hCG blootstelling, dat is duidelijk door de voortdurende aanwezigheid van de kern van de eicel (GV). </li><li> Germinal vesicle uitsplitsing (GVBD). Het kernmembraan is afwezig bij de eicel, maar er is geen polaire lichaam aanwezig is. Daarom is de eicel is nog in meiose-I. </li><li> Metafase-II aangehouden eicel (MII). De eicel hervat meiose, en is nu gearresteerd op metafase-II. Een polaire lichaam moet zichtbaar zijn op een licht of een dissectie microscoop. De eicel blijft op MII, tenzij bevrucht in latere experimenten. </li></ul></li></ol> 6. Representatieve resultaten: Beschreven wij een nieuwe inkapseling methode van follikels in de eierstokken in een FA-IPN voor in vitro cultuur (figuur 1). Ovariële follikels bestaan ​​uit een eicel omgeven door verschillende lagen van somatische cellen. De communicatie tussen de verschillende cellulaire compartimenten is essentieel voor een gezonde follikel ontwikkeling en rijping eicel. Follikel inkapseling in een 3D-hydrogel ondersteunt follikel groei met behoud van de architectuur van de follikel 9,11,12. Als follikels te ontwikkelen, hun volume breidt exponentieel en het inkapselen van biomateriaal moet deze uitbreiding mogelijk te maken zonder de ontwikkeling van een remmende drukkracht. FA-IPN is een netwerk opgebouwd van twee natuurlijke materialen, waar de fibrine proteolytisch afbreekbaar is door plasmine geactiveerd door de follikel en alginaat is biologisch inert 13 (figuur 2). Tijdens de follikelgroei, fibrine degradatie begint lokaal de buurt van de follikel, en gaat door tot de fibrine wordt gewist uit het hydrogel. De niet-afbreekbare alginaat-component, die nog steeds intact gedurende de periode van cultuur, ondersteunt de 3D-structuur van de hydrogel. Follikels werden geïsoleerd in de secundaire fase van de ontwikkeling (150-180 micrometer diameter) en uitgebreid tot 400 micrometer in het antrale stadium van ontwikkeling in de FA-IPN gels. Met hCG stimulatie, kan de gekweekte follikels ondergaan cumulus celexpansie en eicellen kunnen meiose en de voortgang CV naar metafase II voor de bevruchting. Deze resultaten suggereren dat de inkapseling methode en de inkapselingsmateriaal follikel cultuur en succesvolle rijping toegestaan ​​in vitro (figuur 3). Fibrine degradatie rond de encapsulated follikels begint op de eerste dag van de cultuur en wordt aangevuld met dag 6. Aprotinine, een oplosbare plasmine-remmer, kan gebruikt worden om fibrine degradatie te veranderen en de mechanische helling uit te breiden in de inkapselende materiaal (figuur 4). Als follikels worden gekweekt met 0,01 TIU / ml aprotinine, de fibrine afgebroken langzamer voor de eerste 4 dagen. Niettemin, de follikels nog ontwikkelen om de antrale stadium en eicellen bevoegd blijven om meiose cv naar metafase II na aprotinine is removed.A hoge concentratie van aprotinine (0,1 TIU / ml) significant remt fibrine degradatie, stijfheid matrix voorkomt follikel groei en somatische celtherapie invasie in de matrix wordt waargenomen. <img src="/files/ftp_upload/2695/2695fig1.jpg" alt="Figuur 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figuur 1"> Figuur 1. Stroomschema van follikel ontwikkeling. Ovariële follikel bestaat uit een centraal gelegen eicel, omgeven door een of meer lagen van somatische cellen, die eicel ontwikkeling te ondersteunen. Omdat follikels ontwikkelen van het secundair naar het pre-ovulatoire antrale fase, de somatische cellen rondom de eicel prolifereren en differentiëren, en de eicel toeneemt in omvang. In vitro rijping (IVM) is de laatste stap voor de follikel cultuur, als de somatische cellen naast de eicel, genoemd cumulus cellen, uit te breiden na hCG stimulatie, en de eicel hervat meiose en zich ontwikkelt tot een metafase II (MII) fase. <img src="/files/ftp_upload/2695/2695fig2a.jpg" alt="Figuur 2a" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figuur 2a"> Figuur 2a. Alginaat en fibrine-alginaat voor 3D follikel cultuur in vitro. (A) Alginaat is een natuurlijk biomateriaal dat geschikt is voor in-vitro follikel cultuur als gevolg van de zachte gelering en biochemische kenmerken, zoals maaswijdte, controleerbare stijfheid en biologische inertie. Alginaat is een lineaire polysaccharide copolymeer van α-L-guluronzuur (G) en β-D-mannuronic zuur (M). Gebieden met herhalende G monomeren, aangeduid als "G-blokken", zijn cross-gekoppeld aan een hydrogel in de aanwezigheid van tweewaardige calcium-ionen te vormen. <img src="/files/ftp_upload/2695/2695fig2b.jpg" alt="Figuur 2b" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figuur 2b"> Figuur 2b. (Bi) Kleine ingekapseld follikels ervaring lage drukkracht in alginaat aan het begin van de cultuur. Echter, als de follikel de waterverplaatsing in de kraal breidt toe, wat resulteert in een grotere drukkracht in de tegenovergestelde richting van de follikel expansie (b-ii). <img src="/files/ftp_upload/2695/2695fig2c.jpg" alt="Figuur 2c" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figuur 2c"> Figuur 2c. De ketens van de individuele polymeren zijn volledig verstrikt in de fibrine-alginaat-oplossing voorafgaand aan de cross-linking. Beide