26 december 2016
Het identificeren van nieuwe geneesmiddeldoelen die overgaan van preklinisch onderzoek naar menselijke proeven is een wetenschappelijke prioriteit. Daartoe beschrijven we hier een functionele genoombenadering voor het onderzoeken van de impact van gendepletie op kankerstamlijnsferoïden, die menselijke kankers beter modelleren in vivo.
Het doel van dit siRNA-screenprotocol is om de impact van genuitschakeling op de groei van kankersferoïden in cellijnen te onderzoeken. In vergelijking met traditionele tweedimensionale celkweektechnieken, tonen kankersferoïden omstandigheden die meer lijken op die in tumoren in vivo. Deze methode is nuttig voor de functionele beoordeling van frequent gewijzigde genen in menselijke kankers, en belangrijker nog, het kan worden gebruikt om te bepalen welke genen potentiële oncogenen of tumorsuppressorgenen zijn onder complexere kweekcondities, zoals die gezien worden in driedimensionale kweek, en in het bijzonder, onder hypoxie.
Het grote voordeel van deze techniek is dat deze gemakkelijk aanpasbaar is, zodat onderzoekers deze kunnen gebruiken om hun specifieke genen van belang in hun voorkeurscellijnen te bestuderen. Wij geloven dat het voortbouwt op huidige gerichte sRNA-screeningsbenaderingen. Het wordt algemeen gewaardeerd dat gerichte screens, in plaats van volledige genoomstrains, wetenschappers in staat stellen specifieke vragen te stellen en robuustere resultaten te genereren.
We hebben het effect van genuitschakeling op de levensvatbaarheid en grootte van sferoïd onderzocht, maar je zou ook biometrische kleurstoffen kunnen gebruiken voor een ander screenresultaat, zoals apoptose. Patty Wai uit ons laboratorium demonstreert de procedure. Begin door 96-well platen met de siRNA-bibliotheek bij kamertemperatuur te ontdooien.
Draai vervolgens vijf minuten bij 1.000 keer g, met behulp van een tafelcentrifuge. Gebruik een multikanaals pipet om 10 microliters gereduceerd serummedium met het geoptimaliseerde transfectiereagens toe te voegen aan de putjes van elke plaat. Laat 15 minuten incuberen om transfectiecomplexen, die siRNA bevatten, te laten vormen.
Zoals bij elke screeningspijplijn, moet de sferoïdvormende capaciteit van cellijnen onder transfectiecondities robuust worden geoptimaliseerd voordat de volledige screening wordt uitgevoerd. Trypsiniseer vervolgens de cellen die gescreend moeten worden tot ze loskomen van de fles. Zodra de cellen los zijn, neutraliseer de trypsine met een geschikt volume cellijn-specifiek medium, breng over naar een centrifugeerbuis en centrifugeer gedurende vijf minuten bij 1.000 keer g in een tafelcentrifuge om de cellen te verzamelen.
Gooi het supernatant weg en resuspendeer het pellet in een eencellige suspensie met een geschikt volume medium. Voer een celtelling uit met een geautomatiseerde celteller. Verdun vervolgens de suspensie tot 5.000 cellen per 180 microliter met koud medium.
Breng de celsuspensie over naar een reservoir. Gebruik een multikanaals pipet, ingesteld op 180 microliter, pipet om te mengen en breng de celsuspensie over naar de 96-well plaat met de siRNA. Centrifugeer de plaat bij 1.000 keer g in een voorgekoelde centrifuge van 4 graden Celsius gedurende 10 minuten en incubeer vervolgens de plaat in een weefselcultuurincubator van 37 graden Celsius.
Op dit punt zullen de cellen als een mozaïek op de bodem van de putjes verschijnen. Na 24 uur observeer de cellen onder een microscoop. Op dit punt zouden de cellen samen moeten zijn geaggregeerd om een enkele sferoïd in het midden van de put te vormen.
Voeg 100 microliters compleet medium toe aan elke put om groei aan te moedigen voordat u terugkeert naar de incubator. Na drie dagen groei, verwijder voorzichtig 100 microliters medium uit elke put en voeg 100 microliters vers medium toe. Op dag zeven onderzoek de sferoïd onder een microscoop en kwantificeer vervolgens de sferoïdgrootte op een platelezer die de sferoïdgroei kwantitatief kan volgen over tijd.
