-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
<<<<<<< HEAD
K12 Schools
Biopharma
=======
K12 Schools
>>>>>>> dee1fd4 (fixed header link)

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Lab Manual
Biology
Transpiracja
Transpiracja
Lab Manual
Biology
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
Lab Manual Biology
Transpiration

Transpiracja

Skip to

Concept

Instructor Prep

Student Protocol

11,188 Views
06:55 min
January 29, 2019
AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Procedure

  1. Porównanie szybkości transpiracji liści
    • Aby rozpocząć eksperyment mierzący tempo transpiracji liści różnych gatunków roślin, najpierw stworzysz narzędzie zwane potometrem, używając kawałka plastikowej rurki i skalibrowanej pipety o pojemności 5 ml.
    • Aby zmontować urządzenie, wystarczy przymocować gumową rurkę do końcówki pipety.
    • Następnie zanurz urządzenie w wiadrze z wodą i przesuwaj pipetę pod wodą, aby całkowicie napełnić rurkę, uważając, aby nie tworzyć bąbelków.
    • Następnie zakryj otwarty koniec rurki bańką pipety, aby zatrzymać wodę w środku.
    • Teraz, uważając, aby nie rozlać wody z potometru, użyj zacisku i stań, aby przytrzymać zakryty koniec pipety około 1 - 3 cale poniżej bańki pipety.
    • Następnie użyj drugiego zacisku przymocowanego niżej na tym samym stojaku, aby zabezpieczyć otwarty koniec gumowej rurki.
    • Następnie użyj pipety transferowej lub zakraplacza, aby usunąć wodę z otwartego końca rurki, aż poziom wody w części pipetowej potometru znajdzie się na linii zerowej. HIPOTEZY: W tym eksperymencie hipoteza eksperymentalna może być taka, że liście gatunków roślin bardziej przystosowanych do cieplejszych lub suchych środowisk będą miały niższy współczynnik transpiracji niż te z wilgotnych lub wilgotnych regionów. Hipoteza zerowa zakładałaby, że liście różnych gatunków roślin nie będą się różnić pod względem szybkości transpiracji.
    • Aby rozpocząć eksperyment, ostrożnie użyj nożyczek, aby odciąć koniec ogonka lub łodygi pierwszego liścia, a następnie włóż liść do rurki.
    • Następnie umieść warstwę smaru wokół miejsca, w którym styka się łodyga rośliny i gumowa rurka, aby uzyskać wodoszczelne uszczelnienie.
    • Następnie wyjmij bańkę pipety i uważając, aby nie zakłócić konfiguracji, pozwól eksperymentowi działać przez odpowiedni okres eksperymentalny, zwykle 30 - 60 minut.
    • Pod koniec wyznaczonego czasu zapisz poziom wody w pipecie, zwracając uwagę, jak bardzo spadł poziom w mililitrach.
    • Następnie napełnij i zresetuj poziom wody w potometrze do zera, a następnie powtórz procedurę dla każdego z pozostałych liści testowych, aż do zmierzenia szybkości transpiracji wszystkich czterech liści.
    • Następnie, aby określić powierzchnię próbek liści, połóż każdy liść na czystej kartce papieru i ostrożnie obrysuj kontury.
    • Następnie wytnij kontury i zapisz masę każdego śladu.
    • Na koniec wytnij i zważ jeden kwadrat o wymiarach cztery na cztery centymetry tego samego rodzaju papieru, który został użyty do wykonania śladów liści. Będzie to działać jako odniesienie ze znanym obszarem i wagą.
    • Następnie musisz określić ilościowo liczbę aparatów szparkowych na jednostkę powierzchni na każdym liściu. Aby to zrobić, najpierw przygotuj uchwyt do slajdów, malując co najmniej jeden centymetr kwadratowy spodu każdego liścia przezroczystym lakierem do paznokci. WAŻNE: Upewnij się, że pomalowałeś spód liścia, ponieważ większość aparatów szparkowych się tam znajduje.
    • Gdy lakier do paznokci całkowicie wyschnie, ostrożnie dociśnij mały kawałek taśmy celofanowej bezpośrednio do każdej łatki, a następnie delikatnie odklej taśmę, aby usunąć pomalowaną na niej pastę. UWAGA: Użyj kawałka taśmy, który jest mniejszy niż szkiełko mikroskopu.
    • Następnie umieść każdy wycisk i taśmę na osobnym, czystym szkiełku mikroskopowym. HIPOTEZY: W tym ćwiczeniu alternatywną hipotezą może być to, że liście roślin przystosowanych do bardziej suchego środowiska będą miały mniej aparatów szparkowych na jednostkę powierzchni niż liście roślin przystosowanych do bardziej wilgotnego środowiska. Hipoteza zerowa może polegać na tym, że wszystkie gatunki roślin będą miały równą liczbę aparatów szparkowych na jednostkę powierzchni.
    • Aby obserwować każdy odcisk pod mikroskopem, najpierw użyj małego powiększenia, aby znaleźć obszary odcisku liścia, które zawierają aparaty szparkowe. Będą one wyświetlane jako ciemniejsze kropki lub wyświetlenia.
    • Następnie przełącz się na większe powiększenie, utrzymując okno podglądu próbki wyśrodkowane na obszarze zawierającym aparaty szparkowe.
    • Narysuj i oznacz swoje obserwacje, upewniając się, że każdy szkic jest oznaczony gatunkiem rośliny.
    • Następnie policz i zapisz liczbę aparatów szparkowych w polu widzenia. Liczenie to należy wykonać w sumie cztery razy w czterech różnych obszarach odcisku liścia, a następnie określić średnią liczbę aparatów szparkowych na zliczony obszar na liściu.
    • Aby obliczyć liczbę aparatów szparkowych na mm2, umieść przezroczystą plastikową linijkę na stoliku mikroskopu pod obiektywem i zmierz średnicę pola widzenia.
    • Następnie możesz użyć tej liczby, średnicy lub D, aby obliczyć pole pola widzenia w mm2.
  2. Wyniki
    • Najpierw oblicz powierzchnię papierowego kwadratu o wymiarach 4x4 cm, aby uzyskać liczbę centymetrów kwadratowych.
    • Następnie podziel wagę kwadratu papieru przez liczbę centymetrów kwadratowych, które obejmuje, aby uzyskać gramaturę 1cm2 papieru.
    • Na koniec, aby obliczyć powierzchnię każdego liścia, podziel wagę śladu liścia przez gramaturę 1cm2 papieru. To da ci powierzchnię liścia w centymetrach kwadratowych.
    • Teraz powinieneś przeliczyć tę liczbę na metry do kwadratu, standardową jednostkę używaną do obliczania szybkości transpiracji.
    • Aby obliczyć szybkość transpiracji dla każdego liścia, podziel całkowitą utratę wody, którą zmierzyłeś w potometrze w ml przez czas przeprowadzenia eksperymentu w minutach.
    • Następnie podziel to przez powierzchnię liścia w m2.
    • Zrób wykres słupkowy z czterema różnymi gatunkami liści na osi X i odpowiadającymi im współczynnikami transpiracji na osi Y. Czy te stawki wydają się inne?
    • Następnie dodaj drugą oś Y do swojego wykresu i wykreśl średnią liczbę aparatów szparkowych na milimetr kwadratowy dla każdego liścia, który został zaobserwowany pod mikroskopem. Czy widzisz korelację między szybkością transpiracji a liczbą aparatów szparkowych? Jeśli tak, to czy wydaje się, że ma to jakiś związek z rodzimym środowiskiem, w którym zazwyczaj żyje drzewo?

