Name: Meten Oplopend stijfheid van de aorta In Vivo In Muizen met behulp van echografie (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-12-02T12:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 8 s
Description: Leer hoe u aortastijfheid in vivo meet bij muizen met echografie en een drukkatheter. Deze methode registreert diameterveranderingen in reactie op drukvariaties om cardiovasculaire gezondheid te beoordelen.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

Dit werk werd ondersteund door een National Heart, Lung, en Blood Institute-subsidie 1RO1-HL-105296-01 (aan D.E. Berkowitz) en een Australian Research Council-subsidie DP110101134 (aan A. Avolio).

Dit protocol is goedgekeurd door de Institutional Animal Care en gebruik Comite aan de Johns Hopkins University. 1. Voorbereiding van de oplossing, de materialen, en Animal <ol><li> Bereid een 300 ug / ml oplossing van fenylefrine (PE) en 300 ug / ml natrium- nitroprusside (SNP) in 0,9% zoutoplossing. Bereid een aparte heparine-zoutoplossing door het mengen van 1 ml van 1,000 U / ml heparine in 10 ml 0,9% zoutoplossing. OPMERKING: middelen moet bij kamertemperatuur vóór gebruik. </li><li> Maak de katheter voor intraveneuze infusie van het geneesmiddel uit twee 30 G x ½ &quot;injectienaalden en PE 10 polyethyleen buis. Om de katheter te maken, steek een naald in het ene uiteinde van de slang. Verwijder de naald gedeelte van de andere injectienaald en breng het stompe uiteinde in het andere uiteinde van de slang. Bevestig de katheter een 1 ml spuit en vul de catheter met heparine-zoutoplossing. </li><li> Plaats de muis in de anesthesie inductie kamer containing 2-2,5% isofluraan in 100% zuurstof. Laat de muis in de inductie kamer totdat deze reageert op externe prikkels. </li><li> Verwijder de muis uit de inductie kamer en plaats het op de verwarmde elektrocardiogram (ECG) pad. Handhaaf het dier op 2% isofluraan. </li><li> Breng dierenarts zalf of zoutoplossing ogen van het dier tot droog tijdens de procedure te voorkomen. </li></ol> 2. Het inbrengen van katheter in Tail Vein <ol><li> Aangezien de staart aderen zijdelings aan weerszijden van de staart, plaats het dier op de zijkant voor betere toegang. Zet de muis op het ECG pad met tape. Zorg ervoor dat het dier wordt warm gehouden om vaatverwijding van de staart aderen te bevorderen. </li><li> Met behulp van een stuk van flexibele slangen als een tourniquet, bind de tourniquet rond de basis van de staart. Bind de tourniquet strak genoeg om de aderen instorten, maar niet genoeg om af te snijden van de arteriële circulatie. Na 2-3 min, dient de ader uitpuilen en beter zichtbaar. </li><li> Trek de staart strak. Buig de staart schuin met één hand houdt de naald parallel aan de staart van de andere. Pierce de naald wanneer de staart wordt gebogen door de huid in de ader. Bloed terug te duwen in de katheter wanneer de naald in de ader is geplaatst. </li><li> Breng één druppel weefsellijm waar de naald wordt ingebracht om de katheter te verzekeren. Verwijder de tourniquet en bevestig doorgankelijkheid door het injecteren van een zoutoplossing met weinig weerstand. </li></ol> 3. Het inbrengen van Bloeddruk katheter door Femorale Artery <ol><li> Plaats de druk katheter in een 30 ml injectiespuit gevuld met gedestilleerd water en sluit de catheter de druk regeleenheid. Week de katheter in het water, aangesloten, voor 30-45 min tijdens de set-up en chirurgische ingrepen. </li><li> Plaats het dier in rugligging en tape zijn poten op de ECG-pad. Toepassing ontharingscrème op de borst en ruimte boven de femorale slagader. <ol><li> Wacht 3-5 minuten en verwijder crème en haar. Thoroughly verwijder haar van de borst te artefacten te voorkomen tijdens de echo. Veeg zowel de borst en achterste ledematen regio&#39;s met een vochtig pad om overtollig ontharingscrème te verwijderen. </li></ol></li><li> Met behulp van fijne schaar, een insnijding in de huid boven de plaats van de femorale slagader. Prepareer door het onderhuidse vetweefsel de femorale slagader onthullen. De femorale slagader wordt gedeeltelijk door de buik. Gebruik arterieklem om de buik bewegen afstand. Houd de weefsels vochtig door te bedekken met vochtig gaasje of als alternatief druipt zout overheen periodiek weefsels niet uitdroogt. </li><li> Met behulp van fijne tang, scheiden de zenuw uit de buurt van de slagader-ader bundel. Voorzichtig doorboren via de schede rond de slagader-ader bundel om de slagader te scheiden van de ader. Ga een hechtdraad rondom de arterie aan het proximale uiteinde en plaats twee hechtingen aan het distale einde. </li><li> Stevig knoop de meest distale hechtdraad tot distale bloedstroom te stoppen. Gebruik arterieklem aan de p trekkenroximal hechtdraad om tijdelijk te stoppen met de bloedstroom in de femorale slagader. Gebruik microscissors om een ​​kleine incisie in de femorale slagader. Maak de incisie in de buurt van de distale knoop. </li><li> Kalibreer het data acquisitie software om de katheter via de kalibratie-instellingen van de druk regeleenheid. Schakel de drukregeleenheid terug naar het lezen van de transducer en de balans van de druk katheter, zodat de katheter uitgangen 0 mm Hg in het water spuit. </li><li> Breng de katheter in de femorale slagader. Open de incisie met fijne tang met één hand en een katheter kop in de slagader met de andere hand. <ol><li> Knoop de middelste hechtdraad rondom de katheter draad de katheter in de slagader te verzekeren. Ontspannen de proximale hechtdraad en vooruit vooraf de katheter in de abdominale aorta. Knoop de proximale hechtdraad om de katheter verder te beveiligen en om het bloeden te voorkomen. </li></ol></li><li> Verplaats de ECG pad zorgvuldig met de muis, druk katheter en zoutoplossing syringe de echografie fase. Sluit de bloeddruk catheter de druk regeleenheid. Plaats de zoutoplossing spuit in de injectiepomp. Laat het dier en de katheter te equilibreren gedurende 20 min. </li></ol> 4. Het meten van Aorta Diameter over een bereik van bloeddruk <ol><li> Verminder isofluraan tot 1,5%. Visualiseer de aorta ascendens lengterichting op B-modus met behulp van een lange as uitzicht. Monteer de transducer op het railsysteem zodat dezelfde weergave wordt gehandhaafd gedurende de duur van het experiment. </li><li> Op de echo mainframe, plaatst u de M-modus cursor over het gedeelte van de aorta te worden gevolgd. Volg de aorta diameter verandering over de hartcyclus met M-modus. </li><li> Wijzig de zoutoplossing in de spuit met de PE-oplossing en plaats de injectiespuit in de injectiepomp. <ol><li> Opname M-modus bij aanvang aortadruk. Begin infusie met 360 ug / kg / min en trekken gedurende 1 min gedurende aorta druk om stationair. Voor een 25 g muis, hiervoorse gelijk aan 30 ui / min. </li><li> Noteer de M-stand, dan is het infuus te stoppen, en wacht 2 min voor de bloeddruk om terug te keren naar de uitgangswaarde. </li></ol></li><li> Lagere infusiesnelheid tot 240 ug / kg / min. Voor een 25 g muis, deze dosis gelijk aan 20 pl / min. Infuus starten, trekken gedurende 1 min voor de bloeddruk naar een plateau, en opnemen M-modus. Stop de infusie, en wacht 2 min voor de bloeddruk om terug te keren naar de uitgangswaarde. </li><li> Herhaal stap 4.4 120 ug / kg / min PE (10 pl / min bij 25 g muis). </li><li> Vervang PE met een zoutoplossing en trekken de zoutoplossing tegen de koers die voor de 360 ​​ug / kg / min infusie (30 pl / min voor een 25 g muis). Trekken gedurende 2-3 minuten, tot nader infusie produceert niet een verhoging van de druk in de aorta en de druk is terug te keren naar de uitgangswaarde. Wacht 5 minuten voor de bloeddruk te stabiliseren op baseline. </li><li> Vervang zoutoplossing met SNP. <ol><li> Opname M-modus bij aanvang aortadruk. Begin infusie met 240 ug / kg / min (20 ul / min gedurende 25 g muis)en trekken gedurende 1 min. Wanneer aortadruk een plateau bereikt, nemen de M-mode. Stop de infusie en wacht 2 min voor de bloeddruk om terug te keren naar de uitgangswaarde. </li></ol></li><li> Lagere infusiesnelheid tot 120 ug / kg / min (10 ul / min gedurende 25 g muis). Infuus starten, trekken gedurende 1 min voor de bloeddruk naar een plateau, en opnemen M-modus. Stop infusie en wacht 2 min voor de bloeddruk terug te keren naar de uitgangswaarde. </li><li> Herhaal stap 4.8 60 ug / kg / min SNP (5 pl / min gedurende 25 g muis). </li></ol> 5. Beëindiging van het Experiment <ol><li> Om het dier te laten inslapen, verhogen isofluraan tot 4%. Als de ademhaling is vertraagd, meestal in 1-2 min, dwars door het borstbeen met een schaar om de borstholte te openen en het hart bloot te leggen. </li><li> Pak het hart met medium tang en accijnzen uit het lichaam door te snijden in de aorta ascendens met een schaar. </li></ol>

