7 januari 2015
Vettransplantatie is een essentiële techniek voor het reconstrueren van tekorten in zacht weefsel. Het blijft echter een onvoorspelbare procedure, gekenmerkt door variabele overleving van het transplantaat. Ons doel was om een muismodel te ontwikkelen dat een nieuwe beeldvormingsmethode gebruikt om volumeretentie te vergelijken tussen verschillende technieken van vettransplantaatvoorbereiding en -toediening.
Het algemene doel van deze procedure is om een muismodel te beschrijven dat gebruik maakt van micro CT om volumeretentie te vergelijken tussen uitstellende technieken van vettransplantaatvoorbereiding en -toediening. Dit wordt bereikt door eerst menselijke lipo aspiraat te verwerken om vet klaar te maken voor transplantatie. De tweede stap is om vettransplantaten in de hoofdhuiden van CD een thymische naaktmuizen te plaatsen.
Vervolgens wordt de overleving van het vettransplantaat wekelijks geanalyseerd door muizen te CT-scannen, afbeeldingen te reconstrueren en volumeretentie te kwantificeren. De laatste stap is om het vettransplantaat aan het eind van acht weken te verwijderen en ze te vergelijken op basis van gewicht en histologie. Uiteindelijk worden micro CT en histologie gebruikt om verschillen in de kwaliteit en overleving van het vettransplantaat te laten zien.
Het belangrijkste voordeel van deze techniek ten opzichte van bestaande methoden, zoals het wegen van vettransplantaten, is dat het mogelijk maakt om het volume van het vettransplantaat op meerdere tijdstippen na de eerste transplantatie te visualiseren en objectief te kwantificeren zonder dat het proefdier hoeft te worden opgeofferd. We kregen voor het eerst het idee voor deze methode toen we micro CT begonnen te gebruiken om calva Defecten te analyseren. De implicaties van deze techniek zijn dat het een chirurgisch model biedt voor alle onderzoeken die vettransplantaat, retentie en levensvatbaarheid evalueren.
Over het algemeen zullen mensen die nieuw zijn in deze methode worstelen omdat het moeilijk is om het vettransplantaat in de juiste positie boven de hoofdhuid te houden. Visuele demonstratie van deze techniek is cruciaal omdat de transplantatie- en reconstructiestappen moeilijk te leren zijn omdat er tal van stadia zijn waarop een kleine afwijking in de techniek het resultaat kan veranderen. Gebruik de Coleman-procedure om menselijk adipeus weefsel te verkrijgen uit de buik, flank en dijgebieden van gezonde vrouwelijke patiënten die een electieve liposuctie ondergaan.
Om het lipo aspiraat voor transplantatie te verwerken, laat het vet eerst 30 minuten bezinken. Lipo aspiraat zal zich meestal in drie lagen nestelen met olie bovenaan, vet in het midden en bloed onderaan. Aspirateer en gooi de bovenste olie-laag en de onderste bloed-laag weg.
Om eventueel overgebleven tumescente vloeistof of cellulaire restanten verder te verwijderen, centrifugeer het vet gedurende vijf minuten bij 350 Gs en vier graden Celsius. Na centrifugatie aspireert u de onderste bloed-laag en de bovenste olie-laag. Om de hoeveelheid vet te berekenen die nodig is voor transplantatie zoals beschreven in het tekstprotocol, om vettransplantatie uit te voeren, verkrijg vrouwelijke homozygote CD een naaktmuizen.
Kies voor het experimentele onderzoek muizen tussen de acht en 12 weken oud om anesthesie te induceren. Plaats de muis in een knock-down box met 2,5% isofluorine zuurstofmengsel bij twee liter per minuut gedurende ongeveer 10 minuten wanneer de ademhalingssnelheid van de muis is vertraagd. Bevestig adequate sedatie met een teenprik.
Breng veterinaire smerende oftalmische zalf aan op beide ogen van de muis en plaats de neus van de muis in een neuskoker, waarbij 2,5% ISO fluorine zuurstofmengsel wordt afgegeven met een snelheid van een tot twee liter per minuut. Stel vervolgens een steriele werkplek in onder de muis. Steriliseer vervolgens een hoofdhuid met 2,5% povidon-jodium, gevolgd door 70% ethanoloplossing.
