Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Pomiar dynamiki wapnia w pobliżu błony plazmatycznej oraz w całej przestrzeni wewnątrzkomórkowej astrocytów

12.8K wyświetleń

DOI:

10.3791/1142

26 kwietnia 2009

W tym artykule

Podsumowanie

Opisujemy sposób pomiaru dynamiki wapnia wewnątrzkomórkowego w pobliżu błony oraz w całej objętości komórki w hodowlach astrocytów, wykorzystując mikroskopię całkowitego wewnętrznego odbicia oraz epifluorescencyjną.

Streszczenie

Mózg zawiera komórki glejowe. Od dawna wiadomo, że astrocyty, będące rodzajem komórek glejowych, pełnią pasywną rolę wspierającą dla neuronów. Jednak coraz więcej dowodów sugeruje, że astrocyty mogą również aktywnie uczestniczyć w funkcjonowaniu mózgu poprzez funkcjonalne interakcje z neuronami. Niemniej wiele fundamentalnych aspektów biologii astrocytów pozostaje kontrowersyjnych, niejasnych i/lub nieopisanych eksperymentalnie. Ważną kwestią jest dynamika wewnątrzkomórkowych przejściowych zmian stężenia wapnia w astrocytach. Ma to istotne znaczenie, ponieważ wapń jest uznany za ważny drugi przekaźnik, a ponadto wysunięto hipotezę, że wzrost stężenia wapnia w astrocytach może wywoływać uwalnianie z nich neurotransmiterów. Brakuje jednak szczegółowego lub satysfakcjonującego opisu sygnalizacji wapniowej w obrębie błony plazmatycznej astrocytów. Mikroskopia fluorescencyjna z całkownym wewnętrznym odbiciem (TIRF) jest potężnym narzędziem do analizy fizjologicznie istotnych zdarzeń sygnalizacyjnych w odległości około 100 nm od błony plazmatycznej żywych komórek. W niniejszej pracy wykorzystujemy mikroskopię TIRF i opisujemy sposób niemal symultanicznego monitorowania dynamiki wapnia w obrębie błony plazmatycznej oraz globalnej dynamiki wewnątrzkomórkowej. Dalsze dopracowanie i systematyczne zastosowanie tego podejścia może dostarczyć precyzyjnych informacji na temat sygnalizacji wapniowej astrocytów. Szczegółowe zrozumienie dynamiki wapnia w astrocytach może stanowić podstawę do wyjaśnienia, czy, w jaki sposób, kiedy i dlaczego astrocyty i neurony wchodzą w zależne od wapnia interakcje funkcjonalne.

Protokół

PROCEDURY EKSPERYMENTALNE

Procedura eksperymentalna składa się z dwóch kluczowych części, które opisano poniżej krok po kroku.

Część 1: PRZYGOTOWANIE KULTUR ASTROCYTÓW HIPOKAMPA

W skrócie, mieszane kultury astrocytów i neuronów hipokampa przygotowano zgodnie z dobrze ugruntowanym protokołem1,2,3. Zoptymalizowaliśmy procedurę w celu uzyskania zdrowych hodowlanych astrocytów. Wszystkie wymienione poniżej czynności powinny być przeprowadzane w środowisku sterylnym, np. w komorze z laminarnym przepływem powietrza.

Przygotowanie szkiełek nakrywkowy....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

Jest dobrze udokumentowane, że astrocyty wykazują wzrosty stężenia wewnątrzkomórkowego wapnia. Zjawiska te występują spontanicznie lub mogą być wywoływane przez aktywność neuronalną bądź przez aplikację agonistów aktywujących receptory na powierzchni astrocytów11. Ważną i kontrowersyjną kwestią jest to, czy wewnątrzkomórkowe wzrosty stężenia wapnia w astrocytach mogą wywoływać uwalnianie cząsteczek sygnałowych, które aktywują receptory w neuronach11, 12. Kwestia ta pozostaje sporna, ponieważ istniej.......

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Podziękowania

Praca ta była wspierana przez japońską fundację Uehara Memorial Foundation (dla ES), a także przez Whitehall Foundation, National Institute of Neurological Disorders and Stroke oraz nagrodę Stein-Oppenheimer Endowment Award (dla BSK).

....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
VWR® szkiełka nakrywkowe, okrągłe, nr 1NarzędzieVWR International48380-068
Hydrobromek poli-D-lizynyOdczynnikSigma-AldrichP0899
Laminina z błony podstawnej mięsaka mysiego Engelbreth-Holm-SwarmOdczynnikSigma-AldrichL2020
Earle’zrównoważony roztwór soli Earle'a (EBSS) (1X), cieczOdczynnikInvitrogen14155-063
Minimum Essential Medium (MEM) (1X), roztwór. Zawiera Earle’solem, ale bez L-glutaminy i czerwieni fenolowejOdczynnikInvitrogen51200-038
roztwór penicyliny i streptomycynyOdczynnikInvitrogen15140-122
Roztwór pirogronianu soduOdczynnikSigma-AldrichS8636
roztwór HEPES 1 MOdczynnikSigma-AldrichH0887
Suplement N-2 (100X), cieczOdczynnikInvitrogen17502-048
Surowica końska, inaktywowana termicznieOdczynnikInvitrogen26050-088
PAPAIN-022OdczynnikWorthington BiochemicalLK003178
Neurobasal™ Pożywka (1X) płynna bez czerwieni fenolowejOdczynnikInvitrogen12348-017
Suplement bezsurowiczy B-27 (50X), cieczOdczynnikInvitrogen17504-044
L-glutamina 200 mM (100X), roztwórOdczynnikInvitrogen25030-149
Sita do oddzielania komórekNarzędzieBD Biosciences352350
Sterylne wielodołkowe płytki z płaskim dnem i pokrywkami BD FalconNarzędzieBD Biosciences353046
NaClOdczynnikSigma-AldrichS7653
KClOdczynnikSigma-AldrichP3911
CaCl22 heksahydratOdczynnikSigma-Aldrich21108
MgCl₂2 heksahydratOdczynnikSigma-AldrichM2670
kwas HEPESOdczynnikSigma-AldrichH3375
D-(+)-glukozaOdczynnikSigma-AldrichG7528
roztwór Fluo-4, AM o stężeniu 1 mM w DMSOOdczynnikInvitrogenF-14217
Pluronic® 20% roztwór F-127 w DMSOOdczynnikInvitrogenP-3000MP
Olejek imersyjny TYPU DFMikroskopCargill Labs16242
Otwarta komora do okrągłych szkiełek nakrywkowych 25 mm, 100 szt. μobjętośćNarzędzieWarner Instruments64-0362 (RC-21BDW)
Platforma P-2 dla komór serii 20, bez grzałkiNarzędzieWarner Instruments64-0278 (P-2)
mikrosfery FluoSpheres modyfikowane karboksylowo, 0,1 μm, żółto-zielone fluorescencyjne (505/515) 2% ciało stałeOdczynnikInvitrogenF8803

Bibliografia

  1. Richler, E., Chaumont, S., Shigetomi, E., Sagasti, A., Khakh, B. S. An approach to image activation of transmitter-gated P2X receptors in vitro and in vivo. Nature Methods. 5, 87-93 (2008).
  2. Granseth, B., Odermatt, B., Royle, S. J., Lagnado, L.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Tagi

Obrazowanie wapniamikroskopia TIRFhodowla astrocyt wadowanie barwnikiem fluorescencyjnymglobalna dynamika wapniawap w pobli u b onywsp hodowla neuron w hipokampalnychpole ewanescentnefala ewanescentnamikroskopia fluorescencyjna