<ol><li>Mitchell, G. F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Changes+in+arterial+stiffness+and+wave+reflection+with+advancing+age+in+healthy+men+and+women+-+The+Framingham+Heart+Study%5BTitle%5D)+AND+%22Hypertension%22%5BJournal%5D)">Changes in arterial stiffness and wave reflection with advancing age in healthy men and women - The Framingham Heart Study.</a> Hypertension. 43, 1239-1245 (2004).</li>
<li>Mahmud, A., Feely, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effect+of+smoking+on+arterial+stiffness+and+pulse+pressure+amplification%5BTitle%5D)+AND+%22Hypertension%22%5BJournal%5D)">Effect of smoking on arterial stiffness and pulse pressure amplification.</a> Hypertension. 41, 183-187 (2003).</li>
<li>Lehmann, E. D., Gosling, R. G., Sonksen, P. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Arterial+wall+compliance+in+diabetes%5BTitle%5D)+AND+%22Diabet+Med%22%5BJournal%5D)">Arterial wall compliance in diabetes.</a> Diabet Med. 9, 114-119 (1992).</li>
<li>Wang, Y. -X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reduction+of+cardiac+functional+reserve+and+elevation+of+aortic+stiffness+in+hyperlipidemic+Yucatan+minipigs+with+systemic+and+coronary+atherosclerosis%5BTitle%5D)+AND+%22Vasc.+Pharmacol%22%5BJournal%5D)">Reduction of cardiac functional reserve and elevation of aortic stiffness in hyperlipidemic Yucatan minipigs with systemic and coronary atherosclerosis.</a> Vasc. Pharmacol. 39, 69-76 (2002).</li>
<li>Ben-Shlomo, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Aortic+Pulse+Wave+Velocity+Improves+Cardiovascular+Event+Prediction%3A+An+Individual+Participant+Meta-Analysis+of+Prospective+Data+From+17%2C635+Subjects%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Am.+Coll.+Cardiol%22%5BJournal%5D)">Aortic Pulse Wave Velocity Improves Cardiovascular Event Prediction: An Individual Participant Meta-Analysis of Prospective Data From 17,635 Subjects.</a> J. Am. Coll. Cardiol. 63, 636-646 (2014).</li>
<li>Mitchell, G. F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Arterial+stiffness+and+cardiovascular+events%3A+the+Framingham+Heart+Study%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Arterial stiffness and cardiovascular events: the Framingham Heart Study.</a> Circulation. 121, 505-511 (2010).</li>
<li>Mattace-Raso, F. U., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Arterial+stiffness+and+risk+of+coronary+heart+disease+and+stroke%3A+the+Rotterdam+Study%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Arterial stiffness and risk of coronary heart disease and stroke: the Rotterdam Study.</a> Circulation. 113, 657-663 (2006).</li>
<li>Laurent, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Aortic+stiffness+is+an+independent+predictor+of+all-cause+and+cardiovascular+mortality+in+hypertensive+patients%5BTitle%5D)+AND+%22Hypertension%22%5BJournal%5D)">Aortic stiffness is an independent predictor of all-cause and cardiovascular mortality in hypertensive patients.</a> Hypertension. 37, 1236-1241 (2001).</li>
<li>Fung, Y. C. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aFung%2C+YC+%22Biomechanics%3A+Mechanical+Properties+of+Living+Tissues%22">Biomechanics: Mechanical Properties of Living Tissues</a>. , 2nd edn, Springer. New York, NY. (1993).</li>
<li>Shadwick, R. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanical+design+in+arteries%5BTitle%5D)+AND+%22J+Exp+Biol%22%5BJournal%5D)">Mechanical design in arteries.</a> J Exp Biol. 202, 3305-3313 (1999).</li>
<li>Gasser, T. C., Ogden, R. W., Holzapfel, G. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hyperelastic+modelling+of+arterial+layers+with+distributed+collagen+fibre+orientations%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+The+Royal+Society+Interface%22%5BJournal%5D)">Hyperelastic modelling of arterial layers with distributed collagen fibre orientations.</a> Journal of The Royal Society Interface. 3, 15-35 (2006).</li>
<li>Zieman, S. J., Melenovsky, V., Kass, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanisms%2C+Pathophysiology%2C+and+Therapy+of+Arterial+Stiffness%5BTitle%5D)+AND+%22Arteriosclerosis%2C+Thrombosis%2C+and+Vascular+Biology%22%5BJournal%5D)">Mechanisms, Pathophysiology, and Therapy of Arterial Stiffness.</a> Arteriosclerosis, Thrombosis, and Vascular Biology. 25, 932-943 (2005).</li>
<li>Jung, S. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Increased+tissue+transglutaminase+activity+contributes+to+central+vascular+stiffness+in+eNOS+knockout+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Physiol.-Heart+Circul.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Increased tissue transglutaminase activity contributes to central vascular stiffness in eNOS knockout mice.</a> Am. J. Physiol.-Heart Circul. Physiol. 305, 803-810 (2013).</li>
<li>Santhanam, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Decreased+S-Nitrosylation+of+Tissue+Transglutaminase+Contributes+to+Age-Related+Increases+in+Vascular+Stiffness%5BTitle%5D)+AND+%22Circ.+Res%22%5BJournal%5D)">Decreased S-Nitrosylation of Tissue Transglutaminase Contributes to Age-Related Increases in Vascular Stiffness.</a> Circ. Res. 107, 117-243 (2010).</li>
<li>Fitch, R. M., Vergona, R., Sullivan, M. E., Wang, Y. X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nitric+oxide+synthase+inhibition+increases+aortic+stiffness+measured+by+pulse+wave+velocity+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Cardiovasc.+Res%22%5BJournal%5D)">Nitric oxide synthase inhibition increases aortic stiffness measured by pulse wave velocity in rats.</a> Cardiovasc. Res. 51, 351-358 (2001).</li>
<li>Bergel, D. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+static+elastic+properties+of+the+arterial+wall%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Physiology%22%5BJournal%5D)">The static elastic properties of the arterial wall.</a> The Journal of Physiology. 156, 445-457 (1961).</li>
<li>Leloup, A. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Applanation+Tonometry+in+Mice%3A+A+Novel+Noninvasive+Technique+to+Assess+Pulse+Wave+Velocity+and+Arterial+Stiffness%5BTitle%5D)+AND+%22Hypertension%22%5BJournal%5D)">Applanation Tonometry in Mice: A Novel Noninvasive Technique to Assess Pulse Wave Velocity and Arterial Stiffness.</a> Hypertension. 21, 21(2014).</li>
<li>Morrison, T. M., Choi, G., Zarins, C. K., Taylor, C. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Circumferential+and+longitudinal+cyclic+strain+of+the+human+thoracic+aorta%3A+age-related+changes%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vasc+Surg%22%5BJournal%5D)">Circumferential and longitudinal cyclic strain of the human thoracic aorta: age-related changes.</a> J Vasc Surg. 49, 1029-1036 (2009).</li>
<li>Butlin, M., Hammond, A., Lindesay, G., Viegas, K., Avolio, A. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vitro+and+in+vivo+use+of+vasoactive+agents+in+characterising+aortic+stiffness+in+rats%3A+testing+the+assumptions%5BTitle%5D)+AND+%22Hypertens%22%5BJournal%5D)">In vitro and in vivo use of vasoactive agents in characterising aortic stiffness in rats: testing the assumptions.</a> Hypertens. 30, 42(2012).</li>
</ol>

