Artykuł metodologiczny

Oparte na mikroiniekcjach dostarczanie środka terapeutycznego do obudzonego mózgu gryzonia

29 sierpnia 2025

W tym artykule

Streszczenie

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Źródło: Poland, R. i wsp. Mikroiniekcja mózgu gryzoni w celu zbadania molekularnych substratów umotywowanego zachowania. J. Vis. Exp. (2015)

W tym filmie zestaw do mikroiniekcji wypełniony wodą, składający się ze strzykawki i rurki do mikrowstrzykiwaczy, służy do precyzyjnego dostarczania leku. Szczur z wszczepioną kaniulą prowadzącą jest poddawany celowanej mikroiniekcji mózgu, umożliwiającej dokładne podawanie środków terapeutycznych obudzonym zwierzętom przy minimalnym uszkodzeniu tkanek.

Protokół

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Wszystkie procedury z udziałem modeli zwierzęcych zostały zweryfikowane przez lokalną instytucjonalną komisję ds. opieki nad zwierzętami oraz weterynaryjną komisję rewizyjną JoVE.

  1. Przygotowanie strzykawki do mikroiniekcji i mikroiniektora do wstrzykiwania:
    1. Zablokuj każdą gazoszczelną strzykawkę do mikroiniekcji w stojaku pompy do mikroiniekcji.
    2. Umieść końcówkę gazoszczelnej strzykawki w sterylnej wodzie znajdującej się w małej łódce do ważenia i delikatnie potrząśnij tłokiem, aby nasmarować drut wewnętrzny. Równomiernie pociągnij tłok do ogranicznika na pompie, aby napełnić ją wodą.
    3. Wsuń rurkę PE20 podłączoną do mikrowstrzykiwacza na igłę 26 G (brązowa piasta) przymocowaną do strzykawki o pojemności 1 ml wypełnionej sterylną wodą. Rozpyl sterylną wodę przez mikrowtryskiwacz i sprawdź wzór i odległość rozpylania.
      UWAGA: Woda powinna tryskać bardzo daleko i prosto z końcówki mikrowtryskiwacza. Jeśli strumień nie jest prosty, miejsce wstrzyknięcia nie będzie prawidłowe.
    4. Umieść wysterylizowany mikrowstrzykiwacz na sterylnym polu.
    5. Zsuń rurkę z igły, trzymając rurkę mikrowtryskiwacza w pozycji pionowej, aby zapobiec kapaniu wody, jednocześnie przecinając rurkę poniżej obszaru uszkodzonego przez igłę.
    6. Popchnij tłok strzykawki do mikroiniekcji lekko do przodu, aby utworzyć kroplę na końcu igły i wsuń rurkę PE20 wypełnioną wodą (która jest podłączona do mikrowtryskiwacza) na igłę.
      UWAGA: Spowoduje to utworzenie połączenia ciecz-ciecz, które umożliwi odpowiednie przeciwciśnienie, które może usunąć zator, który może powstać na końcówce mikrowtryskiwacza.
    7. Popchnij tłok całkowicie do przodu, aby przygotować się do załadowania próbki i upewnić się, że w mikrowtryskiwaczu nie pozostał śladowy ilość etanolu.
    8. Sprawdź konfigurację pod kątem wycieków, kilkakrotnie dotykając kropli wody, która utworzyła się na końcówce mikrowtryskiwacza, czystą chusteczką laboratoryjną.
  2. UWAGA: Po dotknięciu chusteczki laboratoryjnej powinna powstać tylko jedna mokra plama. Jeśli kropli jest więcej, oznacza to nieszczelność systemu.
  3. Unikaj wycieków, kontrolując nakładanie super kleju i przycinając rurkę PE20 ostrymi nożyczkami lub żyletką za każdym razem, gdy rurka PE20 jest wyjmowana z dowolnego połączenia.