Herhaal de sterilisatie nog twee keer. Laad een enkele milliliter lure lock-spuit terug met een milliliter vet dat is geëquilibreerd naar kamertemperatuur. Verbind een 14 gauge acht centimeter lange vettransplantaatcannula aan het uiteinde van de spuit.
Prime het systeem door de spuitpomp in te drukken totdat er tussen de 200 en 400 microliter vet in de spuit achterblijft. Terwijl u de spuitpomp indrukt, bevestigt u dat de cannule volledig is gevuld met vet door vet te observeren dat uit de distale cannuleopening komt met behulp van fijne pincetten. Til de dorsale huid op in de middenlijn boven het meest caudale aspect van de schedel.
Maak een snede van 1,5 millimeter in de huid met behulp van fijne schaar. Plaats een zes-o nylon naald door het midden van de snede die later zal worden gebruikt om de wondrandjes bij elkaar te brengen. Nadat het transplantaat is uitgevoerd, bind de naald niet vast.
Maak vervolgens een subcutane zak boven de schedel door de cannule door de huidsnede te steken en de cannule heen en weer te bewegen in een waaiervormig patroon over de schedel om eventuele bindweefselverbindingen met de overliggende huid te verwijderen. Zodra de zak is gemaakt, plaats de cannule in de middenlijn van de muis direct boven de schedel totdat de punt ligt op het ramus-aspect van de zak, die net achter een lijn getrokken tussen de ogen zou moeten zijn. Injecteer langzaam het vet in retrograde stijl, waarbij de pomp wordt geavanceerd terwijl de cannule wordt teruggetrokken. Gebruik pincetten om de wondrandjes bij elkaar te brengen en heft ze op om te voorkomen dat vet uit de zak lekt.
Bind de naald die eerder is geplaatst, en zorg ervoor dat de eerste knoop lichtjes tegen de huid ligt. Bind nog drie vierkante knopen en snijd de naald af met een staart van drie millimeter. Verwijder de muis van de anesthesie en ga verder met het herstel zoals beschreven in het tekstprotocol.
Voordat de eerste scan wordt uitgevoerd, kalibreer de micro CT met een beeldvormingsphantom dat onderscheid maakt tussen lucht-, water- en botintensiteit. Na kalibratie. Plaats vier muizen in de scanner in de ventrale positie met twee muizen bovenop en twee op de bodem.
Plaats op een scanbed. Eerder gebouwd uit 60 milliliter spuiten om het lichaam van de muis te houden en 10 milliliter spuiten als neuskokers. Bevestig met een scoutafbeelding dat de volledige schedel van de muis van neus tot eerste cervicale wervel en van de bovenkant van de schedel tot de basis van de schedel zal worden afgebeeld
Bekijk het volledige transcript en krijg toegang tot duizenden wetenschappelijke video's
Deze studie presenteert een muismodel dat gebruikmaakt van micro-CT om de volumebehoud in vettransplantaten te evalueren. Het onderzoek heeft tot doel verschillende technieken voor de voorbereiding en toediening van vettransplantaten te vergelijken, om zo de onvoorspelbaarheid van de overleving van het transplantaat aan te pakken.
Vettransplantatie kent uitdagingen bij klinische translatie vanwege onvoorspelbare overlevingspercentages van het transplantaat, variërend van 10-80%, wat onzekerheid creëert in de reconstructieve resultaten. Dit model maakt longitudinale, niet-invasieve kwantificering van het behoud van het transplantaatvolume mogelijk met micro-CT, waardoor objectieve, reproduceerbare gegevens over verschillende tijdspunten worden verkregen zonder terminale eindpunten. Door biologische variabiliteit te verminderen en mechanische risicoanalyse te ondersteunen, verhoogt het het voorspellende vertrouwen bij de preklinische evaluatie van regeneratieve therapieën op basis van adipocyten.
De methode is geïntegreerd in het ontdekkingscontinuüm, van vroege adipocytkarakterisering tot preklinische validatie, ter ondersteuning van go/no-go-beslissingen op basis van volumetrische stabiliteit en histologische kwaliteit.