De auteurs hebben niets te onthullen.

Metingen diameter bij verschillende stappen druk over een breed bereik van drukwaarden nodig voor nauwkeurige karakterisering van de relatie druk-doorsnede. De bovenste en onderste limieten die druk kan farmacologisch worden geïnduceerd kunnen per experimentele groep, maar het ideale bereik is ongeveer 25 mm Hg tot 125 mm Hg diastolisch en 50 mm Hg tot 200 mm Hg systolisch. Doses van 360 ug / kg / min PE en 240 ug / kg / min SNP algemeen wekken de grenzen van het drukbereik. Echter, doses van PE verhoogd tot 480 ug / kg / min en SNP tot 360 ug / kg / min om te controleren of de grenzen zijn bereikt. Werken concentraties van PE en SNP kan worden verlaagd tot fijnere drukniveau. Aangezien de diameter zal veranderen aorta druk induceren dezelfde drukwaarden tussen dieren en experimentele groepen is niet belangrijk. Veneuze en arteriële canule kan worden uitgevoerd op andere plaatsen met hetzelfde outcomes. Staartaderinjectie canulatie kan lastig zijn vanwege de geringe omvang van de staart ader. Bovendien is de staartader niet gemakkelijk zichtbaar in donkere muizen. De femorale ader kan worden canule als een alternatief. Deze route kan gemakkelijker omdat de femorale ader toegankelijker. Voor druk katheter inbrengen, naast de femorale slagader, kan de katheter worden ingebracht via de halsslagader. De femorale slagader voorkeur via halsslagader, echter, omdat de borstkas blijft intact voor de echografie. Dijbeenslagader canule soms moeilijker omdat de femorale slagader kleiner. Met behulp van een 1,2 F katheter inbrengen van de katheter in de proximale dij slagader onder de buikholte de canule vergemakkelijken. Het plaatsen van een paar druppels van een vaatverwijdend middel, zoals lidocaïne op de femorale arterie of via een katheter introducer kan ook helpen vergroten het vat inbrengen van de katheter vergemakkelijken. De druk katheter worden gehanteerd en gebruiktvolgens de instructies van de fabrikant. Locatie van de katheter in de aorta hoeft niet vergelijkbaar bij dieren als de drukval in de aorta is onbelangrijk. Echter, het plaatsen van de katheter in de abdominale aorta kan beter zijn om interferentie met de echografie van de thoracale aorta minimaliseren. Sommige ultrasone mainframes kan druk real time opnemen met de M-modus spoor, waardoor aan een drukmeting voor elke diameter gemeten op de M-mode. Helaas, omdat de plaats waar de diameter wordt gemeten is niet dezelfde plaats als waar de druk wordt opgenomen, bestaat er een vertraging tussen het opgenomen in de katheter druk en de werkelijke druk in de omhooggaande aorta. Daardoor kan alleen maximale en minimale diameter metingen worden gebruikt voor gegevensanalyse. De belangrijkste beperking van deze methode is de onzekerheid in de meting die door de aorta verschuiven en uit of het ultrasone vlak tijdens de hartcyclus. -Motion geïntroduceerd fout is gemeenschappelijk voor alle beeldvorming op basis van studies, waaronder MRI en CT. Compensatie strategieën omvatten het gebruik van anatomische kenmerken om het referentiekader te verschuiven met de beweging 18 en tijdens de verwerking van gegevens ten uitvoer worden gelegd. Als bewegingscompensatie software niet beschikbaar is, de onderzoeker is waakzaam Verschuiven van de probe de verschuiving in de locatie van de aorta bloeddruk stijgt volgen en vermindert zijn. Diameter metingen worden genomen door het midden van de aorta. Echter, het bepalen of de M-mode opnamelocatie wordt door het middelpunt kan moeilijk te beoordelen op het ultrasone beeld, vooral de aorta schakelposities. De onzekerheid die door deze beperkingen manifesteren in de mate van spreiding in de gegevens, zoals blijkt uit figuur 6. Verkrijgen van een beeld van de dwarsdoorsnede plaats langsas van de ascending aorta kan een oplossing zijn. Echter, het verkrijgen van deze visie kan soms lastig zijn en de resulterende M-modus trace kan minder duidelijk zijn. De dwarsdoorsnede omtrek van het B-mode kunnen worden gemeten in plaats van de diameter van het beeld M-mode. Echter, het bepalen wanneer de maximale en minimale omtrek is bereikt zal worden beperkt door de B-modus frame rate en kan moeilijker te beoordelen dan de M-modus. Maken meerdere metingen van de plot druk diameter en toenemende experimentele groepsgrootte kan de nauwkeurigheid van de gegevens te verbeteren. De data druk diameter kan worden vanuit verschillende plaatsen langs de borst. Dit protocol zal eerst met de sonde geplaatst op een locatie op de borst worden uitgevoerd. De aorta zou dan worden gevisualiseerd met de probe geplaatst op een andere locatie en het protocol herhaald. Vasoactieve middelen die worden gebruikt om de bloeddruk te moduleren kan mogelijk invloed hebben op de aorta gladde muscle toon, waardoor stijfheid zou beïnvloeden. Echter manipulatie van aortadruk veneuze terugkeer is aangetoond soortgelijke veranderingen in invasief gemeten PWV als farmacologische manipulatie ratten produceren. Deze bevindingen tonen aan dat infusie van vasoactieve geneesmiddelen werken voornamelijk op perifere weerstand slagaders en hebben geen significante invloed aorta gladde spiertonus 19. Dit protocol kan worden uitgevoerd bij ratten met enkele kleine aanpassingen. De kist wordt voorafgaand aan het aanbrengen van ontharingscrème geschoren. Een commercieel 27 G x ½ &quot;katheter voor toediening van het geneesmiddel. De drug doses gebruikt aortadruk moduleren 40, 80, en 120 ug / kg / min PE en 40, 80, en 120 ug / kg / min SNP. Naast de aorta ascendens, kunnen regionale verschillen in stijfheid van de aorta worden bepaald met dit protocol. Regionale stijfheid gemeten door deze aanpak zou nauwkeuriger zijn dan door PWV als metingen are genomen van de ene locatie, in tegenstelling tot twee locaties voor PWV. Echter, gebieden langs de aorta die kan worden gemeten met deze techniek zijn beperkt tot die welke kan worden gevisualiseerd door echografie. Elasticiteitsmodulus kan ook worden berekend uit de door deze methode verzameld als een wanddikte meting worden verkregen gegevens. Nauwkeurige in vivo meting van de muis aorta wordt beperkt door het beperkt de huidige ultrasone technologie. Toekomstige verbetering van ultrasone technologie zou kunnen maken in vivo wanddikte meting meer haalbaar. Als alternatief kan diktemetingen worden uitgevoerd ex vivo. Druk myography zou de meest nauwkeurige metingen te bieden, omdat de dikte kan worden gemeten bij elke druk increment.

