4 december 2012
De phagokinetic motiliteit spoor assay is een methode om de beweging van cellen te beoordelen. Met name de test meet chemokinesis (random celmotiliteit) in de tijd op een kwantitatieve wijze. De assay maakt gebruik van het vermogen van cellen om een meetbare spoor van de beweging van colloïdaal goud gecoate dekglaasjes maken.
Het algemene doel van deze procedure is om cellulaire mobiliteit kwantitatief te kunnen meten in de loop van de tijd met behulp van een op goudnanodeeltje gebaseerde celmobiliteitstest. Dit wordt bereikt door eerst glazen deksels voor te bereiden voor een coating van goudnanodeeltjes. Specifiek endotoxinevrije deksels worden bedekt met gelatine en vervolgens gebakken.
De tweede stap is het reduceren van chloro oric zuur, wat goudnanodeeltjes zal creëren en om de gelatinedekte deksels gelijkmatig te bedekken met de oplossing. Vervolgens worden de cellen geplaatst op de goudnanodeeltjecoatingdeksels voor de gewenste tijdsduur van de experimentcellen. Gaandeweg zal de gelatine goudnanodeeltjes verplaatsen en sporen creëren.
De laatste stap is het monitoren en kwantificeren van celmobiliteit met behulp van microscopie om de sporen gecreëerd door de bewegende cellen te beelden. Uiteindelijke oppervlaktemetingen van de sporen worden uitgevoerd met behulp van vrije beschikbare software. Een van de belangrijkste voordelen van deze techniek boven bestaande methoden, zoals time-lapse beeldvorming, is dat deze test alleen een standaard lichtmicroscoop, standaardcamera en vrije beschikbare beeldvormingssoftware vereist.
Bovendien staat de test ook eenvoudig de analyse en vergelijking van meerdere monsters toe met behulp van een methodist die geschikt is voor high-throughput screening. Hoewel deze methode inzicht kan geven in de invloed van verschillende fysiologische factoren en celbeweging, kan deze ook worden toegepast op andere systemen, zoals studies naar de effecten van pathogenen op de mobiliteit van geïnfecteerde cellen. Over het algemeen kunnen personen die nieuw zijn in deze methode worstelen omdat de methode vereist dat men strikt de volumes en temperaturen volgt die in het protocol staan aangegeven.
In dit protocol wordt de nadruk gelegd op het beoordelen van de kleur van de uiteindelijke oplossing van geprecipiteerde goudnanodeeltjes om succes te garanderen. Visuele demonstratie van deze methode is van cruciaal belang. Aangezien de stappen van de FGO kinetische spoormobiliteitstest moeilijk te leren zijn.
Ze bevatten verschillende procedures die niet vaak worden gebruikt in cellulaire en moleculaire biologielaboratoria. Om gelatinedekte deksels voor te bereiden, moet je eerst gelatine en gedeïoniseerd water opnieuw opschorten om de oplossing te maken met een uiteindelijke concentratie van 0,5 gram per 300 milliliter en vervolgens het mengsel gedurende 15 tot 30 minuten autoclaveren. Het is belangrijk om dit binnen twee uur na de toevoeging van de gelatine in een weefselcultuurkap te doen.
Bereid de deksels voor op coating door eerst acht tot negen met zuur gewassen deksels over te brengen naar een 100 millimeter plastic schaal. Zorg ervoor dat de deksels elkaar niet raken of de zijkanten van de schaal. Pipet voorzichtig twee tot drie druppels gelatine op elke deksel en vermijd overloop op de plaat.
Plaats vervolgens de schaal met de gelatinedekte deksels in een oven en bak gedurende 10 minuten op 90 graden Celsius. Verwijder na 10 minuten de schaal uit de oven en plaats deze terug in de weefselcultuurkap.
Pipet voorzichtig eventueel overtollig gelatine weg. Plaats de schaal terug in de oven en droog de deksels gedurende 45 minuten op 70 graden Celsius. Zodra de deksels droog zijn, verwijder de schaal uit de oven en plaats deze terug in de weefselcultuurkap.