componenten van de FA-IPN start onmiddellijk cross-link als zij worden blootgesteld aan het mengsel van trombine en calcium. <img src="/files/ftp_upload/2695/2695fig3a.jpg" alt="Figuur 3a" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figuur 3a"> Figuur 3a. Stroomschema voor de follikel isolatie en inkapseling in een FA-IPN. Secundaire follikels zijn geïsoleerd van een 16-dagen oude muis (Ai). De voortplantingsorganen worden ontleed (A-II), en de geïsoleerde follikels worden overgebracht naar een schotel met onderhoud media (A-III). <img src="/files/ftp_upload/2695/2695fig3b.jpg" alt="Figuur 3b" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figuur 3b"> Figuur 3b De daling methode voor het follikel inkapseling in fibrinogeen alginaat-oplossing (B: I-IV).. Twee druppels van fibrinogeen-alginaat-oplossing, zijn de spoelen druppel (10 pi) en de inkapseling drop (90 pi) gepipetteerd in de schaal (Bi). Komende 3-5 follikels worden overgebracht naar een spoeling druppel (B-ii). Na het spoelen en media verwijdering, worden follikels overgebracht naar de inkapseling laten vallen (B-III). Elke follikel wordt opgezogen met 5 pi fibrinogeen-alginaat-oplossing met een 10 il pipetpunt en vervolgens wordt uitgewezen om in trombine / calcium-oplossing (B-iv). <img src="/files/ftp_upload/2695/2695fig3c.jpg" alt="Figuur 3c" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figuur 3c"> Figuur 3c. De kraal crosslinks gedurende 5 minuten. De Parafilm methode voor het follikel inkapseling in fibrinogeen alginaat-oplossing (C: i-iii). Fibrinogeen-alginaat-oplossing (7,5 pi) is gepipetteerd op de parafilm gecoat glas schuiven en follikels zijn individueel overgebracht naar elke druppel na het spoelen (Ci, ii). Trombine-oplossing (7,5 pi) wordt toegevoegd aan elke druppel (C-iii). <img src="/files/ftp_upload/2695/2695fig3d_e.jpg" alt="Figuur 3d-e" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figuur 3d-e"> Figuur 3d - e. De druppels zijn bedekt met een tweede parafilm gecoat glas glijbaan en de FA-IPN is verknoopt in de incubator voor 5 minuten. (D) De ingekapselde follikels worden overgebracht naar groei media in een 96-well plaat. (E) Een beeld van een ingekapseld follikel in de FA-IPN (witte pijl). <img src="/files/ftp_upload/2695/2695fig4.jpg" alt="Figuur 4" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figuur 4"> Figuur 4. Fibrine degradatie door de groeiende Follicle. Follikels degraderen de fibrine component van de FA-IPN in de cultuur periode, die wordt aangetoond door een duidelijke cirkel rond de follikel. De follikel 3D-architectuur wordt ondersteund door de overige alginaat. Op dag 0 (D0) de fibrine is nog intact en de matrix rondom de follikel is troebel, na een dag in de cultuur (D1) de heldere ring rond de follikel verschijnt (witte pijl) en de fibrine degradatie front blijft radiaal uit te breiden op dag 2 (D2) en dag 4 (D4) van de cultuur. <img src="/files/ftp_upload/2695/2695fig5.jpg" alt="Figuur 5" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figuur 5"> Figuur 5. Beelden van follikelgroei. Representatieve beelden ofsecondary follikel groei in de FA-IPN op dag 0 (A), 4 (B), 6 (C) en 8 (D) van de cultuur. Na 8 dagen werden antrale follikels gerijpt in vitro, en de daaruit voortvloeiende MII stadium eicellen worden weergegeven (E, het polaire lichaam wordt weergegeven met zwarte pijl). <img src="/files/ftp_upload/2695/2695fig6.jpg" alt="Figuur 6" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figuur 6"> Figuur 6. Fibrine degradatie werd geremd door aprotinine. Groeiende follikels op dag 2, 4, 10 en 12 zijn weergegeven in de eerste rij. Aprotinine bij concentraties 0,01 TIU / ml (tweede rij) en 0,1 TIU / ml werd toegevoegd aan het kweekmedium op dag 0, 2 en 4. Alleen follikel culturen met 0,01 TIU / ml aprotinine afgebroken na de fibrine aprotinine verwijdering en bereikte antrale stadium. Follikels gekweekt in 0,1 TIU / ml aprotinine niet groeien in de FA-IPN. <table border="1"><tbody><tr><td> Afkorting </td><td> Volledige naam </td></tr><tr><td> CO 2 incubator </td><td> 37 ° C incubator met 5% CO 2 </td></tr><tr><td> COC </td><td> Cumulus eicel complex </td></tr><tr><td> 3D </td><td> 3 dimensionale </td></tr><tr><td> DM </td><td> Dissection media </td></tr><tr><td> EGF </td><td> Epidermale groeifactor </td></tr><tr><td> FA-IPN </td><td> Fibrine-alginaat interpenetrerend netwerk </td></tr><tr><td> FBS </td><td> Foetaal runderserum </td></tr><tr><td> GM </td><td> Groeimedia </td></tr><tr><td> GV </td><td> Germinal vesicle </td></tr><tr><td> hCG </td><td> Humaan choriongonadotrofine </td></tr><tr><td> ITS </td><td> Insuline Transferrine Selenium te vullen </td></tr><tr><td> IVF schotel </td><td> Centrum goed 60 mm in vitro fertilisatie schotel </td></tr><tr><td> MM </td><td> Onderhoud media </td></tr><tr><td> MII stadium eicel </td><td> Metafase II stadium eicel </td></tr><tr><td> rFSH </td><td> Recombinant Folliculair Stimulerend Hormoon </td></tr><tr><td> TBS </td><td> Tris gebufferde zoutoplossing </td></tr><tr><td> TIU </td><td> Trypsine remmende eenheden </td></tr></tbody></table> Tabel 1. Afkortingen

