Usunięcie górnego gruczołu łzowego: technika chirurgiczna polegająca na usunięciu części powiekowej i oczodołowej górnego gruczołu łzowego z modelu królika

Streszczenie

Źródło: Honkanen, R. A. et al., Ustanowienie modelu ciężkiego suchego oka za pomocą pełnej dacryoadenektomii u królików. J. Vis. Exp. (2020).

Ten film opisuje procedurę chirurgiczną polegającą na usunięciu dwóch części: powiekowej i oczodołowej gruczołu łzowego górnego u królika w celu stworzenia modelu choroby suchego oka. Ten model królika nadaje się do badań homeostazy powierzchni oka, patofizjologii i terapii ocznej.

Protokół

Wszystkie procedury dotyczące modeli zwierzęcych zostały sprawdzone przez lokalny instytucjonalny komitet opieki nad zwierzętami oraz weterynaryjną komisję rewizyjną JoVE.

Użyj królików nowozelandzkich białych (NZW) o wadze 2−3 kg Lekko uspokajające zwierzęta umieszczone w torbie krępującej z podskórną acepromazyną, jak wyżej (1 mg/kg). Usuń całe futro z twarzy i grzbietowej powierzchni czaszki, aby uwidocznić punkty orientacyjne operacji. Przytnij futro nożycami tnącymi, pozostawiając resztki cienkiego futra o długości około 1 mm. Usuń wszystkie resztki sierści za pomocą łagodnego kremu do depilacji, postępując zgodnie z instrukcjami producenta.

1. Usunięcie OSLG

1. Naciekać miejsca nacięć (chirurgiczne linie pióra znakującego i górną tylną powiekę) mieszaniną 50:50 2% lidokainy z epinefryną 1:100 000 i 0,5% bupiwakainy za pomocą strzykawki o pojemności 5 cm3 z igłą 30 G (ryc. 1A).
   nuta: Rozmiar strzykawki i igły nie ma decydującego znaczenia.
2. Użyj igły Colorado podłączonej do jednostki elektrochirurgicznej, aby wykonać nacięcia skóry wzdłuż oznaczeń chirurgicznych. Ustawienia mogą się różnić w zależności od odpowiedzi klinicznej i zazwyczaj wynoszą od 10 do 15 jednostek zarówno w przypadku cięcia, jak i koagulacji (ryc. 1B).
3. Zastosuj przeciwstawne napięcie w poprzek nacięcia skóry, aby oddzielić tkanki i odsłonić leżące pod spodem włókna mięśniowe frontoscutularis.
4. Zastosuj nacisk przyśrodkowy na kulę ziemską, aby pomóc w wizualizacji OSLG, widzianej jako wybrzuszona tkanka znajdująca się tylko przyśrodkowo lub głęboko do włókien mięśniowych frontoscutularis. W razie potrzeby przesuń te włókna mięśniowe na bok, aby odsłonić leżące pod spodem nacięcie.
5. Za pomocą kleszczyków zębatych (0,3) i nożyczek do kapsulotomii delikatnie wycofaj i odetnij włóknistą kapsułkę pokrywającą OSLG. OSLG ma zazwyczaj bladobrązowy kolor (ryc. 1C).
6. Za pomocą kleszczy zębatych lub nieząbkowanych chwyć tkankę gruczołu OSLG i delikatnie wyciągnij ją przez górne nacięcie za pomocą techniki "ręka nad ręką". Wytnij małe, włókniste pasma za pomocą nożyczek kapsulotomijnych, aby uwolnić gruczoł z jego pozycji na orbicie (ryc. 1D).
   nuta: Gdy tkanka gruczołu OSLG zostanie usunięta, zacznie łączyć się w dużą strukturę przypominającą rurkę (główny przewód wydalniczy).
7. Gdy gruczoł zostanie usunięty tak całkowicie, jak to możliwe, użyj obfitej kauteryzacji za pomocą igły Colorado, aby uzyskać zwęglenie tkanki, skracając gruczoł w nacięciu tak głęboko, jak to możliwe. Będzie to później służyć jako punkt orientacyjny potwierdzający podczas usuwania PSLG.