Verhoogde stijfheid van de aorta is een kenmerk van cardiovasculaire ziekte. Aging 1, roken 2, diabetes 3, 4 hyperlipidemie en andere risicofactoren op hart- en vaatziekten is aangetoond aorta stijfheid verhogen. Epidemiologische studies hebben verder aangetoond stijfheid van de aorta als een krachtige onafhankelijke voorspeller van het optreden van coronaire hartziekten en beroerte, alsmede het optreden van cardiovasculaire gebeurtenissen en mortaliteit 5-8. Vanwege de klinische en de volksgezondheid van de toegenomen stijfheid van de aorta, wordt het huidige onderzoek richt zich op het begrijpen van de mechanismen die ten grondslag liggen aan de ontwikkeling en progressie van vasculaire stijfheid. Grote belangstelling bestaat daarom in het ontwikkelen van nauwkeurige metingen van vasculaire stijfheid in experimentele modellen van hart- en vaatziekten. Stijfheid van een materiaal kan worden gekenmerkt door de spanning-rek relatie en gekwantificeerd als elastische modUlus. Een lineair elastisch materiaal vervormt omkeerbaar en de spanning stijgt in verhouding tot stam. De aorta en de grote slagaders lineaire elastische organen: trekkracht, is de stijfheid van de slagader niet constant, maar neemt toe met de graad van uitzetting. Deze niet-lineariteit in de mechanische eigenschappen van grote slagaders vanwege de verschillende stijfheid eigenschappen van de dragende elementen, namelijk elastine en collageen, die de vaatwand vormen. Elastine is zeer uitbreidbare met een elasticiteitsmodulus van 0,6 MPa. In vergelijking, collageen is zeer stijf met elastische modulus van 1 GPa 9. De initiële stijfheid vertoond door de aorta bij lagere rekwaarden wordt toegeschreven aan elastine De hoge stijfheid vertoonden hoge rekwaarden is door collageen. Belasting wordt uit elastine collageen als het schip uitzet en deze regio van lading overdracht is waar het vasculaire stelsel. Daarom, bij fysiologische druk, arteriële stijfheidafhankelijk van de bijdrage van zowel elastine en collageen 10. De verdeling en oriëntatie van elastine en collageen verschillen per laag in de slagaderwand. In de media, de elastine, collageen en gladde spiercellen zijn gebundeld in strakke helices die gelaagd zijn concentrisch. Deze opstelling maakt de slagader hoge belastingen weerstaan ​​omtreksrichting. De adventitia overwegend collageen met weinig elastine en collageenvezels zijn georganiseerd in een net-achtige manier. Deze collageenvezels zijn golvend in een onbeklemtoonde staat en rechtzetten als belasting toeneemt. Stijfheid toeneemt naarmate de collageenvezels recht te trekken, waardoor de slagader voorkomen van overstrekken en scheuren. Wegens de structurele organisatie en wisselende oriëntatie van de collageenvezels, slagaders zijn anisotroop: de stijfheid tentoongesteld afhankelijk van wanneer het schip in de lengte of de omtrek 11 wordt uitgerekt In vivo stijfheid.s is derhalve een samenstelling van langs- en omtreksrichting stijfheid van de aorta&#39;s. Arteriële stijfheid wordt meestal gekwantificeerd in vivo als compliance of polsgolfsnelheid (PWV). Arteriële compliantie wordt gedefinieerd als C = AD / AP waarin AD is diameterverandering en AP de overeenkomstige verandering in druk. Lagere waarden op de naleving duiden stijvere vaten. Compliance wordt berekend uit de druk-dimensie verhouding van de slagader en derhalve een directe maat van stijfheid. Stijfheid wordt verspreid niet gelijkmatig in het vaatstelsel 12, moet de naleving worden gemeten op hetzelfde / vergelijkbare locatie in elk onderwerp om zinvolle vergelijkingen tussen experimentele groepen te maken. Het verschil tussen compliance en elasticiteitsmodulus dat elasticiteitsmodulus genormaliseerd op de afmetingen van het materiaal. Compliance weerspiegelt daarom structurele stijfheid, terwijl elasticiteitsmodulus reflects materiaal stijfheid. Bij het ouder worden, arteriële wanddikte toeneemt en elastine / collageen verhouding afneemt, zodat de structurele stijfheid en materiaal stijfheid groter. Vergeleken met naleving PWV is een indirecte maat van arteriële stijfheid. PWV is de snelheid waarmee de druk puls langs een lengte van slagader en wordt beïnvloed door de eigenschappen van de vaatwand. De Moens-Korteweg vergelijking wordt gebruikt om de relatie tussen PWV en elastische modulus model: PWV 2 = E h / (2 ρ r) waarin E incrementeel elasticiteitsmodulus, h wanddikte, ρ is bloedviscositeit en r radius verblijf . Een hogere PWV waarde stelt daarom voor een stijvere vat. Compliance en elastische modulus kan experimenteel ex vivo worden gemeten op een weggesneden segment van het schip. Om de naleving te bepalen, wordt het segment vat gemonteerd op een druk myograaf 13,14. Druk in het vat wordt verhoogd stapsgewijze en the resulterende verandering in diameter wordt gevolgd met behulp van video-microscopie. Compliance wordt bepaald uit de gegevens druk diameter. Incrementele elastische modulus kan worden gemeten door trekproeven. In deze experimenten wordt het schip uit elkaar getrokken stapsgewijze en kracht-verplaatsing gegevens worden verzameld tot het vaartuig de ring breekt. Stress en spanning waarden kunnen worden berekend en uitgezet om incrementele elastische modulus te bepalen. Deze ex vivo benaderingen kunnen worden gebruikt om wijzigingen in de passieve eigenschappen die stijfheid beïnvloeden evalueren. In vivo, naast inhoud wand, wordt vasculaire stijfheid dynamisch beïnvloed door tonus en bloeddruk 13,15,16. PWV is de meest gebruikte methode voor het meten van in vivo aorta stijfheid in experimentele modellen. PWV kan niet-invasief worden bepaald met behulp van Doppler-echografie of applanatie tonometrie 17. Drukpuls wordt gemeten bij twee afzonderlijke plaatsen en de benodigde tijd voorde pols om de afstand te doorkruisen is het polsgolfsnelheid. Omdat PWV wordt gemeten over een lengte van aorta, is een gemiddelde waarde van stijfheid. Grote slagaders zijn niet-lineaire elastische, dus stijfheid en dus PWV zal variëren met de arteriële druk. Een hogere PWV waarde kan dus het gevolg zijn van verhoogde stijfheid of verhoogde druk. PWV waarden derhalve moet worden genormaliseerd om de bloeddruk tot conclusies over de stijfheid van het schip af te leiden. Meetmethoden dat de invloed van de bloeddruk met de passieve eigenschappen van de vaatwand en de effecten van vasoactieve mediatoren die veranderen toon zou een fysiologisch relevante index van arteriële stijfheid verkregen nemen. Deze benadering wordt uitgevoerd door het meten PWV invasief gebruik van een katheter met twee drukopnemers gescheiden op een vaste afstand 13. Deze dubbele druk katheter wordt ingebracht in de aorta en vasoactieve geneesmiddelen zoals fenylefrine of natrium nitroprusside, intraveneus toegediend viaeen veneuze katheter te verhogen en een lagere bloeddruk. Dit protocol beschrijft een werkwijze aorta stijfheid in vivo bepalen van de druk-afmeting verhouding in een muismodel. Deze aanpak biedt een aantal voordelen boven de invasieve PWV meting. Stijfheid indices, zoals naleving kan worden berekend uit de druk-afmetinggegevens van deze procedure verzameld. Bovendien laat deze techniek voor het meten van de lokale stijfheid van de aorta omdat stijfheid wordt gemeten vanaf één locatie. Deze benadering is bijzonder nuttig bij het meten opgaande aorta stijfheid korte lengte van deze regio maakt PWV meting moeilijk te verkrijgen. Onderzoek belangstelling bestaat specifiek in opgaande aorta omdat de mechanische eigenschappen beïnvloeden de perfusie van de coronaire circulatie en de cardiale respons op vasculaire dysfunctie. De relatie druk-diameter van de aorta in vivo meten </em&gt;, wordt de aorta ascendens gevisualiseerd en de diameter wordt gemeten door echografie. Aorta bloeddruk invasief gemeten met een druk katheter. De bloeddruk wordt stapsgewijs veranderd door intraveneuze infusie van vasoactieve middelen. Fenylefrine de bloedvaten en wordt gebruikt om aortadruk verhogen. Natrium nitroprusside verwijdt bloedvaten en wordt gebruikt om aortadruk verlagen. Systolische en diastolische aorta diameter en bijbehorende aorta druk wordt gemeten voor elke druk increment. Naleving kan worden berekend op basis van de gegevens druk-diameter verzameld.

