Artykuł metodologiczny

Wyczerpanie moczu i płukanie pęcherza moczowego w modelu mysim: procedura oparta na cewniku do opróżniania i mycia mysiego pęcherza moczowego

30 kwietnia 2023

W tym artykule

Streszczenie

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Źródło: Yu, C. et al. Nowatorska metoda dostarczania plazmidowego DNA do nabłonka moczowego myszy metodą elektroporacji. J. Vis. Exp. (2018)

W tym filmie opisujemy procedurę opartą na cewniku, która ma na celu opróżnienie i przepłukanie pęcherza moczowego modelu myszy. Tak przygotowana mysz może być następnie wykorzystana do dalszych procedur eksperymentalnych.

Protokół

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Wszystkie procedury dotyczące modeli zwierzęcych zostały sprawdzone przez lokalny instytucjonalny komitet opieki nad zwierzętami oraz weterynaryjną komisję rewizyjną JoVE.

1. Zwierzę znieczulające

  1. Użyj stołowego systemu znieczulającego, aby znieczulić zwierzę izofluranem. Włącz zbiornikO2 i ustaw przepływomierz tlenu na 1 l/min.
  2. Umieść dorosłą samicę myszy C57BL/6J w komorze indukcyjnej. Włącz i ustaw waporyzator izofluranu na 3% w celu indukcji. Mysz powinna być w znieczuleniu w ciągu 2 minut. Podać podskórnie buprenorfinę przeciwbólową (0,1 mg/kg) po wyjęciu myszy z komory indukcyjnej w celu prewencyjnego znieczulenia.
    nuta: W tym protokole wykorzystuje się samice myszy, ponieważ są one łatwiejsze w pracy podczas cewnikowania cewki moczowej. Protokół działa również w przypadku samców myszy, ale konieczna jest dodatkowa ostrożność.
  3. Nałóż maść okulistyczną na oczy zwierzęcia, aby zapobiec wysuszeniu. Połóż znieczuloną mysz przodem do góry na poduszce grzewczej, tak aby jej nos znajdował się w stożku nosowym. Przekręć przełącznik obwodu powietrza, aby izofluran mógł przejść przez stożek nosowy.
  4. Umocuj głowę i stożek nosowy taśmą klejącą. Dostosuj parownik izofluranu do 2% w celu konserwacji.
  5. Unieruchomić kończyny taśmą klejącą. Wykonaj testy szczypania palców u stóp, aby upewnić się, że zwierzę jest w głębokim znieczuleniu, a następnie ogol okolice brzucha.

2. Wyczerpanie moczu i płukanie pęcherza

  1. Nałóż lubrykant na cewnik (24G, długość 2,11 cm, średnica zewnętrzna 0,045 cm) i upewnij się, że jego zewnętrzna powierzchnia jest całkowicie pokryta.
  2. Włóż cewnik do otworu cewki moczowej i powoli dociśnij go, aż dotrze do pęcherza, po czym mocz powinien wypłynąć przez cewnik. Delikatnie uciskaj brzuch, aby pomóc w odprowadzaniu moczu.
    1. Sprawdź, czy cewnik jest prawidłowo wprowadzony do pęcherza, obserwując automatyczny odpływ moczu. Unikaj przekłuwania cewki moczowej i ściany pęcherza moczowego i w razie potrzeby kilkakrotnie nałóż lubrykant.
  3. Wylać mocz za pomocą pipety do zlewki na odpady.
  4. Odpipetować 80 μl soli fizjologicznej buforowanej fosforanami (PBS) do zewnętrznego końca cewnika, tak aby drugi koniec nadal znajdował się w pęcherzu moczowym. Ostrożnie przymocować strzykawkę o pojemności 1 ml do cewnika. Delikatnie wepchnąć strzykawkę, aby wstrzyknąć PBS do pęcherza moczowego. Pozostaw trochę PBS w cewniku, aby uniknąć tworzenia się pęcherzyków powietrza w pęcherzu.
  5. Wyjąć strzykawkę. Poczekaj, aż PBS spłynie z pęcherza. Delikatnie naciśnij brzuch, aby ewakuować PBS.
  6. Wyrzucić PBS z cewnika za pomocą pipety do zlewki na odpady.
  7. Powtórz pranie PBS (kroki od 2.4 do 2.6) jeszcze dwa razy.
    nuta: Na tych etapach prania należy pracować delikatnie. Krew w cewniku lub niewydolność automatycznego odpływu płynu zwykle wskazuje na przekłucie cewki moczowej

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
Nie stwierdzono konfliktu interesów.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Strzykawka BD 1 ml TBrybakNumer katalogowy: 148232E
Exel International Jednorazowe cewniki dożylne SafeletFisher NaukowyNumer katalogowy 14-841-2124G, długość 2,11 cm, średnica zewnętrzna 0,045 cm
Podgrzewana mata spoczynkowa K&H dla małych zwierząt, 9 na 12 caliAmazonkaPrzykryj matę grzewczą ręcznikami papierowymi
Maść okulistycznarybakNC0849514
PBS, pH 7,4Technologie życiowe10010049
Końcówki do pipet 200 μLUSA NaukoweNumer katalogowy: 1111-0206
Maść okulistyczna rybak NC0849514
Końcówki do pipet, uniwersalne dopasowanie; 0,1 do 10 μlrybak02707438(CS)
Buprenorfina Sigma B9275-50MG
PIPETMAN NEO P2GilsonF144561
PIPETMAN NEO P200NGilsonF144565
Therio-gel Smar weterynaryjnyPBS Zdrowie zwierząt353-736
V-1 Znieczulenie systemowe stołoweWyposażenie weterynaryjne901806
Izofluran Weterynarz jeden 501017
Taśma klejącarybak19047257

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

P cherz myszyprocedura cewnikowaniap ukanie w PBStechnika sterylnawprowadzanie do cewki moczowejiniekcja soli fizjologicznejdrena p yn wprzygotowanie eksperymentalne

Powiązane artykuły