<ol><li>Cortvrindt, R., Smitz, J., VanSteirteghem, A. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In-vitro+maturation%2C+fertilization+and+embryo+development+of+immature+oocytes+from+early+preantral+follicles+from+prepuberal+mice+in+a+simplified+culture+system%5BTitle%5D)+AND+%22Human+Reproduction%22%5BJournal%5D)">In-vitro maturation, fertilization and embryo development of immature oocytes from early preantral follicles from prepuberal mice in a simplified culture system.</a> Human Reproduction. 11, 2656-2666 (1996).</li>
<li>Smitz, J., Cortvrindt, R., Hu, Y. X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Epidermal+growth+factor+combined+with+recombinant+human+chorionic+gonadotrophin+improves+meiotic+progression+in+mouse+follicle-enclosed+oocyte+culture%5BTitle%5D)+AND+%22Human+Reproduction%22%5BJournal%5D)">Epidermal growth factor combined with recombinant human chorionic gonadotrophin improves meiotic progression in mouse follicle-enclosed oocyte culture.</a> Human Reproduction. 13, 664-669 (1998).</li>
<li>Xu, M., Banc, A., Woodruff, T. K., Shea, L. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Secondary+Follicle+Growth+and+Oocyte+Maturation+by+Culture+in+Alginate+Hydrogel+Following+Cryopreservation+of+the+Ovary+or+Individual+Follicles%5BTitle%5D)+AND+%22Biotechnology+and+Bioengineering%22%5BJournal%5D)">Secondary Follicle Growth and Oocyte Maturation by Culture in Alginate Hydrogel Following Cryopreservation of the Ovary or Individual Follicles.</a> Biotechnology and Bioengineering. 103, 378-386 (2009).</li>
<li>Smitz, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Current+achievements+and+future+research+directions+in+ovarian+tissue+culture%2C+in+vitro+follicle+development+and+transplantation%3A+implications+for+fertility+preservation%5BTitle%5D)+AND+%22Human+Reproduction+Update%22%5BJournal%5D)">Current achievements and future research directions in ovarian tissue culture, in vitro follicle development and transplantation: implications for fertility preservation.</a> Human Reproduction Update. 16, 395-414 (2010).</li>
<li>Shikanov, A., Xu, M., Woodruff, T. K., Shea, L. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Interpenetrating+fibrin-alginate+matrices+for+in+vitro+ovarian+follicle+development%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Interpenetrating fibrin-alginate matrices for in vitro ovarian follicle development.</a> Biomaterials. 30, 5476-5485 (2009).</li>
<li>West, E. R., Xu, M., Woodruff, T. K., Shea, L. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Physical+properties+of+alginate+hydrogels+and+their+effects+on+in+vitro+follicle+development%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Physical properties of alginate hydrogels and their effects on in vitro follicle development.</a> Biomaterials. 28, 4439-4448 (2007).</li>
<li>Kreeger, P. K., Fernandes, N. N., Woodruff, T. K., Shea, L. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Regulation+of+mouse+follicle+development+by+follicle-stimulating+hormone+in+a+three-dimensional+in+vitro+culture+system+is+dependent+on+follicle+stage+and+dose%5BTitle%5D)+AND+%22Biology+of+Reproduction%22%5BJournal%5D)">Regulation of mouse follicle development by follicle-stimulating hormone in a three-dimensional in vitro culture system is dependent on follicle stage and dose.</a> Biology of Reproduction. 73, 942-950 (2005).</li>
<li>Pangas, S. A., Saudye, H., Shea, L. D., Woodruff, T. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Novel+approach+for+the+three-dimensional+culture+of+granulosa+cell-oocyte+complexes%5BTitle%5D)+AND+%22Tissue+Engineering%22%5BJournal%5D)">Novel approach for the three-dimensional culture of granulosa cell-oocyte complexes.</a> Tissue Engineering. 9, 1013-1021 (2003).</li>
<li>Xu, M., West, E., Shea, L. D., Woodruff, T. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+of+a+stage-specific+permissive+in+vitro+culture+environment+for+follicle+growth+and+oocyte+development%5BTitle%5D)+AND+%22Biology+of+Reproduction%22%5BJournal%5D)">Identification of a stage-specific permissive in vitro culture environment for follicle growth and oocyte development.</a> Biology of Reproduction. 75, 916-923 (2006).</li>
<li>Xu, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Encapsulated+Three-Dimensional+Culture+Supports+Development+of+Nonhuman+Primate+Secondary+Follicles%5BTitle%5D)+AND+%22Biology+of+Reproduction%22%5BJournal%5D)">Encapsulated Three-Dimensional Culture Supports Development of Nonhuman Primate Secondary Follicles.</a> Biology of Reproduction. 81, 587-594 (2009).</li>
<li>West, E. R., Shea, L. D., Woodruff, T. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Engineering+the+follicle+micro+environment%5BTitle%5D)+AND+%22Seminars+in+Reproductive+Medicine%22%5BJournal%5D)">Engineering the follicle micro environment.</a> Seminars in Reproductive Medicine. 25, 287-299 (2007).</li>
<li>Xu, M., Kreeger, P. K., Shea, L. D., Woodruff, T. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tissue-engineered+follicles+produce+live%2C+fertile+offspring%5BTitle%5D)+AND+%22Tissue+Engineering%22%5BJournal%5D)">Tissue-engineered follicles produce live, fertile offspring.</a> Tissue Engineering. 12, 2739-2746 (2006).</li>
<li>Ebisch, I. M. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Review+of+the+role+of+the+plasminogen+activator+system+and+vascular+endothelial+growth+factor+in+subfertility%5BTitle%5D)+AND+%22Fertility+and+Sterility%22%5BJournal%5D)">Review of the role of the plasminogen activator system and vascular endothelial growth factor in subfertility.</a> Fertility and Sterility. 90, 2340-2350 (2008).</li>
</ol>