<table><tbody><tr><td>Apparatuur</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>High-resolutie echografieapparaat</td><td>Visual Sonics</td><td>Vevo2100</td><td></td></tr><tr><td>13-24 MHz transducer</td><td>Visual Sonics</td><td>MS250</td><td>Gebruikt voor beeldvorming van ratten</td></tr><tr><td>22-55 MHz transducer</td><td>Visual Sonics</td><td>MS550D</td><td>Gebruikt voor beeldvorming van muizen</td></tr><tr><td>Beeldvormingsstation</td><td>Visual Sonics</td><td>Imagine Station 1</td><td></td></tr><tr><td>1.2F Drukkatheter</td><td>Transonic</td><td>FTH-1211B-0018</td><td></td></tr><tr><td>SP200 drukbeleidsunit</td><td>Transonic</td><td>FFS-095-DP01</td><td></td></tr><tr><td>Alleen infusie Harvard Pump 11 Plus spuitpomp</td><td>Harvard Apparatus</td><td>702208</td><td></td></tr><tr><td>Isofluraannevelizer</td><td>VetEquip</td><td>911103</td><td></td></tr><tr><td>Inductiekamer</td><td>VetEquip</td><td>941443</td><td></td></tr><tr><td>100% O2</td><td>Airgas</td><td>OX USP200</td><td></td></tr><tr><td>Single Stage Messing 0-50 psi Algemeen Doel Cilinderregelaar CGA540</td><td>Airgas</td><td>Y11215B540</td><td></td></tr><tr><td>Stereo Boom Stand Microscoop</td><td>National Optical</td><td>420-BMSQ</td><td></td></tr><tr><td>Vezeloptische verlichter &amp; lichtpijp</td><td>Cole Palmer</td><td>EW-41500-50</td><td></td></tr><tr><td>Benodigdheden</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>30G x 1/2" BD PrecisionGlide Naald</td><td>BD</td><td>305106</td><td>Voor canulerings van de staartader bij muizen</td></tr><tr><td>Polyethyleenbuis PE10</td><td>Becton Dickinson</td><td>427401</td><td>Voor canulerings van de staartader bij muizen</td></tr><tr><td>27G x 1/2" Surfloe gevleugelde infuusset</td><td>Terumo</td><td>SV*27EL</td><td>Voor canulerings van de staartader bij ratten</td></tr><tr><td>Signa Gel Elektroden Gel</td><td>Parker</td><td>15-25</td><td>Gebruik voor ECG-opname</td></tr><tr><td>Aquasonic Clear Ultrasound Gel</td><td>Parker</td><td>03-08</td><td>Gebruik voor echografie</td></tr><tr><td>1ml Sub-Q Spuiten, 26G x 5/8"</td><td>BD</td><td>309597</td><td></td></tr><tr><td>Nair</td><td>Nair</td><td></td><td>Depilatoire crème</td></tr><tr><td>Histoacryl</td><td>TissueSeal</td><td>TS1050071FP</td><td>Weefsellijm</td></tr><tr><td>Gevlochten Zijde Naald 6-0</td><td>Teleflex</td><td>104-S</td><td></td></tr><tr><td>Dumostar P55 fijne pincet</td><td>Roboz</td><td>RS-4984</td><td></td></tr><tr><td>Microschaar</td><td>WPI</td><td>501839</td><td></td></tr><tr><td>Fijne schaar</td><td>FST</td><td>14060-11</td><td></td></tr><tr><td>Medium pincet</td><td>Ted Pella</td><td>5665</td><td></td></tr><tr><td>Hemostatische pincet</td><td>Roboz</td><td>RS-7131</td><td></td></tr><tr><td>Niet-steriele katoengaas spons</td><td>Fisherbrand</td><td>22-362-178</td><td></td></tr><tr><td>Met katoen bedekte applicators</td><td>Oritan</td><td>803-WC</td><td></td></tr><tr><td>Labeltape</td><td>Fisherbrand</td><td>15-901-20</td><td></td></tr><tr><td>Geneesmiddelen</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Natriumchloride</td><td>Sigma Aldrich</td><td>S7653</td><td></td></tr><tr><td>R-Fenylephrine hydrochloride</td><td>Sigma Aldrich</td><td>P6126</td><td></td></tr><tr><td>Natriumnitroprusside dihydraat</td><td>Sigma Aldrich</td><td>71778</td><td></td></tr><tr><td>Software</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Prism</td><td>GraphPad</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Excel</td><td>Microsoft</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