  4. Odciągnąć tłok strzykawki o 0,2 μl, tworząc pęcherzyk między sterylną wodą w wężyku/mikrowstrzykiwaczu PE20 a roztworem, który ma być wstrzykiwany.
  5. UWAGA: Ten pęcherzyk zapobiega rozcieńczeniu iniekcji, zanieczyszczeniu wody i pozwala na monitorowanie procesu wstrzykiwania, ponieważ będzie się poruszał podczas wstrzykiwania. Należy wytworzyć pojedynczy, stały pęcherzyk.
  6. Umieścić mikrowstrzykiwacz w odczynniku, który ma być wstrzykiwany, i powoli pociągnąć tłok strzykawki do blokady.
  7. Przygotowanie zwierzęcia do wstrzyknięcia:
  8. Przyłóż klatkę piersiową szczura do klatki piersiowej eksperymentatora. Oczyść obszar wokół kaniul bawełnianym aplikatorem nasączonym 70% etanolem (v/v).
  9. UWAGA: Przy prawidłowym obchodzeniu się z myszami można delikatnie przytrzymać w złożonej dłoni. W przeciwnym razie może być wymagane scruffing.
  10. Usuń zasłony za pomocą małych kleszczy i umieść je w łodzi wagowej z 70% etanolem (v/v).
  11. Wykonywanie iniekcji:
  12. Umieść napełniony mikrowstrzykiwacz w kaniuli. Nacisnąć przycisk start na pompie do mikroiniekcji i monitorować ruch pęcherzyków.
  13. UWAGA: Może być konieczne lekkie dociśnięcie, aby upewnić się, że mikrowtryskiwacze nie unoszą się. Bańka powinna równomiernie przesuwać się do przodu i całkowicie wchodzić do mikrowtryskiwacza.
  14. Wyjmij mikrowstrzykiwacze z kaniuli i wymień obturatory, po zakończeniu wstrzyknięcia i upływie okresu dyfuzji po wstrzyknięciu.
  15. UWAGA: Typowy czas dyfuzji po wstrzyknięciu wynosi 2 – 4 minuty dla odczynników farmakologicznych i 2 – 10 minut dla wirusów. Pozostawienie mikrowstrzykiwacza w okresie po infuzji zapobiega cofaniu się iniekcji z powrotem w górę kaniuli, a nie dyfuzji do tkanki. Umieść obturatory z boku łodzi wagowej wypełnionej etanolem, aby umożliwić odpływ etanolu przed ponownym włożeniem do kaniuli.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Rurka kaniuliAmazon Supply/ Małe częściHTXX-26T-6026 gauge, Hypotube S / S 316-TW 26GA
ObturatorAmazon Supply/ Małe częściGWXX-0080-30-05Gauge 33, Drut S / S 316LVM 0,008 IN
Drut mikroiniektoraMicroGroup33RW 30433 gauge
Super GlueLoctite3924ACPłyn, nieżelowy, może być autoklawowany
Plastikowe rurki do mikrowtryskiwaczyBecton Dickson427406PE20
Średnia waga HemostatsWorld Precision Instruments501241-G
LinijkaFisher09-016Kleszcze
150 mmStoelting52100-77Dumont, Dumostar
Narzędzie obrotoweDremmel285Dwubiegowa
tarcza tnącaMcMaster Carr360215/16 "x 0,025"
Pompa mikroiniekcyjnaAparat HarvardPhD 2000
1 ul Szklana strzykawkaHamilton7001KHStyl igły: aplikator z bawełnianą końcówką 25 s / 2,75 "/ 3
Fisher23-400-101
Chusteczki laboratoryjneKimwipes34133
Oprogramowanie operacyjneCoulbournGraphic State
Operant ChambersCoulborunHabitest

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

Mikroiniekcja w m zg gryzonidostarczanie czynnik w terapeutycznychiniekcja u czuwaj cego szczurawprowadzanie kaniuli prowadz cejkonfiguracja mikroinjektoramonitorowanie ruchu p cherzyka powietrzaprzygotowanie sterylnej wodyprocedura czyszczenia kaniuliwprowadzanie obturatoraledzenie infuzji leku

Powiązane artykuły