Name: lung decellularization and recellularization
Uploaded: 2023-04-30T06:33:07.000Z
Duration: 8 min 45 s
Channel: JoVE

<div class="chapter_text" id="script_0">
Hodowle in vitro całych narządów są często wykorzystywane w celu dokładnego modelowania funkcji tkanek i narządów w różnych warunkach testowych. Posiewy całych narządów mogą obejmować decelularyzację wyciętego narządu lub usunięcie komórek w celu wykorzystania natywnej struktury narządu. Po tym następuje recelularyzacja z nowymi komórkami. Zastosowanie specjalistycznych bioreaktorów jest często włączane do procesu recelularyzacji w celu naśladowania wzrostu tkanek w organizmie. W tym filmie przedstawimy podstawowe zasady hodowli tkanek całego narządu i zademonstrujemy procedurę w laboratorium. 
</div>
<div class="chapter_text" id="script_1">
Proces ten rozpoczyna się od pobrania narządu od dawcy. W tym przykładzie pokazujemy płuco dawcy od małpy. W procesie zwanym perfuzją detergentu izolowany narząd jest systematycznie oczyszczany z rodzimej populacji komórek przez serię płukań, w wyniku czego powstaje sterylna bezkomórkowa matryca narządu. Następnie macierz tkankowa jest rekomórkowana przy użyciu określonych typów komórek, takich jak ustalona linia komórek macierzystych. Komórki mogą być również oddawane przez osobę, która otrzymuje zmodyfikowaną tkankę, co nazywa się autologicznym przeszczepem komórek. Łagodzi to odrzucenie i zwiększa biokompatybilność narządu. Alternatywnie można użyć komórek od innego dawcy, co nazywa się przeszczepem allogenicznym. Może być konieczne podjęcie takich działań, jeśli nie można pobrać wystarczającej liczby komórek od potencjalnego biorcy. Po wysianiu komórek w narządzie wykorzystuje się bioreaktory tkankowe do stymulowania proliferacji komórek i kierowania wzrostem tkanek. Reaktory te mają na celu dynamiczną hodowlę narządu i naśladowanie rodzimego środowiska występującego in vivo. Na przykład narząd można podłączyć do pompy perystaltycznej w celu symulacji przepływu krwi. Teraz, gdy znasz już zasady hodowli narządów, przyjrzyjmy się przykładowej procedurze obejmującej całą hodowlę narządów płuc dawcy. 
</div>
<div class="chapter_text" id="script_2">
Na początek płuca dawcy umieszcza się w tacce preparcyjnej, a tętnicę płucną kaniuluje się poprzez wprowadzenie żeńskiego łącznika luer do otwartej jamy. Drugi żeński łącznik luer jest następnie wkładany do otworu tchawicy. Następnie wkrapla się sól fizjologiczną buforowaną fosforanami lub PBS zawierającą 30 jednostek na mililitr heparyny i pięć mikrogramów na mililitr nitroprusydu sodu, aby ułatwić rozszerzenie naczyń krwionośnych i usunięcie uwięzionego powietrza z płuc. Roztwór jest wydalany przez naturalny odrzut i powtarzany jeszcze dwa razy przed zamknięciem kaniuli, aby zatrzymać roztwór w płucach i rozpuścić resztki krwi. Następnie oba przedsionki są szarpane, a nasadka kaniuli luer tchawicy jest usuwana, aby ułatwić drenaż płynów. Perfuzję kontynuuje się z roztworem PBS, heparyny i nitroprusydu sodu, aż do usunięcia jak największej ilości krwi z naczynia płucnego. Aby rozpocząć deceluturację, płuca są napompowane i przesiąknięte wodą dejonizowaną. Po pięciu płukaniach tętniczych i naczyniowych płuca są wyjmowane z wody i zanurzane w detergentie o nazwie Triton w celu usunięcia komórek, przy minimalnym wpływie na macierz narządu. Płuca są napełniane dwukrotnie roztworem Triton, a następnie inkubowane przez noc w temperaturze czterech stopni Celsjusza. Po inkubacji płuca przemuje się jeszcze pięć razy świeżą wodą dejonizowaną. Następnie płuca zanurza się w 2% roztworze deoksycholanu sodu, a następnie przemywa się je jeszcze kilkakrotnie wodą i roztworem buforowym, aby ułatwić decelularyzację i usunięcie resztek komórkowych. Po całkowitym oczyszczeniu narząd jest przechowywany w sterylnym roztworze PBS w temperaturze czterech stopni Celsjusza do momentu użycia. 