meten oplopend stijfheid van de aorta in vivo in muizen met behulp van echografie

Measuring Ascending Aortic Stiffness In Vivo in Mice Using Ultrasound

We presenteren een protocol voor het meten van in vivo stijfheid van de aorta bij muizen met behulp van hoge-resolutie echografie. Aorta diameter wordt gemeten door middel van ultrageluid en aorta bloeddruk invasief gemeten met een solid-state druk katheter. De bloeddruk wordt verhoogd vervolgens stapsgewijs verlaagd door intraveneuze infusie van vasoactieve geneesmiddelen fenylefrine en natrium nitroprusside. Aorta diameter wordt gemeten voor elke drukstap de relatie druk-doorsnede van de aorta ascendens te karakteriseren. Stijfheid indices afhangen van de druk diameter kan worden berekend uit de verzamelde gegevens. Berekening van de arteriële compliantie wordt beschreven in dit protocol. Deze techniek kan worden gebruikt om onderliggende mechanismen toegenomen stijfheid van de aorta geassocieerd met cardiovasculaire ziekte en veroudering onderzoeken. De techniek levert een fysiologisch relevante maatregel van stijfheid in vergelijking met ex vivo benadert omdat physiological invloeden op stijfheid van de aorta worden opgenomen in de meting. De belangrijkste beperking van deze techniek is de meetfout ingevoerd uit de beweging van de aorta tijdens de hartcyclus. Deze beweging kan worden gecompenseerd door het aanpassen van de locatie van de probe met de aorta beweging en om meerdere metingen van de aorta relatie druk-doorsnede en uitbreiding van de experimentele groepsgrootte.

Een longitudinale beeld van de linker ventrikel en aorta ascendens wordt vastgelegd op B-modus, zoals getoond in figuur 1. Als alternatief kan een longitudinale beeld van alleen de aorta worden verkregen, zoals in figuur 2. De beweging van de aortawand tijdens de cardiale cyclus verschijnt als twee witte lijnen op de M-modus, zoals getoond in figuur 3. De aorta lumen is het gebied tussen de lijnen. Aortadruk wordt gemoduleerd door infusie van vasoactieve middelen. PE verhoogt de druk in de aorta, zoals getoond in figuur 4A en SNP verlaagt druk, zie figuur 4B. M-mode wordt geregistreerd wanneer de bloeddruk plateaus, 1 min na de start van de infusie. Aortadruk wordt stapsgewijs veranderd door het veranderen van de dosis van het toegediende geneesmiddel, zie figuur 5. Dosis van het geneesmiddel wordt geregeld door de infusiesnelheid. Alle drug doses in mg / kg / min. Maximale en minimale diameters worden gemeten vanaf tHij M-modus, getoond in figuur 3. Deze diameters overeen met de systolische en diastolische druk aorta geregistreerd door de druk katheter. Systolische en diastolische diameter en drukwaarden drie hartcycli worden bepaald bij aanvang en voor elke PE en SNP dosis. De standaardafwijking van drie metingen diameter bij een geneesmiddel dosis varieert van 0,01 mm tot 0,04 mm. Aorta diameter kan worden uitgezet tegen de bijbehorende aortadruk de relatie druk-doorsnede illustratie, zoals getoond in figuur 6A. Deze waarden druk diameter worden gebruikt aorta naleving berekenen. Arteriële compliantie wordt berekend door C = (D sys - D dia) / (P sys - P dia) (1) waarbij D sys en D dia zijn systolische en diastolische diameters en P sys en P diazijn systolische en diastolische druk. Compliance and mean aorta druk (MAP) worden berekend bij aanvang en voor elke PE en SNP dosis. Naleving wordt uitgezet tegen MAP om de druk-afhankelijkheid van stijfheid te tonen. Vanwege de niet-lineaire elastische gedrag van de aorta, naleving afneemt met toenemende MAP, zoals getoond in figuur 6B. <img alt="Figuur 1" src="/files/ftp_upload/52200/52200fig1highres.jpg" /> Figuur 1:. Longitudinale weergave van aorta op B-modus Diameter metingen vanuit longitudinaal beeld van de opgaande aorta verlaat de linker ventrikel. LV: linker ventrikel; PA: longslagader; AA: oplopend aorta. Visualisatie van de longslagader afhankelijk van de probe plaatsing. Aorta diameter distaal gemeten om de aortaklep. Frequentie van de sonde gebruikt om dit beeld vast te leggen is 40 MHz. Figuur 2:. Alternatieve gezien aorta op B-modus de aorta ascendens is meer prominent en het linker ventrikel en hartwanden zijn minder duidelijk. AA: oplopend aorta; LV: linker ventrikel. Frequentie van de sonde gebruikt om dit beeld op te nemen is 40 MHz. <img alt="Figuur 3" src="/files/ftp_upload/52200/52200fig3highres.jpg" /> Figuur 3:. Aorta gevisualiseerd op M-modus Aorta diameter wordt gemeten vanaf imago van de M-stand. De beweging van de aortawand wordt weergegeven met twee golvende lijnen. De ruimte tussen de twee lijnen is de aorta lumen. Systolische en diastolische aorta diameter van drie hartcycli worden gemeten vanaf de M-mode. In dit beeld, aortadruk opgenomen door de druk katheter ECG signaal en ademhalingscyclus worden in rood, groen en geel op de M-mode. Sonde frequency gebruikt om op te nemen het beeld is 40 MHz en de overname sweep snelheid is 1200 Hz. <img alt="Figuur 4" src="/files/ftp_upload/52200/52200fig4highres.jpg" /> Figuur 4:. Veranderen aorta druk incrementeel aorta druk stapsgewijs veranderd door de dosis geneesmiddel toegediend. Dosis drug wordt gemoduleerd door de infusiesnelheid. Alle doses in mg / kg / min. <img alt="Figuur 5" src="/files/ftp_upload/52200/52200fig5highres.jpg" /> Figuur 5:. Modulerende aortadruk met vasoactieve geneesmiddelen aorta druk wordt verhoogd met infusie van vasoconstrictor fenylefrine (PE) en nam af bij infusie van vaatverwijdende natriumnitroprusside (SNP). Aortadruk plateaus 1 min na de start van de infusie van het geneesmiddel. M-mode van de aorta diameter wordt geregistreerd op het plateau. (A) toont de stijging aortadrukmet 360 ug / kg / min PE infusie. (B) toont de afname in druk in de aorta met 240 ug / kg / min SNP infusie. De tijd van de infusie wordt begonnen en het moment dat de M-modus is opgenomen, worden aangegeven op de sporen. &#160; Aortadruk wordt stapsgewijs veranderd door de dosis geneesmiddel toegediend. Dosis drug wordt gemoduleerd door de infusiesnelheid. Alle doses in mg / kg / min. <img alt="Figuur 6" src="/files/ftp_upload/52200/52200fig6highres.jpg" /> Figuur 6: Diameter versus druk en naleving versus gemiddelde aortadruk plaatsen aorta diameter tegen de bijbehorende aortadruk de relatie druk-diameter (A) tonen worden uitgezet.. Naleving kan worden berekend voor elke druk afneemt en uitgezet tegen de gemiddelde aorta druk (MAP) de druk afhankelijkheid van stijfheid van de aorta (B) tonen.

