23 oktober 2014
Dit protocol beschrijft een werkwijze voor het genereren en het zuiveren van wild type en mutante versies van de menselijke INO80 chromatin remodelling complex. Epitoop-gemerkte versies van INO80 subeenheden zijn stabiel tot expressie gebracht in HEK293-cellen en volledige complexen en complexen ontbreekt specifieke sets van subeenheden gezuiverd door immuno-affiniteitschromatografie.
Het doel van deze procedure is om wild type en mutante versies van het multi-subeenheid in oh 80 chromatine-hermodelleringscomplex te genereren en zuiveren. Dit wordt bereikt door eerst de kernen te isoleren van cellen die flag-epitoop getagde in O 80-eiwitten tot expressie brengen. In de tweede stap worden nucleaire extracten bereid en vervolgens worden de wild type of mutante humane in O 80 chromatine-hermodelleringscomplexen gezuiverd door Anti-Flag aros chromatografie. Uiteindelijk kunnen de subeenheidsamenstellingen van de gezuiverde NO 80-complexen worden geanalyseerd door middel van western blot of zilverkleuring.
Deze methode kan helpen bij het beantwoorden van sleutelvragen over hoe de subeenheden van MultiPro chromatine-hermodelleringscomplexen bijdragen aan hun algehele activiteit. Deze methode is specifiek ontworpen voor het bestuderen van wild type en mutante versies van het NO 80 Chromatine Remodeling complex, maar kan ook worden gebruikt om andere multi-subeenheid nucleaire complexen te bestuderen. Zoals de mediator.
De meest kritische stap van de procedure is de nucleaire extractiestap. Mensen komen meestal problemen tegen omdat tijdens de zoutextractiestap mensen de neiging hebben om te snel of te krachtig zout toe te voegen Na cultuur in rollerflessen, breng de HEC 2 9 3 cellen over naar een geschikt bemaat gesneden conische buis en draai ze 10 minuten bij 1000 keer G en vier graden Celsius. Verwijder na het verwijderen van het supernatant het volume van de gepakte cellenpellet, en suspendeer vervolgens de pellet in vijf keer het celvolume buffer A met zacht pipetteren en incubeer de cellen gedurende exact 10 minuten op ijs.
Nadat de cellen opnieuw zijn afgecentrifugeerd, meet u de cellenpellet een tweede keer, deze zou tot tweemaal zo groot moeten zijn. Dit keer suspendeert u de cellen in twee keer het celvolume buffer A en brengt u de celsuspensie over naar een geschikt bemaat neerwaartse weefselhomogenisator en homogeniseert u de celsuspensie met de losse glazen stamper tot 90% van de cellen positief kleurt met trian blauw centrifuge, de gehomogeniseerde cellen in een 45 milliliter hoge snelheid centrifugebuis gedurende 20 minuten bij 25.000 keer G en vier graden Celsius in een vaste hoek rotor. Verwijder vervolgens het SUP nataat dat de cytosolische eiwitten bevat van de nucleaire pellet om de kernen met zout te extraheren.
Voeg nu 2,5 milliliter buffer C toe, maar elke drie milliliter van het beginvolume van de gepakte cellen, aan de pellet. Gebruik vervolgens een serologische pipet om de pellet los te maken van de wand van de buis en breng het hele mengsel over naar een neerwaartse homogenisator van geschikte grootte. Homogeniseer het mengsel met twee slagen van een losse stamper om de kernen opnieuw te suspenderen en breng vervolgens de gesuspendeerde nucleaire fractie over in een gekoelde beker van zo'n formaat dat de suspensie de beker ten minste 0,5 centimeter diep zal vullen.
Bereken vervolgens het volume vijf molaar natriumchloride dat nodig is om de oplossing tot een eindconcentratie van 0,42 molaar natriumchloride te brengen volgens de volgende formule. Voeg vervolgens geleidelijk het berekende volume zoutoplossing druppelsgewijs toe terwijl u de suspensie voorzichtig roert met een glazen staaf op ijs om de zoutconcentratie van de suspensie te verhogen totdat al het natriumchloride is toegevoegd en de oplossing zeer viskeus wordt. Breng vervolgens de viskeuze suspensie voorzichtig over in 70 milliliter polycarbonaatbuizen in een Type 45 TI rotor met kapsamenstelling en gebruik een mutator om de verzegelde buizen gedurende 30 minuten bij vier graden Celsius langzaam heen en weer te schudden. Ultracentrifugeer de monsters vervolgens in een TI 45 rotor gedurende 30 minuten bij 40.000 keer G en vier graden Celsius, en trek de nucleaire extract bevattende supernatanten in een enkele plastic container.