Transcript

Aby rozpocząć eksperyment polegający na pomiarze szybkości transpiracji liści różnych gatunków roślin, najpierw stworzysz narzędzie zwane potometrem, używając kawałka plastikowej rurki i skalibrowanej pipety o pojemności pięciu mililitrów. Aby zmontować urządzenie, wystarczy przymocować gumową rurkę do końcówki pipety. Następnie zanurz urządzenie w wiadrze z wodą i przesuwaj pipetę pod wodą, aby całkowicie napełnić rurkę, uważając, aby nie tworzyć pęcherzyków.

Następnie zakryj otwarty koniec probówki gruszką pipety, aby zatrzymać wodę w środku. Teraz, uważając, aby nie rozlać wody z miernika, użyj zacisku i stań, aby przytrzymać zakryty koniec pipety około jednego do trzech cali poniżej gruszki pipety. Następnie użyj drugiego zacisku przymocowanego niżej na tym samym stojaku, aby zabezpieczyć otwarty koniec gumowej rurki.

Następnie użyj pipety transferowej lub zakraplacza, aby usunąć wodę z otwartego końca rurki, aż poziom wody w części pipetowej potometru znajdzie się na linii zerowej. W tym eksperymencie hipoteza eksperymentalna może być taka, że liście gatunków roślin bardziej przystosowanych do cieplejszego lub suchego środowiska będą miały niższe wskaźniki transpiracji niż te z wilgotnych lub wilgotnych regionów. Hipoteza zerowa zakładałaby, że liście różnych gatunków roślin nie będą się różnić pod względem szybkości transpiracji.

Aby rozpocząć eksperyment, ostrożnie użyj nożyczek, aby przeciąć koniec ogonka lub łodygi pierwszego liścia, a następnie włóż liść do rurki. Następnie umieść warstwę smaru wokół miejsca, w którym spotyka się łodyga rośliny i gumowa rurka, aby uzyskać wodoszczelne uszczelnienie. Następnie wyjmij gruszkę pipety i uważając, aby nie zakłócić konfiguracji, pozwól eksperymentowi działać przez odpowiedni okres eksperymentu, zwykle od 30 do 60 minut.