De gepresenteerde ovariële follikel inkapseling methode in een FA-IPN maakt follikel cultuur in een 3D omgeving in vitro. Een FA-IPN is een dynamische, cel-responsieve matrix waarin de aanvankelijke mechanische eigenschappen worden bepaald door de combinatie van beide fibrine en alginaat. Tijdens de cultuur, de ingekapselde follikel activeert proteases dat slechts een onderdeel van het IPN, de fibrine, wat resulteert in een geleidelijk afnemende gel stijfheid die wordt bijgedragen uitsluitend door de resterende...

<table><tbody><tr><td>Fetuïne</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>F3385</td><td></td></tr><tr><td>FBS</td><td>Invitrogen</td><td>10082-139</td><td></td></tr><tr><td>Aprotinine</td><td>Roche Group</td><td>10236624001</td><td></td></tr><tr><td>CaCl&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;</td><td>Wako Pure Chemical Industries, Ltd.</td><td>039-00475</td><td>40 mM</td></tr><tr><td>EGF</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A412</td><td></td></tr><tr><td>rFSH</td><td>National Institute of Diabetes and Digestive and Kidney Diseases</td><td></td><td></td></tr><tr><td>hCG</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>CG-5</td><td></td></tr><tr><td>Hyaluronidase</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A1603</td><td></td></tr><tr><td>ITS</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>I1884-1VL</td><td></td></tr><tr><td>L-15</td><td>GIBCO, by Life Technologies</td><td>11415</td><td></td></tr><tr><td>&amp;alpha;MEM+Gluta MAX</td><td>GIBCO, by Life Technologies</td><td>32561</td><td></td></tr><tr><td>Pen-Strep</td><td>Cellgro</td><td>30-002-CI</td><td></td></tr><tr><td>TBS</td><td>Pierce, Thermo Scientific</td><td>28379</td><td></td></tr><tr><td>Tisseel Fibrine kit</td><td>Baxter Internationl Inc.</td><td>921030</td><td></td></tr><tr><td>Natriumalginaat</td><td>FMC BioPolymers</td><td>LF200DL</td><td>Mw 418kDa</td></tr></tbody></table>

een methode voor ovariële follikel encapsulation en cultuur in een proteolytisch afbreekbare 3 dimensionale systeem

A Method for Ovarian Follicle Encapsulation and Culture in a Proteolytically Degradable 3 Dimensional System

