28 november 2014
We beschrijven een eenvoudige, kwantitatieve colorimetrische test die specifiek de proteolytische activiteit van humane, muis- of ratten-Granzyme B (GzmB) meet. Dit protocol kan eenvoudig worden aangepast voor het bepalen van de protease-activiteit van andere granuulserineproteasen door de hydrolyse van andere synthetische peptide-substraten met een geschikte herkenningssequentie.
Het algemene doel van het volgende experiment is om de proteolytische activiteit van het protease granzyme B te meten. Dit wordt bereikt door eerst een lysaat van de betreffende cellen te bereiden en vervolgens snel substraat aan de monsters toe te voegen. De granzyme B-activiteit wordt daarna gemeten via een colorimetrische reactie. Uiteindelijk kan de zeer specifieke splitsing van alla alla as s benzo door granzyme B worden beoordeeld op basis van de unieke substraatspecificiteit voor a spart-zuurresidu's.
Het belangrijkste voordeel van deze techniek ten opzichte van bestaande methoden, zoals de detectie van granzym B-expressie met behulp van PCR of Western blot, is dat de hydrolyse van benzyl specifiek is voor granzym B en bovendien aangeeft dat het protease actief is. Om de cellysaten te bereiden, worden eerst primaire NK-cellen geïsoleerd uit enkelcellsuspensies van milten van wild-type C57BL/6-muizen of controlegranzym B-gene-null-muizen door middel van negatieve selectie met commercieel verkrijgbare kits volgens de instructies van de fabrikant, nadat de cellen zijn geactiveerd. Was de cultuur drie keer in PBS op maximale snelheid gedurende twee tot drie seconden en resuspendeer het pellet, dat minimaal 5 miljoen NK-cellen bevat, vervolgens in 100 µL NP-40 lysisbuffer op ijs gedurende 20 minuten.
Centrifuge vervolgens het lysaat 10 minuten bij 15.000 Gs in een microcentrifuge en breng het supernatant over naar een nieuwe buis. Nadat de proteïneconcentratie is bepaald aan de hand van het bijbehorende commercieel beschikbare protocol, wordt het supernatant bewaard bij een minimale concentratie van ongeveer twee milligram per milliliter bij -20 °C om een granzyme B-activiteitsassay uit te voeren. Verdun vervolgens minimaal 100 microgram proteïnelysaat per monster in vers bereide HEPS-buffer tot een eindvolume van 160 µL.
Gebruik vervolgens een meerkanaalpipet om per well 50 µL monster in triplo in een 96-well vinylle U-bodemplaat te laden. Voeg aan elke well 100 µL verdunde DTNB toe, waarbij u erop let dat er drie controlewells met alleen buffer worden opgenomen. Voeg vervolgens snel 50 µL vers verduurd alala asks s benzoylsubstraat toe aan elk van de wells met alleen buffer, gevolgd door de negatieve controles, en eindig met de verwachte positieve monsters.
Meet de aase-activiteit door de hydrolyse van alala as benzyl in een microplaatlezer bij een optische dichtheid van 405 nanometer met behulp van een kinetisch assay-protocol waarbij elke 15 seconden 25 metingen worden verricht. Gebruik vervolgens de software van de plaatlezer om de maximale snelheid van substraatsplitsing voor elke put te berekenen, en transfer de ruwe gegevens vervolgens naar de passende statistische analyse-software met behulp van granzyme-gen-knockoutmuizen. Er is ontdekt dat het synthetische peptide-substraat alala as benzyl specifiek wordt gehydrolyseerd door granzyme B. Verdere robuuste splitsing van het synthetische substraat kan worden gemeten in cellysaten van wildtype primaire NK-cellen, maar niet in NK-cellen van granzyme B-knockoutdieren als controle.
In dit experiment was de proteolytische activiteit van granzym A, dat een trypsine-achtige substraatspecificiteit heeft en aanwezig is in lysaten van beide celtypen, gelijk zoals gemeten door de hydrolyse van BLT benzyl; I-E-P-D-P-N-A is generiek gebruikt om de granzym B-activiteit over verschillende soorten te testen. In deze representatieve experimentele analyse van de tetrapeptide-sequenties bleek dat menselijk, maar niet muis-granzym B, efficiënt kan splitsen na de sequentie IEPD, welke overeenkomt met de herkenningssequentie in zowel menselijk als muis-bid. In tegenstelling hiermee resulteert het verlagen van de hoeveelheid menselijk NK-leukemiecellysaat van 30 micrograms naar 10 micrograms nog steeds in voldoende granzym B om het I-E-P-D-P-N-A-substraat te hydrolyseren.
Na het bekijken van deze video zou u een goed inzicht moeten hebben in hoe u het juiste substraat en de experimentele controles kiest voor de in vitro analyse van rood menselijk en muizenenzym B.
Bekijk het volledige transcript en krijg toegang tot duizenden wetenschappelijke video's
Dit artikel presenteert een kwantitatieve colorimetrische assay voor het meten van de proteolytische activiteit van Granzyme B (GzmB) in menselijke, muis- of ratmonsters. De methode kan worden aangepast voor andere granulaire serineproteasen door gebruik te maken van verschillende synthetische peptide-substraten.
Een nauwkeurige meting van de proteolytische activiteit van Granzyme B is essentieel voor de validatie van de functie van cytotoxische lymfocyten bij de ontwikkeling van immunotherapie. Deze colorimetrische assay biedt een directe, specifieke readout van de protease-activiteit, waardoor mechanistische risicoanalyse van target-interactie en pro-apoptotisch potentieel in preklinische modellen mogelijk wordt. De compatibiliteit tussen verschillende soorten ondersteunt de translationele continuïteit van knaagdierstudies naar menselijke toepassingen.
De assay past binnen het ontdekkingscontinuüm van targetvalidatie tot leadoptimalisatie, waarbij functionele proteaseactiviteit inzicht geeft in de biologische effectiviteit en het werkingsmechanisme.