We beschrijven een techniek voor het meten van de aortica-stijfheid uit zijn druk-diameter relatie in vivo bij muizen. De diameter van de aorta wordt geregistreerd door middel van echografie en de aortadruk wordt invasief gemeten met een solid-state drukkatheter. De bloeddruk wordt incrementeel gewijzigd en de resulterende diameter wordt gemeten.

Meten Oplopend stijfheid van de aorta In Vivo In Muizen met behulp van echografie

We present a protocol for measuring in vivo aortic stiffness in mice using high-resolution ultrasound imaging. Aortic diameter is measured by ultrasound ...

Het algemene doel van deze procedure is om de relatie tussen de diameter en de druk van de aorta in vivo te meten om de aortic stiffness te bepalen. Dit wordt bereikt door eerst een katheter in de staarsafvoer in te brengen voor intraveneuze toediening van vasoactieve geneesmiddelen. De tweede stap is het inbrengen van een druk katheter in de aorta via de dijbeenslagader voor invasieve bloeddrukmeting.Vervolgens wordt de opgaande aorta gevisualiseerd door middel van echografie en wordt de diameter ervan gevolgd door M mode. De laatste stap is het infuseren van vasoactieve geneesmiddelen om de bloeddruk te verhogen en te verlagen en de bijbehorende veranderingen in aortadiameter te registreren. Uiteindelijk kunnen de verzamelde gegevens over de drukdiameter van de aorta worden gebruikt om de aorta-compliantie te berekenen om de druksafhankelijkheid van de aortic stiffness te laten zien.Het belangrijkste voordeel van deze techniek ten opzichte van onze bestaande methoden zoals pulsgolfsnelheid, is dat lokale aortastijfheid kan worden gemeten. Om te beginnen, bereidt u oplossingen van fenylefrine en natriumnitropressie voor in 0,9%zoutoplossing. Plaats vervolgens de druk katheter in een spuit van 30 milliliter gevuld met gedestilleerd water en sluit deze aan op de drukregeleenheid.Laat de katheter die is aangesloten gedurende 30 tot 45 minuten weken. Tijdens de instelling en chirurgische procedures is de katheter die wordt gebruikt voor intraveneuze medicijninfusie gemaakt van twee 30 gauge naalden en PE 10 polyethyleenbuizen. Plaats één naald in één uiteinde van de buis.Vervolgens verwijdert u het naaldgedeelte van de andere naald en steekt u de stompe kant in het andere uiteinde van de buis. Bevestig de katheter aan een ene milliliter spuit en vul deze met heparine zoutoplossing. Nadat u de afwezigheid van een reflex van de achterpoot hebt bevestigd, plaatst u de muis op een verwarmde elektrocardiogram pad.Behoud de anesthesie met 2% isofluorine. Nadat u zalf op de ogen heeft aangebracht, plaatst u het dier op zijn zij om betere toegang tot de staarsafvoeren te krijgen. Zet de muis vast op de ECG-pad met plakband en zorg ervoor dat het dier warm blijft om vasodilatatie te bevorderen.Gebruik vervolgens een stuk elastisch buis om een tourniquet rond de basis van de staart te binden. Strak genoeg om de aderen te laten inzakken, maar niet genoeg om de arteriële circulatie af te snijden. Na twee tot drie minuten zou de ader uit moeten zetten en zichtbaarder moeten worden.Trek voorzichtig met één hand aan de staart en buig hem onder een hoek terwijl u de naald parallel aan de staart houdt met de andere hand. Prik met de naald door de huid en in de ader. Bloed zal terug in de katheter drukken. Als de naald correct is ingebracht.Plaats een druppel weefsel lijm waar de naald is ingebracht. Om de katheter te bevestigen, verwijdert u het tourniquet en bevestigt u de doorlaatbaarheid door zoutwater met weinig weerstand te injecteren. Om de bloeddruk katheter te plaatsen, plaatst u het dier in een rugligging en plakt u zijn poten op de ECG-pad.Na het verwijderen van het haar op de borst en het been met ontharingscreme, gebruikt u een fijne schaar om een incisie te maken in de huid boven de locatie van de dijbeenslagader. Snijd door het onderhuidse vetweefsel en gebruik een hemostaat om de buik opzij te schuiven. Om de slagader met fijne pincetten te visualiseren, scheidt u de zenuw van het slagader-aderbundel.Prikt voorzichtig door de omhulsel rond het slagader-aderbundel om de slagader van de ader te scheiden. Plaats één hechting rond de slagader aan het proximale uiteinde en plaats twee hechtingen op het distale uiteinde veilig, niet de meest distale hechting om distale bloedstroom te stoppen. Gebruik een hemostaat om de proximale hechting te trekken om de bloedstroom in de dijbeenslagader tijdelijk te stoppen.Gebruik vervolgens micro schaar om een kleine incisie te maken in de dijbeenslagader nabij de distale knoop. Calibreer de bloeddruk katheter net voordat u deze in de dijbeenslagader inbrengt. Wanneer u klaar bent, opent u de incisie met fijne pincetten met één hand en steekt u de katheterkop in de ader met de andere, niet in het midden.Hecht rond de katheterdraad om de katheter op zijn plaats te bevestigen. Ontspan de proximale hechting en breng de katheter naar voren in de abdominale aorta, niet de proximale hechting. Om de katheter verder te bevestigen en bloeding te voorkomen, verplaatst u voorzichtig de ECG-pad met muisdruk katheter en zoutwaterspuit naar de ultrasone beeldvormingsfase.Verbind de bloeddruk katheter met de drukregeleenheid. Plaats de zoutwaterspuit in de spuitpomp. Laat het dier en de katheter gedurende 20 minuten in evenwicht komen.Verlaag eerst het isofluraangehalte tot 1,5%. Monteer de transducer op het railsysteem zodat hetzelfde zicht gedurende de duur van het experiment wordt gehandhaafd. Visualiseer de opgaande aorta longitudinaal op B-modus met behulp van een lange asweergave op de ultrasone mainframe. Plaats de M-modus cursor over het deel van de aorta dat moet worden gevolgd.Volg de verandering in de diameter van de aorta over de hartcyclus met behulp van M-modus. Vervang vervolgens de zoutwaterspuit in de spuitpomp door een spuit met PE-oplossing. Neem M-modus op bij basale aortadruk.Begin de infusie bij 360 microgram per kilogram per minuut en infundeer gedurende één minuut totdat de aortadruk een plateau bereikt. Op dit punt stopt u met infunderen en wacht u twee minuten totdat de bloeddruk weer op basisniveau is. Verlaag vervolgens de infusiesnelheid naar 240 microgram per kilogram per minuut.Infundeer gedurende één minuut totdat de bloeddruk een plateau bereikt en neem M-modus op. Stop de infusie en wacht twee minuten totdat de bloeddruk weer op basisniveau is. Herhaal deze stappen voor 120 microgram per kilogram per minuut per na terugkeer naar basisniveau, vervang de PE door zoutwater en infundeer met een snelheid van 30 microliters per minuut.In