De ovariële follikel is de functionele eenheid van de eierstok dat seks hormonen afscheidt en ondersteunt de eicel rijping. In vitro follikel technieken bieden een tool om model follikel ontwikkeling om de fundamentele biologie te onderzoeken, en worden verder ontwikkeld als een techniek om de vruchtbaarheid te behouden in de kliniek 1-4. Onze in-vitro-cultuur systeem maakt gebruik van hydrogels in om de inheemse ovariële omgeving na te bootsen door het handhaven van de 3D-folliculaire architectuur, cel-cel interacties en paracriene signalen dat de directe follikelontwikkeling 5. Voorheen werden follikels met succes gekweekt in alginaat, een inert algen-afgeleide polysaccharide die gelering ondergaat met calcium-ionen 6-8. Alginaat hydrogelen gevormd bij een concentratie van 0,25% w / v waren de meest tolerante voor follikel cultuur, en behield de hoogste ontwikkelingscompetentie 9. Alginaat hydrogels zijn niet afbreekbaar zijn, dus een toename van het follikel diameter resulteert in een drukkracht op de follikel dat de follikelgroei 10 van invloed kan zijn. We vervolgens ontwikkelden een cultuur gebaseerd op een fibrine-alginaat interpenetrerend netwerk (FA-IPN), waarin een mengsel van fibrine en alginaat tegelijkertijd worden gegeleerd. Deze combinatie zorgt voor een dynamische mechanische omgeving, omdat beide componenten bijdragen aan de stijfheid matrix in eerste instantie, maar proteasen afgescheiden door de groeiende follikel degraderen fibrine in de matrix waardoor alleen alginaat om ondersteuning te bieden. Met het IPN, kan de alginaat inhoud moet lager dan 0,25%, wat niet mogelijk is met alginaat alleen 5. Dus, als de follikel groeit, zal het ervaren een verminderde drukkracht ten gevolge van de verminderde gehalte aan vaste stoffen. Hierin beschrijven we een inkapseling methode en een in-vitro-cultuur systeem voor follikels in de eierstokken binnen een FA-IPN. De dynamische mechanische omgeving bootst de natuurlijke ovariële klimaat waarin kleine follikels wonen in een rigide cortex en verhuizen naar een meer tolerante medulla als ze in omvang toenemen 11. De afbreekbare component kan worden bijzonder kritisch voor de klinische vertaling, om de meer dan 10 6-voudige toename in het volume dat de menselijke follikels normaal ondergaan in vivo te ondersteunen.

Een nieuwe methode voor ovariële follikel inkapseling in een 3D-fibrine-alginaat interpenetrerend netwerk wordt beschreven. Dit systeem combineert een structurele ondersteuning met proteolytische degradatie van de ontwikkeling van onvolgroeide follikels steun aan rijpe eicellen te produceren. Deze methode kan worden toegepast op de cultuur cel aggregaten tot cel-cel contacten, zonder beperking van de uitbreiding te behouden.

Een methode voor ovariële follikel Encapsulation en cultuur in een proteolytisch Afbreekbare 3 dimensionale systeem

Het eierstokfollicikel is de functionele eenheid van de eierstok die geslachtshormonen secreteert en de rijping van de oöcyt ondersteunt. In vitro follicikeltechnieken bieden ...