</div>
<div class="chapter_text" id="script_3">
Aby naśladować naturalne zachowanie płuc, można użyć specjalistycznego bioreaktora, takiego jak ten pokazany tutaj. Po pierwsze, główna komora reaktora jest wypełniona pożywką hodowlaną, która została zrównoważona z atmosferą 5% dwutlenku węgla. Następnie instalowane są organy. Po podłączeniu pokrywa jest zabezpieczona, a całe powietrze jest usuwane z rurki za pomocą strzykawki. Bioreaktor jest następnie przenoszony do inkubatora kultur tkankowych w celu zrównoważenia. Następnie płuca są wentylowane około jednym pełnym oddechem co dwie minuty, a medium jest krążone w układzie naczyniowym za pośrednictwem pompy perystaltycznej z prędkością około 10 mililitrów na minutę przez łącznie 30 minut. 
</div>
<div class="chapter_text" id="script_4">
W celu wysiewu do dróg oddechowych płuca są napompowane zawiesiną komórkową zawierającą mezenchymalne komórki macierzyste pochodzące ze szpiku kostnego. Aby recellularyzacja pęcherzyków płucnych, które są odpowiedzialne za wymianę gazową tlenu i dwutlenku węgla, która zachodzi w płucach. Płuca są następnie inkubowane przez noc, aby umożliwić komórkom przyłączenie się do bezkomórkowego macierzy. Po całonocnej inkubacji wentylacja jest ponownie inicjowana, a komórki mogą rosnąć w macierzy narządu przez kilka dni. Następnie wysiew naczyniowy kończy się stopniowym wprowadzaniem komórek śródbłonka za pomocą pompy perystaltycznej w celu zainicjowania recelularyzacji małych naczyń, a następnie hodowli statycznej przez kilka godzin, aby ułatwić rozwój dokładnego narządu komórkowego. Pożywka hodowlana jest ponownie wprowadzana w obieg, a komórki są hodowane przez tydzień, aby promować wzrost i przywiązanie w dynamicznych warunkach. Po zakończeniu wzrostu tkanki wykonuje się histologię w celu potwierdzenia przyczepu i wzrostu zarówno mezenchymalnych komórek macierzystych, jak i komórek śródbłonka na naczyniach krwionośnych i drogach oddechowych narządu. Histologia pokazuje przyczepienie mezenchymalnych komórek macierzystych i komórek śródbłonka do pęcherzyków płucnych w rusztowaniu macierzy i małych naczyń krwionośnych, tworząc wygląd natywnej tkanki płucnej. 
</div>
<div class="chapter_text" id="script_5">
Teraz, gdy dowiedziałeś się już o hodowli całych narządów, przyjrzyjmy się kilku praktycznym zastosowaniom tej technologii poza głównym celem medycyny regeneracyjnej i wymiany narządów. Posiew całych narządów może być również wykorzystany jako sposób testowania środków farmaceutycznych lub urządzeń do dostarczania leków. Na przykład w tym badaniu embrionalne mysie tarczyce zostały wyklęte, wyhodowane i wykorzystane jako model narządów do obserwacji, w jaki sposób eksperymentalne środki farmaceutyczne są transportowane przez narząd i tkankę. Symulacja ta może ostatecznie doprowadzić do bardziej realistycznego odwzorowania tego, w jaki sposób lek jest przenoszony w obrębie narządu in vivo. Wreszcie, hodowla tkanek całego narządu może być wykorzystana do badania zachowania tkanek w różnych warunkach. Na przykład krążki międzykręgowe pobrano z ogonów bydlęcych w celu zbadania możliwych mechanizmów zwyrodnienia dysku. Specjalnie zaprojektowane bioreaktory wykorzystano do wywołania obciążenia mechanicznego dysku, aby lepiej zrozumieć, w jaki sposób obciążenia te wpływają na degenerację. 
</div>
<div class="chapter_text" id="script_6">
Właśnie obejrzałeś film Jowisza na temat hodowli tkanek całego narządu. Powinieneś teraz zrozumieć, w jaki sposób całe narządy mogą być hodowane in vitro i jak ta technika jest stosowana w dziedzinie bioinżynierii. Dzięki za oglądanie. 
</div>

