23 juni 2011
In utero elektroporatie zorgt voor een snelle genafgifte in een ruimtelijk-temporeel en gecontroleerde wijze in de zich ontwikkelende centrale zenuwstelsel (CZS). Hier beschrijven we een groot aanpassingsvermogen in utero electroporatie protocol dat gebruikt kan worden om expressie constructen te leveren in meerdere embryonale CNS domeinen, waaronder de telencephalon, diencephalon en netvlies.
Het algemene doel van deze procedure is om de genexpressie in het neuronale embryonale centrale zenuwstelsel te veranderen. Dit wordt bereikt door eerst zwangere vrouwtjes te verkrijgen en ze voor te bereiden op een operatie. De baarmoederhoorns worden vervolgens blootgelegd door een abdominale incisie te maken.
Zodra de embryo's zijn blootgelegd, wordt DNA geïnjecteerd in de laterale ventrikel, derde ventrikel of subretinale ruimte. De laatste stap van de procedure is om een elektrische stroom toe te passen op het embryo via de baarmoederwand, waarbij de paddle-elektroden zo worden gepositioneerd dat de positieve pool over de gewenste plaats van transfectie wordt geplaatst. Uiteindelijk kunnen resultaten worden verkregen die de proliferatie, migratie en differentiatie van neuroprogenitorcellen in de tline kelon stervende kelon en retina laten zien door middel van immunofluorescentiemicroscopie.
Het belangrijkste voordeel van deze techniek of bestaande methoden, zoals de degeneratie van transgene muizen, is dat het snel is, hogere doorvoerstudies mogelijk maakt en minder kost. Deze methode kan helpen bij het beantwoorden van belangrijke vragen op het gebied van neurale ontwikkeling, zoals welke genen neurale progenitorcellen reguleren, celproliferatie, celbestemmingspecificatie, neuronale differentiatie en celmigratie. De implicaties van deze techniek kunnen zich uitstrekken tot een beter begrip van de genetische paden die defecten in de ontwikkeling van het centrale zenuwstelsel onderliggen, waarvan vele resulteren in cognitieve beperkingen en gedragsstoornissen bij mensen. Dit gaat verder dan alleen het nut ervan bij het begrijpen van de ontwikkeling van het centrale zenuwstelsel.
Deze techniek kan ook worden toegepast op andere orgaansystemen zoals het zich ontwikkelende perifere zenuwstelsel, hart en placenta. Het kan ook worden toegepast om ziektemodellen bij muizen en andere modelorganismen zoals kip en xip te bestuderen. Over het algemeen is het grootste obstakel voor succes voor personen die nieuw zijn met deze techniek de overleving van embryo's. Er moet zorgvuldig worden omgegaan met het manipuleren, injecteren en poren van de embryo's.
We hadden voor het eerst het idee voor deze methode toen we een snelle manier nodig hadden om genexpressie te manipuleren in het embryonale telencephalon en de retina. We ontwikkelden deze techniek in ons laboratorium door de techniek te wijzigen die oorspronkelijk werd beschreven door Sal, gepubliceerd in het tijdschrift Developmental Biology in 2001. We werkten ook samen met een crashlab om dit protocol ook in de zich ontwikkelende dilon vast te stellen.
De visuele demonstratie van deze methode is cruciaal, omdat de injectie- en elektroporatiefasen moeilijk te leren zijn omdat ze een zeer zorgvuldige manipulatie van de embryo's vereisen en de injectieplaatsen soms erg klein kunnen zijn. Voorbeeld, de subretinale ruimte. Het demonstreren van de procedure zal vandaag worden gedaan door Rajiv, een postdoc van het Sherman's Laboratory. Om te beginnen, reinig en steriliseer alle chirurgische gereedschappen. Vul vervolgens spuiten met fysiologische zoutoplossing en lactaatringer-oplossing en plaats ze op een verwarmingskussen om op te warmen in het operatiegebied.
Steriliseer een verwarmingskussen met 70% ethanol en bedek het vervolgens met een gesteriliseerde, kreukvrije gaaspad. Stel het verwarmingskussen in op 37 graden Celsius. Plaats het dier in een kleine anesthesiekamer en anesthetiseer het door 5% isofluorine met zuurstof bij een liter per minuut via een verdamper te leveren.