Dit protocol beschrijft een nieuwe inkapselingsmethode van eierstokfolliculi in een interpenetrerend netwerk van fibrine-alginaat voor in vitro kweken. Een secundaire follikel bestaat uit een centraal gelegen oöcyt omringd door verschillende lagen somatische cellen die de ontwikkeling van de oöcyt ondersteunen; de inkapseling en kweek van de follikel in een driedimensionale omgeving maakt expansie van de follikel mogelijk, terwijl de communicatie tussen meerdere cellulaire compartimenten wordt ondersteund en de sferische structuur van de follikel behouden blijft. In de eerste stap van dit protocol worden secundaire folliculi geïsoleerd uit eierstokken van 16 dagen oude muizen met behulp van de druppelmethode.Spoel de follikels af en breng ze over naar een inkapselingsoplossing. Aspireer elke follikel met een fibrinogeen-alginaatoplossing, pipetteer deze in een trombine-calciumoplossing en laat de kralen crosslinken voor de paraform-methode. Breng individuele follikels over in druppels fibrinogeen-alginaatoplossing op een met paraform gecoate glazen objectglas en voeg trombine-oplossing toe om de F-A-I-P-N crosslinking te initiëren.Breng vervolgens de ingekapselde follikels over naar een groeimedium en maak beelden van de ingekapselde follikel in het FA IPN. Aangezien dit systeem structurele ondersteuning combineert met biologische responsiviteit om de groei en ontwikkeling van onrijpe follikels voor de productie van eicellen te ondersteunen, kan het worden toegepast voor de kweek van celaggregaten om cel-celcontacten te behouden zonder de expansie te beperken. Hallo, mijn naam is Lonnie Shea en via een samenwerking met Three Wood Drip hebben we een kweeksysteem ontwikkeld voor de in vitro rijping van eierstokfollikels.Deze kweekstudie weerspiegelt een echte samenwerking tussen bioengineering en reproductieve biologie. Vandaag zullen de mensen die dit kweeksysteem daadwerkelijk hebben ontwikkeld de methoden aan u presenteren. Allereerst is Ariel Checkoff een postdoctoral fellow in bioengineering die het biomateriaalsysteem heeft ontwikkeld.Vervolgens is Minsu, een reproductiebioloog bij de afdeling Verloskunde en Gynaecologie, die de verwerkingsprocedures voor het eierstokweefsel heeft ontwikkeld. Samen zullen zij u de methoden presenteren voor het daadwerkelijk inkapselen en kweken van eierstokweefsel. Het belangrijkste voordeel van de beschreven techniek ten opzichte van bestaande methoden, zoals de standaardkweek op een vlak plastic oppervlak, is dat het fibrine-alginaatsysteem de driedimensionale architectuur van het follikel ondersteunt, terwijl het een mechanisch dynamische omgeving biedt voor het snel expanderende follikel.De dynamische mechanische micro-omgeving in het huidige apparaat biedt extra voordelen wanneer deze technologie wordt vertaald van een muismodel naar potentiële klinische toepassingen, aangezien menselijke follikels een veel uitgebreidere groei nodig hebben om rijpe en bevruchtbare eicellen te produceren. Voor optimale resultaten moeten alle dissecties worden uitgevoerd in L 15-gebaseerde media voor pH-controle, op verwarmde plateaus van 37 °C voor temperatuurcontrole en in een cleanbench om bacteriële contaminatie te minimaliseren. Breng vers gedissecteerde eierstokken over naar een nieuwe 35 millimeter Petrischaal met 1 tot 2 milliliter onderhoudsmediums bevattend 0,1% collagenase en 0,1% DNase en incubeer deze gedurende 15 minuten in een koolstofdioxide-incubator.Was de monsters in DM om de collagenase te verwijderen en breng ze vervolgens over naar een Petri-schaal van 35 millimeter met verse DM om de follikels uit het ovarium te isoleren. Tik de follikels voorzichtig los van het gehele ovarium met behulp van twee naalden met een gauge van 28 5 8 die zijn bevestigd aan insulinespuiten. Verwijder zoveel mogelijk stromacellen zonder de integriteit van de follikel aan te tasten.Disseceer per eierstok 20 tot 40 secundaire follikels met een diameter van 130 tot 150 micron. Deze follikels hebben gewoonlijk twee tot drie lagen granulosecellen. Voeg vervolgens aan een IVF-schaal één milliliter mm toe in de centrale put en drie milliliter mm in de buitenring.Breng de intacte follikels met de pipette over naar de buitenring van de IVF-schaal. Bewaar deze IVF-schaal in de incubator bij 37 °C en 5% koolstofdioxide. Nadat alle follikels zijn verzameld.Inspecteer de monsters onder een dissectiemicroscoop met een vergroting van vijf tot acht keer; selecteer follikels met een grootte van 130 tot 150 micron die een gezonde morfologie vertonen, waaronder twee tot drie lagen granulosa-cellen, geen scheiding tussen de oocyten en granulosa-cellen, en intacte, ronde oocyten. Breng de gezonde follikels over naar het midden van een andere IVF-schaal voor encapsulatie. Voor de druppelmethode van follikelencapsulatie voegt u één milliliter trombine-oplossing van 50 international units per milliliter toe aan de middelste put van een IVF-schaal; ontdooi de fibrinogeen-stockoplossing en bewaar deze op ijs.Breng het fibrinogeen vlak voor de inkapseling naar kamertemperatuur. Direct voor gebruik. Bereid de fibrinogeen-alginaatoplossing door 1× PBS met 0,5% alginaat en 50 mg/mL fibrinogeen te mengen.Fibrinogeen in een verhouding van twee op één op één in een steriele microcentrifugebuis van 1,7 milliliter. Vortex de licht troebele oplossing voorzichtig en centrifugeer deze om verdamping te verminderen. Schakel de verwarmingsplaat van de dissectiescoop uit en plaats het in de hoek van de buitenring van een IVF-schaal.90 µL fibrinogeen-alginaatoplossing voor inkapseling en een tweede druppel van 10 µL voor een wasstap. Breng 10 tot 15 follikels over naar de druppel