Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Produkcja i osadzanie zarodników Bacillus subtilis w aerozolu

1.2K wyświetleń

⸱

30 października 2025

W tym artykule

Streszczenie

Źródło: Fuchs, F. M., et al. Badanie szkodliwego wpływu niskociśnieniowej sterylizacji plazmowej na przetrwanie zarodników Bacillus subtilis przy użyciu mikroskopii żywych komórek. J. Vis. Exp. (2017)

Ten film demonstruje produkcję, oczyszczanie i osadzanie zarodników Bacillus subtilis w aerozolu w celu stworzenia jednolitej monowarstwy, umożliwiającej dalsze zastosowania, takie jak analiza mikroskopowa kiełkowania, żywotności lub reakcji na stres zarodników.

Protokół

1. Produkcja i oczyszczanie zarodników Bacillus subtilis

  1. W celu produkcji przetrwalników przenieść 5 ml nocnej kultury odpowiedniego szczepu B. subtilis , uzupełnionej odpowiednimi antybiotykami, do 200 ml płynnej pożywki zarodnikowej Schaeffera o podwójnej mocy (na litr 16 g bulionu odżywczego, KCl (chlorek potasu) 2 g, 0,5 g MgSO4*7 H2O (siarczan magnezu siedmiowodny), 2 ml 1 M Ca(NO3)2 (azotan wapnia), 2 ml 0,1 M MnCl2 *• 4 H2O (czterowodny chlorek manganu), 2 ml 1 mMFeSO4 (siarczan żelazawy), 2 ml 50% (w/v) glukozy18) i uprawiać z energicznym napowietrzaniem w temperaturze 37 °C przez 72 godziny lub do momentu> gdy 95% kultury ulegnie zarodnikowaniu. Wykorzystywane są zarodniki następujących szczepów: B. subtilis PY79 (typ dziki) B. subtilis PY79ΔrecA::neo (niedobór białka naprawy DNA RecA) B. subtilis PY79 recA-yfp::cat (RecA połączony z białkiem żółtej fluorescencji [YFP]).
  2. Zebrać zarodniki przez wirowanie przez 15 minut przy 3 000 x g w probówkach o pojemności 50 ml i oczyścić próbki przez wielokrotne mycie (do 15 razy) przy użyciu sterylnego destylowanegoH2Oi sprawdzić czystość i stan kiełkowania za pomocą mikroskopii z kontrastem fazowym. Upewnij się, że zawiesiny zarodników składają się z zarodników jasnych fazowo (> 99%) i są wolne od komórek wegetatywnych (pręcików), kiełkujących zarodników (wygląd/szary) i resztek komórkowych; W przeciwnym razie dalsze eksperymenty mikroskopowe mogą zostać zakłócone. Myć próbkę aż do osiągnięcia pożądanej czystości.
  3. Oznaczyć miano przetrwalników, rozsiewając 50 μl 10-krotnych seryjnych rozcieńczeń na agarze LB (luria-bertani) (tj.: Użyć 30 μl próbki + 270 μl sterylnej wody do rozcieńczenia 1:10. Pobrać 30 μl z danego rozcieńczenia do 270 μlH2Odla rozcieńczenia 1:100 i tak dalej) w celu obliczenia CFU (jednostek tworzących kolonie) i inkubować płytki w temperaturze 37 °C przez noc. Po oznaczeniu CFU dostosować próbkę do 10-9 zarodników na ml, zagęszczając lub rozcieńczając sterylną wodą.

2. Przygotowanie próbki zarodników Bacillus subtilis osadzonych w aerozolu

NUTA: Nagromadzenie i nakładanie się zarodników może prowadzić do efektu zacienienia podczas zabiegu, co ostatecznie prowadzi do sfałszowanej kinetyki inaktywacji. Aby zminimalizować ten problem, należy przygotować próbki zarodników techniką osadzania w aerozolu. Krótko mówiąc, steruj precyzyjną dyszą dwusubstancyjną za pomocą elektrycznego timera, który reguluje przepływ cieczy wraz z przepływem sprężonego gazu nośnego (tutaj N2). Rozproszyć wstrzykniętą próbkę cieczy przez wylot dyszy za pomocą przepływu azotu gazowego.

  1. Umieścić nośnik próbki w postaci wysterylizowanych szkiełek mikroskopowych (do kinetyki przeżycia) lub okrągłych szkiełek nakrywkowych o średnicy 25 mm (do fluorescencyjnego śledzenia procesów naprawy DNA/cLSM; konfokalnej laserowej mikroskopii skaningowej) wewnątrz elektrycznie sterowanego urządzenia do rozpylania aerozoli w jednej linii z dyszą. Użyte stężenie zarodników musi odpowiadać stukrotności pożądanego stężenia końcowego.
  2. Przenieść 1 ml kultury przetrwalników do wlotu płynu dyszy i rozpocząć proces opryskiwania trwający 0,1 s pod ciśnieniem 1,3 bara. Rozpylona zawiesina zarodników (1 x 107) tworzy cienką warstwę na mikroskopijnym szkiełku, która szybko wysycha w ciągu kilku sekund, tworząc równomiernie rozłożoną monowarstwę zarodników. Nośniki próbek poddanych działaniu substancji należy przechowywać w sterylnym pojemniku w temperaturze pokojowej.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Dysza do dwóch substancji (model 970-8)Schlick14,404230 V, 50 Hz, D 4.484/8, średnica otworu 0,8 mm
Luria Bertani MediumSigma Aldrich70122-100G 
Łączniki ruroweFestoN/aG 1/8
Szkiełka szklaneFirma VWR48300-026 
Komora celna attofluorowaMenzel, Fisher Ref.3406816d=25 mm, okrągły
Siarczan magnezu siedmiowodnySigma Aldrich13152 
Azotan wapniaSigma Aldrich202967 
Chlorek manganu czterowodnySigma Aldrich244589 
Siarczan żelazawyZastosowanie13446-34-9 
GlukozaMerck215422 
Chlorek potasuSigma AldrichZobacz materiał P9541-500G 
Bulion odżywczy (NB)Merck105443 
Luria-Bertani (LB)Merck110283 
Płytka 96-dołkowaRybak termiczny243656 

Przeglądaj więcej artykułów

Produkcja przetrwalnikówdepozycja aerozoluoczyszczanie przetrwalnikówmikroskopia fazowo-kontrastowarozcieńczenia seryjneoznaczanie CFUpożywka do sporulacjiprzemywanie przez wirowaniejednorodna monowarstwa