Name: Bacteriële Detection and Identification gebruiken elektrochemische sensoren (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-04-23T12:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 30 s
Description: Leer bacteriële detectie en identificatie met elektrochemische sensoren voor microbiologisch onderzoek. Deze methode detecteert bacteriën in ongeveer 45 minuten via ribosomaal RNA-hybridisatie.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Deze studie werd ondersteund door Coöperatieve overeenkomst Award AI075565 (tot DAH) van het Nationale Instituut voor Allergie en Besmettelijke Ziekten en door de Wendy en Ken Ruby Fund for Excellence in Pediatric Urology Research. BMC is de Judith en Robert Winston Chair in Pediatric Urology.

1. Functionaliseringen van elektrochemische sensoren <ol><li> Bereid de gethioleerde capture probe in een concentratie van 0,05 uM in 300 uM 1,6-hexaandithiol (HDT), 10 mM Tris-HCl, pH 8,0, 0,3 M NaCl, 1 mM EDTA en incubeer in het donker bij kamertemperatuur gedurende 10 min . Incubatie van de gethioleerde vangprobe met HDT zodat de thiolgroep op de vangprobe wordt verminderd, wat resulteert in meer consistente resultaten. </li><li> Breng een stroom stikstof tot kale goud 16 sensor-array chip (en) voor 5 sec om vocht te verwijderen en / of deeltjes. </li><li> Breng 6 ul van de HDT-gethioleerde capture probe-mengsel voor de werkelektrode van 16 sensoren van de sensor array en bewaar de sensor chip (s) in een bedekte petrischaal bij 4 ° C overnacht. Gethioleerde vangprobes binden rechtstreeks aan de kale goud elektrode en de HDT handelt om overpacking van de vangprobes te voorkomen en bewaar ze in een verlengde conformatie die hybridisatie bevordert met de doelgroep. </li><li> Devolgende dag was de sensorchip met gedeïoniseerd H2O 2-3 seconden en onder een droge stikstofstroom gedurende 5 sec. </li><li> Breng 6 pl 10 mM Tris-HCl, pH 8,0, 0,3 M NaCl, 1 mM EDTA, 1 mM 6-mercapto-1-hexanol (MCH) de werkelektrode van 16 sensoren en incubeer gedurende 50 minuten. Deze en alle volgende sensorchip incubaties worden uitgevoerd in een afgedekte petrischaal bij kamertemperatuur. MCH fungeert als blokkeermiddel, vullen de openingen wanneer de gethioleerde vangprobe of HDT niet aanwezig op het elektrodeoppervlak. </li></ol> 2. Monstervoorbereiding <ol><li> Breng 1 ml bacteriekweek in de log fase van groei (OD 600 ≈ 0,1) een