measuring-ascending-aortic-stiffness-in-vivo-in-mice-using-ultrasound

Research

JoVE Journal

Medicine

Geneeskunde

Het doel van dit protocol is om niet-invasief beoordelen cardiale structurele en functionele veranderingen in een muismodel van hart-en vaatziekten door dwarse aorta vernauwing, met behulp van B- en M-mode echocardiografie en kleur / pulse wave Doppler imaging.

Beoordeling van Cardiac morfologische en functionele veranderingen in muismodel van Transversale Aorta Vernauwing door Echocardiografie Imaging

Dit protocol geeft een gedetailleerde beschrijving van de echocardiografische benadering voor uitgebreide fenotypering van de hart- en hartklepfunctie bij muizen.

Echocardiografische benaderingen en protocollen voor Comprehensive Fenotypische karakterisering van Valvular hart-en vaatziekten in Muizen

Arteriële stijfheid is een belangrijke factor bij hart-en vaatziekten en pulsgolfsnelheid (PWV) kan als een surrogaat index voor arteriële stijfheid worden beschouwd. Dit protocol beschrijft een beeld processing algoritme voor het berekenen van PWV in muizen op basis van echografie beeldverwerking die van toepassing zijn op verschillende arteriële sites is.

Ultrasound-gebaseerde Pulse Wave Velocity Evaluatie in Muizen

We presenteren gedetailleerde protocollen voor het isoleren van aorta's uit muizen en het meten van hun elastische modulus met behulp van atoomkrachtmicroscopie.

Meten van de stijfheid van<em&gt; Ex Vivo</em&gt; Mouse aorta&#39;s met behulp van Atomic Force Microscopy

Echografie imaging is geworden een gemeenschappelijke modaliteit te bepalen de luminal afmetingen van borst- en buikholte aorta aneurysma in muizen. Dit protocol beschrijft de procedure om het verkrijgen van betrouwbare en reproduceerbare tweedimensionale ultrasound beelden van de oplopende en abdominale aorta in muizen.

Echografie beeldvorming van de borst- en buikholte Aorta bij muizen om te bepalen van de afmetingen van het aneurysma

Dit manuscript beschrijft een gedetailleerd protocol voor het gebruik van hoge frequentie echografie om luminale diameter, puls vermeerderingssnelheid, distensibiliteit en radiale belasting op een muis model van abdominale aorta aneurysma te meten.

Meting van pulse propagatiesnelheid, distensibiliteit en spanning in een abdominale aortaaneurysma muismodel

In de pathogenese van bot metastase, angiogenese is een cruciaal proces en vormt derhalve een doel voor beeldvorming en therapie. Hier presenteren we een rat model van site-specifieke borstkanker botmetastase en beschrijven strategieën om niet-invasieve beeld...

Multi-modale beeldvorming van angiogenese in een Naakt ratmodel van borstkanker botmetastase Met behulp van Magnetic Resonance Imaging, Volumetrische computertomografie en Echografie

We beschrijven een techniek waarbij een deel van de abdominale aorta van een muis getransplanteerd orthotopically is om net onder de nierslagaders in een allogene of syngene ontvanger. Deze techniek kan nuttig zijn in studies waarin transplantatie van grote slagaders van gelijke grootte is als voordelig.

Orthotope Aorta Transplantatie in Muizen voor de Studie van vasculaire aandoeningen

We beschrijven een algemeen protocol voor in vivo cell tracking met MRI in een muismodel met ex vivo gemerkte cellen. Een typische protocol voor mobiele etikettering, beeldaanwinst verwerking en kwantificering is inbegrepen.

In vivo 19 F MRI voor mobiele Tracking

We beschrijven een stapsgewijze procedure voor het creëren van druk overbelasting en linker ventrikel hypertrofie in Wistarratten door vernauwing van de aorta ascendens met een kleine metalen clip. Dit model wordt veel gebruikt voor het bestuderen remodelleren veranderingen tijdens cardiale hypertrofie en voor het identificeren en evalueren van strategieën voor regressie van dergelijke veranderingen.

Oplopend Aorta Vernauwing in ratten voor de schepping van druk overbelasting cardiale hypertrofie Model

Leer hoe u aortastijfheid in vivo meet bij muizen met echografie en een drukkatheter. Deze methode registreert diameterveranderingen in reactie op drukvariaties om cardiovasculaire gezondheid te beoordelen.

Meten Oplopend stijfheid van de aorta In Vivo In Muizen met behulp van echografie

Meer video's verkennen