Om de sferoïdgrootte te kwantificeren, open eerst de software op de computer. Selecteer 96-well plaat, selecteer het juiste plaattype en voer een experimentnaam in. Plaats vervolgens de 96-well plaat met de sferoïd in een tafel-micro-well plate imaging cytometer.
Selecteer vervolgens de Tumorsphere applicatie. Selecteer beeldgebaseerde focus om de focus aan te passen zodat de sferoïd scherp staat en een optimale contrast heeft. Selecteer de putten die gescand moeten worden en start de scan.
Zorg er vervolgens voor dat het objectmasker de sferoïdgrootte nauwkeurig weergeeft. Voor BT474 sferoïd gedurende zeven dagen gekweekt, pas de Precisie aan op Hoog en stel de minimale Koloniediameter in op 200 micrometer. Gebruik de Export functie om de gegevens te exporteren in de vorm van een geannoteerd databestand dat zal worden geanalyseerd om siRNAs met een statistisch significant effect op sferoïdgebied te identificeren.
Na het beeldvormen, verwijder 100 microliters medium uit elke put en voeg 100 microliters luminescente levensvatbaarheidskleurstof toe om de cellevensvatbaarheid te bepalen. Laat de platen 15 minuten incuberen en scan vervolgens de plaat met een luminescente platelezer. Dit protocol kan ook worden aangepast voor gebruik met andere kankerscellijnen.
De omgekeerde transfectieprocedure van niet-targeterende controles had geen significant effect op de levensvatbaarheid voor een van de geteste lijnen, terwijl de transfectie van Ubiquitine B, een positieve celdodende controle, de levensvatbaarheid significant verminderde. BT474 cellen werden omgekeerd getransfecteerd met de 200-gen Human siGENOME siRNA Bibliotheek in drievoudig. Sferoïdgebied en levensvatbaarheid werd waargenomen.
Belangrijke uitzonderingen met een z-score groter dan 1,7 werden geïdentificeerd. SiRNAs die het sferoïdgebied en de levensvatbaarheid significant verhoogden of verminderden, worden in blauw geschaduwd, en rood geeft de controle siRNAs weer. Deze reeks micrografieën toont representatieve beelden van BT474 sferoïd zeven dagen na omgekeerde transfectie met E-Cadherin, een niet-targeterende controle, PIK3CA, ERBB2 of SF3B1 siRNA.
Deze histogram toont hoe behandeling met elk siRNA de cellevensvatbaarheid zeven dagen na omgekeerde transfectie beïnvloedde. Knockdown van ERBB2 en PIK3CA verminderde de cellevensvatbaarheid significant in vergelijking met controles. Dit beeld toont aan dat de sferoïd succesvol kunnen worden geïmmunokleuring om de impact van genuitschakeling op doelwitteiwitten te onthullen.
Eenmaal onder de knie, kunnen enkele honderden genen in meerdere cellijnen in één dag worden gescreend, en dit maakt de rob
Dit artikel presenteert een functionele genomica-benadering om potentiële drugtargets te identificeren door de effecten van gendepletie in sferoïden van kankercellijnen te onderzoeken. Deze sferoïden bieden een nauwkeuriger model van menselijke tumoren in vivo vergeleken met traditionele 2D-culturen.
Functionele genomische screening in 3D-kankerspheroidmodellen verbetert de validatie van targets door genafhankelijkheden onder fysiologisch relevante omstandigheden bloot te leggen. Deze aanpak vergroot de voorspellende betrouwbaarheid bij het identificeren van nieuwe drugtargets door invloeden van de tumormicro-omgeving vast te leggen die in 2D-culturen vaak over het hoofd worden gezien. De methode ondersteunt vroege beslissingen in het ontdekkingsproces door effecten van gen-silencing te koppelen aan de groei en levensvatbaarheid van sferoïden, waardoor mechanische risicoreductie van kandidaat-targets mogelijk wordt.
De methode integreert in het ontdekkingscontinuüm van targetidentificatie tot leadoptimalisatie, in het bijzonder voor targets die validatie vereisen in complexe, hypoxia-gevoelige tumormodellen.