2. Usunięcie PSLG.

1. Narysuj górną powiekę za pomocą aplikatora z bawełnianą końcówką. Bulwiasty koniec PSLG jest zwykle dobrze widoczny.
   nuta: W niektórych rozwarstwieniach anatomicznych możliwe jest uwidocznienie głównego przewodu wydalniczego jako bladej liniowej struktury o szerokości około 1 lub 2 mm.
2. Zaczepić PSLG za pomocą kleszczy zębatych (0.3) i cofnąć go od powierzchni powieki, używając nożyczek do kapsulotomii, aby przeciąć wokół jego podstawy, oddzielając go od leżącego poniżej stępu (ryc. 2A).
3. Kontroluj umiarkowane krwawienie za pomocą kauteryzacji monopolarnej.
4. Zastosuj ciągłą trakcję na oddzielonej tkance, aby utrzymać płaszczyznę tkanki do rozwarstwienia. Umożliwi to również usunięcie głównego przewodu wydalniczego SLG (ryc. 2B).
   nuta: W miarę przeprowadzania sekcji zazwyczaj przesuwa się ona do górnej krawędzi oczodołu, gdzie można zobaczyć ślady kauteryzacji pozostawione po usunięciu bardziej górnego i przyśrodkowo położonego OSLG.

Wyniki

Rysunek 1: Usunięcie OSLG.(A) Miejsca chirurgiczne są infiltrowane środkiem znieczulającym za pomocą kombinacji 50:50 2% lidokainy z 1:100 000 epinefryny i 0,5% bupiwakainy, którą wstrzykuje się do górnej powieki i wzdłuż linii nacięcia, aby zminimalizować dyskomfort podczas zabiegu. (B) Igła do mikrodysekcji Colorado służy do nacinania skóry i powierzchownych warst...

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule

Nazwa	Firma	Numer katalogowy	Komentarze
acepromazyna, Aceproinj	Henry Schein Animal Health, Dublin, OH	NDC11695-0079-8	0,1 ml / kg wstrzyknięcie podskórne w celu uspokojenia królika
Torba do krępowania zwierząt	Henry Schein Animal Health, Dublin, OH	Jorvet J0170	Użyj torby o odpowiednim rozmiarze.
bupiwakaina, 0,5%	Hospira Inc, Jezioro Leśne IL	NDC: 0409-1162-02	Zmieszany 50:50 z 2% lidokainą z 1:100 000 epinefryną do infiltracji miejsc nacięć.
Igła Colorado	Stryker Czaszkowo-szczękowo-twarzowy, Kalamazoo, MI	Zobacz materiał N103A	Stosować z unitem elektrochirurgicznym do wykonywania nacięć
Unit elektrochirurgiczny z monopolarną płytką kauteryczną	Valleylab, Głaz, Kolorado	Wymuś FXc	Stosować z unitem elektrochirurgicznym do wykonywania nacięć
kleszcze, biskup Harmon	Bausch and Lomb (Storz), Bridgewater	NJ E1500-C	Użyj kleszczy zębatych do dacryoadenektomii
Igła, rozmiar 30	BD, Franklin Lakes, Nowy Jork	NR KAT. 305106	Do infiltracji miejsc nacięć; rozmiar strzykawki i igły nie ma decydującego znaczenia
królik, Nowa Zelandia Biały	Charles River Labs, Waltham, Massachusetts	(NZW) 2-3 kg	Zwierzęta badawcze
nożyczki, Vannas McKesson	Medyczno-chirurgiczny, San Francisco, Kalifornia	Miltex 2-130	Nożyczki do kapsulotomii do dakrioadenektomii
strzykawka, 5 ml	BD, Franklin Lakes, Nowy Jork	NR KAT. 309603	Do infiltracji miejsc nacięć; rozmiar strzykawki i igły nie ma decydującego znaczenia

powiedział: