Name: Profilering Thiol Redox Proteome Met behulp van Isotope Tagging massaspectrometrie (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-03-24T14:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 7 s
Description: Leer thiol redox proteoom profilering met isotoop tagging massaspectrometrie bij tomatenplanten na infectie met Pseudomonas syringae. Deze methode helpt onderzoekers om redox-gereguleerde eiwitten op grote schaal te analyseren.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

De auteurs willen graag Dr Greg Martin (Cornell University) en zijn groep te bedanken voor het verstrekken van de DC3000 stam, tomaat zaden, en advies. Zij zouden ook graag bedanken Dr Zhonglin Mou voor hulp bij de DAB-protocol en de Proteomics Division bij UF Interdisciplinair Centrum voor biotechnologisch onderzoek voor hulp bij de methode ontwikkeling. Het protocol voor eiwitextractie werd gewijzigd van Hurkman en Tanaka 16. Het protocol betreffende cysTMT etikettering, stappen 4 tot 6 werd aangepast op basis van de originele Thermo Fisher Scientific Pierce handleiding van het product 17. Dit werk werd gefinancierd door National Science Foundation (MCB 0818051 naar S Chen).

1. Groeiende Zaailingen en voorbereiden van bacteriën <ol><li> Zaailingen ontkiemd in MetroMix 500 grondmengsel (BWI ​​Companies) in een groeikamer (160 umol fotonen m -2 s -1 met een fotoperiode van 8 uur licht bij 22 ° C en 16 uur donker bij 20 ° C gedurende 1 week. Relatieve vochtigheid was ingesteld op 70%. zaailingen werden besproeid met water uit de kraan als nodig is om de bodem te houden uitdroogt. </li><li> Twee zaailingen van vergelijkbare grootte worden vervolgens getransplanteerd 4 &quot;diameter potten met de MetroMix 500 bodem en gekweekt nog 3 weken in dezelfde voorwaarden als 1.1. </li><li> Pseudomonas syringae (PST) is in het begin T-strepen op Kings B Medium (KBM) platen (per liter: 20 g proteosepepton, 0,1975 g MgSO 4, 1% glycerol, 1,5 g K 2 HPO 4, 18 g Agar) en geteeld voor twee dagen bij 28 ° C. Een enkele kolonie wordt verzameld, gemengd in 300μl vloeibare Kings B Medium (20 g proteosepepton, 0,1975 g MgSO 4 </sub&gt;, 10 ml glycerol, 10 ml 100x K 2 HPO 4 voorraad (1,5 g K 2 HPO 4 op de 10 ml H 2 O), en verspreid op een Kings B Medium plaat. Dit wordt gekweekt &#39;s nachts op 28 ° C. </li><li> De bacteriën inoculum wordt bereid door het afschrapen van de gekweekte bacteriën uit de KBM plaat in 20 ml H2O Een OD 600 0,03 (~ 10 6 cfu / ml) bereid in 1 liter inoculatie buffer (10 mM MgCl2 + 400 pi Silwett-70). Inenting buffer minus bacteriën werd vervaardigd voor de beheersing oplossing. </li></ol> 2. Enten van tomaat met Pst en H 2 O 2 Histochemische Stain <ol><li> Vier weken oude planten werden geïnoculeerd door dompelen in bovenstaande inoculatie oplossing gedurende 30 seconden. Doorzichtige plastic zakken werden over de planten direct na inenting. </li><li> 3&#39;-3 &#39;diaminobenzidine (DAB) vlek 11 werd bereid (1 mg / ml DAB in H2O, pH 3,8 (HCl)) drie degen voor gebruik om volledige solubilisatie bereiken. De oplossing werd geschud te mengen bij kamertemperatuur. </li><li> Vierentwintig uur na de behandeling werd het volledig uitgevouwen blad verwijderd, geplaatst in DAB vlek epidermale omhoog en vacuum geïnfiltreerd gedurende 15 minuten. De bladeren werden vervolgens in het donker bij kamertemperatuur gedurende de nacht voor de kleuring. </li><li> Bladeren werden gekookt in 95% ethanol gedurende 10 minuten en vervolgens bewaard in 75% ethanol. </li></ol> 3. Eiwitextractie <ol><li> Na de oogst, werden tomatenbladeren vermalen tot fijn poeder met vloeibare stikstof met behulp van mortier en een stamper. </li><li> 0,5 g weefsel toe 1,25 ml Tris pH 8,8 gebufferde fenol en 1,25 ml / g 0,5 extractiebuffer (0,1 M Tris-HCl pH 8.8, 10 mM EDTA, 0,9 M sucrose) vervolgens verder malen een paar minuten in een zuurkast. </li><li> Breng het extract om Oakridge centrifugebuis (Thermo Fisher Scientific Nalgene Company) en schud gedurende 2 uur bij kamertemperatuur. </li><li> Centrifugeer bij 5.000 xgen 15 ° C gedurende 10 minuten. Breng de top fenol fase om een ​​nieuwe schone buis. </li><li> Back-extract de waterfase met een gelijk volume fenol geëxtraheerd buffer; roeren op een schudapparaat gedurende 30 minuten. Centrifugeer en dragen het extract aan een nieuwe Falcon buis. </li><li> Herhaal de bovenstaande stap nog een keer en zet het extract om nieuwe Oakridge buis. </li><li> Neerslaan fenol geëxtraheerd eiwitten door toevoeging van 5 volumes van 0,1 M ammoniumacetaat in 100% methanol (bewaard bij -20 ° C). Vortex en incubeer bij -20 ° C voor de overnachting. </li><li> Verzamelt de eiwitpellet door centrifugeren bij 20.000 xg, 4 ° C gedurende 20 minuten. </li><li> Was de pellet 2x met koude 0,1 M ammoniumacetaat in methanol en 2 maal met 80% koude aceton. Voeg 1,5 ml koud 70% ethanol aan pellet en te schorten. Breng een 2 ml microcentrifugebuisje (USA Scientific) en gecentrifugeerd bij 14.000 rpm, 4 ° C gedurende 20 minuten. Verwijder de ethanol. </li><li> Droog de pellet kort in een SpeedVac concentrator en los op in een eiwit extractie buffer, bijvoorbeeld ReadyPrep eiwitextractie Kit Reagens 3 (8 M ureum, 4% CHAPS, 40 mM Tris-base, 2 M thioureum) (Bio-Rad). Centrifugeer bij 14.000 rpm en 20 ° C gedurende 30 minuten tot een pellet vormen. Gebruik de bovenstaande vloeistof. </li><li> Meet de eiwitconcentratie met behulp van een CB-X eiwit assay volgens de fabrikant de handleiding (Geno Technology). </li></ol> 4. Monstervoorbereiding en Peptide labeling met cysTMTs <ol><li> Bereid proteïnemonster in een concentratie van 2-5 pg / pl. Hier gebruiken we 100 ug eiwit per massa-tag, 20 ul-50 il monsters. Voor dit experiment alle 6 labels gebruikt. </li><li> Voeg gelijk volume alkylering buffer (100 mM Tris-HCl pH 7,5, 200 mM iodoacetamide) aan het proteïnemonster het vrije thiol groep geblokkeerd. Buffer moet vers worden bereid. Alkylering wordt uitgevoerd bij 37 ° C gedurende 1 uur. </li><li> Neerslaan van de eiwitten door 1 ml 80% koude aceton bij -20 ° C overnacht. Pellet het eiwit door centrifugeren bij 14.000rpm, 4 ° C gedurende 20 minuten. Was de pellet 3 maal met 80% aceton telkens vortexen. Verwijder de bovenstaande vloeistof en laat het drogen terwijl de lucht op het ijs. </li><li> De pellet in 50 ul lysis buffer (6 M ureum, 50 mM Tris base, 1 mM EDTA). 0,5 pi 100 mM Tris (2-carboxyethyl) fosfine (TCEP) wordt vervolgens toegevoegd aan de disulfidebindingen verminderen incuberen gedurende een uur bij kamertemperatuur. </li><li> Bereid labels door toevoeging van 20 pi van acetonitril de reageerbuizen de codes solubiliseren. Vortex en draaien tot op de bodem. </li><li> Spoel de extra TCEP met een Microcon 3KD centrifugaalfilter apparaat (Millipore). Voeg 50 ul monster Microcon 3KD kolom en 50 ul lysis buffer aan de kolom. Centrifugeer 15 minuten bij 10.000 xg en 4 ° C. Herhaal stap in totaal drie keer. Verwijder de kolom en omgekeerd in een schone buis. Centrifugeer 5 min bij 1000 x g en 4 ° C. </li><li> Controleer de pH. Indien nodig, breng de pH op 7.0-8.0 met 1 M HCl. </li><li> Voeg 5 pi de cysTMT reagens aan elk monster (De cysTMT reagens kit biedt 20 ul tags voor maximaal 500 ug eiwit. Deze methode maakt gebruik van 100 ug eiwit daarom maken we gebruik van een vijfde van de tag.). Laat de reactie doorgaan gedurende 2 uur bij kamertemperatuur. </li><li> Monsters werden gecombineerd met Laemmli monsterbuffer (Bio-Rad) in een 1:1 verhouding. </li></ol> 5. Verwijdering van niet-gereageerd Tag Sample Fractionering <ol><li> Monsters werden gedurende 5 min gekookt en gescheiden op een geprefabriceerde 12% polyacrylamidegel (Bio-Rad). De gel werd driemaal gewassen in 5 minuut met gefilterd H2O en gekleurd met Coomassie Blue (Bio-Rad) gedurende 1 uur. De gel was de-lood &#39;s nachts met H 2 O. </li><li> Twaalf fracties werden verzameld uit elke gel baan. Fracties werden bepaald door eiwitband concentraties. Fracties werden gehakt in 1mm stukjes en verzameld in een 1,5 ml buis. </li><li> Gel stukken waren de-gekleurd met 50% acetonitril en 0,1 M ammoniumbicarbonaat in H2 </sub&gt; O. Deze stap wordt herhaald totdat blauwe kleur uit gel stukken (~ 3-4 maal, 15 min per keer). </li><li> De gekleurde gel stukken werden gedroogd met 100% acetonitril (betrekking gel stuks) gedurende 15 minuten supernatant verwijderd en de stukken gedroogd met een SpeedVac. </li><li> Los trypsine (Promega) op 1:10 (trypsine: eiwit) verhouding in hetzelfde volume (als samengevoegde het label monster) van 25 mM ammoniumbicarbonaat. Bijvoorbeeld, 600 ug eiwit monster met een volume van 500 ul moet 60 pg trypsine opgelost in 500 pL 25 mM ammoniumbicarbonaat. </li><li> Voeg de trypsine oplossing voor de gel stukken en zet op het ijs te hydrateren. Als er stukjes vallen niet onder voeg 50 mM ammoniumbicarbonaat buffer. Na rehydratatie, incuberen bij 37 ° C gedurende 12-16 uur. </li><li> Verwijder de vloeistof eiwit uittreksel uit de bebroede monsters. </li><li> Stop de reactie en alle resterende eiwitten te verteren door het bedekken van gel stukken met 5% mierenzuur, 50% acetonitril .. Schudden gel stukken gedurende 20 min bij kamertemperatuur temperature. Breng de bovenstaande het geëxtraheerde eiwit monsterbuizen van 5,7. Twee keer Herhaal de extractie procedure. Droog de geëxtraheerde peptiden met de SpeedVac. </li></ol> 6. Voorbeeld Verrijking van cysTMT Labeled-peptiden <ol><li> Voeg een gradiënt van anti-TMT hars tot 0,5 ml buizen voor een 50% slurry. (Gradient werd bepaald uit band concentratie fractionering gel. Als een verzameling van fracties uit een donkere band, meer hars nodig. Fracties met een zwakkere band vereisen minder hars is minder eiwit.) </li><li> De hars wordt vervolgens driemaal gewassen met een kolom volume van 1 x Tris-gebufferde zoutoplossing (TBS) (25 mM Tris, 0,15 M NaCl, pH 7,2) (Pierce Thermo Scientific Eiwitten Products). </li><li> Voeg 200 ul 1xTBS aan elk monster. Monsters worden vervolgens toegevoegd aan anti-TMT hars (Thermo Scientific Pierce Eiwitten Products) en geroerd bij kamertemperatuur gedurende 2 uur, gevolgd door tuimelen overnacht bij 4 ° C. </li><li> Voeg monster kolom (TheRMO Wetenschappelijk Pierce Protein Research Products). </li><li> Was elke kolom drie keer met 1x 200 pi TBS. Dit wordt dan gevolgd door driemaal wassen met 0,05% CHAPS (opgelost in 1x TBS). </li><li> De kolom wordt dan drie keer gewassen met 4 M ureum 1x TBS. Tweehonderd microliter H2O wordt gebruikt om de kolom driemaal wassen. </li><li> Elk monster wordt driemaal uitgewassen met 200 pi 50 elutiebuffer% (50% acetonitril, 0,4% TFA). </li><li> Monsters worden vervolgens gedroogd in een vacuum concentrator. </li></ol> 7. Massaspectrometrie Analyse <ol><li> Resuspenderen de monsters in 12 pl 3% acetonitril met 0,1% mierezuur en direct injecteren 5 pi op een Eksigent nanoLC-1D hogedrukvloeistofchromatografie kolom (AB Sciex, USA). </li><li> Peptiden worden afgescheiden in een Proteopep II C18 kolom 75 urn ID x 20 cm (New Objective, USA) met een 4-60% gradiënt (A: 3% acetonitril, 0,1% mierezuur, B: 97% acetonitril, 0,1% mierezuur zuur)bij 3 pl / min 60 min. </li><li> Een Thermo Scientific LTQ Orbitrap XL massaspectrometer werd gebruikt om peptiden met een top 2 te detecteren x 3 experiment bestaande uit enkele fase MS gevolgd door de aankoop van 3 MS / MS spectra met een hogere energie-C-trap dissociatie (HCD) fragmentatie, gevolgd door 3 MS / MS met een botsing geïnduceerde dissociatie (CID) voor eiwit identificatie. Parameters in deze modus zijn: Isolatie breedte: 3,0 m / z; Collision energie: 50% (10% met twee stappen). Alleen dubbel-en driedubbel geladen peptiden werden geselecteerd voor fragmentatie. Dynamische uitsluiting parameters werden ingesteld op: Herhaal tellen = 1; Herhaal Duur = 60; Uitsluiting lijst size = 500; Uitsluiting duur = 28. Doel waarden zijn: MS = 5 e 5, MS / MS (HCD) = 1 e 5. Ion overdracht tijden werden ingesteld op 500 voor FTMS en 300 voor MS / MS (HCD). Twee microscans nodig waren voor HCD spectra. </li></ol> 8. Database te doorzoeken en Kwantificering <ol><li> De verworven CID en de HCD data waren eennalyzed met behulp van Thermo Scientific Proteome Discoverer software 1.2 (Thermo Scientific Pierce Protein Research Products) via een vertakte workflow die een verslaggever Ion kwantiseerder (20 ppm massa tolerantie van fragment ionen) geïmplementeerd om de verhouding te kwantificeren. Een apart segment verwerkt de MS 2 spectra door de Spectrum Selector, Spectrum Normalizer, en Spectrum Grouper knooppunten. </li><li> De gegevens werden vervolgens doorzocht tegen de Sequest zoekmachine. Een 20 ppm massa tolerantie werd gebruikt. Statische wijzigingen werden gesteld om de cysTMT reagens (304.18 Da) en dynamische wijzigingen opgenomen fosforylering en methionine oxidatie (15.99 Da). Een op maat database voor Solanum lycopersicum was samengesteld met behulp van RNA-gegevens (met ongeveer 350.000 inzendingen uit Harvard University) 13 werd gebruikt in beide gevallen. </li></ol> 9. Representatieve resultaten Een representatief beeld van een controle tomatenplant blad en een Pseudomonas ingeënt bladfiguur 1. Een verschil tussen de behandelde-controle en Pseudomonas behandelde bladeren wordt waargenomen. Nadat de bladeren zijn verwijderd en gekleurd met DAB de de-kleuring werkwijze maakt de histochemische vlek vertonen ROS in het plantenweefsel (figuur 2). Figuur 2A is representatief voor een controle blad zonder vlekken. Figuur 2B is representatief van een blad behandeld met Pseudomonas positieve kleuring voor H 2 O 2 productie. Een voorbeeld van Proteome Discover datauitgang van een differentieel redox gereguleerd proteïne is in figuur 3. Dit eiwit is een bekend redox gereguleerde eiwit ferredoxin-1 14 en is aangetoond dat een rol afweer tegen Pseudomonas syringae pv tomaat 15. Peak intensiteit tussen controle en ingeënt monsters wordt gebruikt om de relatieve kwantificatie, die aanzienlijke wijzigingen in ferredox toonde te verkrijgenin een redox regeling (p &lt;0,05). Hoge intensiteit pieken suggereren dat dit eiwit wordt geoxideerd in reactie op de behandeling pathogeen. Figuur 4 een voorbeeld van Proteome Discover datauitgang van een eiwit dat soortgelijke redox regeling van een eiwit van een controle-en geïnoculeerd monster. Pieken van vergelijkbare intensiteit suggereren de aanwezigheid van disulfidebindingen niet door een verandering in de behandeling. De methode verandert de manier waarop wetenschappers redox reageren cysteines en disulfiden 10 op te sporen. <img alt="Figuur 1" src="/files/ftp_upload/3766/3766fig1.jpg" /> Figuur 1. Een representatief beeld van geënt tomatenbladeren met controle-oplossing (A) en Pseudomonas (B). &lt;span class = &quot;pdflinebreak&quot;&gt; <img alt="Figuur 2" src="/files/ftp_upload/3766/3766fig2.jpg" /> Figuur 2. Een representatief beeld van DAB kleuring van geënt tomatenbladeren met controle-oplossing (A) en Pseudomonas (B). Bladeren werden gekleurd met 3&#39;-3 &#39;diaminobenzidine. Chlorofyl werd uit bladeren door koken in 95% ethanol. Donkere plekken de aanwezigheid van H 2 O 2. Alleen laat geënt met bacteriën cultuur toonde donkere vlekken. <img alt="Figuur 3" src="/files/ftp_upload/3766/3766fig3.jpg" /> Figuur 3. Een voorbeeld van Proteome Discover datauitgang van ferredoxin-1, differentieel redox gereguleerd proteïne 14. Peak intensiteit boven elke piek wordt gebruikt voor absolute kwantificering. Piekintensiteit tussen controle en geënt samples gebruiktrelatieve kwantificering uitgevoerd. <img alt="Figuur 4" src="/files/ftp_upload/3766/3766fig4.jpg" /> Figuur 4. Een voorbeeld van Proteome Discover datauitgang van een eiwit dat soortgelijke piekintensiteit tussen controle en geïnoculeerd monster. Pieken van vergelijkbare intensiteit suggereren de aanwezigheid van disulfidebindingen niet door een verandering in de behandeling.

<ol><li>Almeida, N. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+draft+genome+sequence+of+Pseudomonas+syringae+pv.+tomato+T1+reveals+a+type+III+effector+repertoire+significantly+divergent+from+that+of+Pseudomonas+syringae+pv.+tomato+DC3000%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Plant+Microbe+Interact%22%5BJournal%5D)">A draft genome sequence of Pseudomonas syringae pv. tomato T1 reveals a type III effector repertoire significantly divergent from that of Pseudomonas syringae pv. tomato DC3000.</a> Mol. Plant Microbe Interact. 22, 52-62 (2009).</li>
<li>Preiter, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Novel+virulence+gene+of+Pseudomonas+syringae+pv.+tomato+strain+DC3000%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Bacteriol%22%5BJournal%5D)">Novel virulence gene of Pseudomonas syringae pv. tomato strain DC3000.</a> J. Bacteriol. 187, 7805-7814 (2005).</li>
<li>Apostol, I., Heinstein, P. F., Low, P. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rapid+stimulation+of+an+oxidative+burst+during+elicitation+of+cultured+plant+cells%3A+role+in+defense+and+signal+transduction%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Physiol%22%5BJournal%5D)">Rapid stimulation of an oxidative burst during elicitation of cultured plant cells: role in defense and signal transduction.</a> Plant Physiol. 90, 109-116 (1989).</li>
<li>Orozco-Cardenas, M., Ryan, C. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hydrogen+peroxide+is+generated+systemically+in+plant+leaves+by+wounding+and+systemin+via+the+octadecanoid+pathway%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.S.A%22%5BJournal%5D)">Hydrogen peroxide is generated systemically in plant leaves by wounding and systemin via the octadecanoid pathway.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 96, 6553-6557 (1999).</li>
<li>Tonks, N. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Redox+redux%3A+revisiting+PTPs+and+the+control+of+cell+signaling%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Redox redux: revisiting PTPs and the control of cell signaling.</a> Cell. 121, 667-670 (2005).</li>
<li>Alvarez, S., Wilson, G. H., Chen, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Determination+of+in+vivo+disulfide-bonded+proteins+in+Arabidopsis%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Chromatogr.+B%22%5BJournal%5D)">Determination of in vivo disulfide-bonded proteins in Arabidopsis.</a> J. Chromatogr. B. 877, 101-104 (2009).</li>
<li>Apel, K., Hirt, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reactive+oxygen+species%3A+metabolism%2C+oxidative+stress%2C+and+signal+transduction%5BTitle%5D)+AND+%22Annu.+Rev.+Plant+Biol%22%5BJournal%5D)">Reactive oxygen species: metabolism, oxidative stress, and signal transduction.</a> Annu. Rev. Plant Biol. 55, 373-399 (2004).</li>
<li>Dayon, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Relative+quantification+of+proteins+in+human+cerebrospinal+fluids+by+MS%2FMS+using+6-+plex+isobaric+tags%5BTitle%5D)+AND+%22Anal.+Chem%22%5BJournal%5D)">Relative quantification of proteins in human cerebrospinal fluids by MS/MS using 6- plex isobaric tags.</a> Anal. Chem. 80, 2921-2931 (2008).</li>
<li>Thompson, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tandem+mass+tags%3A+a+novel+quantification+strategy+for+comparative+analysis+of+complex+protein+mixtures+by+MS%2FMS%5BTitle%5D)+AND+%22Anal.+Chem%22%5BJournal%5D)">Tandem mass tags: a novel quantification strategy for comparative analysis of complex protein mixtures by MS/MS.</a> Anal. Chem. 75, 1895-1904 (2003).</li>
<li>A novel cysteine-reactive tandem mass tag reagent for subproteome labeling, enrichment and quantitation. Rosenblatt, M. The 58th ASMS Conference on Mass Spectrometry, , Thermo Fisher Scientific. TP169(2010).</li>
<li>Clark, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Phenotypic+analysis+of+Arabidopsis+mutants%3A+diaminobenzidine+stain+for+hydrogen+peroxide%5BTitle%5D)+AND+%22Cold+Spring+Harb.+Protoc%22%5BJournal%5D)">Phenotypic analysis of Arabidopsis mutants: diaminobenzidine stain for hydrogen peroxide.</a> Cold Spring Harb. Protoc. , (2009).</li>
<li>Sethuraman, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isotope-Coded+affinity+tag+%28ICAT%29+approach+to+redox+proteomics%3A+identification+and+quantification+of+oxidant-sensitive+cysteine+thiols+in+complex+protein+mixtures%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Proteome+Res%22%5BJournal%5D)">Isotope-Coded affinity tag (ICAT) approach to redox proteomics: identification and quantification of oxidant-sensitive cysteine thiols in complex protein mixtures.</a> J. Proteome Res. 3, 1228-1233 (2004).</li>
<li>DFCI - Tomato Gene Index. , Harvard University: Computational Biology and Functional Genomics Laboratory. Boston, MA. Available from: 
		
	 <a target="_blank" href="http://compbio.dfci.harvard.edu/cgi-bin/tgi/gimain.pl?gudb=tomato">http://compbio.dfci.harvard.edu/cgi-bin/tgi/gimain.pl?gudb=tomato</a> (2010).</li>
<li>Asso, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((EPR+and+redox+characterization+of+ferredoxins+I+and+II+from+Desulfovibrio+vulgaris+Miyazaki%5BTitle%5D)+AND+%22Biochem.+Biophys.+Res.+Commun%22%5BJournal%5D)">EPR and redox characterization of ferredoxins I and II from Desulfovibrio vulgaris Miyazaki.</a> Biochem. Biophys. Res. Commun. 211, 198-204 (1995).</li>
<li>Huang, H. e <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Disease+resistance+to+bacterial+pathogens+affected+by+the+amount+of+ferredoxin-I+proteins+in+plants%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Plant+Pathol%22%5BJournal%5D)">Disease resistance to bacterial pathogens affected by the amount of ferredoxin-I proteins in plants.</a> Mol. Plant Pathol. 8, 129-137 (2007).</li>
<li>Hurkman, W., Tanaka, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Solubilization+of+plant+membrane+proteins+for+analysis+by+two-dimensional+gel+electrophoresis%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Physiol%22%5BJournal%5D)">Solubilization of plant membrane proteins for analysis by two-dimensional gel electrophoresis.</a> Plant Physiol. 81, 802-806 (1986).</li>
<li>Cysteine-Reactive Tandem Mass Tag®(cysTMT®) Reagents. , Thermo Scientific Pierce Biotechnolgy. Rockford, IL. Available from: 
		
	 <a target="_blank" href="http://www.piercenet.com/instructions/2162220.pdf">http://www.piercenet.com/instructions/2162220.pdf</a> (2011).</li>
</ol>

Geen belangenconflicten verklaard.