microcentrifugebuis en centrifugeer bij 16.000 xg gedurende 5 minuten. Verwijder het supernatant. De bacteriële pellet kan onmiddellijk worden verwerkt of bewaard bij -80 ° C voor later gebruik. </li><li> Grondig resuspendeer de bacteriële pellet in 10 gl 1 M NaOH door toepassing van de pipetpunt het bottom van de microcentrifugebuis en en neer te pipetteren meerdere malen. Incubeer de suspensie bij kamertemperatuur gedurende 5 minuten. </li><li> Neutraliseer het bacteriële lysaat door toevoeging van 50 ui 1 M fosfaatbuffer, pH 7,2, bevattende 2,5% runderserumalbumine (BSA) en 0,25 mM van fluoresceïne gemodificeerde detector probe. Incubeer de geneutraliseerd lysaat gedurende 10 minuten bij kamertemperatuur. Fluoresceïne-gemodificeerde probes detector hybridiseren met bacteriële rRNA-moleculen. </li></ol> 3. Elektrochemische sensor Assay <ol><li> Was de MCH van de sensorchip met gedeïoniseerd H2O 2-3 seconden en drogen onder een stroom van stikstof gedurende 5 sec. </li><li> Breng 4 pl geneutraliseerd bacterieel lysaat van de werkelektrode van elk van 14 sensoren en incubeer gedurende 15 minuten. Target-detector probe complexen hybridiseren aan geïmmobiliseerd gethioleerde vangprobes. </li><li> Breng 4 pi 1 nM overbruggen oligonucleotide in 1 M fosfaatbuffer, pH 7,2, die 2,5% BSA en 0,25 &amp;mu; M fluoresceïne-gemodificeerde detector sonde naar 2 positieve controle sensoren (gebruikt voor signaal normalisatie) en incubeer gedurende 15 minuten. </li><li> Was de sensorchip met gedeïoniseerd H2O 2-3 seconden en drogen onder een stroom van stikstof gedurende 5 sec. </li><li> Breng 4 ui 0,5 U / ml anti-fluoresceïne-HRP in 1 M fosfaatbuffer, pH 7,2, dat 0,5% caseïne de werkelektrode van 16 sensoren en incubeer gedurende 15 minuten. De anti-fluoresceïne-HRP bindt aan de geïmmobiliseerde fluoresceïne gemodificeerde probes detector. </li><li> Was de sensorchip met gedeïoniseerd H2O 2-3 seconden en drogen onder een stroom van stikstof gedurende 5 sec. </li><li> Breng een film goed sticker op het oppervlak van de sensor chip en lading in de sensor chip mount. Pipetteer 50 ul van TMB substraat op alle 16 sensoren en sluit de sensor chip mount. </li><li> Verkrijgen amperometrie en cyclische voltammetrie metingen voor alle 16 sensoren met behulp van het Helios Chiplezer. Amperometrische stroom is proportioneel aan de TMB reduction op de sensor oppervlak (zie figuur 1). </li></ol>