posiew tkankowy całego narządu

Całe narządy mogą być hodowane ex vivo przy użyciu specjalistycznych bioreaktorów w celu naprawy lub wymiany całych narządów. Metoda ta wykorzystuje narząd dawcy, który jest pozbawiony wszystkich komórek, pozostawiając trójwymiarową strukturę, która jest następnie ponownie zaludniana nowymi komórkami. Ten film pokazuje całą kulturę narządową płuc i pokazuje, w jaki sposób dynamiczna kultura, która naśladuje mechaniczną stymulację w ciele, jest potrzebna do wywołania natywnych właściwości tkanki.

Całe organy mogą być hodowane ex vivo za pomocą specjalistycznych bioreaktorów w celu naprawy lub wymiany całych narządów. Metoda ta wykorzystuje narząd dawcy, który jest pozbawiony wszystkich komórek, pozostawiając trójwymiarową strukturę, która jest następnie ponownie zaludniana nowymi komórkami. Ten film pokazuje całą kulturę narządową płuc i pokazuje, w jaki sposób dynamiczna kultura, która naśladuje mechaniczną stymulację w ciele, jest potrzebna do wywołania natywnych właściwości tkanki.

Posiew tkankowy całego narządu

Whole organs can be cultured ex vivo using specialized bioreactors&#160;with the goal of repairing or replacing entire organs. This method uses a donor ...