Dit protocol geeft informatie over het uitvoeren van DAB-kleuring en cysTMT gelabeld redox-cysteïne kwantificering. Deze procedures zijn nuttig bij de behandeling productie van ROS evenals het effect op eiwitregulering wanneer Solanum lycopersicum geënt met Pseudomonas syringae. De methoden in deze protocol een manier om ROS onderzoeken geheel bladmonsters op een manier die het minste beschadiging bladweefsel veroorzaakt. De etikettering procedure biedt een manier om potentieel redox-gereguleerde proteïnen te onderzoeken door gebruik te maken van een cysteïne etikettering methode. Dit is handig bij de behandeling van een vroeg stadium van stressreactie. Methoden zoals isotoop gecodeerde affiniteit tag (ICAT) en cysTMT kunnen worden gebruikt bij de behandeling mogelijke redox gereguleerde eiwitten in biologische monsters. ICAT laat etikettering en de vergelijking van twee steekproeven 12. Beide methoden labelen vrije cysteïnen en kan worden gebruikt voor eiwit quantificatie 10,12. De cysTMT methode maakt een afname in experimental variatie als multiplexing 10. Het aantal tags beschikbaar stelt onderzoekers in staat op te nemen repliceert of meerdere monsters in hun experimentele design. Met meer monsters biedt de mogelijkheid van een hoger aantal geïdentificeerde eiwitten. Een groot nadeel van de cysTMT techniek is dat het de algehele kwaliteit van eiwit identificatie wegens de selectieve verrijking stappen voor cysTMT label-peptiden (6,5 tot 6,6) in gevaar brengt. Het aantal van peptiden voor de proteïne-identificatie sterk afhankelijk van het aantal cysteïneresten in de eiwitsequentie. Dit probleem kan worden ondervangen door indiening van het tryptische monster voor verrijking voor massaspectrometrie proteïne-identificatie. Door de aard van de experimentele ontwerp en de labelen mechanisme dat de methode gebruik maakt cysTMT bepaalde stappen kritisch. Bij het uitvoeren van eiwit precisiepitation en pellet waswater (3,9) is het belangrijk om monsters gekoeld op ijs eiwitafbraak verminderen. Tijdens cysTMT etikettering, het verwijderen van de vermindering van reagens (4.6) is belangrijk omdat monsters kunnen ondergaan omgekeerde etikettering. Reverse labeling is mogelijk als reductiemiddel blijft in het monster. Indien monsters worden verminderd na de etikettering, de cysTMT tag worden verwijderd. Zodra de labels worden toegevoegd aan de monsters moet de pH gecontroleerd (4,7) om optimale labelingsefficiëntie hebben. Daarnaast, data-analyse is afhankelijk van wat nodig is van de onderzoeker en het uiteindelijke doel in het gebruik van het protocol. Het is ook afhankelijk van de gebruikte software die elk software verschillende algoritmen. Dit experiment maakt gebruik van pathogenen als een elicitor voor een verbeterde productie van reactieve oxidatieve soorten in tomaat, maar andere redox-gereguleerde reacties kan dienovereenkomstig worden gemeten. Deze experimentele ontwerp is aan te passen aan andere planten en dieren systemen. </p&gt;

<table border="1"><tbody><tr><td> Naam van het serum </td><td> Vennootschap </td><td> Catalogusnummer </td></tr><tr><td> MetroMix 500 </td><td> BWI Bedrijven </td><td> TX-500 </td></tr><tr><td> 3,3 &#39;-diaminobenzidine </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> D8001 </td></tr><tr><td> ReadyPrep Sequential Extraction Kit Reagens 3 </td><td> Bio-Rad </td><td> 163-2104 </td></tr><tr><td> CB-X eiwit assay </td><td> Geno Technology </td><td> 786-12x </td></tr><tr><td> cysTMT reagentia </td><td> Thermo Scientific Pierce Protein Research Products </td><td> 90071 </td></tr><tr><td> Laemmli monsterbuffer </td><td> Bio-Rad </td><td> 161-0737 </td></tr><tr><td> Bio-Safe Comassie (G-250 vlek) </td><td> Bio-Rad </td><td> 161-0786 </td></tr><tr><td> Microcon 3KD kolom </td><td> Millipore </td><td> 42403 </td></tr><tr><td> Geïmmobiliseerd Anti-TMT hars </td><td> Thermo Scientific Pierce Protein Research Products </td><td> 90076 </td></tr><tr><td> Centrifuge kolom </td><td> Thermo Scientific Pierce Protein Research Products </td><td> 89896 </td></tr><tr><td> Proteopep II C18 kolom </td><td> New Objective </td><td> PFC7515-PP2-10 </td></tr><tr><td> NanoLC-1D HPLC </td><td> AB Sciex </td><td> 90389 </td></tr><tr><td> LTQ Orbitrap XL </td><td> Thermo Scientific </td><td> 0020137580 </td></tr><tr><td> SpeedVac </td><td> Labconco </td><td> 7812013 </td></tr><tr><td> Proteome Discoverer 1.2 software </td><td> Thermo Scientific Pierce Protein Research Products </td><td></td></tr><tr><td> Trypsine </td><td> Promega </td><td> V5111 </td></tr><tr><td> Oakridge Centrifuge Tube </td><td> Thermo Scientific Nalgene Bedrijf </td><td> 3139-0050 </td></tr><tr><td> Microcentrifugebuisje (2 ml) </td><td> USA Wetenschappelijk </td><td> 1620-2700 </td></tr><tr><td> 12% Mini-Protean TGX Prefab Gel </td><td> Bio-Rad </td><td> 456-1043 </td></tr><tr><td> Top of Form &gt; Bio-Safe Coomassie StainBottom van de Vorm </td><td> Bio-Rad </td><td> 161-0786 </td></tr><tr><td> TMT verrijking kit </td><td> Thermo Scientific Pierce Protein Research Products </td><td> 90077 </td></tr></tbody></table>

profilering thiol redox proteome met behulp van isotope tagging massaspectrometrie