<ol><li>Wu, J., Campuzano, S., Halford, C., Haake, D. A., Wang, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ternary+Surface+Monolayers+for+Ultrasensitive+%28Zeptomole%29+Amperometric+Detection+of+Nucleic+Acid+Hybridization+without+Signal+Amplification%5BTitle%5D)+AND+%22Anal.+Chem%22%5BJournal%5D)">Ternary Surface Monolayers for Ultrasensitive (Zeptomole) Amperometric Detection of Nucleic Acid Hybridization without Signal Amplification.</a> Anal. Chem. 82, 8830-8837 (2010).</li>
<li>Halford, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rapid+Antimicrobial+Susceptibility+Testing+by+Sensitive+Detection+of+Precursor+Ribosomal+RNA+Using+a+Novel+Electrochemical+Biosensing+Platform%5BTitle%5D)+AND+%22Antimicrob.+Agents+Chemother%22%5BJournal%5D)">Rapid Antimicrobial Susceptibility Testing by Sensitive Detection of Precursor Ribosomal RNA Using a Novel Electrochemical Biosensing Platform.</a> Antimicrob. Agents Chemother. 56, In Press (2012).</li>
<li>Campuzano, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ternary+monolayers+as+DNA+recognition+interfaces+for+direct+and+sensitive+electrochemical+detection+in+untreated+clinical+samples%5BTitle%5D)+AND+%22Biosens.+Bioelectron%22%5BJournal%5D)">Ternary monolayers as DNA recognition interfaces for direct and sensitive electrochemical detection in untreated clinical samples.</a> Biosens. Bioelectron. 26, 3577-3584 (2011).</li>
<li>Gau, V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Electrochemical+molecular+analysis+without+nucleic+acid+amplification%5BTitle%5D)+AND+%22Methods%22%5BJournal%5D)">Electrochemical molecular analysis without nucleic acid amplification.</a> Methods. 37, 73-83 (2005).</li>
<li>Patel, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Target+Specific+Capture+Enhances+Sensitivity+of+Electrochemical+Detection+of+Bacterial+Pathogens%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Clin.+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Target Specific Capture Enhances Sensitivity of Electrochemical Detection of Bacterial Pathogens.</a> J. Clin. Microbiol. 49, 4293-4296 (2011).</li>
<li>Mastali, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optimal+probe+length+and+target+location+for+electrochemical+detection+of+selected+uropathogens+at+ambient+temperature%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Clin.+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Optimal probe length and target location for electrochemical detection of selected uropathogens at ambient temperature.</a> J. Clin. Microbiol. 46, 2707-2716 (2008).</li>
<li>Liao, J. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Use+of+electrochemical+DNA+biosensors+for+rapid+molecular+identification+of+uropathogens+in+clinical+urine+specimens%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Clin.+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Use of electrochemical DNA biosensors for rapid molecular identification of uropathogens in clinical urine specimens.</a> J. Clin. Microbiol. 44, 561-570 (2006).</li>
<li>Liao, J. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+an+advanced+electrochemical+DNA+biosensor+for+bacterial+pathogen+detection%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Mol.+Diagn%22%5BJournal%5D)">Development of an advanced electrochemical DNA biosensor for bacterial pathogen detection.</a> J. Mol. Diagn. 9, 158-168 (2007).</li>
<li>Pedrero, M., Campuzano, S., Pingarron, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Electroanalytical+sensors+and+devices+for+multiplexed+detection+of+foodborne+pathogen+microorganisms%5BTitle%5D)+AND+%22Sensors+%28Basel%29%22%5BJournal%5D)">Electroanalytical sensors and devices for multiplexed detection of foodborne pathogen microorganisms.</a> Sensors (Basel). 9, 5503-5520 (2009).</li>
<li>Kuralay, F., Campuzano, S., Haake, D. A., Wang, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Highly+sensitive+disposable+nucleic+acid+biosensors+for+direct+bioelectronic+detection+in+raw+biological+samples%5BTitle%5D)+AND+%22Talanta%22%5BJournal%5D)">Highly sensitive disposable nucleic acid biosensors for direct bioelectronic detection in raw biological samples.</a> Talanta. 85, 1330-1337 (2011).</li>
<li>Ecker, D. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ibis+T5000%3A+a+universal+biosensor+approach+for+microbiology%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Rev.+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Ibis T5000: a universal biosensor approach for microbiology.</a> Nat. Rev. Microbiol. 6, 553-558 (2008).</li>
<li>Casalta, J. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+of+the+LightCycler+SeptiFast+test+in+the+rapid+etiologic+diagnostic+of+infectious+endocarditis%5BTitle%5D)+AND+%22Eur.+J.+Clin.+Microbiol.+Infect.+Dis%22%5BJournal%5D)">Evaluation of the LightCycler SeptiFast test in the rapid etiologic diagnostic of infectious endocarditis.</a> Eur. J. Clin. Microbiol. Infect. Dis. 28, 569-573 (2009).</li>
</ol>