van 10 µL met een minimale hoeveelheid kweekmedium, meng deze snel met een minimale hoeveelheid oplossing, breng alle follikels over naar de druppel van 90 µL en meng. Aspireer één follikel in 5 µL fibrinogeen-alginaatoplossing met een 10 µL tip en laat de fibrinogeen-alginaatoplossing samen met de follikel vallen in de thrombine-oplossing in het midden van de IVF-schaal. Herhaal deze stap totdat alle follikels zijn ingekapseld.Laat de kralen vijf tot zeven minuten staan om de gel in de trombine-calciumoplossing te crosslinken. De kralen worden donkerder naarmate er fibrine wordt gevormd. Draag de kralen over naar het onderhoudsmedium, beginnend met de donkerste kralen.Incubeer eerst gedurende 15 tot 30 minuten bij 37 °C en spoel het resterende trombine weg. Breng de beads vervolgens over naar een kweekplaat en maak beelden. Bereid onmiddellijk de fibrinogeen-alginaatoplossing voor door 0,5% alginaat en 50 mg/mL te mengen.Fibrinogen in een verhouding van één op één in een steriele microcentrifugebuis van 1,7 milliliter; pipetteer 7,5 µL druppels van het fibrinogeen-alginaatmengsel op het parfumgecoate glasplaatje met een afstandhouder van drie millimeter en breng één follikel over in elke druppel met een minimale hoeveelheid medium.Voeg 7,5 µL trombine-oplossing toe aan elke druppel zonder de druppel aan te raken of met het follikel te mengen, aangezien de gel vrijwel onmiddellijk wordt gevormd. Dek de gels af met het tweede met parafilm beklede glasplaatje. Schuif en plaats deze ondersteboven in een schaal van 100 mm in een incubator voor vijf minuten.Verplaats de kleverige beads met een pincet, indien nodig, naar onderhoudsmedium en vervolgens elke twee dagen naar een kweekputje. Beeld de gekweekte follikels af met een lichtmicroscoop en meet de diameter van de follikels met ImageJ. Vervang daarnaast elke twee dagen de helft van het groeimedium door vers geëquilibreerd groeimedium. Na acht dagen kweek zou de hydrogel helder moeten zijn als gevolg van de volledige degradatie van de fibrinecomponenten en kunnen de follikels hun uiteindelijke afmetingen bereiken met een diameter groter dan 400 microns. Verwijder het groeimedium en voeg 100 µL van 10 IE/mL toe.Voeg alginaatlyase toe aan het alpha-medium om het alginaat af te breken. Plaats de plaat gedurende 25 tot 30 minuten in een incubator. Verwijder vervolgens de follikels uit de gedeeltelijk opgeloste kraaltjes met een stompe tip.Breng de follikels over naar de buitenste ring van een IVF-schaaltje met dissectiemedium om de alginaatbinding uit te wassen, en breng ze vervolgens over naar de binnenste ring. Breng de antrale follikels nu over naar de buitenste en vervolgens de binnenste ring van het IVF-schaaltje met rijpingmedium dat HCG en EGF bevat en incubeer deze in een kooldioxide-incubator gedurende 15 tot 16 uur. Controleer de culturen op expansie van cumuluscellen om de cumuluscellen te verwijderen.Voeg IDE-oplossing toe tot een eindconcentratie van 0,1 milligram per milliliter en incubeer gedurende twee tot drie minuten bij 37 °C met 5% koolstofdioxide. Gebruik een mondpipet om de oocyten van de cumuluscellen te bevrijden en bepaal vervolgens hun rijpingsstadium onder de microscoop.Alginaat is een natuurlijk biomateriaal dat geschikt is voor in vitro follikelkweek vanwege de milde eigenschappen en biochemische kenmerken zoals maaswijdte, regelbare stijfheid en biologische inertie. Kleine ingekapselde follikels ervaren aan het begin van de kweek een lage compressiekracht in alginaat. Naarmate de follikel echter uitbreidt, neemt het verplaatste volume in de kraal toe, wat resulteert in een grotere compressiekracht in de tegenovergestelde richting van de follikeluitbreiding.De ketens van individuele polymeren zijn volledig verstrengeld in de fibrilline-alginaatoplossing vóór het cross-linken. Beide componenten van F-A-I-P-N beginnen onmiddellijk te cross-linken zodra ze worden blootgesteld aan het mengsel van trombine en calcium; follikels degraderen de fibrinecomponent van het F-A-I-P-N tijdens de kweekperiode, wat wordt aangetoond door een duidelijke cirkel rondom de follikel. De 3D-architectuur van de follikel wordt ondersteund door het resterende alginaat.Deze afbeeldingen tonen de groei van secundaire follikels in F-A-I-P-N over een tijdsverloop van dag 0, 4, 6 en acht, leidend tot de resulterende M twee stage X. Met polaire lichamen; aprotinine is een protease-remmer die aan het kweekmedium kan worden toegevoegd om de afbraak van fibrine te vertragen. Wanneer 0,01 TIU per milliliter aprotinine tijdens de eerste vier dagen aan het kweekmedium wordt toegevoegd, zijn de follikels niet in staat om de matrix af te breken. Na verwijdering van het aprotinine hervatten de follikels de groei en bereiken ze het antrale stadium.Echter, bij follikels die aanvankelijk werden gekweekt in een hogere concentratie aprotinine, werd de groei geremd. Vandaag hebben we een nieuwe techniek gedemonstreerd voor het variëren van follikelencapsulatie en in vitro kweek in een driedimensionaal fibrine-alginaatnetwerk. Het systeem behoudt niet alleen de intacte follikelstructuur gedurende de kweek, maar ondersteunt ook succesvolle folliculaire genese in vitro, wat resulteert in M twee stage O site.Deze technologie is van groot belang om te ontdekken hoe het eierstokfollicikel werkt en heeft het potentieel om in bredere zin fertiliteitsopties te bieden aan jonge kankerpatiënten. Dit culturesysteem kan worden gebruikt voor de kweek van celclusters of voor de kweek van cellen terwijl deze zich organiseren tot structuren. Deze 3D-culturesystemen zullen waardevolle instrumenten bieden voor de moleculaire dissectie van weefselgroei.