Hodowle in vitro części lub całych narządów są często stosowane w celu dokładnego modelowania funkcji tkanek i narządów w różnych warunkach testowych. Hodowla całego narządu może obejmować decelularyzację - wyciętego narządu lub usunięcie komórek - w celu wykorzystania natywnej struktury narządu. Po tym następuje recelularyzacja z nowymi komórkami. Stosowanie specjalistycznych bioreaktorów jest często włączane do procesu recelularyzacji, aby naśladować wzrost tkanek w organizmie. W tym filmie przedstawimy podstawowe zasady hodowli tkanek całego narządu i zademonstrujemy procedurę w laboratorium. Proces ten rozpoczyna się od pobrania narządu od dawcy. W tym przykładzie pokazujemy płuco dawcy od małpy. W procesie zwanym perfuzją detergentu izolowany narząd jest systematycznie oczyszczany z rodzimej populacji komórek przez serię płukań, w wyniku czego powstaje sterylna bezkomórkowa matryca narządu. Następnie macierz tkankowa jest rekomórkowana przy użyciu określonych typów komórek, takich jak ustalona linia komórek macierzystych. Komórki mogą być również oddawane przez osobę, która otrzymuje zmodyfikowaną tkankę, co nazywa się autologicznym przeszczepem komórek. Łagodzi to odrzucenie i zwiększa biokompatybilność narządu. Alternatywnie można użyć komórek od innego dawcy, co nazywa się przeszczepem allogenicznym. Może być konieczne podjęcie takich działań, jeśli nie można pobrać wystarczającej liczby komórek od potencjalnego biorcy. Po wysianiu komórek w narządzie wykorzystuje się bioreaktory tkankowe do stymulowania proliferacji komórek i kierowania wzrostem tkanek. Reaktory te mają na celu dynamiczną hodowlę narządu i naśladowanie rodzimego środowiska występującego in vivo. Na przykład narząd można podłączyć do pompy perystaltycznej w celu symulacji przepływu krwi. Teraz, gdy znasz już zasady hodowli narządów, przyjrzyjmy się przykładowej procedurze obejmującej całą hodowlę narządów płuc dawcy. Na początek płuca dawcy umieszcza się w tacce preparcyjnej, a tętnicę płucną kaniuluje się poprzez wprowadzenie żeńskiego łącznika luer do otwartej jamy. Drugi żeński łącznik luer jest następnie wkładany do otworu tchawicy. Następnie wkrapla się sól fizjologiczną buforowaną fosforanami lub PBS - zawierającą 30 jednostek na mililitr heparyny i pięć mikrogramów na mililitr nitroprusydku sodu - w celu ułatwienia rozszerzenia naczyń krwionośnych i usunięcia uwięzionego powietrza z płuc. Roztwór jest wydalany przez naturalny odrzut i powtarzany jeszcze dwa razy przed zamknięciem kaniuli, aby zatrzymać roztwór w płucach w celu rozpuszczenia resztek krwi. Następnie oba przedsionki są szarpane, a nasadka kaniuli luer tchawicy jest usuwana, aby ułatwić drenaż płynów. Perfuzję kontynuuje się z roztworem PBS, heparyny i nitroprusydku sodu, dopóki nie zostanie usunięta jak największa ilość krwi z naczynia płucnego. Aby rozpocząć deceluturację, płuca są napompowane i przesiąknięte wodą dejonizowaną. Po pięciu płukaniach tętniczych i naczyniowych płuca są wyjmowane z wody i zanurzane w detergencie o nazwie Triton, aby usunąć komórki, przy minimalnym wpływie na macierz narządu. Płuca są napełniane jeszcze dwukrotnie roztworem Triton, a następnie inkubowane przez noc w temperaturze czterech stopni Celsjusza. Po inkubacji płuca przemuje się jeszcze pięć razy świeżą wodą dejonizowaną. Następnie płuca zanurza się w 2% roztworze deoksycholanu sodu, a następnie przemywa się je jeszcze kilka razy wodą i roztworem buforowym, aby ułatwić decelularyzację i usunięcie resztek komórkowych. Po całkowitym oczyszczeniu narząd jest przechowywany w sterylnym roztworze PBS w temperaturze czterech stopni Celsjusza do momentu użycia. Aby naśladować naturalne zachowanie płuc, można użyć specjalistycznego bioreaktora, takiego jak ten pokazany tutaj. Po pierwsze, główna komora reaktora jest wypełniona pożywką hodowlaną, która została zrównoważona z atmosferą 5% dwutlenku węgla. Następnie instalowane są organy. Po podłączeniu pokrywa jest zabezpieczona, a całe powietrze jest usuwane z rurki za pomocą strzykawki. Bioreaktor jest następnie przenoszony do inkubatora kultur tkankowych w celu zrównoważenia. Następnie płuca są wentylowane mniej więcej jednym pełnym oddechem co dwie minuty, a pożywka jest krążąca w naczyniu, za pośrednictwem pompy perystaltycznej, z prędkością około 10 mililitrów na minutę - w sumie przez 30 minut. W celu wysiewu do dróg oddechowych płuca są napompowane zawiesiną komórkową zawierającą mezenchymalne komórki macierzyste pochodzące ze szpiku kostnego. Aby recellularyzacja pęcherzyków płucnych, które są odpowiedzialne za wymianę gazową tlenu i dwutlenku węgla, która zachodzi w płucach. Płuca są następnie inkubowane przez noc, aby umożliwić komórkom przyłączenie się do zdecelularizowanej matrycy. Po całonocnej inkubacji wentylacja jest ponownie inicjowana, a komórki mogą rosnąć w macierzy narządu przez kilka dni. Następnie wysiew naczyniowy kończy się stopniowym wprowadzaniem komórek śródbłonka za pomocą pompy perystaltycznej - w celu zainicjowania recelularyzacji małych naczyń - a następnie hoduje się statycznie przez kilka godzin - aby ułatwić rozwój dokładnego narządu komórkowego. Pożywka hodowlana jest ponownie wprowadzana w obieg, a komórki są hodowane przez tydzień, aby promować wzrost i przywiązanie w dynamicznych warunkach. Po zakończeniu wzrostu tkanki przeprowadza się histologię - w celu potwierdzenia przyczepienia i wzrostu zarówno mezenchymalnych komórek macierzystych, jak i komórek śródbłonka - na naczyniach krwionośnych i drogach oddechowych narządu. Histologia pokazuje przyczepienie mezenchymalnych komórek macierzystych i komórek śródbłonka do pęcherzyków płucnych w rusztowaniu macierzy i małych naczyń krwionośnych, tworząc wygląd natywnej tkanki płucnej. Teraz, gdy dowiedziałeś się już o hodowli całych narządów, przyjrzyjmy się kilku praktycznym zastosowaniom tej technologii poza głównym celem medycyny regeneracyjnej i wymiany narządów. Posiew całych narządów może być również wykorzystany jako sposób testowania środków farmaceutycznych lub urządzeń do dostarczania leków. Na przykład w tym badaniu embrionalne mysie tarczyce zostały wyklęte, wyhodowane i wykorzystane jako model narządów do obserwacji, w jaki sposób eksperymentalne środki farmaceutyczne są transportowane przez narząd i tkankę. Symulacja ta może ostatecznie doprowadzić do bardziej realistycznego odwzorowania tego, w jaki sposób lek jest przenoszony w obrębie narządu in vivo. Wreszcie, hodowla tkanek całego narządu może być wykorzystana do badania zachowania tkanek w różnych warunkach. Na przykład krążki międzykręgowe pobrano z ogonów bydlęcych w celu zbadania możliwych mechanizmów zwyrodnienia dysku. Wykorzystano specjalnie zaprojektowane bioreaktory do wywołania obciążenia mechanicznego dysku, aby lepiej zrozumieć, w jaki sposób obciążenia te wpływają na degenerację. Właśnie obejrzałeś film Jowisza na temat hodowli tkanek całego narządu. Powinieneś teraz zrozumieć, w jaki sposób całe narządy mogą być hodowane in vitro i jak ta technika jest stosowana w dziedzinie bioinżynierii. Dzięki za oglądanie.