Alle auteurs zijn uitvinders van octrooien om de beschreven methoden relevant. Een van deze patenten is in licentie gegeven aan Qvella Corporation. BMC en DAH hebben aandelenbelang in Qvella Corporation. VG is de voorzitter van GeneFluidics, dat is de fabrikant van de elektrochemische sensor-array chip, chip mount, en chip lezer in dit document beschreven.

De elektrochemische sensor assay beschreven maakt een snelle detectie van nucleïnezuurdoelen. Sensitiviteit en specificiteit hangen gedeeltelijk van de vrije energie van target-probe hybridisatie, op zijn beurt afhankelijk van de lengte en het GC-gehalte van de opname en probes detector. We meestal uit te voeren de stappen hybridisatie bij kamertemperatuur (~ 20 ° C) 5, 6. De stappen hybridisatie (3.2 en 3.3) kan worden bij hogere temperaturen in een hybridisatie oven uitgevoerd als de chip wordt geplaatst in...

Gebruik rRNA als doelmolecuul voor bacteriële detectie en identificatie heeft een aantal voordelen. De overvloed van rRNA in bacteriële cellen voorziet in een gevoeligheidslimiet zo laag als 250 bacteriën per milliliter zonder dat doelamplificatie 1. Bacteriële rRNA bevat unieke soort-specifieke sequenties die toegankelijk zijn voor hybridisatie met DNA probes. Bijgevolg kan een reeks van elektrochemische sensoren worden gebruikt om onbekende bacteriën, waarbij elke sensor is gefunctionaliseerd met een ander species-specifiek capture probe te identificeren. Positieve controle sensoren moeten worden opgenomen voor een synthetisch oligonucleotide doel dat &quot;bruggen&quot; het vangen en sondes detector een interne kalibratie-signaal te creëren. Elektrochemische sensoren hebben een breed scala van fundamenteel en translationeel onderzoek toepassingen. Bijvoorbeeld, de assay beschreven is gebruikt om het effect van E. nauwkeurig te meten coli groeifase op RRNA en pre-rRNA aantallen kopieën, die van groot belang voor onderzoekers geïnteresseerd in bacteriële fysiologie 2. De gevoeligheid van de elektrochemische sensor assay wordt bepaald door de signaal-ruisverhouding. Een verscheidenheid van signaalversterking en methoden ruisonderdrukking zijn onderzocht. We zien dat verbetering van de chemie van het sensoroppervlak is de sleutel tot het verminderen van niet-specifieke binding van detector probe en / of HRP enzym. Met name is een gemengde monolaag van alkanedithiols en mercaptohexanol gebleken achtergrond beperken door het elektrodeoppervlak geheel behoud toegankelijkheid van de capture probe voor hybridisatie doel 3. Deze oppervlakte chemie behandelingen zijn bijzonder belangrijk voor testen met een complexe biologische monsters.

<table><tbody><tr><td>6-mercapto-1-hexanol (MCH)</td><td>Sigma</td><td>451088</td><td>Bewaren bij kamertemperatuur</td></tr><tr><td>1,6-hexaandithiol (HDT)</td><td>Sigma</td><td>H-12005</td><td>Bewaren bij kamertemperatuur</td></tr><tr><td>Gethiolateerde capture-probes</td><td>Operon</td><td>N/A</td><td>Bewaren bij 100 &amp;mu;M in 0,1x TE bij -20 &amp;deg;C</td></tr><tr><td>Fluoresceïne-gemodificeerde detector-probes</td><td>Operon</td><td>N/A</td><td>Bewaren bij 100 &amp;mu;M in 0,1x TE bij -20 &amp;deg;C</td></tr><tr><td>Bridging Oligonucleotide</td><td>Operon</td><td>N/A</td><td>Bewaren bij 100 &amp;mu;M in 0,1x TE bij -20 &amp;deg;C</td></tr><tr><td>Anti-Fluoresceïne-HRP, Fab-fragmenten</td><td>Roche</td><td>11 426 346 910</td><td>Bewaren bij 4 &amp;deg;C</td></tr><tr><td>Helios Chip Reader</td><td>GeneFluidics</td><td>GFR-2009</td><td></td></tr><tr><td>Sensor Chip Mount</td><td>GeneFluidics</td><td>GFR-003</td><td></td></tr><tr><td>Film well-sticker</td><td>GeneFluidics</td><td></td><td>Wordt meegeleverd met de sensorchips</td></tr><tr><td>Onbehandelde gouden 16-sensor array-chips</td><td>GeneFluidics</td><td>SC1000-16X-B</td><td>Bewaren in 100% N&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt; bij kamertemperatuur</td></tr><tr><td>Bovien serumalbumine</td><td>Sigma</td><td>A7906</td><td>Bewaren bij 4 &amp;deg;C</td></tr><tr><td>1M fosfaatbuffer, pH 7,2</td><td></td><td></td><td>0,35M NaH&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;PO&lt;sub&gt;4&lt;/sub&gt;, 0,65M K&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;HPO&lt;sub&gt;4&lt;/sub&gt;, ingesteld op pH 7,2</td></tr><tr><td>Blocker Caseïne in PBS</td><td>Pierce</td><td>37528</td><td>Verdunnen met een gelijk volume 1M fosfaatbuffer, pH 7,2, bewaren bij 4 &amp;deg;C</td></tr><tr><td colspan="4">&lt;strong&gt;Tabel 1. Reagentia en apparatuur.&lt;/strong&gt;</td></tr></tbody></table>