Profiling Thiol Redox Proteome Using Isotope Tagging Mass Spectrometry

Pseudomonas syringae pv. Tomaten stam DC3000 veroorzaakt niet alleen bacteriële speck disease in Solanum lycopersicum maar ook Brassicaceae, alsmede op Arabidopsis thaliana, een genetisch handelbaar waardplant 1,2. De accumulatie van reactieve zuurstofradicalen (ROS) in zaadlobben geënt met DC3000 duidt op een rol van ROS bij het ​​moduleren van necrotische celdood tijdens bacteriële stip ziekte van tomaat 3. Waterstofperoxide is een onderdeel van ROS wordt geproduceerd na inoculatie van tomatenplanten Pseudomonas 3. Waterstofperoxide kan worden gedetecteerd met een histochemische vlek 3&#39;-3 &#39;diaminobenzidine (DAB) 4. DAB kleuring reageert met waterstofperoxide een bruine vlek op het plantenweefsel 4. ROS heeft een regulerende rol van de cellulaire redox-omgeving, die de redox status van bepaalde eiwitten 5 kan veranderen. Cysteïne een belangrijke aminozuur gevoeligredox verandert. Onder milde oxidatie, reversibele oxidatie van cysteïne sulfhydrylgroepen dient als redox sensoren en transducers signaal dat een verscheidenheid aan fysiologische processen 6,7 reguleren. Tandem massa tag (TMT) reagentia in staat stellen gelijktijdig identificatie en kwantificatie multiplexed van eiwitten in verschillende monsters met behulp van tandem massaspectrometrie 8,9. De cysteïne-reactieve TMT (cysTMT) reagentia in staat stellen selectief etikettering en de relatieve kwantificatie van cysteïne bevattende peptiden uit maximaal zes biologische monsters. Elke isobare cysTMT tag dezelfde nominale bovenliggende massa bestaat uit een sulfhydryl-reactieve groep, een MS-neutrale spacer arm en MS / MS reporter 10. Na labelen werden de monsters aan protease digestie. De cysteïne-gelabelde peptiden werden verrijkt met hars met anti-TMT antilichaam. Tijdens de MS / MS-analyse, een serie van reporter ionen (dat wil zeggen, 126-131 Da) ontstaan ​​in de lage massa regio, informatie te verstrekken over de relatieve kwantificatie.De workflow is effectief voor het verminderen van de complexiteit steekproef, het verbeteren van dynamisch bereik en het bestuderen van cysteïne wijzigingen. Hier hebben we redox proteomische analyse van de Pst DC3000 behandeld tomaat presenteren (Rio Grande) laat met behulp van cysTMT technologie. Deze hoge verwerkingscapaciteit methode heeft de potentie om te passen aan de studie andere redox-gereguleerde fysiologische processen.

Reactive oxygen species niveau wordt verhoogd wanneer de cellen tegenkomen stress. Hier laten we het voorbeeld van 3&#39;-3 &#39;diaminobenzidine vlekken en cysTMT etikettering en massaspectrometrie om de redox proteoom profileren in<em&gt; Pseudomonas syringae</em&gt; Behandeld tomaat bladeren.

Profilering Thiol Redox Proteome Met behulp van Isotope Tagging massaspectrometrie

Pseudomonas syringae pv. tomato stam DC3000 veroorzaakt niet alleen bacterial speck (bacteriële spikkelziekte) bij Solanum lycopersicum, maar ook bij Brassica-soorten, alsmede bij ...