Education

JoVE Science Education

Engineering

Inżynieria

Bioengineering

Bioinżynieria

Whole Organ Tissue Culture

lung decellularization and recellularization

Whole organs can be cultured ex vivo using specialized bioreactors to support repair or replacement of entire organs. In this approach, a donor organ is first stripped of all cells. What remains is the three-dimensional structure of the organ, which can then be repopulated with new cells.

The lung is the example shown here. The method uses a dynamic culture system that provides mechanical stimulation, similar to what the organ experiences in the body. This type of culture helps induce native tissue properties in the developing lung tissue.

Lung Decellularization and Recellularization

lung-decellularization-and-recellularization

overview of biomaterials

Biomaterials in Medicine and Engineering

Biomaterials are materials designed to interact well with biological organisms or molecules. They may come from an organism, be produced by an organism, or be made as a synthetic polymer. Because of these properties, engineers use biomaterials in medicine and other biological applications. These materials are used in tissue engineering, biosensing, and drug delivery. Tissue engineering uses materials to support the growth or repair of tissues. Biosensing uses materials to detect biological...

collagen hydrogels

Porcine Collagen for Tissue Engineering

Collagen is a useful biomaterial with uses that go beyond the lab. It has also found commercial use in photography. In tissue engineering, collagen can be turned into hydrogels that give engineered tissue support and structure. This page follows the path from porcine skin to a collagen hydrogel. Porcine skin is used as the source of collagen. The material is then prepared for use in tissue engineering applications. The video also shows several applications of collagen and the methods used to...

electrospinning of silk biomaterials

Silk Cocoon Processing for Fiber Mats

Silk cocoons can be processed into a soluble material that is useful for making biomaterials. Silk fibers have been used for fabrics and threads for centuries, but turning them into a versatile pre-polymer solution is a newer technique. That solution can then be shaped into materials with controllable mechanical properties. The process begins with silk worm cocoons. The silk is solubilized, or dissolved, so it can be handled as a liquid-like solution. The video then shows how that silk...

overview of biomem devices

BioMEMs in Diagnostics and Miniaturization

Bio-microelectromechanical systems, or BioMEMs, are microscale devices used in diagnostic settings. They work with very small sample and reagent volumes in vivo and in vitro, which means inside a living body or outside it in a lab. These compact systems support bioengineering research and help make diagnostic tools more efficient. BioMEMs can carry out functions such as filtration, sensing, and synthesis on a tiny scale. Using less material can lower costs and improve sensitivity. The...

microfabrication via photolithography

Photolithography for Silicon Wafer Patterning

Photolithography is a common microfabrication method used to pattern a silicon wafer. It uses light to transfer a design onto the wafer surface. This process helps form the basis for many BioMEM devices. The page also shows how photolithography is carried out in a cleanroom. Cleanroom steps are important because they support careful fabrication of small, detailed features. The video ends by introducing applications of this process in BioMEM device production.

soft lithography

Photolithography for Microfluidic Device Making

Photolithography and soft lithography are used to make BioMEM devices such as microfluidic channels. A microscale pattern is copied by curing an elastomeric polymer over a 3D structure. The result is a polymer piece that can serve as part of a biological device. These polymer structures are then used to build a range of tools. Some are microfluidic channels for biosensing applications. Others are microscale bioreactors that let scientists visualize micro-colonies. The process also shows how...