Zorg ervoor dat de isofluorine-uitlaat wordt opgevangen met behulp van een opvangsysteem. Zodra de ademhaling van het dier diep en regelmatig is, verwijdert u het uit de kamer. Gebruik teen knijpen en oogknipreflexen.
Om volledige anesthesie te garanderen. Plaats het anesthetiseerde dier op zijn buik en gebruik een ademhalingsbuis om tijdens de operatie 2,25% ijsfluorine te leveren. Injecteer buprenorfine in een concentratie van 0,1 milligram per kilogram lichaamsgewicht subcutaan aan de achterkant van de nek.
Blijf de ademhaling van het dier controleren en pas de stroom isofluorine indien nodig aan. Plak vervolgens een plek tape over de borst van het anesthetiseerde dier en controleer opnieuw op een terugtrekkingsreactie door de achterpoot met stompe pincetten te knijpen. Gebruik een steriele wattenstaafje om een dikke laag de cream op de buik te smeren en zorg ervoor dat de ondervacht volledig is bedekt.
Laat de cream ongeveer drie minuten staan en controleer periodiek op haarverwijdering. Gebruik een steriele wattenstaaf om een steriele gaaspad nat te maken met steriel water en veeg het haar van de buik. Steriliseer vervolgens de snede met chloorhexidine en meer water.
Droog de buik met schone steriele gaas. Herhaal deze stap met 70% ethanol met behulp van vers gesteriliseerde katoenen gaas. Bereid u voor op de operatie door chirurgische kledij aan te trekken om de baarmoederhoorns bloot te leggen.
Loceer eerst de linea alba als de zwakke lijn onder de huid op de middellijn. Trek de huid met behulp van pincetten weg van de buikwand en maak een kleine rechte insnijding vanaf het midden van de buik naar beneden met behulp van rechte pincetten en schaar. Herhaal het proces met het peritoneum. Pak het peritoneum vast met de pincetten.
Trek weg en snijd vervolgens een insnijding die net groot genoeg is om de baarmoeder doorheen te trekken. Plaats steriele gaas met een kleine verticale snede over de insnijding en maak het vochtig met warm steriel zoutoplossing. Schuif vervolgens de pincetten in de insnijding en lokaliseer de baarmoeder terwijl de insnijding met de pincetten open wordt gehouden.
Pak de baarmoeder tussen de eerste en tweede zichtbare embryo's vast en trek beide zijden van de baarmoederhoorns op het gaas. Tel het aantal embryo's en noteer eventuele reabsorptie of embryo's met een kleine lichaamsgrootte. Om het juiste aantal DNA-injecties voor te bereiden, bevochtigt u de baarmoederhoorns met zoutoplossing en brengt u een baarmoederhoorn voorzichtig te
Bekijk het volledige transcript en krijg toegang tot duizenden wetenschappelijke video's
Dit artikel beschrijft een protocol voor in utero electroporatie, een techniek die nauwkeurige genoverdracht in het ontwikkelende centrale zenuwstelsel (CZS) mogelijk maakt. De methode maakt de gerichte introductie van expressieconstructen in verschillende embryonale regio's van het CZS mogelijk, waaronder het telencephalon, diencephalon en de retina.
Snelle, regio-specifieke genoverdracht in embryonale modellen van het CZS is cruciaal voor het verminderen van risico's bij target-validatie en het versnellen van vroeg neuro-ontwikkelingsonderzoek. In utero electroporatie maakt high-throughput, kostenefficiënte manipulatie van genexpressie in meerdere CZS-gebieden mogelijk, wat bijdraagt aan de voorspellende betrouwbaarheid van mechanistische studies. Deze mogelijkheid stroomlijnt de overgang van discovery biology naar de ontwikkeling van preklinische modellen in neurofarmaceutische pipelines.
In utero elektroporatie slaat een brug tussen vroege ontdekkingen en preklinisch onderzoek door snelle, gerichte genlevering in embryonale CNS-modellen mogelijk te maken.