Gebruik een steriele naald om voorzichtig een zijde van het deksel op te tillen. Gebruik vervolgens steriele pincetten om de gelatinedekte deksels uit de schaal te verwijderen en plaats ze in afzonderlijke putjes van een 24-putjesplaat. De volgende stap is het voorbereiden van colloïdaal goudbedekte deksels.
Begin met het voorbereiden van 10 milliliter 0,5% natriumcitraatoplossing werkend in een weefselcultuurkap, combineer 1,5 milliliter van de 14,5 millimolair chloro ORIC zuuroplossing en 13,5 milliliter autoclaaf gedeïoniseerd water in een steriele endotoxinevrije erlenmeyerkolf. Voor elke acht tot negen deksels zou het resultaat een lichtgele oplossing moeten opleveren. Chloro ORIC zuur is giftig en moet voorzichtig worden behandeld. Het is ook lichtgevoelig, dus de kookstap moet worden uitgevoerd in een omgeving met weinig licht.
Wanneer de oplossing zijn kookpunt heeft bereikt, haalt u de kolf van de hotplate en brengt u deze over naar een roerplaat. Om de colloïdale gouddeeltjes in oplossing te vormen, voegt u 0,7 milliliter van de 0,5% natriumcitraatoplossing per 15 milliliter van de chloro ORIC zuuroplossing toe terwijl u roert, blijf roeren gedurende ongeveer twee minuten. Gedurende deze tijd zal de oplossing veranderen van lichtgeel naar helder naar grijs naar paars naar diep paars.
Voordat het uiteindelijk een kleur rode wijn of bij voorkeur roest krijgt, trekt u de colloïdale goudoplossing in een 10 milliliterpipet en laat u de oplossing een tot twee minuten afkoelen in de pipet tot het kamertemperatuur bereikt. Voeg vervolgens 0,5 tot een milliliter toe bovenop de gelatinedekte deksels in de 24-putjesplaat. Plaats de 24-putjesplaat met de colloïdaal goudbedekte deksels in een incubator bij 37 graden Celsius en incubeer gedurende 30 minuten. Nadat de deeltjes de tijd hebben gehad om zich te settelen op de gelatinedekte deksels, controleert u hun dichtheid onder een lichtmicroscoop.
De juiste verdeling van goudnanodeeltjes helpt om de randen van zonnewagens eenvoudig en efficiënt te onderscheiden. De optimale dichtheid varieert met de celgrootte. Een concentratie van gouddeeltjes die te hoog is, belemmert het vermogen van cellen om te bewegen, terwijl een concentratie van goud, gouddeeltjes die te laag is, het vermogen beperkt om een nauwkeurig spoor van mobiliteit te bepalen.
Om deze reden moeten alleen deksels die in dezelfde batch zijn gemaakt of die zijn gekarakteriseerd om dezelfde dichtheid te hebben, samen worden gebruikt in individuele experimenten
Bekijk het volledige transcript en krijg toegang tot duizenden wetenschappelijke video's
De fagokinetische motiliteit-trackassay meet kwantitatief de beweging van cellen over een bepaalde tijd. Deze methode maakt gebruik van met goudnanodeeltjes gecoate dekglasjes om celmotiliteit te visualiseren via de vorming van tracks.
De fagokinetische track-motiliteitsassay biedt een kosteneffectieve, kwantitatieve methode voor het evalueren van cellulaire motiliteit met behulp van standaard laboratoriumapparatuur, waardoor een belangrijke flessenhals in vroege discovery-workflows wordt weggenomen. Door high-throughput analyse van celbewegingen mogelijk te maken zonder dure imagingsystemen, ondersteunt het de snelle screening van verbindingen of genetische perturbaties die de motiliteit beïnvloeden. Deze mogelijkheid vergroot het voorspellende vertrouwen in de fasen van targetvalidatie en lead-identificatie door reproduceerbare, mechanistisch relevante fenotypische gegevens te leveren.
De assay past binnen het ontdekkingscontinuüm van vroege targetvalidatie via lead-identificatie tot preklinische evaluatie en biedt een herbruikbaar fenotypisch platform voor motiliteitsafhankelijke processen.