bacteriële detection &amp; identification gebruiken elektrochemische sensoren

Bacterial Detection &amp; Identification Using Electrochemical Sensors

Elektrochemische sensoren worden veel gebruikt voor snelle en nauwkeurige meting van bloedglucose en kan worden aangepast voor de detectie van een groot aantal analyten. Elektrochemische sensoren werken door transducing een biologische gebeurtenis erkenning tot een bruikbaar elektrisch signaal. Signaaltransductie vindt plaats door het koppelen van de activiteit van een redox-enzym een ​​amperometrische elektrode. Sensor specificiteit ofwel inherent aan het enzym glucose oxidase in het geval van een glucose sensor, of een product van de koppeling tussen het enzym en een antilichaam of probe. Hier beschrijven we een elektrochemische sensor testwerkwijze direct detecteren en identificeren van bacteriën. In alle gevallen, de hier beschreven probes DNA oligonucleotiden. Deze methode is gebaseerd op de sandwich hybridisatie van afvang en detector sondes met een doelgroep van ribosomaal RNA (rRNA). De capture probe is verankerd aan het sensoroppervlak, terwijl de detector probe is gekoppeld aan horseradish peroxidase (HRP). Wanneer een substraat zoals 3,3 &#39;, 5,5&#39;-tetramethylbenzidine (TMB) werd toegevoegd aan een elektrode met capture-detector-target complexen gebonden aan het oppervlak, wordt het substraat geoxideerd door HRP en verminderd met de werkelektrode. Deze redox cyclus resulteert in shuttling van elektronen door het substraat van de elektrode naar HRP, produceren stroom door de elektrode.

We beschrijven een elektrochemische test die gelijk is gestructureerd om een ​​sandwich ELISA. Zoals getoond in figuur 1, doel ribosomaal RNA (rRNA) hybridisatie met capture detector en probes wordt ontwikkeld door een redox reactie gekatalyseerd door HRP geconjugeerd aan anti-fluoresceïne antilichaam fragmenten die binden aan het 3&#39;-fluoresceïne koppeling op de detector probe. Een belangrijk onderdeel van assaygevoeligheid is de oppervlaktechemie van de goudelektrode. Wij hebben gevonden dat een te...

We beschrijven een elektrochemische sensor bepalingsmethode voor snelle bacteriële detectie en identificatie. De bepaling omvat een sensor-array gefunctionaliseerd met DNA oligonucleotide capture probes voor ribosomaal RNA (rRNA) species-specifieke sequenties. Sandwich hybridisatie van doelwit rRNA met de invangingsprobe en een mierikswortel peroxidase-linked DNA-oligonucleotide probe detector produceert een meetbare amperometrisch stroom.

Bacteriële Detection &amp; Identification gebruiken elektrochemische sensoren

Elektrochemische sensoren worden op grote schaal gebruikt voor de snelle en nauwkeurige meting van de bloedglucosewaarde en kunnen worden aangepast voor de detectie van een breed scala aan ...

Het algemene doel van het volgende experiment is het detecteren en identificeren van bacteriën met behulp van elektrochemische sensoren. Dit wordt bereikt door in eerste instantie het ribosomaal RNA uit de bacteriën vrij te maken om hybridisatie met de gefluoreerde detectieprobe mogelijk te maken; als tweede stap wordt het aan de detectieprobe gebonden ribosomaal RNA toegevoegd aan de werkelektrode, wat hybridisatie met de vangprobe op het sensoroppervlak mogelijk maakt. Vervolgens krijgt het anti-fluoresceïne mierikswortelperoxidase-conjugaat de kans om te binden aan de gefluoreerde detectieprobe.Ten slotte kan de interferometrische stroom worden verkregen, waarvan de intensiteit gecorreleerd is met het aantal complexen van capture probe ribosomaal RNA-detector probes op het sensoroppervlak. Het belangrijkste voordeel van deze techniek ten opzichte van kweekgebaseerde methoden is dat bacteriën in ongeveer 45 minuten kunnen worden gedetecteerd en geïdentificeerd, waardoor het wachten tot de volgende dag om een zichtbare kolonie op een EDGAR-plaat te vormen, wordt vermeden. Toepassing van deze techniek zou het beheer van infectieziekten verbeteren.Aangezien vroege detectie van bacte

bacterial-detection-identification-using-electrochemical-sensors

Research

JoVE Journal

Bioengineering

Bio-engineering

Een protocol om trichothecenen (mycotoxinen van zorg voor de gezondheid van de mens) met behulp van een nieuw ontwikkelde screening methode gebaseerd op een competitief immunochemische methode en een laatste elektrochemische detectie te detecteren is aangetoond.