Verdeel vervolgens de nucleaire extractoplossing in handige maat porties, snap ze ingeslagen in vloeibaar stikstof en bewaar ze bij min 80 graden Celsius. Om Anti-Flag aros voor immunozuivering voor te bereiden, begint u met het gebruik van een 200 microliter pipet met de punt afgesneden om 200 microliter over een 50% Anti-Flag aros kralen suspensie over te brengen in een 1,5 milliliter micro centrifugeerbuis. Breng de voorgewassen kralen over in een conische buis met 10 milliliter vers ontdooid nucleair extract gedurende uren bij vier graden Celsius met langzame rotatie op een laboratoriumrotator, en verzamel vervolgens de flag aros door centrifugatie gedurende vijf minuten bij 1000 keer G en vier graden Celsius.
Was vervolgens de bead extract P in 10 milliliter lice vier 50 buffer gedurende vijf minuten bij vier graden Celsius met voorzichtig schudden op een mutator. Breng na het afcentrifugeren van het bead extract mengsel de pellet opnieuw in suspensie in 100 tot 150 microliter vers lice vier 50, breng de kralen over naar een 1,5 milliliter micro centrifugeerbuis.
Ga door met het spoelen van de 15 milliliter conische buis met 100 tot 150 microliter vatjes Lysol 50 totdat alle kralen zijn overgebracht naar de micro centrifugeerbuis. Na het afcentrifugeren van de kralen in een microcentrifuge, was ze drie keer met één milliliter lys vier 50 en één keer met één milliliter EB 100.Buffer. Voeg vervolgens 200 microliter EB 100 buffer met flag peptide toe om de gebonden eiwitten te elueren en incubeer het monster gedurende vier graden Celsius op een nutt.
Na een half uur pellet de kralen in de microcentrifuge die u hebt gewonnen en breng vervolgens het SUP nataat dat het elueerde in OAC C complex bevat over naar een nieuwe micro centrifugeerbuis. Nadat u de elucatie vier keer herhaalt, laat u het getrokken eluaat door een lege spinkolom lopen om eventuele resterende flag aeros kralen uit de eiwitfractie te verwijderen. Gebruik ten slotte een centrifugaal ultrafiltratieapparaat met een moleculair gewicht van 50.000 om de geelueerde eiwitfractie ongeveer 10 keer te concentreren.
Zoals geïllustreerd in deze figuur, kan de zuiverheid van de NO 80 complexen die zijn bereid met behulp van de aangegeven flag-tag subeenheden, zoals zojuist aangetoond, worden beoordeeld
Bekijk het volledige transcript en krijg toegang tot duizenden wetenschappelijke video's
Dit protocol beschrijft een methode voor het genereren en zuiveren van zowel wild-type als gemuteerde versies van het menselijke INO80-chromatineremodelleringscomplex. Het proces omvat de expressie van epitope-getagde INO80-subeenheden in HEK293-cellen en het zuiveren van de complexen via immunoaffiniteitschromatografie.
Zuivering van humane INO80 chromatine-remodelleringscomplexen en subcomplexen maakt een nauwkeurige dissectie van de assemblage en functie van multi-subunits mogelijk, wat direct bijdraagt aan targetvalidatie en mechanische risicoreductie in de vroege ontdekkingsfase. Deze capaciteit is cruciaal voor het begrijpen van hoe individuele subunits bijdragen aan de chromatine-remodelleringsactiviteit, wat de voorspellende betrouwbaarheid van epigenetische targetportfolio's vergroot. De aanpak biedt een herbruikbaar platform voor het onderzoeken van mammaliaanse chromatine-remodelleringscomplexen die relevant zijn voor genregulatie en ziektebiologie.
Deze methode bevindt zich op het snijvlak van vroege ontdekking en lead-identificatie, wat mechanistische studies mogelijk maakt die zowel de target-validatie als de assay-ontwikkeling voor chromatine-remodelleringscomplexen ondersteunen.