Pod koniec wyznaczonego czasu zapisz poziom wody w pipecie, zwracając uwagę, o ile poziom spadł w mililitrach. Następnie napełnij i zresetuj poziom wody w potometrze do zera, a następnie powtórz procedurę dla każdego z pozostałych liści testowych, aż zostaną zmierzone szybkości transpiracji wszystkich czterech liści. Następnie, aby określić powierzchnię próbek liści, połóż każdy liść na czystej kartce papieru i ostrożnie prześledź kontury.

Następnie wytnij kontury i zapisz masę każdego śladu. Na koniec wytnij i zważ jeden kwadrat o wymiarach cztery na cztery centymetry tego samego rodzaju papieru, który został użyty do wykonania śladów liści. Będzie to działać jako odniesienie ze znanym obszarem i wagą.

Następnie musisz określić ilościowo liczbę aparatów szparkowych na jednostkę powierzchni na każdym liściu. Aby to zrobić, najpierw przygotuj uchwyt do slajdów, malując co najmniej jeden centymetr kwadratowy spodu każdego liścia przezroczystym lakierem do paznokci. Gdy lakier do paznokci całkowicie wyschnie, ostrożnie dociśnij mały kawałek taśmy celofanowej bezpośrednio do każdego plastra, a następnie delikatnie odklej taśmę, aby usunąć pomalowany na lakierze.

Następnie umieść każdy wycisk i taśmę na osobnym, czystym szkiełku mikroskopowym. W tym ćwiczeniu alternatywną hipotezą może być to, że liście roślin przystosowanych do bardziej suchego środowiska będą miały mniej aparatów szparkowych na jednostkę powierzchni niż liście roślin przystosowanych do bardziej wilgotnego środowiska. Hipoteza zerowa może polegać na tym, że wszystkie gatunki roślin będą miały równą liczbę aparatów szparkowych na jednostkę powierzchni.

Aby obserwować każdy wycisk pod mikroskopem, najpierw użyj małego powiększenia, aby znaleźć obszary wycisku liścia, które zawierają aparaty szparkowe. Będą one wyświetlane jako ciemniejsze kropki lub wyświetlenia. Następnie przełącz się na większe powiększenie, utrzymując okienko podglądu próbki wyśrodkowane na obszarze zawierającym aparaty szparkowe.

Narysuj i opisz swoje obserwacje, pamiętając, aby każdy szkic oznaczyć gatunkami roślin. Następnie policz i zapisz liczbę aparatów szparkowych w polu widzenia. Liczenie to należy wykonać w sumie cztery razy w czterech różnych obszarach odcisku liścia, a następnie określić średnią liczbę aparatów szparkowych na zliczony obszar na liściu.

Aby obliczyć liczbę aparatów szparkowych na milimetr kwadratowy, umieść przezroczystą plastikową linijkę na stoliku mikroskopu pod obiektywem i zmierz średnicę pola widzenia. Następnie możesz użyć tej liczby, średnicy lub D i pokazanego wzoru, aby obliczyć pole pola widzenia w milimetrach do kwadratu. Najpierw oblicz powierzchnię papierowego kwadratu o wymiarach cztery na cztery centymetry, aby uzyskać liczbę centymetrów kwadratowych.

Następnie podziel wagę kwadratu papieru przez liczbę centymetrów kwadratowych, które pokrywa, aby uzyskać wagę jednego centymetra kwadratowego papieru. Na koniec, aby obliczyć powierzchnię każdego liścia, podziel wagę kalki liściowej przez wagę jednego centymetra kwadratowego papieru. To da ci powierzchnię liścia w centymetrach kwadratowych.

Powinieneś teraz przeliczyć tę liczbę na metry do kwadratu, standardową jednostkę używaną do obliczania współczynnika transpiracji. Aby obliczyć szybkość transpiracji dla każdego liścia, podziel całkowitą utratę wody zmierzoną w potometrze w mililitrach przez czas przeprowadzenia eksperymentu w minutach. Następnie podziel to przez powierzchnię liścia w metrach do kwadratu.

Utwórz wykres słupkowy z czterema różnymi gatunkami liści na osi X i odpowiadającymi im współczynnikami transpiracji na osi Y. Czy te stawki wydają się inne? Następnie dodaj drugą oś Y do wykresu i wykreśl średnią liczbę aparatów szparkowych na milimetr kwadratowy dla każdego liścia, który został zaobserwowany pod mikroskopem.

Czy widzisz korelację między szybkością transpiracji a liczbą aparatów szparkowych? Jeśli tak, to czy wydaje się, że ma to jakiś związek z rodzimym środowiskiem, w którym zazwyczaj żyje drzewo?

Explore More Videos

JoVE Lab Laboratorium: 14 Procedura

Skip to

Concept

Instructor Prep

Student Protocol

Related Videos

Transpiracja

01:10

Transpiracja

Biology

2.9K Wyświetlenia

Transpiracja

06:55

Transpiracja

Biology

11.2K Wyświetlenia

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code