ELIME (Enzyme Linked Immuno Magnetic Electrochemical) Methode voor Mycotoxine Detection

"E-DNA" sensoren, reagentless hebben elektrochemische biosensoren die goed presteren, zelfs wanneer direct uitgedaagd in het bloed en andere complexe matrices, aangepast aan de detectie van een breed scala van nucleïnezuur, eiwitten en kleine moleculen analyten. Hier presenteren we een algemene procedure voor de fabricage en het gebruik van dergelijke sensoren.

Fabricatie van elektrochemische-DNA Biosensoren voor de Reagentless detectie van nucleïnezuren, eiwitten en kleine moleculen

Source: Barber, A. E., et al. Preparation and Application of a New Bacterial Biosensor for the Presumptive Detection of Gunshot Residue. J. Vis. Exp. (2019).This video demonstrates the detection of specific analytes using a bacterial biosensor. A bacterial culture carrying a plasmid with a red fluorescent protein (RFP) gene under an analyte-sensitive promoter is taken. After thoroughly wiping the test surface, a small section of the wipe is immersed in the culture and incubated. The analyte...

Detection of a Target Analyte Using a Bacterial Biosensor

This video demonstrates a technique to detect bacterial contaminants in food and water samples using nanosensors. The target pathogenic bacteria are detected through a combination of magnetic relaxation and fluorescence emission modalities.

Detecting Bacterial Contamination Using Magneto-fluorescent Nanosensors

A-label-free optische biosensor voor de snelle detectie van bacteriën wordt geïntroduceerd. De biosensor is gebaseerd op een nanogestructureerde poreuze Si, die is ontworpen om direct vastleggen van de doelbacteriën cellen op het oppervlak. Wij gebruiken monoklonale antilichamen geïmmobiliseerd op de poreuze transducer als capture probes. Onze studies tonen de toepasselijkheid van deze biosensoren voor de detectie van lage bacteriële concentraties binnen enkele minuten zonder voorafgaande...

Optische detectie van E. coli Bacteriën door Mesoporous Silicon biosensoren

In dit werk rapporteren we een nieuwe methode om te studeren met behulp van een conductimetric biosensor gebaseerd op de technologie van de β-lactamase hybride eiwit-eiwitinteractie. Deze methode is gebaseerd op de release van protonen op hydrolyse van β-lactamen.

Het gebruik van een β-lactamase gebaseerde Conductimetric Biosensor Assay voor het detecteren van biomoleculaire interacties

Het algemene doel van dit protocol is voor het synthetiseren van functionele nanosensors voor de portable, kosteneffectief en snelle detectie van specifiek gericht pathogene bacteriën door een combinatie van magnetische ontspanning en fluorescentie emissie modaliteiten.

Foodborne Pathogen Screening met behulp van Magneto-belichting fluorescerende Nanosensor: Snelle detectie van E. Coli O157:H7

Een protocol voor de ontwikkeling van een elektrochemische DNA biosensor bestaat uit een polylactic acid-gestabiliseerde, gouden nanodeeltjes gemodificeerde, gezeefdrukt koolstof elektrode voor het detecteren van Vibrio parahaemolyticus wordt gepresenteerd.

Ontwikkeling van een elektrochemische DNA Biosensor te detecteren een Foodborne Pathogen

Hier presenteren we een protocol voor de detectie en kwantificering van lage overvloedige molecules in complexe oplossingen met behulp van moleculaire inprenting in combinatie met een capaciteit biosensor.

Ultrasensitive detectie van Biomarkers met behulp van een moleculaire Imprinting gebaseerd capacitieve Biosensor

Een protocol wordt gepresenteerd met behulp van synthetische biologietechnieken om een set van bacteriële biosensoren voor de analyse van schot residu te synthetiseren, en om de werking van de apparaten te testen voor het beoogde gebruik met behulp van fluorescentiespectroscopie.

Voorbereiding en toepassing van een nieuwe bacteriële biosensor voor de vermoedelijke detectie van schot residu

Leer bacteriële detectie en identificatie met elektrochemische sensoren voor microbiologisch onderzoek. Deze methode detecteert bacteriën in ongeveer 45 minuten via ribosomaal RNA-hybridisatie.

Bacteriële Detection & Identification gebruiken elektrochemische sensoren

Meer video's verkennen