overview of bioprocess engineering

Bioreactors and Protein Production in Bioprocessing

Bioprocessing uses living organisms to make a desired target product. In many cases, that product is a protein made in a bioreactor, which is a controlled vessel for growing cells. This process often relies on genetically engineered organisms. Engineers design the system so the cells can produce proteins at large scale. That approach is central to making biotherapeutics, which are drugs made from biological materials. Biotherapeutics are important medicines for complex diseases such as...

synthetic biology

Engineering Cells to Produce Proteins

Synthetic biology is a bioengineering method for programming cells to make useful products. In many cases, the goal is to genetically modify an organism so it can produce large amounts of a protein. That protein may already be made by the cell, or it may come from a newly inserted DNA sequence. The process depends on changing an organism’s genetic material. This is done with transformation or transfection, two common ways to introduce DNA into cells. The video also shows how this work is...

batch and continuous bioreactors

Growing Cells in Bioreactors

Bioreactors are used to grow organisms in large volumes. This makes it possible to produce large amounts of a target product. In laboratory and bioengineering settings, they provide a controlled place for cell growth and product formation. The two main reactor types are batch reactors and continuous reactors. A batch reactor contains all of the materials needed for cell growth at the start. A continuous reactor has inlet and outlet ports, so fresh growth media can be added while cell waste is...

overview of biosensing

How Biosensors Detect Molecules

Biosensors detect biological molecules and chemical contaminants by combining biology with physical measurement. They can identify targets such as proteins or cells, as well as non-biological molecules like chemicals or contaminants. This makes biosensing a useful field for studying and monitoring many kinds of samples. These devices rely on different signal types to find the target molecule. Some biosensors use electrical signals, while others depend on optical, electrochemical, or mechanical...

electrochemical biosensing

Glucose Sensors and Cancer Detection

Electrochemical biosensors detect target molecules by measuring an oxidation-reduction event. That signal changes when a molecule binds to the sensor surface. These sensors helped shape modern biosensing after the first glucose biosensor was invented. The glucose biosensor is a key example of this technology. It shows how electrochemical sensing can track a biological target through a measurable electrical change. The same basic idea also helps explain how electrochemical biosensors can be...

optical biosensing

Detecting Molecules with Light

Optical biosensors detect target molecules with light. They monitor binding by reading an optical signal from the sample. This makes them useful for seeing when a target molecule is present. Some optical biosensors use a label molecule. The label creates a measurable signal, such as fluorescence. Other optical biosensors are label-free and track changes in optical properties, such as refractive index, as binding occurs. This page introduces both label and label-free optical biosensors. It...

overview of tissue engineering

Building Artificial Tissue with Biomaterials

Tissue engineering uses biomaterials, specific cells, and growth factors to build artificial tissue. These engineered tissue constructs are designed for tissue repair and, in some cases, organ replacement. The field focuses on how to make tissue work like natural tissue. It begins with a scaffold, which is a structure that supports cell growth. Cells are then added to the scaffold, and growth factors help encourage proliferation, or cell multiplication. The video also outlines common methods...

histotypic tissue culture

3D Cell Growth on Engineered Matrices

Histotypic tissue culture uses an engineered three-dimensional matrix to grow and propagate cells. Compared with common two-dimensional tissue culture, cells in a 3D setting behave more realistically and better mimic native tissue. The method is useful when high cell density is needed. The process begins by harvesting cells from donor tissue. Those cells are then placed onto an engineered construct for culture. This setup supports growth in a three-dimensional space instead of a flat surface.

whole organ tissue culture

Whole organs can be cultured ex vivo using specialized bioreactors to support repair or replacement of entire organs. In this approach, a donor organ is first stripped of all cells. What remains is the three-dimensional structure of the organ, which can then be repopulated with new cells. The lung is the example shown here. The method uses a dynamic culture system that provides mechanical stimulation, similar to what the organ experiences in the body. This type of culture helps induce native...

bioengineering

This collection covers core bioengineering concepts, which include production of biomaterials, histotypic and whole organ tissue cultures, bioprocessing techniques, and the complex system-level fields of bioMEMs and biosensing.


Learn how donor lungs are decellularized, repopulated with new cells, and grown in bioreactors that provide dynamic mechanical stimulation.

Lung Decellularization and Recellularization

Description

Transcript

Tags