a-method-for-ovarian-follicle-encapsulation-culture-proteolytically

Research

JoVE Journal

Bioengineering

Bio-engineering

Cultuur van normale cellen in hun drie-dimensionale context is een alternatieve methode voor vroege gebeurtenissen die nodig is voor cellulaire transformatie en tumorvorming te bestuderen. Deze methode wordt gebruikt om de normale eierstokken en oviductal cellen groeien naar vroege gebeurtenissen bij eierstokkanker vorming te bestuderen.

Alginaat Hydrogelen voor Three-Dimensional orgelcultuur van de eierstokken en eileiders

This video describes the protocols for encapsulating porcine cumulus-oocyte complexes (COCs) in fibrin-alginate beads to establish a 3D culture.  This in-vitro maturation system maintains normal cell-to-cell communication, ensuring oocyte maturation and retaining viability.

3D Culture of Porcine COCs: A Procedure to Encapsulate Cumulus Oocyte Complexes in Fibrin-alginate Polymer Hydrogel Beads

In this video, we describe a protocol for the encapsulation of porcine oocytes in hydrophobic microbioreactors.

Liquid Marble Microbioreactor System: A 3D Culture Protocol for Encapsulation of Porcine Oocytes

Dit protocol beschrijft de primaire cultuur / co-cultuur van de muis eierstokweefsel, met behulp van de eierstokken van pasgeboren muizen en individuele ovariële follikels van prepuberale muizen. De kweektechnieken ondersteunen In een sterk fysiologische wijze, waardoor onderzoek naar het effect van extrinsieke middelen op de eierstok en interacties tussen ovariële follikels.

Cultuur en co-cultuur van de Muis eierstokken en ovariële follikels

Hier worden twee protocollen gepresenteerd voor de inkapseling van varkensocyten in 3D-kweekomstandigheden. In de eerste worden cumulus-eicellencomplexen (COC's) ingekapseld in fibrin-alginaatkralen. In de tweede zijn ze ingesloten met gefluoreerde ethyleenpropyleenpoederdeeltjes (microbioreactoren). Beide systemen zorgen voor optimale omstandigheden om hun 3D-organisatie te onderhouden.

Proteolytisch afgebroken alginaat hydrogels en hydrofobe microbioreactoren voor porcine Oocyte Inkapseling

Dit protocol beschrijft een nieuw driedimensionaal (3D) kweekmodel waarbij gebruik wordt gemaakt van een tyramine-gekoppelde hyaluronzuurhydrogel om preantrale follikels uit de eierstok van de muis in te kapselen en te kweken. We beschrijven ook twee benaderingen van cryopreservatie van de ovariële follikel door vitrificatie.

Toepassing van een nieuwe hyaluronzuurhydrogel voor driedimensionale follikelcultuur en methodologie voor cryopreservatie van de ovariële follikel bij muizen

We beschrijven methoden om ovariële follikels te kweken in een nieuwe steigervrije agaroseschimmel die een aanvulling vormt op in vitro gametogenese.

Productie en gebruik van aanpasbare agarose-mallen voor steigervrije ovariële follikelcultuur van muizen

We beschrijven methoden om somatische cellen van muis-ovariumcellen te isoleren uit een stroma-verrijkte fractie van de eierstok en om somatische organoïden van muis-ovarium te genereren met een steigervrije benadering.

Onderzoek naar de ovariummicroomgeving: Methoden voor isolatie, 2D-kweek en organoïde kweek van somatische cellen van muis eierstokcellen

Een methode wordt beschreven voor de bereiding van een 3-dimensionale matrix van collageen type I en primaire humane fibroblasten. Deze organotypische gel dient als nuttige substraat invasieve celmigratie beoordelen omdat het bootst basiskenmerken van weefsel stroma en vatbaar is voor vele vormen van microscopie.

Organotypische Collageen I Assay: een Smeedbaar Platform to Cell Gedrag beoordelen in een 3-dimensionale Context

Zelf-geassembleerde monolagen (SAM) gevormd uit lange keten alkaan thiolen op goud bieden goed gedefinieerde substraten voor de vorming van eiwit patronen en cel opsluiting. Microcontact printen van hexadecanethiol met behulp van een polydimethylsiloxaan (PDMS), stempel, gevolgd door opvulling met een glycol-beëindigde alkaan thiol monomeer produceert een patroon waarbij eiwitten en cellen adsorberen alleen aan de gestempelde hexadecanethiol regio.

Het creëren van twee-dimensionale Patterned Substraten voor eiwit en Cell opsluiting

Leer een methode voor het inkapselen van ovariale follikels in een 3D fibrine-alginaatnetwerk voor in-vitrocultuur. Deze techniek ondersteunt de groei en rijping van oöcyten bij muizen.

Een methode voor ovariële follikel Encapsulation en cultuur in een proteolytisch Afbreekbare 3 dimensionale systeem

Meer video's verkennen