Artykuł metodologiczny

Test Coincubation do badania konkurencyjnych interakcji między szczepami bakterii

26 września 2025

W tym artykule

Streszczenie

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Źródło: Speare, L., et al. Test komonetacyjności do ilościowego określania konkurencyjnych interakcji między izolatami Vibrio fischeri. J. Vis. Exp. (2019 rok)

Ten film przedstawia test współinkubacji używany do badania, w jaki sposób szczepy bakteryjne konkurują ze sobą we wspólnym środowisku. Jest szeroko stosowany w mikrobiologii do identyfikacji mechanizmów, takich jak zabijanie zależne od kontaktu lub niezależne od kontaktu, które napędzają te interakcje.

Protokół

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Równoczesne szczepy (ryc. 1B, C)
    1. Wymieszaj szczep referencyjny i szczep konkurencyjny w stosunku 1:1 (v/v), dodając 100 μl każdego szczepu (znormalizowanego do OD 1,0) do znakowanej 1,5 ml probówki wirówkowej. Jako kontrolę, zmieszaj odkształcenie odniesienia z różnie oznaczoną wersją samego siebie (szczep referencyjny pVSV102 + szczep referencyjny pVSV208). Ta kontrola jest wymagana do późniejszej analizy statystycznej w celu określenia, czy obecność szczepu konkurencyjnego wpływa na wzrost szczepu referencyjnego. Wiruj kulturę mieszanego szczepu przez 1-2 s.
      NUTA: Ten krok może wymagać optymalizacji, ponieważ współczynnik początkowy może znacząco wpłynąć na wyniki i może wymagać dostosowania.
    2. Powtórzyć krok 1 dla każdej kontrpróby biologicznej. Po wykonaniu tego etapu powinno być w sumie osiem probówek ze szczepami mieszanymi: cztery kontrpróby biologiczne z różnie znakowanymi szczepami referencyjnymi (kontrola) i cztery kontrpróby biologiczne z różnie znakowanymi szczepami referencyjnymi i konkurencyjnymi (eksperymentalne).
    3. Umieścić 10 μl każdej mieszaniny kontrolnej i doświadczalnej na płytkach Petriego zawierających agar LBS; Te plamki hodowlane zostaną wykorzystane do mikroskopii fluorescencyjnej po inkubacji.
    4. Pozostawić plamki do całkowitego wyschnięcia na stole do momentu, gdy cały płyn zostanie wchłonięty przez agar i inkubować płytki Petriego w temperaturze 24 °C przez 24 godziny. Szczepy V. fischeri oznaczone pVSV102 i pVSV208 potrzebują co najmniej 15 godzin, aby osiągnąć wystarczająco wysoką gęstość komórek, aby uwidocznić odpowiednio białko zielonej fluorescencji (GFP) i białko czerwonej fluorescencji (RFP) na poziomie populacji za pomocą mikroskopu fluorescencyjnego. W tym przypadku stosujemy 24-godzinną inkubację do obrazowania mieszanych miejsc.
      NUTA: Ważne jest, aby używać talerzy, które nie są zbyt wilgotne ani zbyt suche. Jeśli płytki są zbyt wilgotne, plamki coincubation nie zostaną wchłonięte przez płytkę agarową; Unikaj używania talerzy wylanych tego samego dnia. Jeśli płytki są zbyt suche, na powierzchni agaru mogą tworzyć się małe fale lub pęknięcia, co sprawia, że plamki coincubation mają nieregularny kształt.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
figure-results-1

Rysunek 1: Schemat blokowy ilustrujący test coincubacji. (A) Szczepy bakteryjne zawierające pVSV102 (szczep referencyjny oznaczony jako Ref. Strain lub R.S.) lub pVSV208 (szczep konkurencyjny oznaczony jako Comp. Strain lub C.S.) są...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Probówki do mikrowirówek 1,5 mlRybak05-408-129 
Pipeta wielokanałowa 10 μl   
Pipeta wielokanałowa 100 μl   
Pipeta wielokanałowa 300 μl   
Pipeta jednokanałowa 10 μl   
Pipeta jednokanałowa 20 μl   
Pipeta jednokanałowa 200 μl   
Pipeta jednokanałowa 1000 μl   
Płytki 24-dołkoweRybak07-200-84sterylne z pokrywką
Płytki PetriegoRybakFB0875713sterylne z pokrywką
System startowy TipOne 0,1-10 μlUSA Naukowe1111-350010 stojaków
System startowy TipOne 200 μLUSA Naukowe1111-50010 stojaków
System startowy TipOne 1000 μLUSA Naukowe1111-252010 stojaków
Nośniki LBS
1M bufor Tris (pH ~ 7,5)  50 ml 1 M bufor podstawowy (62 ml HCl, 938 ml wody DI, 121 g zasady Trizma)
AgarTechniczny rybakDF0812-17-915 g (dodać tylko do talerzy)
Woda DI  950 ml
Chlorek soduRybakZobacz materiał S640-320 gramów
TryptonRybakBP9726510 gramów
Ekstrakt drożdżowyRybakZobacz materiał BP9727-25 gramów

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

Konkurencja bakteryjnamarkery fluorescencyjnezabijanie zale ne od kontaktuzabijanie niezale ne od kontaktumikroskopia fluorescencyjnainkubacja na p ytkach agarowychidentyfikacja szczep w

Powiązane artykuły