Het algemene doel van dit experiment is om de effecten van pseudomona siro PV tomato op redoxgereguleerde eiwitten in tomatenplanten te observeren. Inoculeer eerst tomatenplanten met pseudomona siro PV PV tomato om pathogeeninfectie en eiwitrespons op te wekken. Vervolg met kleuring met DIAM benzine om veranderingen in reactieve zuurstofspecies te observeren.Voer vervolgens cystein-TMT-labeling uit om redox-gereguleerde cysteïnen in eiwitten te onderzoeken. De verkregen resultaten kunnen veranderingen tussen behandelde en controlemonsters meten. Hallo, ik ben Chen van de afdeling biologie en de proteomics-faciliteit hier aan de University of Florida.Het voordeel van onze CTMT-labeling ten opzichte van bestaande methoden, zoals isotoopgecoate vinnenlabels (ook bekend als ASCA), is de mogelijkheid tot multiplexing bij het op grote schaal analyseren van redox-responsieve eiwitten. Hoewel deze demonstratie inzicht zal geven in de redox-gereguleerde eiwitten van tomaten als reactie op een pathogene infectie, kan het experiment worden toegepast op andere systemen, zoals joof, muizen cu en andere planten en gecontroleerde stresscondities. We kwamen voor het eerst op het idee voor deze methode nadat we een sterke variatie tussen ICAD-experimenten waarnamen omdat er slechts twee labels beschikbaar zijn.Een VIR-demonstratie van deze methode is essentieel, aangezien de labelings- en verrijkingsstappen moeilijk aan te leren zijn. Experimentele variaties tussen gelabelde monsters moeten worden geminimaliseerd en het verwijderen van regio's moet worden beperkt om een efficiënte labeling te garanderen. Laten we beginnen. Kweek twee verpotte tomatenkiemplanten van vergelijkbare grootte in potten met een diameter van vier inch voor de inoculumcultuur.Een lawn van Pseudomonas syringae op een KBM-plaat. Schraap de bacteriën in 20 milliliter water en bereid een bacterie-inoculum van ongeveer 10⁶ colony forming units per milliliter. Dompel de vier weken oude planten gedurende 30 seconden in de bacteriële inoculatie-oplossing in één liter inoculatiebuffer.Dek vervolgens onmiddellijk af met doorzichtige plastic zakken. Oogst na de gewenste inoculatietijd het volledig ontwikkelde blad, plaats de epidermale zijde naar boven in 1 mg/mL DAB-kleurstof en infiltreer vacuüm gedurende 15 minuten. Incubeer de bladeren vervolgens gedurende de nacht in het donker bij kamertemperatuur.Kook nu de gekleurde bladeren 10 minuten lang in 95%ethanol en bewaar deze in 75%ethanol. Maal de geoogste bladeren met een vijzel tot een fijn poeder in vloeibare stikstof. Voer vervolgens fenolextracties uit zoals beschreven in de bijbehorende tekst.Precipiteer vervolgens de met fenol geëxtraheerde eiwitten met vijf volumes koude 0,1 molaire ammoniumacetaat in 100% methanol. Oogst de eiwitten door centrifugatie en voer pellet-wassingen uit. Resuspendeer de monsters vervolgens in 1,5 milliliters koude 70% ethanol en breng deze over naar een microcentrifugebuis van twee milliliter.Gooi na centrifugatie de ethanol-supernatant weg en droog het pellet kort in een speed vac. Los de monsters op in een denaturerende eiwitextractiebuffer; verzamel na centrifugatie om een pellet te vormen de supernatant en meet de eiwitconcentratie volgens de handleiding van de fabrikant. Begin voor elk van de zes massatags met 100 µg eiwitmonster in een gelijk volume vers bereide, 200 mM iodoacetamide-alkyleringsbuffer om de vrije thiolgroepen te blokkeren; incubeer gedurende een uur bij 37 °C. Voeg vervolgens, om de eiwitten te precipiteren, 1 mL koude, 80% acetone toe en bewaar dit gedurende de nacht bij -20 °C.Pellet het eiwit door centrifugatie en voer drie wasbeurten uit met 80% acetone. Nadat de monsters aan de lucht zijn gedroogd op ijs, resuspendeert u het pellet in 50 µL lysisbuffer. Voeg vervolgens 0,5 µL 100 mM TCEP toe om de disulfidebindingen te reduceren en incubeer dit gedurende één uur bij kamertemperatuur.Solubiliseer de tags door 20 µL acetonitril aan de reagensbuizen toe te voegen. Vortex en centrifugeer kort. Om overtollig TCEP te verwijderen, laadt u 50 µL monster op een MicroCon three KD-kolom. Voeg 50 µL lysisbuffer toe en centrifugeer 15 minuten bij 10.000 ×g en 4 °C.Om het monster te verzamelen, verwijdert u de kolom, plaatst u deze omgekeerd in een schone buis en centrifugeert u deze. Controleer indien nodig de pH van het monster. Stel de pH bij naar een waarde tussen zeven en acht met één molair zoutzuur.Voeg vijf µL van het TMT-reagens toe en laat de reactie twee uur incuberen bij kamertemperatuur, voeg de monsters samen en voeg een gelijk volume Laly-monsterbuffer toe, kook vijf minuten en scheid op een precast 12% polyacrylamidegel. Nadat de gel drie keer is gespoeld met gefilterd water, wordt deze een uur gekleurd met Coomassie blauw en overnight ontkleurd in water op basis van de proteïnebandconcentraties. Verdeel 12 fracties per gellane. Snijd elke fractie in stukjes van 1 mm en plaats deze in een 1,5 mL buisje.Dompel de gelstukjes volledig onder in 0,1 M ammoniumbicarbonaat in 50% acetonitril. Bedek de stukjes vervolgens gedurende 15 minuten met 100% acetonitril. Verwijder de vloeistof en droog de stukjes met een speed vac.Voeg vervolgens een gelijk volume tripsine-oplossing toe en plaats het op ijs om te rehydrateren. Incubeer daarna gedurende 12 tot 16 uur bij 37 °C voor tripsine-digestie. Verwijder vervolgens het vloeibare eiwitextract uit de geïncubeerde monsters.Stop de reactie en verwijder alle resterende proteïnedigest door de gelstukjes te bedekken met 5% mierenzuur, 50% acetonitril. Schud de gelstukjes vervolgens gedurende 20 minuten bij kamertemperatuur. Draag het supernatant over naar de buisjes met geëxtraheerd proteïnemonster na nog twee extracties.Droog de monsters in 0,5 milliliter buisjes met een speed vac. Bereid een 50% slurry van anti-TMT-hars in TBS voor, met een concentratie die proportioneel is aan de intensiteit van de respectievelijke eiwitband. Was de hars drie keer met één kolomvolume 1x TBS en voeg vervolgens 200 microliters TBS toe aan elk monster.Overbreng het vervolgens naar anti-TMT-hars en agiteer dit gedurende twee uur bij kamertemperatuur, gevolgd door overnight rocken bij vier graden Celsius. Laad elke sample op een kolom. Voer kolomwasbeurten uit van telkens 200 µL.Elueer vervolgens elk monster drie keer met 200 µL 50% elutiebuffer en droog onder vacuüm. Suspendeer de monsters in 12 µL 3% acetonitril met 0,1% mierenzuur en injecteer vijf µL direct op een HPLC-kolom. Elueer peptiden met een gradiënt van toenemend acetonitril, zoals beschreven in de bijbehorende tekst.Gebruik massaspectrometrie om peptiden te detecteren in een top-twee-bij-drie workflow. Begin met een enkele ms-stap. Verwerf vervolgens drie Ms.Ms-spectra met fragmentatie door higher energy C trapped dissociation, gevolgd door drie.Ms.MS met botsing-geïnduceerde dissociatie voor proteïne-identificatie. Analyseer de massaspectrometriegegevens met een vertakte workflow. Implementeer een reporter-ijzerquantiseerder om de ratio te kwantificeren.Verwerk daarnaast het MSM MS-spectrum via de spectrumselector-, spectrumnormalisatie- en spectrumgroeperingsknooppunten en query de gegevens tegen de SeaQuest-zoekmachine. Deze afbeelding toont voorbeelden van een gecontroleerd tomatenplantblad links en een met Pseudomonas geïnoculeerd blad rechts nadat de bladeren met DAB zijn gekleurd. Het DES-kleuringsproces maakt het mogelijk dat de histochemische kleuring tekenen van reactieve zuurstofverbindingen in het bladweefsel laat zien.Zoals verwacht vertoont de controle geen significante kleuring, terwijl de bladeren die behandeld zijn met pseudomonas positief kleuren voor de productie van waterstofperoxide. Dit voorbeeld toont de output van proteoom-ontdekkingsgegevens, waarbij de piekareaal van een differentieel redox-gereguleerd eiwit voor elk monster absolute kwantificering mogelijk maakt. Het piekareaal tussen de controle- en de geïnoculeerde monsters geeft de relatieve hoeveelheden aan.Hier is de redoxregulatie van een eiwit tussen een controle- en een geïnoculeerd monster vergelijkbaar. Pieken van gelijke intensiteit suggereren de aanwezigheid van disulfidebindingen die niet gereguleerd worden door een verandering in de behandeling. Zodra deze techniek onder de knie is, kan deze binnen één week correct worden uitgevoerd.Denk eraan om de monsters koud te houden en de etiketten georganiseerd te houden. Neem daarnaast voorzorgsmaatregelen bij het gebruik van fenol, zoals het dragen van handschoenen en het werken in de zuurkast volgens deze procedure. Andere maatregelen, zoals specifieke massaspectrometrie-analyse van post-translationele modificaties, kunnen worden uitgevoerd om andere systeemmodificaties te bepalen, zoals onic acid en glutenyllering.Na het bekijken van deze video zou u een goed inzicht moeten hebben in het uitvoeren van de DIB standing CTMD-activatie en de redox 16-kwalificatie.

profiling-thiol-redox-proteome-using-isotope-tagging-mass-spectrometry

Research

JoVE Journal

Biology

Biologie

Capture Verbindingen zijn trifunctionele kleine moleculen om de complexiteit van het proteoom te verminderen door functionele omkeerbare klein molecuul-eiwit interacties, gevolgd door foto-crosslinking en zuivering. Hier gebruiken we een Capture Compound...

Profilering van methyl-en andere S-Adenosyl- L-Homocysteine-bindende eiwitten door Capture Compound-massaspectrometrie (CCMS)

Stabiele isotoop labeling van peptiden door reductieve dimethylering (Redi etikettering) is een snelle, goedkope strategie voor nauwkeurige massa-spectrometrie gebaseerde kwantitatieve proteomics. Hier laten we een robuuste werkwijze voor de bereiding en analyse van eiwitmengsels met de Redi aanpak die kan worden toegepast op vrijwel elk type monster.

Kwantitatieve Proteomics behulp Reductieve dimethylering voor stabiele isotopen Labeling

Gecombineerd voorloper isotopische labeling en isobare tagging (cPILOT) is een kwantitatieve proteomics strategie die steekproef multiplexing mogelijkheden van isobarisch labels verbetert. Dit protocol beschrijft de toepassing van cPILOT op weefsels van de ziekte van Alzheimer muismodel en wildtype controles.

Verbeterde Sample Multiplexing Weefsels gebruik van Gecombineerd Precursor isotopische labeling en Isobaric Tagging (cPILOT)

We presenteren een protocol om te kwantificeren nauwkeurig eiwitten met isobaar etikettering, uitgebreide fractionering, bioinformatica tools en kwaliteitscontrole stappen in combinatie met vloeibare chromatografie geïnterfacet met een hoge resolutie massaspectrometer.

Diepe Proteoom profilering door isobaar Labeling, uitgebreide vloeistofchromatografie, massaspectrometrie en Software-bijgewoonde kwantificering

We presenteren een geoptimaliseerd tmt-labelprotocol (tandem mass tag) dat gedetailleerde informatie bevat voor elk van de volgende stappen: eiwitextractie, kwantificering, neerslag, spijsvertering, etikettering, indiening bij een proteomics-faciliteit en gegevensanalyses.

TMT Sample Voorbereiding voor Proteomics Facility Indiening en latere data-analyse

Het beschreven protocol biedt een geoptimaliseerde kwantitatieve proteomics-analyse van weefselmonsters met behulp van twee benaderingen: labelgebaseerde en labelvrije kwantificering. Labelgebaseerde benaderingen hebben het voordeel van een nauwkeurigere kwantificering van eiwitten, terwijl een labelvrije aanpak kosteneffectiever is en wordt gebruikt om honderden monsters van een cohort te analyseren.

Uitgebreide workflow van op massaspectrometrie gebaseerde Shotgun Proteomics van weefselmonsters

Protein Arginine (R)-methylatie is een wijdverspreide posttranslationele modificatie die meerdere biologische routes reguleert. Massaspectrometrie is de beste technologie om het R-methylproteoom wereldwijd te profileren, wanneer gekoppeld aan biochemische benaderingen voor gemodificeerde peptideverrijking. De workflow die is ontworpen voor de identificatie met hoge betrouwbaarheid van globale R-methylatie in menselijke cellen wordt hier beschreven.

Een op massaspectrometrie gebaseerde proteomics-benadering voor wereldwijde en betrouwbare eiwit-R-methylatieanalyse

Eiwitthioloxidatie heeft significante implicaties onder normale fysiologische en pathofysiologische omstandigheden. We beschrijven de details van een kwantitatieve redox proteomics-methode, die gebruik maakt van harsondersteunde vangst, isobare etikettering en massaspectrometrie, waardoor locatiespecifieke identificatie en kwantificering van reversibel geoxideerde cysteïneresiduen van eiwitten mogelijk wordt.

Harsondersteunde vangst in combinatie met isobare tandemmassalabellabeling voor multiplexed kwantificering van eiwitthodoxe oxidatie

Dit artikel beschrijft een monstervoorbereidingsmethode op basis van warmte-inactivatie om endogene peptiden te behouden die post-mortem degradatie voorkomen, gevolgd door relatieve kwantificering met behulp van isotopische etikettering plus LC-MS.

Monstervoorbereiding en relatieve kwantificering met behulp van reductieve methylering van amines voor peptidomics-studies

Deze video toont de voorbereiding van een ultra-dunne matrix / analyt laag voor het analyseren van peptiden en eiwitten door Matrix-assisted laser desorptie ionisatie massaspectrometrie (MALDI-MS).

MALDI Monstervoorbereiding: de Ultra Thin Layer methode

Leer thiol redox proteoom profilering met isotoop tagging massaspectrometrie bij tomatenplanten na infectie met Pseudomonas syringae. Deze methode helpt onderzoekers om redox-gereguleerde eiwitten op grote schaal te analyseren.

Profilering Thiol Redox Proteome Met behulp van Isotope Tagging massaspectrometrie

Meer video's verkennen